Uji Infeksi Phaeophleospora sp. pada Klon Hibrid Eucalyptus Grandis X Eucalyptus Urophylla

LAMPIRAN

Lampiran 1. Data Intensitas Serangan (IS) Pengamatan I

No. Klon Ulangan Rataan

U1 U2 U3 U4 U5 U6 U7 U8 U9 U10

1 IND 47 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0

2 IND 61 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0

3 IND 66 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0

Total 0

Pengamatan II

No. Klon Ulangan Rataan

U1 U2 U3 U4 U5 U6 U7 U8 U9 U10

1 IND 47 7,5 0 0 26,032 12 0 0 13,333 0 12,5 7,1365

2 IND 61 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0

3 IND 66 0 1,818 0 0 0 0 0 0 0 0 0,1818

Total 7,3183

Tabel ANOVA Sumber Keragaman Derajat Bebas Jumlah Kuadrat Kuadrat

Tengah F Hitung F Tabel

Perlakuan 2 331,102 165,551 6,3348 3.354

Galat 27 705,607 26,1336

Total 29 1036,71

Pengamatan III

No. Klon Ulangan Rataan

U1 U2 U3 U4 U5 U6 U7 U8 U9 U10

1 IND 47 21,5 0 0 31,111 10 10 22,5 26,190 15,556 17,5 15,4357 2 IND 61 5,744 0 22 0 17,778 8 8 5 5 5,179 7,6700 3 IND 66 12,5 14,545 7,5 10 0 10,909 12,727 15 0 5,454 8,8636

Total 31,9693

Tabel ANOVA Sumber Keragaman Derajat Bebas Jumlah Kuadrat Kuadrat

Tengah F Hitung F Tabel

Perlakuan 2 349,745 174,872 2,7584 3,354

Galat 27 1711,7 63,3962

Pengamatan IV

No. Klon Ulangan Rataan

U1 U2 U3 U4 U5 U6 U7 U8 U9 U10

1 IND 47 20 5 0 28,485 28,485 9 23,333 28,571 19,798 16,5 17,9172 2 IND 61 6,667 0 30 0 0 9 9 8,3333 8,3333 7,143 7,8476 3 IND 66 13 15,227 18,889 13,590 13,590 18,182 13,636 22 0 7,692 13,5806

Total 39,3455

Tabel ANOVA Sumber Keragaman Derajat Bebas Jumlah Kuadrat Kuadrat

Tengah F Hitung F Tabel

Perlakuan 2 510,236 255,118 3,503 3,354

Galat 27 1966,37 72,8286

Total 29 2476,61

Pengamatan V

No. Klon Ulangan Rataan

U1 U2 U3 U4 U5 U6 U7 U8 U9 U10

1 IND 47 17,333 10,5 0 23,916 7,381 7,821 17,778 28,571 15,944 13 14,2244 2 IND 61 6,039 0 27,818 0 15,944 8,333 8,333 7,381 6,111 8,929 8,8889 3 IND 66 13 14,762 20,444 12,308 7,381 18,182 10,308 17,333 0 7,253 12,0971

Total 35,2103

Tabel ANOVA Sumber Keragaman Derajat Bebas Jumlah Kuadrat Kuadrat

Tengah F Hitung F Tabel

Perlakuan 2 144,287 72,1434 1,2548 3,354

Galat 27 1552,74 57,5089

Total 29 1697,03

Pengamatan VI

No. Klon Ulangan Rataan

U1 U2 U3 U4 U5 U6 U7 U8 U9 U10

1 IND 47 16,667 18 0 21,846 7,363 7,692 13,905 28,571 15,385 14,167 14,3595 2 IND 61 5,556 0 20,357 0 14,564 8,531 8,531 6,25 5,556 8,762 7,8108 3 IND 66 11,111 15,238 18,667 10,833 6,25 16,364 12,667 12,917 0 16,392 12,0438

Tabel ANOVA

Sumber Keragaman

Derajat Bebas

Jumlah Kuadrat

Kuadrat

Tengah F Hitung F Tabel

Perlakuan 2 220,559 110,28 2,50 3,354

Galat 27 1190,83 44,1049

Lampiran 2. Data Luas Serangan (A) Pengamatan I

No. Klon Ulangan Rataan

U1 U2 U3 U4 U5 U6 U7 U8 U9 U10

1 IND 47 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0

2 IND 61 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0

3 IND 66 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0

Total 0

Pengamatan II

No. Klon Ulangan Rataan

U1 U2 U3 U4 U5 U6 U7 U8 U9 U10

1 IND 47 10,833 0 0 52,063 36 14 22,5 26,667 22,5 50 23,4563 2 IND 61 13,846 0 20 3,333 0 8 5,455 4 0 0 5,4634 3 IND 66 0 14,545 17,778 13,333 24 24 23,434 0 0 0 11,7091

Total 40,6288

Tabel ANOVA Sumber Keragaman Derajat Bebas Jumlah Kuadrat Kuadrat

Tengah F Hitung F Tabel

Perlakuan 2 1669,18 834,588 5,0173 3,354

Galat 27 4491,21 166,341

Total 29 6160,38

Pengamatan III

No. Klon Ulangan Rataan

U1 U2 U3 U4 U5 U6 U7 U8 U9 U10

1 IND 47 31 10 0 62,222 34 26 47,5 52,381 33,333 50 34,6437 2 IND 61 27,179 20 27 16,667 33,333 20 27,273 16,667 26,667 20,714 23,55 3 IND 66 25 41,818 31,389 36,667 38 38,909 47,273 22,5 21,818 21,818 32,5192

Total 90,7128

Tabel ANOVA Sumber Keragaman Derajat Bebas Jumlah Kuadrat Kuadrat

Tengah F Hitung F Tabel

Perlakuan 2 693,432 346,716 2,1152 3,354

Galat 27 4425,71 163,915

Pengamatan IV

No. Klon Ulangan Rataan

U1 U2 U3 U4 U5 U6 U7 U8 U9 U10

1 IND 47 32 15 0 56,970 34,667 27 46,667 57,143 35,152 50 35,4597 2 IND 61 34,667 18 34 28,462 33,939 36 37,622 23,333 38,333 31,429 31,5785 3 IND 66 26 47,424 42,778 47,692 46 49,091 47,832 33 27,273 23,077 39,0167

Total 106,055

Tabel ANOVA Sumber Keragaman Derajat Bebas Jumlah Kuadrat Kuadrat

Tengah F Hitung F Tabel

Perlakuan 2 276,808 138,404 0,8492 3,354

Galat 27 4400,58 162,985

Total 29 4677,39

Pengamatan V

No. Klon Ulangan Rataan

U1 U2 U3 U4 U5 U6 U7 U8 U9 U10

1 IND 47 34,667 21 0 47,832 29,524 23,462 35,556 57,143 31,888 43,333 32,4404 2 IND 61 36,235 14,762 46,364 30,769 31,888 33,333 36,264 22,143 42,778 32,143 32,6679 3 IND 66 26 44,286 40,889 50,769 44,286 63,636 41,231 26 23,916 21,758 38,2771

Total 103,385

Tabel ANOVA Sumber Keragaman Derajat Bebas Jumlah Kuadrat Kuadrat

Tengah F Hitung F Tabel

Perlakuan 2 218,607 109,304 0,6316 3,354

Galat 27 4672,36 173,051

Total 29 4890,97

Pengamatan VI

No. Klon Ulangan Rataan

U1 U2 U3 U4 U5 U6 U7 U8 U9 U10

1 IND 47 33,333 40 0 43,692 26,374 23,077 27,810 57,143 30,769 41,667 32,3864 2 IND 61 33,333 13,571 33,929 27,143 36,410 25,594 35,294 31,25 38,889 30,515 30,5929 3 IND 66 25 42,857 37,333 50 37,5 63,636 42,667 22,5 23,077 38,118 38,2688

Tabel ANOVA

Sumber Keragaman

Derajat Bebas

Jumlah Kuadrat

Kuadrat

Tengah F Hitung F Tabel

Perlakuan 2 322,465 161,232 1,0802 3,354

Galat 27 4029,94 149,257

Lampiran 3. Data Perhitungan One way ANOVA & Uji Lanjut DMRT Intensitas Serangan Menggunakan SPSS 21.0

Tabel Intensitas Serangan pada akhir pengamatan (Pengamatan VI)

No. Klon Ulangan Rataan

U1 U2 U3 U4 U5 U6 U7 U8 U9 U10

1 IND 47 16,667 18 0 21,846 7,363 7,692 13,905 28,571 15,385 14,167 14,3595 2 IND 61 5,556 0 20,357 0 14,564 8,531 8,531 6,25 5,556 8,762 7,8108 3 IND 66 11,111 15,238 18,667 10,833 6,25 16,364 12,667 12,917 0 16,392 12,0438

Total 34,2141

Oneway

Descriptives

Intensitas Serangan

N Mean Std.

Deviation

Std. Error 95% Confidence Interval for Mean

Lower Bound Upper Bound IND 47 10 14,359524 8,0104291 2,5331201 8,629208 20,089840 IND 61 10 7,810755 6,1426320 1,9424708 3,416581 12,204929 IND 66 10 12,043833 5,5150432 1,7440098 8,098609 15,989058 Total 30 11,404704 6,9762914 1,2736907 8,799714 14,009694

Descriptives

Intensitas Serangan

Minimum Maximum

IND 47 ,0000 28,5714

IND 61 ,0000 20,3571

IND 66 ,0000 18,6667

Total ,0000 28,5714

Test of Homogeneity of Variances

Intensitas Serangan Levene

Statistic

df1 df2 Sig.

,445 2 27 ,645

ANOVA

Intensitas Serangan

Sum of Squares

df Mean Square F Sig. Between Groups 220,559 2 110,280 2,500 ,101 Within Groups 1190,831 27 44,105

Lampiran 4. Data Perhitungan One Way ANOVA & Uji Lanjut DMRT Luas Serangan Menggunakan SPSS 21.0

Tabel Luas Serangan pada akhir pengamatan (Pengamatan VI)

No. Klon Ulangan Rataan

U1 U2 U3 U4 U5 U6 U7 U8 U9 U10

1 IND 47 33,333 40 0 43,692 26,374 23,077 27,810 57,143 30,769 41,667 32,3864 2 IND 61 33,333 13,571 33,929 27,143 36,410 25,594 35,294 31,25 38,889 30,515 30,5929 3 IND 66 25 42,857 37,333 50 37,5 63,636 42,667 22,5 23,077 38,118 38,2688

Total 101,248

Oneway

Descriptives

Luas Serangan

N Mean Std.

Deviation

Std. Error 95% Confidence Interval for Mean

Lower Bound

Upper Bound IND 47 10 32,386447 15,2058264 4,8085045 21,508854 43,264040 IND 61 10 30,592856 7,2300247 2,2863346 25,420808 35,764905 IND 66 10 38,268808 12,8172050 4,0531561 29,099932 47,437684 Total 30 33,749370 12,2508338 2,2366860 29,174834 38,323907

Descriptives

Luas Serangan

Minimum Maximum

IND 47 ,0000 57,1429

IND 61 13,5714 38,8889

IND 66 22,5000 63,6364

Total ,0000 63,6364

Test of Homogeneity of Variances

Luas Serangan Levene Statistic

df1 df2 Sig.

1,318 2 27 ,284

ANOVA

Luas Serangan

Sum of Squares

df Mean Square F Sig. Between Groups 322,465 2 161,232 1,080 ,354 Within Groups 4029,940 27 149,257

DAFTAR PUSTAKA

Agrios G.N. 1996. Ilmu Penyakit Tumbuhan. Gadjah Mada University Press. Yogyakarta.

Alfenas, A.C. Potential and Present Status of Eucalyptus and Acacia mangium in Northern Sumatera. Universidade Federal de Vicosa. Departamento de Fitopatologia. Brazil.

Andjic, V., Hardy, G.E., Cortinas, M.N., Wingfield, M.J., Burgess, T.I. 2007. Multiple Gene Genealogies Reveal Important Relationships Between Species of Phaeophleospora Infecting Eucalyptus leaves. FEMS Microbiol Lett 268 (2007) 22–33.

Barber, P.A. (2004) Forest Pathology: The Threat of Disease to Plantation Forests in Indonesia. Plant Pathology Journal, 3 (2). pp. 97-104. Murdoch University.

Bos, L. 1994. Pengantar Virologi Tumbuhan, Penerjemah Triharso. Gadjah Mada University Press. Yogyakarta.

Burgess, T.I., et al. 2004. First Report of Phaeophleospora destructans in China. Institute of Tropical Forestry, Londong, Guangzhou. China. Journal of Tropical Forest Science 18(2): 144-146 (2006)

Darwo. 1997. Evaluasi Hasil Inventarisasi Tegakan Eucalyptus urophylla di HTI. PT. Indo Rayon Utama, Sumatera Utara. Jurnal Konifera No.1/Thn. XIII/April/1997.

Kapisa. N., H. A. F. Mashud dan R. Harahap. 1999. Pemilihan Jenis Eucalyptus sp. Laporan Satu Tahun Setelah Penanaman. Buletin Penelitian Kehutanan. Balai Penelitian Kehutanan. Pematang Siantar.

Khaeruddin, 1999. Pembibitan Tanaman Hutan Tanaman Industri (HTI). Cetakan kedua. Penebar Swadaya. Jakarta.

Nair, K. S. S. 2000. Insects Pest and Diseases in Indonesian Forest an Assessment of the Major Threats, Research Efforte and Literature. Center for International Forestry Research (CIFOR). Bogor.

Old, K.M., Wingfield, M.J. and Z.Q. Yuan, 2003. A Manual of Diseases of Eucalypts in South-East Asia. Center for International Forestry Research (CIFOR), Bogor.

Old, K.M., Pongpanich, K., Thu, P.Q., Wingfield, M.J., and Yuan, Z.Q. 2003. Phaeophleospora Destructans Causing Leaf Blight Epidemics in South East Asia.

Poerwowidodo. 1991. Gatra Tanah dalam Pembangunan Hutan Tanaman di Indonesia. Penerbit Rajawali. Jakarta.

Pratama, T. D. 2013. Pemetaan Potensi Simpanan Karbon Hutan Tanaman Industri Tegakan Eucalyptus spp. (Studi Kasus di Hutan Tanaman Industri PT. Toba Pulp Lestari, Tbk., Sektor Aek Nauli). [Skripsi]. Universitas Sumatera Utara. Medan.

SAPPI. 2014. Tree Farming Guidelines for Private Growers. Southern Africa. Sastrosupadi, A. 2000. Rancangan Percobaan Praktis Bidang Pertanian. Penerbit

Kanisius. Yogyakarta.

Semangun, H. 2001. Pengantar Ilmu Penyakit Tumbuhan. Gadjah Mada University Press. Yogyakarta.

Sembiring, K.A. 2009. Karakteristik Patogen Penyebab Penyakit Hawar Daun pada Daun Bibit Tanaman Eucalyptus spp. di PT Toba Pulp Lestari Tbk. Kabupaten Toba Samosir, Sumatera Utara. [Skripsi]. Universitas Sumatera Utara. Medan.

Siahaan, L.A. 2010. Studi terhadap Penyakit Daun Eukaliptus di Kebun Percobaan PT. Toba Pulp Lestari Sektor Aek Nauli. _{[Skripsi]. Universitas}

Sumatera Utara. Medan.

Simpson, J.A., Xiao Y., H.Q. Bi. 2005. Phaeophleospora epicoccoides Leaf Disease of Eucalyptus in China. Australasian Mycologist24 (1): 13-14. Sinaga, S. N. 2003. Ilmu Penyakit Hutan. Penebar Swadaya. Jakarta.

Sondang, L.M. 2009. Uji Infeksi Mycosphaerella spp. terhadap Bibit Eucalyptus spp. [Skripsi]. Universitas Sumatera Utara. Medan.

Sutisna, U., T. Kalima dan Purmadjaja. 1998. Pedoman Pengenalan Pohon Hutan di Indonesia. Disunting oleh Soetjipto, N.W dan Soekotjo. Yayasan PROSEA Bogor dan Pusat Diklat Pegawai & SDM Kehutanan. Bogor. Uganda Tree Resources. 2012. [http://ugandatreeresource.com/][14 Januari 2015] Wahyu. 2008. Konsep Timbulnya Penyakit Tanaman. Institut Pertanian Bogor. Wingfield, M.J. 2006. Survey of Plantation Diseases in The Kirinci and Lake

Toba Areas Belonging to The April Group. University of Pretoria. Republic of South Africa.

Wingfield, M.J. 2008. Evaluation of Nursery and Tree Health Problems in April Group Plantations in Kirinci and Lake Toba. University of Pretoria. Republic of South Africa.

Wingfield, M.J. 2010. Nursery and Tree Health Evaluations in Plantations in North and South Sumatera. University of Pretoria. Republic of South Africa.

METODE PENELITIAN

Tempat dan Waktu Penelitian

Penelitian dilakukan di lokasi pembibitan PT. Toba Pulp Lestari, Tbk. Kec. Parmaksian, Toba Samosir dan di Laboratorium Bioteknologi Program Studi Kehutanan Fakultas Pertanian Universitas Sumatera Utara. Penelitian dilakukan pada bulan Juli sampai Desember 2014.

Bahan dan Alat

Bahan

Bahan yang digunakan dalam penelitian adalah klon IND 47, IND 61, dan IND 66 turunan Eucalyptus grandis x Eucalyptus urophylla di PT. Toba Pulp Lestari, Tbk, alkohol 70% dan Kloroks 0,3%, air steril, spritus, tisu dan kapas, serta PDA (Potatoe Dextrose Agar).

Alat

Alat yang digunakan dalam penelitian adalah kaca pembesar, plastik sampel/amplop, sarung tangan, masker pernafasan, kertas milimeter, mikroskop, cawan petridish, labu erlenmeyer, pinset, spatula, jarum ose, timbangan analitik, oven dan otoklaf, kaca preparat dan gelas penutup, serta gelas ukur.

Prosedur Penelitian

Tahapan prosedur penelitian adalah:

1. Pengambilan sampel tanaman yang sakit dan yang sehat

Tanaman Eucalyptus sp. yang sakit atau yang bergejala digunakan sebagai bahan isolasi untuk mencari patogen Phaeophleospora sp., sedangkan tanaman Eucalyptus sp. yang sehat atau yang tidak bergejala digunakan

sebagai bahan pengamatan setelah patogen Phaeophleospora sp. diperoleh dan disemprotkan ke tanaman.

2. Isolasi patogen

Tanaman yang sakit atau yang bergejala dibersihkan dengan menggunakan kloroks, setelah dibersihkan diambil dengan menggunakan pinset dan dikeringkan lalu dipotong-potong dengan ukuran 1x1 cm, kemudian diisolasi ke dalam cawan petri dengan media PDA (Potatoe Dextrose Agar). Setelah 3 hari dilakukan kembali pengisolasian tetapi isolasi yang dilakukan adalah isolasi biakan murni dengan ketentuan tidak mengalami kontaminasi lagi. Setelah 14 hari dan tidak terjadi kontaminasi maka dapat dilakukan identifikasi fungi dengan menggunakan mikroskop dengan perbesaran 1000x. 3. Pengamatan patogen

Jamur yang telah berumur 14 hari diambil dengan cara dipotong dan diambil dengan pinset yang steril. Dimasukkan ke dalam cawan petri kemudian diletakkan di atas preparat dan ditutupi dengan kaca objek lalu dimasukkan ke dalam kotak tray. Setelah 4 hari dapat diamati di bawah mikroskop dengan perbesaran 1000x.

4. Penyiapan inokulum

Biakan yang telah murni diambil lalu dimasukkan ke dalam cawan petri yang telah diisi aquades sebanyak 10 ml dan kemudian dikikis dengan menggunakan pengait, bagian atas biakan dikikis tanpa mengenai medianya. Setelah semua bagian permukaan terkikis lalu disaring dengan menggunakan kain kassa. Hal ini dilakukan sebanyak 30 kali sesuai dengan jumlah tanaman yang ada setelah selesai dimasukkan ke dalam tabung reaksi dan diberi label.

5. Pelaksanaan inokulasi

Sebelum inokulasi dilakukan, bibit tanaman sehat dipindahkan ke dalam polybag yang telah diisi top soil lalu dipindahkan ke dalam rumah kaca. Tanaman dipelihara selama satu minggu untuk penyesuaian di rumah kaca. Inokulasi dilakukan dengan metode penyemprotan inokulum (campuran 10 ml aquades dengan spora Phaeophleospora sp.) ke tanaman. Inokulasi dilakukan menggunakan hand sprayer.

Setiap tanaman disemprotkan 10 ml inokulum dan dilakukan secara bergantian terhadap tanaman. Penyemprotan dilakukan di dalam sungkup. Setelah penyemprotan inokulum, tiap tanaman lalu disungkup selama 1 x 24 jam. Keesokan harinya sungkup dibuka dan dimulai pengamatan gejala yang muncul pada daun tanaman. Pengamatan terhadap infeksi fungi Phaeophleospora pada tanaman Eucalyptus spp. dilakukan selama 30 hari dengan selang pengamatan enam kali.

6. Uji infeksi

Dilakukan untuk mengetahui intensitas serangan dan luas serangan Phaeophleospora sp. terhadap tanaman Eucalyptus sp. Agrios (1996) mengungkapkan intensitas serangan/keparahan penyakit (KpP) didefinisikan sebagai persentase luasnya jaringan tanaman yang terserang patogen dari total luasan yang diamati. Luas serangan/keterjadian penyakit (KjP) merupakan persentase jumlah tanaman yang terserang patogen (n) dari total tanaman yang diamati (N).

Parameter pengamatan

a. Intensitas Serangan

Parameter yang diamati adalah perubahan yang dialami oleh daun setelah inokulasi. Pengamatan dilakukan terhadap lima daun teratas. Daun yang diamati diberi tanda dan disesuaikan dengan skala bercak daun (0-5) dalam (Sinaga, 2003).

Skala bercak terdiri dari:

Skala 0: tidak ada bercak pada daun Skala 1: terdapat bercak daun 1/16 bagian Skala 2: terdapat bercak daun 1/8 bagian Skala 3: terdapat bercak daun 1/4 bagian Skala 4: terdapat bercak daun 1/2 bagian

Skala 5: terdapat bercak daun pada seluruh bagian permukaan daun Nilai intensitas serangan ditentukan dengan rumus:

IS = ∑ � � �

� � � x 100%

Towsend dan Heiiberger (1943) dalam Sinaga (2003). Keterangan:

IS : Intensitas serangan

n : jumlah daun pada skala ke-i v : skala ke-i

N : jumlah total daun setiap tanaman Z : skala tertinggi

b. Luas Serangan

Luas serangan ditentukan dengan cara menghitung jumlah daun yang terserang pada setiap bibit kemudian membaginya dengan jumlah seluruh daun dari bibit yang diamati.

A = �

� x 100 %

Keterangan: A : luas serangan

n : jumlah daun yang terserang penyakit Phaeophleospora sp. N : jumlah seluruh daun dari bibit yang diamati

Tabel 1. Penilaian tingkat intensitas dan luas serangan penyakit dan reaksi tanaman

No Nilai Intensitas dan Luas Serangan (%) Kategori Reaksi Tanaman

1 0% Imun

2 1 % - 25 % Resisten (R)

3 26 % - 50 % Agak Resisten (AR)

4 51 % - 75 % Agak Rentan (Ar)

5 76 % - 100 % Rentan (r)

Sumber : Sembiring (1985) dalam Sinaga (2003)

Analisis Data

Rancangan percobaan yang digunakan pada penelitian ini menggunakan meodel rancangan acak lengkap (RAL) non faktorial dengan model linier sebagai berikut:

Yij= μ + τi + εij Keterangan:

Yij = pengamatan pada perlakuan ke-i dan ulangan ke-j

μ = rataan umum

τi = pengaruh perlakuan ke-i

εij = pengaruh acak pada perlakuan ke-i dan ulangan ke-j i = perlakuan ke-i (1,2,3)

j = ulangan ke-j (1,2,3...,10)

Data yang diperoleh dari lapangan ditransformasikan menggunakan transformasi logaritma. Jika diperoleh rancangan berbeda nyata pada interaksi antara tanaman dengan kelas umur akan dilanjutkkan dengan menggunakan rancangan DMRT (Duncan’s Multiple Range Test) (Sastrosupadi, 2000).

Hipotesis yang akan diuji adalah terdapat perbedaan respon jenis klon Eucalyptus spp. turunan E. grandis x E. urophylla terhadap infeksi Phaeophleospora sp.

HASIL DAN PEMBAHASAN

1. Isolasi dan Identifikasi Phaeophleospora sp.

Fungi Phaeophleospora sp. didapatkan dengan mengambil sampel daun berpenyakit pada areal pembibitan PT Toba Pulp Lestari, Tbk, Kecamatan Parmaksian. Pengambilan sampel daun berpenyakit dilakukan dengan menjadikan buku panduan A Manual of Diseases of Eucalypts in South-East Asia (Old et al., 2003) sebagai pedoman lalu membandingkannya dengan gejala penyakit yang timbul pada daun pada tanaman di areal pembibitan. Gejala yang ditunjukkan berupa bercak daun berwarna kemerahan pada permukaan atas daun dan adanya spora berwarna hitam pada bagian permukaan bawah daun.

Untuk genus fungi Phaeophleospora, jenis Phaeophleospora epicoccoides dan Phaeophleospora destructans merupakan fungi yang paling banyak menyerang tanaman Eukaliptus di areal pembibitan ini (Wingfield, 2006). Gejala yang ditimbulkan kedua jenis fungi ini juga tidak jauh berbeda, hal ini sesuai dengan pernyataan Andjic, et al. (2007) bahwa gejala infeksi yang disebabkan oleh P. epicoccoides, P. eucalypti dan P. destructans hampir identik dan sering terjadi kesalahan analisis, tergantung pada inang dan iklim.

Sampel daun berpenyakit dibawa ke laboratorium Bioteknologi Kehutanan, Fakultas Pertanian Universitas Sumatera Utara untuk kemudian dibiakkan. Hasil dari biakan murni tersebut didapatlah fungi Phaeophleospora sp., yang tampilan makroskopisnya dapat dilihat pada Gambar 3.

Gambar 3. Tampilan makroskopis Phaeophleospora sp. pada media PDA

Biakan murni fungi Phaeophleospora sp. memiliki penampilan berwarna merah muda (pink), pertumbuhannya lambat, teksturnya seperti berbulu dan tebal, serta penyebarannya merata ke segala arah. Ciri-ciri biakan murni ini sesuai dengan salah satu jenis fungi Phaeophleospora sp. yang dikemukakan oleh Burgess et al. (2004) bahwa P. destructans berwarna kemerahmudaan, pertumbuhannya lambat, dan agak lembut.

Selain pengamatan makroskopis, dilakukan juga pengamatan mikroskopis terhadap biakan murni. Pengamatan mikroskopis dilakukan untuk memastikan apakah biakan murni yang kita dapat memang benar jenis Phaeophleospora sp. yang kita inginkan. Pengamatan dilakukan dengan memerhatikan bentuk konidia lalu membandingkannya dengan sumber literatur-literatur yang ada. Hasil pengamatan dapat dilihat pada Tabel 2.

Tabel 2. Hasil pengamatan mikroskopis Phaeophleospora sp.

No. Katerangan Karakteristik Mikroskopis biakan murni

Karakteristik Mikroskopis Phaeophleospora sp.*

1 Spora

*Sumber: First Report of Phaeophleospora destructans in China (Burgess, et al., 2004)

Hasil pengamatan mikroskopis pada biakan murni Phaeophleospora sp. menunjukkan bahwa sporanya berbatang panjang, bersepta dua, dan tampilannya tipis. Hal ini dipertegas dengan pernyataan Burgess et al. (2004) tentang fungi Phaeophleospora destructans, bahwa spora Phaeophleospora destructans berbentuk panjang dan tipis. Spora memiliki dimensi rata-rata 40,1 x 2,4 µm dan bersepta 1-2. Jadi, melalui pengamatan makroskopis dan mikroskopis yang telah dilakukan dapat diambil kesimpulan bahwa biakan murni yang ditemukan adalah jenis Phaeophleospora destructans.

Berikut taksonomi dari Phaeophleospora destructans Kingdom : Fungi

Phylum : Ascomycota Class : Dothideomycetes Ordo : Capnodiales

Family : Mycosphaerellaceae Genus : Phaeophleospora

2. Gejala Penyakit Phaeophlespora sp. pada Tanaman Eucalyptus spp.

Bibit Eukaliptus yang digunakan sebagai sampel untuk uji infeksi merupakan bibit hasil persilangan antara Eucalyptus grandis dengan Eucalyptus urophylla. Bibit klon hibrid ini digunakan sebanyak tiga klon, yakni IND 47, IND 61, dan IND 66, serta berumur dua bulan, diulang sebanyak sepuluh kali.

Tabel 3. Perkembangan gejala penyakit pada daun IND 47, IND 61, dan IND 66

Klon Gejala Awal Gejala Lanjutan

IND 47

IND 61

IND 66

Ket. Gejala awal berupa bercak kekuningan pada permukaan atas daun

Gejala lanjutan ditandai dengan munculnya bercak kemerahan pada permukaan atas daun

Gejala awal yang ditunjukkan oleh penyakit ini adalah adanya bercak kekuningan pada permukaan atas daun. Bercak ini menyebabkan hijau daun memudar. Besar dan letak bercaknya berbeda-beda pada setiap daun. Pada awal

kemunculannya, tidak terdapat spora hitam pada permukaan bawah daun. Tanaman sudah menunjukkan gejala pada pengamatan II setelah inokulasi.

Gejala lanjutan menunjukkan pada permukaan atas daun yang terdapat bercak kekuningan kemudian muncul bercak kemerahan. Beberapa hari kemudian, pada lokasi bercak kemerahan tersebut muncul spora hitam pada permukaan bawah daun. Hal ini sesuai dengan pernyataan Old, et al. (2003) bahwa gejala Phaeophleospora yang ditunjukkan berupa bercak daun berwarna kemerahan pada permukaan atas daun dan adanya spora berwarna hitam pada bagian permukaan bawah daun.

Karakteristik lain dari gejala yang ditimbulkan oleh fungi Phaeophleospora adalah munculnya awal gejala selalu dimulai dari daun yang paling bawah atau paling pangkal. Bila daun paling bawah sudah terjangkiti, biasanya setelah beberapa hari akan diikuti oleh munculnya awal gejala pada daun di atasnya. Hal yang sama sudah dipaparkan oleh Old, et al. (2003) apabila satu daun tanaman telah terinfeksi patogen ini maka akan terjadi penularan penyakit pada daun yang berdekatan hingga dapat mengakibatkan kematian bibit tanaman. Penularan sering kali terlihat dimulai dari bagian pangkal bibit tanaman hingga mencapai daun bagian ujung tanaman. Maka dari itu fungi ini tergolong sebagai patogen yang agresif yang dapat menyebabkan gugurnya daun pada usia muda, seperti yang diungkapkan Barber (2004) spesies ini adalah patogen agresif yang dapat menyebabkan hawar daun yang luas pada daun muda dan gugurnya daun pada usia muda sebagai akibat dari nekrosis daun dan tangkai daun.

3. Intensitas Serangan (IS)

Pengamatan terhadap infeksi fungi Phaeophleospora pada tanaman Eucalyptus spp. dilakukan selama 30 hari dengan selang pengamatan enam kali. Pengukuran intensitas serangan dilakukan dengan metode scoring pada lima daun teratas tiap ulangan percobaan. Daun yang diamati diberi tanda dan disesuaikan dengan nilai skor (0-5) (Sinaga, 2003). Hasil scoring kemudian ditransformasikan ke dalam formula nilai intensitas serangan. Nilai intensitas serangan (IS) setiap selang pengamatan dapat dilihat dalam tabel 4 berikut.

Tabel 4. Rata-rata Intensitas Serangan (IS) Pengamatan I-Pengamatan VI

No Klon Intensitas Serangan (IS) (%)

I II III IV V VI

1 IND 47 0 7,137 15,436 17,917b 14,224 14,360 2 IND 61 0 0 7,670 7,848a 8,889 7,811 3 IND 66 0 0,182 8,864 13,581ab 12,097 12,044

Keterangan : Angka yang diikuti huruf kecil yang tidak sama berbeda nyata pada taraf 5% berdasarkan uji DMRT, sedangkan yang tidak bernotasi menunjukkan tidak berbeda nyata.

Gambar 4. Grafik Rata-rata Intensitas Serangan (IS) Pengamatan I-Pengamatan VI Tanaman mulai menunjukkan gejala pada pengamatan II (± sepuluh hari setelah inokulasi). Namun tidak semua klon sudah menunjukkan gejala serangan

0 2 4 6 8 10 12 14 16 18 20

I II III IV V VI

IND 47 IND 61 IND 66

Phaeophleospora tersebut, hanya klon IND 47 dan IND 66 yang sudah mulai timbul gejala yaitu sebesar 7,137% dan 0,182%. Pada pengamatan III, ketiga klon sudah menunjukkan gejala akibat serangan Phaeophleospora. Tanaman-tanaman yang sebelumnya masih tampak sehat sudah mulai menunjukkan gejala serangan. Angka yang ditunjukkan terus meningkat hingga mencapai puncak pada pengamatan IV (± dua puluh hari setelah inokulasi). Setelah pengamatan IV, tidak ada lagi penambahan angka karena tidak ada lagi tanaman yang memunculkan gejala seperti pada pengamatan-pengamatan sebelumnya.

Dapat dilihat pada tabel dan grafik bahwa peningkatan intensitas serangan secara signifikan dimulai pada pengamatan III (± lima belas hari setelah proses inokulasi). Hal ini dapat diasumsikan bahwa setelah minggu ketiga, fungi Phaeophleospora sudah mencapai tahap untuk menginfeksi tubuh jaringan, dalam hal ini adalah daun, dari tanaman Eucalyptus spp. Sementara di lain pihak, kondisi jaringan tanaman sudah semakin melemah karena adanya patogen yang menginfeksi. Seperti disebutkan oleh Agrios (1996) bahwa terjadinya suatu penyakit paling sedikit diperlukan tiga faktor yang mendukung, yaitu tanaman inang atau host, penyebab penyakit atau patogen, dan faktor lingkungan. Pengaruh komponen patogen dalam timbulnya penyakit sangat tergantung pada kehadiran patogen, jumlah populasi patogen, kemampuan patogen untuk menimbulkan penyakit yaitu berupa kemampuan menginfeksi (virulensi) dan kemampuan menyerang tanaman inang (agresivitas).

Pengujian DMRT dilakukan sejak pengamatan IV hingga pengamatan VI. Hal ini dilakukan karena pada pengamatan IV mulai tampak perbedaan nyata dari hasil analisis data (tabel 4). Hasil uji lanjut DMRT pada pengamatan IV

memperlihatkan bahwa klon IND 47 menunjukkan respon yang berbeda nyata terhadap serangan Phaeophleospora, namun tidak berbeda nyata dibandingkan dengan klon IND 66. Pengamatan V hingga pengamatan VI tidak menunjukkan perbedaan nyata dari hasil analisis data. Karena tidak menunjukkan perbedaan nyata dari hasil analisis data maka uji lanjutan DMRT tidak perlu untuk dilakukan pada pengamatan V dan pengamatan VI.

Pada akhir pengamatan (pengamatan VI) dilakukan penilaian akhir tentang resistensi tanaman berdasarkan hasil scoring lalu dihubungkan dengan tabel penilaian tingkat instensitas serangan dan reaksi tanaman (tabel 1). Angka-angka yang ditunjukkan pada pengamatan VI berturut-turut mulai dari IND 47, IND 61, dan IND 66 adalah 14,360%, 7,811%, dan 12,044%. Nilai intensitas serangan tertinggi terdapat pada klon IND 47 pengamatan IV senilai 17,917%. Berdasarkan angka-angka yang ditunjukkan pada pengamatan VI ketiga klon ini masuk dalam kategori resisten (R) karena dari angka statistik yang ditunjukkan pada setiap klon berada dalam kisaran 1-25%.

4. Luas Serangan (A)

Luas serangan diperoleh dengan cara menghitung jumlah daun yang terserang pada setiap tanaman kemudian membaginya dengan jumlah seluruh daun dari setiap tanaman yang diamati. Pengamatan terhadap tanaman Eucalyptus spp. dilakukan selama 30 hari dengan selang pengamatan enam kali.

Tabel 5. Rata-rata Luas Serangan (A) Pengamatan I-Pengamatan VI

No Klon Luas Serangan (A) (%)

I II III IV V VI

1 IND 47 0 23,456b 34,644 35,460 32,440 32,386 2 IND 61 0 5,463a 23,55 31,579 32,668 30,593 3 IND 66 0 11,709ab 32,519 39,017 38,277 38,269

Keterangan : Angka yang diikuti huruf kecil yang tidak sama berbeda nyata pada taraf 5% berdasarkan uji DMRT, sedangkan yang tidak bernotasi menunjukkan tidak berbeda nyata.

Gambar 5. Grafik Rata-rata Luas Serangan (A) Pengamatan I-Pengamatan VI

Gejala serangan mulai ditunjukkan pada pengamatan II (± sepuluh hari setelah inokulasi). Ketiga klon IND 47, IND 61, dan IND 66 sudah menunjukkan gejala serangan akibat Phaeophleospora. Grafik yang ditunjukkan terus meningkat dari pengamatan III hingga pengamatan IV. Namun tidak semua klon sudah mencapai puncak serangan pada pengamatan IV karena pada klon IND 61 baru mencapai puncak pada pengamatan V (± 25 hari setelah pengamatan), sedangkan klon IND 47 dan IND 66 sudah menunjukkan penurunan pada grafik. Pada pengamatan VI, ketiga klon sudah menunjukkan penurunan grafik.

Grafik pada gambar 7 menunjukkan puncak grafik ditunjukkan pada pengamatan IV lalu setelah itu perlahan-lahan menurun pada pengamatan V hingga pengamatan VI. Faktor yang menyebabkan penurunan serangan fungi Phaeophleospora ini bisa disebabkan karena umur bibit Eukaliptus semakin bertambah. Seperti yang diungkapkan oleh Bos (1994) yang menyatakan bahwa

0 5 10 15 20 25 30 35 40 45

I II III IV V VI

IND 47 IND 61 IND 66

semakin tinggi umur tanaman maka akan memiliki ketahanan yang lebih besar dari umur yang lebih muda.

Kesehatan tanaman juga memiliki pengaruh dalam menurunnya serangan fungi Phaeophleospora. Kesehatan tanaman dapat dikenali dari pertambahan tinggi tanaman dan pertambahan jumlah daun yang normal. Seperti diungkapkan Wahyu (2008) bahwa faktor lain dari inang yang berpengaruh terhadap kemungkinan terserangnya sutu penyakit adalah kesehatan tanaman inang. Tanaman yang sehat merupakan tanaman yang mempunyai pertumbuhan baik (daun dan batang segar), batang lurus, dan tajuk lebat.

Pengujian DMRT dilakukan sejak pengamatan II hingga pengamatan VI. Hal ini dilakukan karena pada pengamatan II mulai tampak perbedaan nyata dari hasil analisis data (tabel 4). Seperti halnya pada intensitas serangan, hasil uji lanjut DMRT pada pengamatan II memperlihatkan bahwa klon IND 47 menunjukkan respon yang berbeda nyata terhadap serangan Phaeophleospora, namun tidak berbeda nyata dibandingkan dengan klon IND 66. Pengamatan III hingga pengamatan VI tidak menunjukkan perbedaan nyata dari hasil analisis data. Karena tidak menunjukkan perbedaan nyata dari hasil analisis data maka uji lanjutan DMRT tidak perlu untuk dilakukan pada pengamatan III dan pengamatan VI.

Pada akhir pengamatan, angka-angka yang didapatkan adalah 32,386%, 30,593%, dan 38,269% pada klon IND 47, IND 61, dan IND 66. Bila dihubungkan dengan tabel penilaian tingkat luas serangan dan reaksi tanaman (tabel 1) ketiga jenis klon ini termasuk dalam kategori agak resisten (AR). Berarti dalam hal ini, klon-klon hibrid tesebut masih dalam kategori bisa menoleransi

serangan penyakit. Hal ini sejalan dengan tujuan pengembangan Eukaliptus hibrida yang disebutkan dalam Uganda Tree Resources (2012) bahwa penggunaan klon Eukaliptus hasil hibrida ditujukan karena hasil hibrida ini lebih resisten terhadap hama dan penyakit yang mungkin menyerang pohon.

Tidak semua tanaman pada ketiga klon menunjukkan gejala akibat Phaeophleospora. Tanaman pada IND 47 U3 sama sekali tidak menunjukkan gejala serangan pada seluruh daun tanaman tersebut. Hal ini membuktikan bahwa adanya sifat tanaman dapat berbeda-beda. Hal ini sesuai dengan pernyataan Habeshaw (1984) dalam Sondang (2009) yang menyatakan walaupun inokulum diberikan pada waktu yang sama ke semua tanaman tetapi ketahanan tanaman tersebut berbeda-beda.

Hasil analisis data pengamatan terakhir kedua parameter di atas, yaitu intensitas dan luas serangan, klon-klon IND 47, IND 61, dan IND 66, menunjukkan perbedaan yang tidak signifikan terhadap infeksi Phaeophleospora. Hal ini berarti bahwa klon-klon itu mempunyai tingkat resistensi yang sama. Tingkat resistensi yang sama ini juga secara tidak langsung ditunjukkan oleh gejala penyakit Phaeophleospora yang timbul pada klon-klon tersebut. Gejala yang tampak pada klon-klon tersebut adalah sama, yaitu berupa bercak daun berwarna kemerahan pada permukaan atas daun dan adanya spora berwarna hitam pada bagian permukaan bawah daun. Penelitian ini tidak menggunakan klon-klon resisten sebagai pembanding. Hal ini disebabkan karena sampai saat ini belum ditemukan secara resmi klon-klon yang secara fisiologis resisten terhadap Phaeophleospora.

Pengembangan klon-klon tanaman secara massal dimaksudkan untuk menghasilkan individu-individu tanaman yang mempunyai sifat beragam-ragam. Klon-klon yang mempunyai resistensi yang sama dapat berbahaya jika digunakan terus-menerus pada suatu areal tanam karena sifat resisten tersebut hanya dapat menghambat perkembangan patogen. Dalam hal ini patogen mempunyai potensi merusak di kemudian hari karena patogen juga berkembang untuk memahami karakteristik calon inangnya.

KESIMPULAN DAN SARAN

Kesimpulan

1. Gejala pada daun yang diakibatkan Phaeophleospora pada tiga klon IND 47, IND 61, dan IND 66 hibrid turunan Eucalyptus grandis x Eucalyptus urophylla menunjukkan gejala yang sama. Gejala awal yang muncul adalah adanya titik kekuningan pada permukaan atas daun dan kemudian berkembang menjadi bercak. Gejala lanjutan berupa bercak daun berwarna kemerahan pada permukaan atas daun dan adanya spora berwarna hitam pada bagian permukaan bawah daun.

2. Hasil pengamatan terakhir menunjukkan ketiga klon IND 47, IND 61, dan IND 66 merupakan klon-klon yang tergolong resisten (R) pada pengukuran intensitas serangan (IS). Pada pengukuran luas serangan (A), ketiga klon tergolong agak resisten (AR).

3. Hasil uji infeksi Phaeophleospora pada tiga klon IND 47, IND 61, dan IND 66 menunjukkan reaksi yang sama sehingga dapat dikatakan bahwa ketiga klon yang digunakan mempunyai tingkat resistensi yang sama. Hal ini didukung oleh hasil analisis data yang tidak signifikan pada intensitas dan luas serangan.

Saran

Sebaiknya dilakukan penelitian lain mengenai patogen Phaeophleospora seperti, strain patogen, atau keragaman genetis patogen, atau keragaman virulensinya terhadap Eukaliptus.

TINJAUAN PUSTAKA

Eukaliptus (Eucalyptus sp.)

Tanaman Eucalyptus spp. merupakan famili Myrtaceae, terdiri atas lebih kurang 700 jenis. Jenis Eucalyptus sp. dapat berupa semak dan perdu sampai mencapai ketinggian 100 meter. Batang umumnya bulat, lurus, tidak berbanir dan sedikit bercabang. Pohon pada umumnya bertajuk sedikit ramping, ringan dan banyak meloloskan cahaya matahari. Cabangnya lebih banyak membuat sudut ke atas, jarang-jarang dan daunnya tidak begitu lebat. Daunnya berbentuk lanset hingga bulat telur memanjang dan bagian ujungnya runcing membentuk kait. Beberapa marga Eucalyptus dengan jenis Eucalyptus spp. Jenis-jenis yang sudah dikenal umum antara lain E. deglupta, E. urophylla, E. camadulensis, E. grandis, E. pellita, E. tereticornis, dan E. torreliana (Latifah, 2004 dalam Sembiring, 2009).

Eucalyptus spp. merupakan salah satu tanaman yang bersifat fast growing (tanaman cepat tumbuh). Eucalyptus spp. juga dikenal sebagai tanaman yang dapat bertahan hidup pada musim kering. Tanaman ini mempunyai sistem perakaran yang dalam namun jika ditanam di daerah dengan curah hujan sedikit maka perakarannya cenderung membentuk jaringan rapat dekat permukaan tanah untuk memungkinkan menyerap setiap tetes air yang jatuh di cekaman tersebut. Eucalyptus spp. merupakan salah satu jenis tanaman yang dikembangkan dalam pembangunan hutan tanaman industri (Poerwowidodo, 1991).

Manurut Sutisna dan Purmadjaja (1999), tanaman Eucalyptus spp. mempunyai sistematika sebagai berikut:

Divisio : Spermatophyta (Menghasilkan biji) Class : Dycotyledone (berkeping dua) Ordo : Myrtiflorae

Famili : Myrtaceae (suku jambu-jambuan) Genus : Eucalyptus

Species : Eucalyptus spp.

Berdasarkan penelitian-penelitian yang telah dilakukan, Eucalyptus spp. memiliki banyak kelebihan dibanding penanaman tanaman lain baik dari segi manfaat kayu maupun dari segi pertumbuhannya. Dari segi manfaat kayunya Eucalyptus spp. dapat digunakan untuk bahan bangunan, kusen pintu dan jendela, kayu lapis, bahan pembungkus, korek api, dan sebagai bahan pulp dan kertas. Daun dan cabang Eucalyptus spp. dapat menghasilkan minyak yang digunakan untuk kepentingan farmasi, misalnya untuk obat gosok, obat batuk, parfum, deterjen, desinfektan dan pestisida (Sutisna dan Purmadjaja, 1999).

Syarat Tumbuh Eucalyptus spp.

Jenis-jenis Eucalyptus spp. terutama menghendaki iklim bermusim (daerah arid) dan daerah yang beriklim basah dari tipe hujan tropis. Jenis Eucalyptus spp. tidak menuntut persyaratan yang tinggi terhadap tempat tumbuhnya. Eucalyptus spp. dapat tumbuh pada tanah yang dangkal, berbatu-batu, lembab, berawa-rawa, secara periodik digenangi air, dengan variasi kesuburan tanah mulai dari tanah-tanah kurus, gersang, sampai tanah-tanah yang baik dan subur. Jenis Eucalyptus spp. dapat tumbuh di daerah beriklim A sampai C dan dapat dikembangkan mulai dari dataran rendah sampai daerah pegunungan yang tingginya per tahun yang sesuai bagi pertumbuhannya antara 0-1 bulan dan suhu rata-rata pertahun 20-32o_{C. Jenis}

tanah yang digunakan dalam pertanaman Eucalyptus spp. ini adalah jenis tanah litosol dan regosol podsolik (Darwo, 1997).

Hampir semua jenis Eucalyptus beradaptasi dengan iklim muson. Beberapa jenis bahkan dapat bertahan hidup di musim yang sangat kering, misalnya jenis-jenis yang telah dibudidayakan yaitu E. alba, E. camaldulensis, E. citriodora, E. deglupta adalah jenis yang beradaptasi pada habitat hutan hujan dataran rendah dan hutan pegunungan rendah, pada ketinggian hingga 1800 mdpl, dengan curah hutan tahunan 2500-5000 mm, suhu minimum rata-rata 23 dan maksimum 31 di dataran rendah, dan suhu minimum rata-rata 13 dan maksimum 29 di pegunungan (Kapisa et al., 1999).

Penyebaran dan Morfologi Eucalyptus sp.

Daerah penyebaran alaminya berada di sebelah Timur garis Wallace,

mulai dari 7°’ LU sampai 43°39’ LS meliputi Australia, New Britania, Papua dan

Tazmania. Beberapa spesies juga ditemukan di Kepulauan Indonesia yaitu Irian Jaya, Sulawesi, Nusa Tenggara Timur, dan Timor- Timur. Genus Eukaliptus terdiri atas 500 spesies yang kebanyakan endemik Australia. Hanya ada dua spesies yang tersebar di wilayah Malesia (Maluku, Sulawesi, Nusa Tenggara dan Fillipina) yaitu Eucalyptus urrophylla dan Eucalyptus deglupta. Beberapa spesies menyebar di Australia bagian Utara menuju bagian Timur. Spesies ini banyak tersebar di daerah-daerah pantai New South Wales dan Australia bagian Barat Daya. Pada saat ini beberapa spesies ditanam di luar daerah penyebaran alami, misalnya di Benua Asia, Afrika bagian Tropika dan Subtropika, Eropa bagian Selatan dan Amerika Tengah (Latifah, 2004 dalam Siahaan, 2010).

Tanaman Eucalyptus sp. pada umumnya berupa pohon kecil hingga besar, tingginya rata-rata 40 meter dan rata-rata bebas cabang 25 m. Batang utamanya berbentuk lurus, dengan diameter hingga 200 cm. Permukaan kulit kayu licin, berserat berbentuk papan catur. Daun muda dan daun dewasa sifatnya berbeda, daun dewasa umumnya berseling kadang-kadang berhadapan, tunggal, tulang tengah jelas, pertulangan sekunder menyirip atau sejajar, berbau harum bila diremas. Perbungaan berbentuk payung yang rapat kadang-kadang berupa malai rata di ujung ranting. Buah berbentuk kapsul, kering dan berdinding tipis. Biji berwarna coklat atau hitam. Marga Eucalyptus termasuk kelompok yang berbuah kapsul dalam suku Myrtaceae dan dibagi menjadi 7-10 anak marga, setiap anak dibagi lagi menjadi beberapa seksi dan seri (Khaeruddin, 1999).

Penyakit pada Tanaman Eucalyptus spp.

Fungi merupakan salah satu faktor biotik terbanyak yang menyebabkan tanaman hutan menjadi sakit. Umumnya penyakit tidak hanya disebabkan oleh satu jenis patogen akan tetapi dapat disebabkan oleh beberapa patogen yang datang atau muncul secara bersama ataupun berurutan. Hal ini dapat menyebabkan berkurangnya produksi hutan tanaman yang diusahakan (Semangun, 2001).

Ada beberapa penyakit penting yang sering menyerang tanaman Eucalyptus spp. antara lain:

1. Penyakit pada akar

a. Busuk akar Phytophthora

Penyakit ini disebabkan oleh Phytophthora cinnamomi dan Phytophthora nicotianea di Afrika Selatan. Gejala dari phon yang terinfeksi pada

umumnya daun yang layu. Hal ini diikuti dengan busuknya kambium akar dan pangkal akar. Kulit dari akar biasanya terkelupas. Jika pangkal akar terinfeksi, pohon akan mati (SAPPI, 2014).

2. Penyakit batang

a. Busuk Botryosphaeria

Penyakit ini disebabkan oleh Botryosphaeria eucalyptorum dan Botryosphaeria ribis. Banyak gejala yang diasosiasikan dengan infeksi Botryosphaeria pada Eukaliptus. Gejala yang umum adalah kematian pada pucuk pohon dan ini menyebabkan infeksi pada hati kayu dan perubahan warna kayu yang dilapisi oleh bagian luar kayu yang sehat (SAPPI, 2014).

b. Busuk Cryphonectria

Ada dua spesies yang menyebabkan penyakit ini di Afrika Selatan. Cryphonectria eucalypti yang merupakan patogen minor dan Cryphonectria cubensis yang merupakan patogen major. Cryphonectria yang disebabkan Cryphonectria cubensis pada umumnya membunuh pohon muda pada dua tahun pertama pertumbuhan dengan terkelupasnya pangkal batang. Pohon yang berpenyakit ini biasanya tiba-tiba mati pada musim panas (SAPPI, 2014).

c. Busuk Coniothyrium

Coniothyrium zuluensi adalah agen penyebab penyakit ini. Infeksi yang dapat dikenali adalah adanya spot-spot kecil pada jaringan muda dan hijau batang. Luka ini akan bersatu dan menimbulkan tonjolan yang besar berwarna hitam pada kulit kayu (SAPPI, 2014).

3. Penyakit daun

a. Foliar spot dan foliar blight

Penyakit ini disebabkan oleh Cylindrocladium sp., merupakan patogen yang menyerang tanaman Eucalyptus sp. Cylindrocladium sp. merupakan salah satu jenis dari marga Calonectria de Not. yang menyebabkan penyakit pada pembibitan dan pada tanaman termasuk akar dan leher akar, hawar tunas,

hawar daun dan bercak daun (Old, et al., 2003).

b. Hawar pucuk

Penyakit ini disebabkan oleh Cryptosporiopsis eucalypti. Gejala penyakit ini berkembang di sekitar daun dan batang Eucalyptus spp., biasanya tersebar secara menyeluruh, lembut dan berwarna coklat, luka nekrotik yang menjalar, bentuknya bundar dengan diameter 1-2 cm. Luka yang berat ditunjukkan dengan warna coklat tua atau abu- abu di seluruh permukaan

daun (Old, et al., 2003).

c. Penyakit Mycosphaerella

Penyakit yang ditimbulkan berupa bintik daun, bisul dan kerut daun yang disebabkan oleh Mycosphaerella. Tetapi marga ini belumlah pasti ditemukan pada tanaman Eucalyptus sp., karena banyak variasi gejala yang ditunjukkan oleh infeksi Mycosphaerella dengan hasil yang berbeda dalam hal ukuran luka, warna dan morfologi. Daun yang terinfeksi akan berkembang menjadi bintik dan bisul.

d. Penyakit Phaeophleospora

Penyakit ini disebabkan oleh Phaeophleospora yang biasanya terdapat pada pembibitan dan menjangkit penanaman jenis tertentu. Gejala yang

ditunjukkan berupa bercak daun berwarna kemerahan pada permukaan atas daun dan adanya spora berwarna hitam pada bagian permukaan bawah daun.

e. Penyakit Pestalotia

Penyakit ini disebabkan oleh Pestalotia sp. Serangan Pestalotia pada daun menimbulkan gejala bercak yang dimulai dari tepi daun ujung, yang kemudian meluas ke tengah daun. Serangan fase awal hampir selalu terjadi di ujung daun. Diduga bahwa stoma di daerah ujung memberikan kondisi yang kondusif bagi perkembangan konidiaspora (Semangun, 2001).

Penyakit daun Phaeophleospora

Phaeophleospora destructans juga dikenal sebagai Kirramyces destructans terkait dengan penyakit hawar daun pada E. grandis berusia satu tahun hingga tiga tahun di Sumatera Utara, Indonesia. Spesies ini adalah patogen agresif yang dapat menyebabkan hawar daun yang luas pada daun muda dan gugurnya daun pada usia muda sebagai akibat dari nekrosis daun dan tangkai daun. Patogen ini ditemukan pada tahun 2000, menyerang perkebunan klonal E. camaldulensis di timur Thailand dan pada tahun 2002 ditemukan untuk pertama kalinya di beberapa lokasi, meliputi selatan, tengah dan utara Vietnam, pada spesies E. camaldulensis, E. urophylla dan klon hibrid. Penyebaran yang cepat menunjukkan adanya serangan patogen ke tanaman hingga bahkan menyerang benih, dan hal ini berpotensi sebagai ancaman serius bagi Eukaliptus di Asia Tenggara dan, mungkin, vegetasi asli dan perkebunan di utara Australia yang berdaerah tropis. Dalam rangka untuk membantu mengatasi penyakit ini, klon toleran dipilih dan ditempatkan di Sumatera (Barber, 2004).

Penyakit ini umumnya ditemukan pada tanaman Eukaliptus di Sumatera Utara. Plot percobaan dari E. globulus di Habinsaran terinfeksi dalam jumlah besar. Penyakit ini ditemukan pada areal pembibitan dan areal penanaman. Penyakit ini biasanya ditemukan pada daun dewasa, terutama pada bibit-bibit yang persediaannya berlebih. Penyakit ini dikenali dengan bercak warna ungu hingga ungu kecoklatan. Jika lefel infeksi sudah tinggi, penyakit ini dapat menyebabkan gugurnya daun pada usia muda (Alfenas, 1993).

Menurut Simpson et al. (2005) ada lima spesies Phaeophleospora yang diketahui menyerang tanaman Eukaliptus, antara lain:

a. P. delegatensis b. P. destructans c. P. epicoccoides d. P. eucalypti e. P. lilianiae

Phaeophleospora epicoccoides merupakan salah satu patogen daun yang paling banyak dilaporkan dan diteliti di dunia, terjadi pada berbagai spesies di banyak negara termasuk dari daerah subtropis. Dianggap sebagai patogen yang menyerang pembibitan di Australia dan India, menyebabkan kematian tanaman di Malawi dan Afrika Selatan, defoliasi perkebunan di Australia (G. Hardy pers. Comm.), dan kerusakan yang signifikan di pembibitan dan perkebunan di Indonesia. Gejala yang ditimbulkan bervariasi, spora dapat tersebar, dan menginfeksi bibit dan kebun klonal di pembibitan dengan sanitasi yang buruk (Barber, 2004).

P. epicoccoides dan P. destructans memiliki perbedaan pada warna dan tekstur. P. epicoccoides padat, pertumbuhannya lambat, dan berwarna gelap, sedangkan P. destructans berwarna kemerahmudaan, pertumbuhannya lambat, dan agak lembut. Dibandingkan dengan spesies lain, spora P. epicoccoides pendek, lebar, multisepta, dan berwarna hijau, sedangkan spora P. destructans lebih panjang dan lebih tipis (Burgess et al, 2004).

P. epicoccoides dominan ditemukan pada daun yang mulai menua dan menyebabkan daun gugur lebih cepat. Fungi ini tidak digolongkan sebagai patogen mayor. P. destructans adalah patogen mayor yang menyerang daun muda pada pembibitan, pada tanaman induk, dan pada areal penanaman. Bibit yang terinfeksi, tanaman induk, dan stek pada pembibitan dapat rusak total pada kondisi lembab. Material terinfeksi yang dapat bertahan di lapangan, pada akhirnya kondisi pertumbuhan terganggu dan tidak stabil (Burgess et all, 2004).

Penyakit ini disebabkan oleh Phaeophleospora yang biasanya terdapat pada pembibitan dan menjangkit penanaman jenis tertentu. Gejala yang ditunjukkan berupa bercak daun berwarna kemerahan pada permukaan atas daun dan adanya spora berwarna hitam pada bagian permukaan bawah daun. Apabila satu daun tanaman telah terinfeksi patogen ini maka akan terjadi penularan penyakit pada daun yang berdekatan hingga dapat mengakibatkan kematian bibit tanaman. Penularan sering kali terlihat dimulai dari bagian pangkal bibit tanaman hingga mencapai daun bagian ujung tanaman. Patogen ini biasanya berada di bawah tajuk pohon dan dapat menyebabkan penghancuran secara signifikan pada semai di pembibitan (Old, et al., 2003).

Tampilan dan tingkat keparahan luka pada daun Eukaliptus umumnya digunakan untuk mengenali spesies Phaeophleospora yang menyebabkan penyakit. Namun, gejala infeksi yang disebabkan oleh P. epicoccoides, P. eucalypti dan P. destructans hampir identik dan sering terjadi kesalahan analisis, tergantung pada inang dan iklim. Selain itu, identifikasi P. eucalypti dan P. destructans berdasarkan morfologi konidia agak sulit karena ukuran spora bervariasi tergantung pada spesies inang. Sebuah teknik diagnostik molekuler yang sederhana dan akurat akan sangat membantu dalam membedakan antara spesies ini dibandingkan dengan teknik konvensional melalui pangamatan morfologi (Andjic, et al, 2007).

Gambar 1. Penampakan permukaan bawah daun yag terinfeksi P. destructans (A) [sumber: Nursery and Tree Health Evaluations in Plantations in North

and South Sumatera (Wingfield,2010)];

Penampakan permukaan bawah daun yag terinfeksi P. epicoccoides (B) [sumber: Survey of Plantation Diseases in The Kirinci and Lake Toba

Areas Belonging to The April Group (Wingfield,2006)]

Daun berpenyakit Destructans dan hawar pucuk yang disebabkan P. destructans adalah penyakit utama yang menyerang Eukaliptus di area Danau Toba. Penyakit ini sudah diteliti di Aek Nauli, kira-kira sepuluh tahun yang lalu.

Salah satu pertanyaan penting yang telah dikemukakan dalam beberapa tahun terakhir adalah apakah kerentanan setiap klon berbeda di tempat yang berbeda. Ini dikarenakan genotipe yang terbentuk karena interaksi lingkungan menentukan apakah klon yang resisten terhadap penyakit Destructans dan hawar pucuk dapat efektif di satu area namun tidak di area lain (Wingfield, 2006).

Diungkapkan oleh Wingfield (2008), hawar daun Destructans telah menjadi subjek penelitian utama di TPL sejak dekade yang lalu. Saat ini, telah banyak dipelajari tentang penyakit ini dan dampak buruknya telah menurun secara signifikan. Salah satu penemuan penting yang terkait dengan patogen ini antara lain:

a. Setiap klon berbeda kerentanannya terhadap infeksi penyakit. Jadi klon toleran telah dipilih dan dikembangkan.

b. Ada perbedaan besar antara material bibit dan klon terpilih dalam hal kerentanannya. Dampak dari pemuliaan yang baik dan program seleksi di TPL secara jelas dapat dilihat pada percobaan di mana pembibitan kontrol ditanam.

c. Lokasi klon mempengaruhi kerentanannya terhadap infeksi K. Destructans, klon tersebut sangat terpengaruh jika mereka dalam kondisi stress. Jadi pohon yang terdapat di pinggir jalan dan pohon yang memiliki sistem perakaran buruk dapat terinfeksi secara serius. Klon-klon yang tumbuh secara baik, dapat tumbuh dan terbebas dari penyakit.

Ketika banyak yang sudah dipelajari tentang penyakit Destructans dan hawar pucuk selama lima belas tahun terakhir, masih banyak pertanyaan yang memerlukan jawaban. Mungkin hal terpenting dari hal tersebut adalah untuk

mengetahui hubungan antara stress dan gejala penyakit yang tampak. Dalam hal ini, sekarang dapat dikenali tentang ada klon-klon yang memiliki kerentanan tinggi terhadap infeksi dan hal ini menyebabkan tanaman berpenyakit, terlepas dari kondisi pertumbuhannya. Juga diketahui bahwa klon-klon yang terbebas dari kondisi stress pada saat percobaan mengalami pertumbuhan yang buruk pada saat ditanam di area dengan kondisi stress (Wingfield, 2010)

Perkembangan bagus telah dibuat oleh TPL untuk mereduksi dampak dari K. destructans dan penyakit ini sudah lebih dimengerti daripada waktu yang lalu. Menurut Wingfield (2010), beberapa fakta yang muncul melalui studi yang dilakukan TPL:

a. Patogen ini merupakan spesifik inang dan ada banyak variabel dari tanaman dalam hal kerentanan

b. Generasi baru dari klon TPL mempunyai level resisten yang tinggi terhadap penyakit

c. Klon yang agak rentan tidak terinfeksi jika berada pada kondisi pertumbuhan yang optimal. Tapi jika mengalami stress, mereka dapat rusak secara serius. Hal ini agak berkebalikan dengan sifat dari patogen spesifik inang yang cenderung kurang terpengaruh oleh stress yang dialami tanaman. Satu kemungkinan lainnnya adalah akibat kondisi stress ini, jaringan pada daun-daun muda lebih mudah untuk terinfeksi.

Identifikasi Penyakit Tanaman

Gejala dapat terlihat karena adanya perubahan, bau, rasa, atau rabaan. Gejala dalam, penting artinya untuk penelitian anatomi patologi, sedangkan gejala luar bersifat morfologis. Gejala ini adalah keadaan penyakit yang ditunjukkan

oleh bagian tubuh tanaman atau seluruh tubuh tanaman. Gejala adalah keadaan patologi dan fisiologi yang merupakan respon tanaman terhadap aktivitas patogen atau faktor yang lain (Satrahidayat, 1990).

Tanda penyakit adalah struktur dari suatu patogen yang berasosiasi dengan tanaman yang terinfeksi. Beberapa tipe struktur patogen tidak harus selalu ada pada tanaman yang sakit karena pembentukannya berdasarkan kondisi lingkungan. Kebanyakan tanda penyakit dapat dilihat dan dibedakan dengan bantuan mikroskop. Misalnya penyebab penyakit berupa miselium, spora, tubuh buah fungi, sel atau lendir bakteri, tubuh karena penggumpalan hifa fungi (Sklerotial bodies), nematoda dengan berbagai fase telur, juvenil dan imago serta berbagai bagian tumbuhan parasit (Sinaga, 2003).

Menurut Sinaga (2003) agar hasil diagnosa akurat, diperlukan pembuktian dengan menggunakan Postulat Koch. Kaidah-kaidah Postulat Koch adalah sebagai berikut :

1) patogen yang diduga harus selalu berasosiasi dengan tanaman yang sakit 2) patogen tersebut harus dapat diisolasi dan ditumbuhkan sebagai biakan murni 3) biakan murni tersebut jika diinokulasikan ke tanaman sehat harus

menghasilkan gejala dan tanda penyakit yang sama

4) bila penyebab penyakit direisolasi dari tanaman yang diinokulasi tersebut, akan dihasilkan biakan murni yang sama dengan penyebab yang diisolasi dari tanaman sakit yang didiagnosis

METODE PENELITIAN

Tempat dan Waktu Penelitian

Penelitian dilakukan di lokasi pembibitan PT. Toba Pulp Lestari, Tbk. Kec. Parmaksian, Toba Samosir dan di Laboratorium Bioteknologi Program Studi Kehutanan Fakultas Pertanian Universitas Sumatera Utara. Penelitian dilakukan pada bulan Juli sampai Desember 2014.

Bahan dan Alat

Bahan

Bahan yang digunakan dalam penelitian adalah klon IND 47, IND 61, dan IND 66 turunan Eucalyptus grandis x Eucalyptus urophylla di PT. Toba Pulp Lestari, Tbk, alkohol 70% dan Kloroks 0,3%, air steril, spritus, tisu dan kapas, serta PDA (Potatoe Dextrose Agar).

Alat

Alat yang digunakan dalam penelitian adalah kaca pembesar, plastik sampel/amplop, sarung tangan, masker pernafasan, kertas milimeter, mikroskop, cawan petridish, labu erlenmeyer, pinset, spatula, jarum ose, timbangan analitik, oven dan otoklaf, kaca preparat dan gelas penutup, serta gelas ukur.

Prosedur Penelitian

Tahapan prosedur penelitian adalah:

1. Pengambilan sampel tanaman yang sakit dan yang sehat

Tanaman Eucalyptus sp. yang sakit atau yang bergejala digunakan sebagai bahan isolasi untuk mencari patogen Phaeophleospora sp., sedangkan tanaman Eucalyptus sp. yang sehat atau yang tidak bergejala digunakan

sebagai bahan pengamatan setelah patogen Phaeophleospora sp. diperoleh dan disemprotkan ke tanaman.

2. Isolasi patogen

Tanaman yang sakit atau yang bergejala dibersihkan dengan menggunakan kloroks, setelah dibersihkan diambil dengan menggunakan pinset dan dikeringkan lalu dipotong-potong dengan ukuran 1x1 cm, kemudian diisolasi ke dalam cawan petri dengan media PDA (Potatoe Dextrose Agar). Setelah 3 hari dilakukan kembali pengisolasian tetapi isolasi yang dilakukan adalah isolasi biakan murni dengan ketentuan tidak mengalami kontaminasi lagi. Setelah 14 hari dan tidak terjadi kontaminasi maka dapat dilakukan identifikasi fungi dengan menggunakan mikroskop dengan perbesaran 1000x. 3. Pengamatan patogen

Jamur yang telah berumur 14 hari diambil dengan cara dipotong dan diambil dengan pinset yang steril. Dimasukkan ke dalam cawan petri kemudian diletakkan di atas preparat dan ditutupi dengan kaca objek lalu dimasukkan ke dalam kotak tray. Setelah 4 hari dapat diamati di bawah mikroskop dengan perbesaran 1000x.

4. Penyiapan inokulum

Biakan yang telah murni diambil lalu dimasukkan ke dalam cawan petri yang telah diisi aquades sebanyak 10 ml dan kemudian dikikis dengan menggunakan pengait, bagian atas biakan dikikis tanpa mengenai medianya. Setelah semua bagian permukaan terkikis lalu disaring dengan menggunakan kain kassa. Hal ini dilakukan sebanyak 30 kali sesuai dengan jumlah tanaman yang ada setelah selesai dimasukkan ke dalam tabung reaksi dan diberi label.

5. Pelaksanaan inokulasi

Sebelum inokulasi dilakukan, bibit tanaman sehat dipindahkan ke dalam polybag yang telah diisi top soil lalu dipindahkan ke dalam rumah kaca. Tanaman dipelihara selama satu minggu untuk penyesuaian di rumah kaca. Inokulasi dilakukan dengan metode penyemprotan inokulum (campuran 10 ml aquades dengan spora Phaeophleospora sp.) ke tanaman. Inokulasi dilakukan menggunakan hand sprayer.

Setiap tanaman disemprotkan 10 ml inokulum dan dilakukan secara bergantian terhadap tanaman. Penyemprotan dilakukan di dalam sungkup. Setelah penyemprotan inokulum, tiap tanaman lalu disungkup selama 1 x 24 jam. Keesokan harinya sungkup dibuka dan dimulai pengamatan gejala yang muncul pada daun tanaman. Pengamatan terhadap infeksi fungi Phaeophleospora pada tanaman Eucalyptus spp. dilakukan selama 30 hari dengan selang pengamatan enam kali.

6. Uji infeksi

Dilakukan untuk mengetahui intensitas serangan dan luas serangan Phaeophleospora sp. terhadap tanaman Eucalyptus sp. Agrios (1996) mengungkapkan intensitas serangan/keparahan penyakit (KpP) didefinisikan sebagai persentase luasnya jaringan tanaman yang terserang patogen dari total luasan yang diamati. Luas serangan/keterjadian penyakit (KjP) merupakan persentase jumlah tanaman yang terserang patogen (n) dari total tanaman yang diamati (N).

Parameter pengamatan

a. Intensitas Serangan

Parameter yang diamati adalah perubahan yang dialami oleh daun setelah inokulasi. Pengamatan dilakukan terhadap lima daun teratas. Daun yang diamati diberi tanda dan disesuaikan dengan skala bercak daun (0-5) dalam (Sinaga, 2003).

Skala bercak terdiri dari:

Skala 0: tidak ada bercak pada daun Skala 1: terdapat bercak daun 1/16 bagian Skala 2: terdapat bercak daun 1/8 bagian Skala 3: terdapat bercak daun 1/4 bagian Skala 4: terdapat bercak daun 1/2 bagian

Skala 5: terdapat bercak daun pada seluruh bagian permukaan daun Nilai intensitas serangan ditentukan dengan rumus:

IS = ∑ � � �

� � � x 100%

Towsend dan Heiiberger (1943) dalam Sinaga (2003). Keterangan:

IS : Intensitas serangan

n : jumlah daun pada skala ke-i v : skala ke-i

N : jumlah total daun setiap tanaman Z : skala tertinggi

b. Luas Serangan

Luas serangan ditentukan dengan cara menghitung jumlah daun yang terserang pada setiap bibit kemudian membaginya dengan jumlah seluruh daun dari bibit yang diamati.

A = �

� x 100 %

Keterangan: A : luas serangan

n : jumlah daun yang terserang penyakit Phaeophleospora sp. N : jumlah seluruh daun dari bibit yang diamati

Tabel 1. Penilaian tingkat intensitas dan luas serangan penyakit dan reaksi tanaman

No Nilai Intensitas dan Luas Serangan (%) Kategori Reaksi Tanaman

1 0% Imun

2 1 % - 25 % Resisten (R)

3 26 % - 50 % Agak Resisten (AR)

4 51 % - 75 % Agak Rentan (Ar)

5 76 % - 100 % Rentan (r)

Sumber : Sembiring (1985) dalam Sinaga (2003)

Analisis Data

Rancangan percobaan yang digunakan pada penelitian ini menggunakan meodel rancangan acak lengkap (RAL) non faktorial dengan model linier sebagai berikut:

Yij= μ + τi + εij Keterangan:

Yij = pengamatan pada perlakuan ke-i dan ulangan ke-j

μ = rataan umum

τi = pengaruh perlakuan ke-i

εij = pengaruh acak pada perlakuan ke-i dan ulangan ke-j i = perlakuan ke-i (1,2,3)

j = ulangan ke-j (1,2,3...,10)

Data yang diperoleh dari lapangan ditransformasikan menggunakan transformasi logaritma. Jika diperoleh rancangan berbeda nyata pada interaksi antara tanaman dengan kelas umur akan dilanjutkkan dengan menggunakan rancangan DMRT (Duncan’s Multiple Range Test) (Sastrosupadi, 2000).

Hipotesis yang akan diuji adalah terdapat perbedaan respon jenis klon Eucalyptus spp. turunan E. grandis x E. urophylla terhadap infeksi Phaeophleospora sp.

HASIL DAN PEMBAHASAN

1. Isolasi dan Identifikasi Phaeophleospora sp.

Fungi Phaeophleospora sp. didapatkan dengan mengambil sampel daun berpenyakit pada areal pembibitan PT Toba Pulp Lestari, Tbk, Kecamatan Parmaksian. Pengambilan sampel daun berpenyakit dilakukan dengan menjadikan buku panduan A Manual of Diseases of Eucalypts in South-East Asia (Old et al., 2003) sebagai pedoman lalu membandingkannya dengan gejala penyakit yang timbul pada daun pada tanaman di areal pembibitan. Gejala yang ditunjukkan berupa bercak daun berwarna kemerahan pada permukaan atas daun dan adanya spora berwarna hitam pada bagian permukaan bawah daun.

Untuk genus fungi Phaeophleospora, jenis Phaeophleospora epicoccoides dan Phaeophleospora destructans merupakan fungi yang paling banyak menyerang tanaman Eukaliptus di areal pembibitan ini (Wingfield, 2006). Gejala yang ditimbulkan kedua jenis fungi ini juga tidak jauh berbeda, hal ini sesuai dengan pernyataan Andjic, et al. (2007) bahwa gejala infeksi yang disebabkan oleh P. epicoccoides, P. eucalypti dan P. destructans hampir identik dan sering terjadi kesalahan analisis, tergantung pada inang dan iklim.

Sampel daun berpenyakit dibawa ke laboratorium Bioteknologi Kehutanan, Fakultas Pertanian Universitas Sumatera Utara untuk kemudian dibiakkan. Hasil dari biakan murni tersebut didapatlah fungi Phaeophleospora sp., yang tampilan makroskopisnya dapat dilihat pada Gambar 3.

Gambar 3. Tampilan makroskopis Phaeophleospora sp. pada media PDA

Biakan murni fungi Phaeophleospora sp. memiliki penampilan berwarna merah muda (pink), pertumbuhannya lambat, teksturnya seperti berbulu dan tebal, serta penyebarannya merata ke segala arah. Ciri-ciri biakan murni ini sesuai dengan salah satu jenis fungi Phaeophleospora sp. yang dikemukakan oleh Burgess et al. (2004) bahwa P. destructans berwarna kemerahmudaan, pertumbuhannya lambat, dan agak lembut.

Selain pengamatan makroskopis, dilakukan juga pengamatan mikroskopis terhadap biakan murni. Pengamatan mikroskopis dilakukan untuk memastikan apakah biakan murni yang kita dapat memang benar jenis Phaeophleospora sp. yang kita inginkan. Pengamatan dilakukan dengan memerhatikan bentuk konidia lalu membandingkannya dengan sumber literatur-literatur yang ada. Hasil pengamatan dapat dilihat pada Tabel 2.

Tabel 2. Hasil pengamatan mikroskopis Phaeophleospora sp.

No. Katerangan Karakteristik Mikroskopis biakan murni

Karakteristik Mikroskopis Phaeophleospora sp.*

1 Spora

*Sumber: First Report of Phaeophleospora destructans in China (Burgess, et al., 2004)

Hasil pengamatan mikroskopis pada biakan murni Phaeophleospora sp. menunjukkan bahwa sporanya berbatang panjang, bersepta dua, dan tampilannya tipis. Hal ini dipertegas dengan pernyataan Burgess et al. (2004) tentang fungi Phaeophleospora destructans, bahwa spora Phaeophleospora destructans berbentuk panjang dan tipis. Spora memiliki dimensi rata-rata 40,1 x 2,4 µm dan bersepta 1-2. Jadi, melalui pengamatan makroskopis dan mikroskopis yang telah dilakukan dapat diambil kesimpulan bahwa biakan murni yang ditemukan adalah jenis Phaeophleospora destructans.

Berikut taksonomi dari Phaeophleospora destructans Kingdom : Fungi

Phylum : Ascomycota Class : Dothideomycetes Ordo : Capnodiales

Family : Mycosphaerellaceae Genus : Phaeophleospora

2. Gejala Penyakit Phaeophlespora sp. pada Tanaman Eucalyptus spp.

Bibit Eukaliptus yang digunakan sebagai sampel untuk uji infeksi merupakan bibit hasil persilangan antara Eucalyptus grandis dengan Eucalyptus urophylla. Bibit klon hibrid ini digunakan sebanyak tiga klon, yakni IND 47, IND 61, dan IND 66, serta berumur dua bulan, diulang sebanyak sepuluh kali.

Tabel 3. Perkembangan gejala penyakit pada daun IND 47, IND 61, dan IND 66

Klon Gejala Awal Gejala Lanjutan

IND 47

IND 61

IND 66

Ket. Gejala awal berupa bercak kekuningan pada permukaan atas daun

Gejala lanjutan ditandai dengan munculnya bercak kemerahan pada permukaan atas daun

Gejala awal yang ditunjukkan oleh penyakit ini adalah adanya bercak kekuningan pada permukaan atas daun. Bercak ini menyebabkan hijau daun memudar. Besar dan letak bercaknya berbeda-beda pada setiap daun. Pada awal

kemunculannya, tidak terdapat spora hitam pada permukaan bawah daun. Tanaman sudah menunjukkan gejala pada pengamatan II setelah inokulasi.

Gejala lanjutan menunjukkan pada permukaan atas daun yang terdapat bercak kekuningan kemudian muncul bercak kemerahan. Beberapa hari kemudian, pada lokasi bercak kemerahan tersebut muncul spora hitam pada permukaan bawah daun. Hal ini sesuai dengan pernyataan Old, et al. (2003) bahwa gejala Phaeophleospora yang ditunjukkan berupa bercak daun berwarna kemerahan pada permukaan atas daun dan adanya spora berwarna hitam pada bagian permukaan bawah daun.

Karakteristik lain dari gejala yang ditimbulkan oleh fungi Phaeophleospora adalah munculnya awal gejala selalu dimulai dari daun yang paling bawah atau paling pangkal. Bila daun paling bawah sudah terjangkiti, biasanya setelah beberapa hari akan diikuti oleh munculnya awal gejala pada daun di atasnya. Hal yang sama sudah dipaparkan oleh Old, et al. (2003) apabila satu daun tanaman telah terinfeksi patogen ini maka akan terjadi penularan penyakit pada daun yang berdekatan hingga dapat mengakibatkan kematian bibit tanaman. Penularan sering kali terlihat dimulai dari bagian pangkal bibit tanaman hingga mencapai daun bagian ujung tanaman. Maka dari itu fungi ini tergolong sebagai patogen yang agresif yang dapat menyebabkan gugurnya daun pada usia muda, seperti yang diungkapkan Barber (2004) spesies ini adalah patogen agresif yang dapat menyebabkan hawar daun yang luas pada daun muda dan gugurnya daun pada usia muda sebagai akibat dari nekrosis daun dan tangkai daun.

3. Intensitas Serangan (IS)

Pengamatan terhadap infeksi fungi Phaeophleospora pada tanaman Eucalyptus spp. dilakukan selama 30 hari dengan selang pengamatan enam kali. Pengukuran intensitas serangan dilakukan dengan metode scoring pada lima daun teratas tiap ulangan percobaan. Daun yang diamati diberi tanda dan disesuaikan dengan nilai skor (0-5) (Sinaga, 2003). Hasil scoring kemudian ditransformasikan ke dalam formula nilai intensitas serangan. Nilai intensitas serangan (IS) setiap selang pengamatan dapat dilihat dalam tabel 4 berikut.

Tabel 4. Rata-rata Intensitas Serangan (IS) Pengamatan I-Pengamatan VI

No Klon Intensitas Serangan (IS) (%)

I II III IV V VI

1 IND 47 0 7,137 15,436 17,917b 14,224 14,360 2 IND 61 0 0 7,670 7,848a 8,889 7,811 3 IND 66 0 0,182 8,864 13,581ab 12,097 12,044

Keterangan : Angka yang diikuti huruf kecil yang tidak sama berbeda nyata pada taraf 5% berdasarkan uji DMRT, sedangkan yang tidak bernotasi menunjukkan tidak berbeda nyata.

Gambar 4. Grafik Rata-rata Intensitas Serangan (IS) Pengamatan I-Pengamatan VI Tanaman mulai menunjukkan gejala pada pengamatan II (± sepuluh hari setelah inokulasi). Namun tidak semua klon sudah menunjukkan gejala serangan

0 2 4 6 8 10 12 14 16 18 20

I II III IV V VI

IND 47 IND 61 IND 66

Phaeophleospora tersebut, hanya klon IND 47 dan IND 66 yang sudah mulai timbul gejala yaitu sebesar 7,137% dan 0,182%. Pada pengamatan III, ketiga klon sudah menunjukkan gejala akibat serangan Phaeophleospora. Tanaman-tanaman yang sebelumnya masih tampak sehat sudah mulai menunjukkan gejala serangan. Angka yang ditunjukkan terus meningkat hingga mencapai puncak pada pengamatan IV (± dua puluh hari setelah inokulasi). Setelah pengamatan IV, tidak ada lagi penambahan angka karena tidak ada lagi tanaman yang memunculkan gejala seperti pada pengamatan-pengamatan sebelumnya.

Dapat dilihat pada tabel dan grafik bahwa peningkatan intensitas serangan secara signifikan dimulai pada pengamatan III (± lima belas hari setelah proses inokulasi). Hal ini dapat diasumsikan bahwa setelah minggu ketiga, fungi Phaeophleospora sudah mencapai tahap untuk menginfeksi tubuh jaringan, dalam hal ini adalah daun, dari tanaman Eucalyptus spp. Sementara di lain pihak, kondisi jaringan tanaman sudah semakin melemah karena adanya patogen yang menginfeksi. Seperti disebutkan oleh Agrios (1996) bahwa terjadinya suatu penyakit paling sedikit diperlukan tiga faktor yang mendukung, yaitu tanaman inang atau host, penyebab penyakit atau patogen, dan faktor lingkungan. Pengaruh komponen patogen dalam timbulnya penyakit sangat tergantung pada kehadiran patogen, jumlah populasi patogen, kemampuan patogen untuk menimbulkan penyakit yaitu berupa kemampuan menginfeksi (virulensi) dan kemampuan menyerang tanaman inang (agresivitas).

Pengujian DMRT dilakukan sejak pengamatan IV hingga pengamatan VI. Hal ini dilakukan karena pada pengamatan IV mulai tampak perbedaan nyata dari hasil analisis data (tabel 4). Hasil uji lanjut DMRT pada pengamatan IV

memperlihatkan bahwa klon IND 47 menunjukkan respon yang berbeda nyata terhadap serangan Phaeophleospora, namun tidak berbeda nyata dibandingkan dengan klon IND 66. Pengamatan V hingga pengamatan VI tidak menunjukkan perbedaan nyata dari hasil analisis data. Karena tidak menunjukkan perbedaan nyata dari hasil analisis data maka uji lanjutan DMRT tidak perlu untuk dilakukan pada pengamatan V dan pengamatan VI.

Pada akhir pengamatan (pengamatan VI) dilakukan penilaian akhir tentang resistensi tanaman berdasarkan hasil scoring lalu dihubungkan dengan tabel penilaian tingkat instensitas serangan dan reaksi tanaman (tabel 1). Angka-angka yang ditunjukkan pada pengamatan VI berturut-turut mulai dari IND 47, IND 61, dan IND 66 adalah 14,360%, 7,811%, dan 12,044%. Nilai intensitas serangan tertinggi terdapat pada klon IND 47 pengamatan IV senilai 17,917%. Berdasarkan angka-angka yang ditunjukkan pada pengamatan VI ketiga klon ini masuk dalam kategori resisten (R) karena dari angka statistik yang ditunjukkan pada setiap klon berada dalam kisaran 1-25%.

4. Luas Serangan (A)

Luas serangan diperoleh dengan cara menghitung jumlah daun yang terserang pada setiap tanaman kemudian membaginya dengan jumlah seluruh daun dari setiap tanaman yang diamati. Pengamatan terhadap tanaman Eucalyptus spp. dilakukan selama 30 hari dengan selang pengamatan enam kali.

Tabel 5. Rata-rata Luas Serangan (A) Pengamatan I-Pengamatan VI

No Klon Luas Serangan (A) (%)

I II III IV V VI

1 IND 47 0 23,456b 34,644 35,460 32,440 32,386 2 IND 61 0 5,463a 23,55 31,579 32,668 30,593 3 IND 66 0 11,709ab 32,519 39,017 38,277 38,269

Keterangan : Angka yang diikuti huruf kecil yang tidak sama berbeda nyata pada taraf 5% berdasarkan uji DMRT, sedangkan yang tidak bernotasi menunjukkan tidak berbeda nyata.

Gambar 5. Grafik Rata-rata Luas Serangan (A) Pengamatan I-Pengamatan VI

Gejala serangan mulai ditunjukkan pada pengamatan II (± sepuluh hari setelah inokulasi). Ketiga klon IND 47, IND 61, dan IND 66 sudah menunjukkan gejala serangan akibat Phaeophleospora. Grafik yang ditunjukkan terus meningkat dari pengamatan III hingga pengamatan IV. Namun tidak semua klon sudah mencapai puncak serangan pada pengamatan IV karena pada klon IND 61 baru mencapai puncak pada pengamatan V (± 25 hari setelah pengamatan), sedangkan klon IND 47 dan IND 66 sudah menunjukkan penurunan pada grafik. Pada pengamatan VI, ketiga klon sudah menunjukkan penurunan grafik.

Grafik pada gambar 7 menunjukkan puncak grafik ditunjukkan pada pengamatan IV lalu setelah itu perlahan-lahan menurun pada pengamatan V hingga pengamatan VI. Faktor yang menyebabkan penurunan serangan fungi Phaeophleospora ini bisa disebabkan karena umur bibit Eukaliptus semakin bertambah. Seperti yang diungkapkan oleh Bos (1994) yang menyatakan bahwa

0 5 10 15 20 25 30 35 40 45

I II III IV V VI

IND 47 IND 61 IND 66

semakin tinggi umur tanaman maka akan memiliki ketahanan yang lebih besar dari umur yang lebih muda.

Kesehatan tanaman juga memiliki pengaruh dalam menurunnya serangan fungi Phaeophleospora. Kesehatan tanaman dapat dikenali dari pertambahan tinggi tanaman dan pertambahan jumlah daun yang normal. Seperti diungkapkan Wahyu (2008) bahwa faktor lain dari inang yang berpengaruh terhadap kemungkinan terserangnya sutu penyakit adalah kesehatan tanaman inang. Tanaman yang sehat merupakan tanaman yang mempunyai pertumbuhan baik (daun dan batang segar), batang lurus, dan tajuk lebat.

Pengujian DMRT dilakukan sejak pengamatan II hingga pengamatan VI. Hal ini dilakukan karena pada pengamatan II mulai tampak perbedaan nyata dari hasil analisis data (tabel 4). Seperti halnya pada intensitas serangan, hasil uji lanjut DMRT pada pengamatan II memperlihatkan bahwa klon IND 47 menunjukkan respon yang berbeda nyata terhadap serangan Phaeophleospora, namun tidak berbeda nyata dibandingkan dengan klon IND 66. Pengamatan III hingga pengamatan VI tidak menunjukkan perbedaan nyata dari hasil analisis data. Karena tidak menunjukkan perbedaan nyata dari hasil analisis data maka uji lanjutan DMRT tidak perlu untuk dilakukan pada pengamatan III dan pengamatan VI.

Pada akhir pengamatan, angka-angka yang didapatkan adalah 32,386%, 30,593%, dan 38,269% pada klon IND 47, IND 61, dan IND 66. Bila dihubungkan dengan tabel penilaian tingkat luas serangan dan reaksi tanaman (tabel 1) ketiga jenis klon ini termasuk dalam kategori agak resisten (AR). Berarti dalam hal ini, klon-klon hibrid tesebut masih dalam kategori bisa menoleransi

RIWAYAT HIDUP

Penulis dilahirkan di Medan pada tanggal 16 September 1991 dari pasangan orangtua Ir. Erwin P. Nasution dan Herlina H. Siregar, SE. Penulis merupakan anak pertama dari tiga bersaudara.

Penulis menyelesaikan pendidikan Sekolah Dasar di SD Methodist-8 Medan pada tahun 2003, lulus dari SMP Bakti Prima Pamulang pada tahun 2006, dan lulus dari SMA Methodist-8 Medan pada tahun 2009. Pada tahun 2010, penulis lulus seleksi di Universitas Sumatera Utara (USU) melalui jalur Ujian Masuk Bersama (UMB). Penulis memilih Program Studi Kehutanan, Fakultas Pertanian.

Penulis mengikuti Praktik Pengenalan Ekosistem Hutan (P2EH) di Taman Hutan Raya Bukit Barisan Kabupaten Karo pada tahun 2012. Penulis juga melaksanakan Praktik Kerja Lapang (PKL) di KPH Banyuwangi Barat Perum Perhutani Unit II Jawa Timur pada tahun 2014. Penulis melaksanakan penelitian

dengan judul “Uji Infeksi Phaeophleospora sp. pada Klon Hibrid Eucalyptus

KATA PENGANTAR

Puji dan syukur penulis ucapkan kepada Tuhan Yang Maha Esa yang telah memberikan segala berkat dan karunia-Nya sehingga penulis dapat menyelesaikan

skripsi ini dengan baik. Skripsi ini berjudul “Uji Infeksi Phaeophleospora sp. pada Klon Hibrid Eucalyptus grandis x Eucalyptus urophylla”. Skripsi ini merupakam salah satu syarat untuk menyelesaikan pendidikan di Program Studi Kehutanan, Fakultas Pertanian, Universitas Sumatera Utara.

Pada kesempatan ini penulis menyampaikan ucapan terima kasih kepada Ibu Nelly Anna S.Hut., M.Si. dan Bapak Dr. Ir. Edy Batara Mulya Siregar, M.S. selaku Komisi Pembimbing yang telah memberikan arahan, bimbingan, dan masukan kepada penulis dalam penyelesaian penelitian dan skripsi ini. Dalam perjalanannya, penyelesaian skripsi ini tidak lepas dari dukungan doa, motivasi, dan nasehat kedua orangtua Ir. Erwin P. Nasution dan Herlina H. Siregar, SE. beserta saudari-saudari. Penulis juga tidak lupa mengucapkan terima kasih kepada sahabat-sahabat dan pihak-pihak yang telah membantu terwujudnya skripsi ini. Secara khusus penulis ucapkan terima kasih kepada PT Toba Pulp Lestari Tbk Kabupaten Toba Samosir, Sumatera Utara beserta seluruh staf yang telah memberi izin dan mendampingi selama proses penelitian.

Penulis juga mengharapkan kritik dan saran yang bersifat membangun dari para pembacanya dalam penyempurnaan tulisan ini. Akhir kata, penulis mengucapkan terima kasih.

Medan, Januari 2015

DAFTAR ISI

Hal

ABSTRAK ... i

ABSTRACT ... ii

RIWAYAT HIDUP ... iii

KATA PENGANTAR ... iv

DAFTAR ISI ... v

DAFTAR TABEL ... vii

DAFTAR GAMBAR ... viii

PENDAHULUAN Latar Belakang ... 1

Tujuan Penelitian ... 2

Hipotesis Penelitian ... 3

Manfaat Penelitian ... 3

TINJAUAN PUSTAKA Eukaliptus (Eucalyptus sp.)... 4

Syarat Tumbuh Eucalyptus sp. ... 5

Penyebaran dan Morfologi Eucalyptus sp ... 6

Penyakit pada Tanaman Eucalyptus spp ... 7

Penyakit Daun Phaeophleospora ... 10

Identifikasi Penyakit Tanaman ... 15

METODE PENELITIAN Waktu dan Tempat ... 17

Bahan dan Alat ... 17

Prosedur Penelitian ... 17

Parameter Pengamatan ... 19

Analisis Data ... 21

HASIL DAN PEMBAHASAN Isolasi dan Identifikasi Phaeophleospora sp. ... 22

Gejala Penyakit Phaeophlespora sp. pada Tanaman Eucalyptus spp. ... 25

Intensitas Serangan (IS) ... 27

Luas Serangan (A) ... 29

KESIMPULAN DAN SARAN Kesimpulan ... 34

Saran ... 34

DAFTAR TABEL

No. Judul Hal

1. Penilaian tingkat intensitas dan luas serangan penyakit dan reaksi

tanaman ... 21 2. Hasil pengamatan mikroskopis Phaeophleospora sp. ... 24 3. Perkembangan gejala penyakit pada daun IND 47, IND 61, dan

IND 66 ... 25 4. Rata-rata Intensitas Serangan (IS) Pengamatan I-Pengamatan VI ... 27 5. Rata-rata Luas Serangan (A) Pengamatan I-Pengamatan VI ... 29

DAFTAR GAMBAR

No. Judul Hal

1. (A) Penampakan permukaan bawah daun yag terinfeksi P.

destructans ... 13

(B) Penampakan permukaan bawah daun yag terinfeksi P.

epicoccoides ... 13

2. Pembibitan Eukaliptus di TPL yang terinfeksi penyakit daun ... 22 3. Tampilan makroskopis Phaeophleospora sp. pada media PDA ... 23

4. Grafik Rata-rata Intensitas Serangan (IS) Pengamatan

I-Pengamatan VI ... 27 5. Grafik Rata-rata Luas Serangan (A) Pengamatan I-Pengamatan VI ... 29