Stasiun 1 Titik Sampel 2 Stasiun 1 Titik Sampel 3 Stasiun 2 Titik Sampel 1

  LAMPIRAN

Lampiran 1. Foto Lokasi Penelitian

  Stasiun 1 Titik Sampel 1 Stasiun 1 Titik Sampel 2 Stasiun 1 Titik Sampel 3 Stasiun 2 Titik Sampel 1 Stasiun 2 Titik Sampel 2 Stasiun 2 Titik Sampel 3

Lampiran 2. Alat dan Bahan

  Coolbox Ember pH meter Meteran

  Botol BOD

  5 Gayung Botol Winkler Labu Erlenmeyer GPS Termometer Raksa

  Secchi disk Es batu Alat titrasi Botol Sampel Fecal Coliform Tabung Reaksi Spektrofotometer

  Pipet Ukur Bola Karet Spatula Timbangan Analitik Beaker glass Autoklaf Inkubator Tabung durham Bunsen burner Jarum ose Kertas saring Whatman

Lampiran 3. Kegiatan Pengambilan Sampel Di Lapangan

  Pengukuran pH Pengukuran Suhu Pengukuran DO Pengambilan Sampel Air

  Pengukuran BOD

  5 Pengukuran Kecerahan Air

Lampiran 4. Uji Laboratorium Fecal Colifom

  Tes perkiraan sampel diinokulasikan Sampel diinkubasi ke dalam media Lauryl Triptose Broth Persiapan pembuatan media EC Broth untuk Uji Penegasan EC Broth ditimbang sebanyak 3,7 Dilarutkan dengan aquades sebanyak gram

  1 L Dipindahkan ke dalam 15 buah Sampel ditutup dengan kapas tabung reaksi sebanyak 10 mL Tabung reaksi ditutup dengan kapas Sampel disterilisasi di dalam autoklaf dan disusun di dalam rak Uji Penegasan

  Sampel yang telah diinkubasi Kemudian sampel diinokulasikan dihitung jumlahnya yang terbentuk dengan menggunakan jarum ose gas di dalam tabung durham secara steril.

Lampiran 5. Data Hasil Pengukuran Nilai Parameter Fisika, Kimia dan Biologi Perairan (Sampling 4 Mei 2013). No Parameter S tasiun 1 (Ada Aktivitas KJA) Titik S ampling 1 Rata

  0.24

  4.3

  4.0

  4.3

  4.1

  3.7

  6. DO (mg/l)

  5. T SS (mg/l) 15.64 15.22 15.38 15.4 18.24 17.98 18.36 18.19 12.64 12.42 12.58 12.55

  0.23

  4.2

  0.23

  0.25

  6.10

  6.32

  5.27

  6.72

  3.13

  4.3

  4.3

  3.06

  1.6

  8. COD (mg/l) 5.568 5.378 5.568 5.50 6.636 6.144 6.528 6.44

  1.0

  1

  1

  0.8

  1.6

  1.5

  1.6

  5

  1.2

  1.1

  1.2

  1.2

  7. BOD(mg/l)

  5.0

  5

  5.1

  3.14

  3.18

  9. NH

  27

  7.5

  7.4

  7.4

  7.8

  27 2. pH

  27

  27

  27

  7.1

  27

  27

  26

  26

  C)

  1. Suhu (

  2 U1 U2 U3 U1 U2 U3 U1 U2 U3

  2 Titik S ampling 3 Rata

  7.1

  7.4

  Kekeruhan (NT U)

  3.65

  3.4 4.

  3.4

  3.5

  3.2

  3.4

  3.3

  3.2

  3.09

  7.2

  3.3

  3

  2.96

  Kecerahan (m)

  7.7 3.

  7.3

  7.9

  8

  4.8 5.376 5.184 5.12

• N (mg/l)
• N(mg/l)
• N (mg/l)

  3

  0.6

  6.0

  7. BOD(mg/l)

  0.5

  0.5

  0.4

  0.5

  0.3

  6

  0.3

  0.4

  0.5

  0.3

  0.3

  0.4

  8. COD (mg/l) 4.992 5.184 5.184

  6.1

  6

  4.992 4.8 4.608

  14.12

  12.36

  12.42

  12.38

  12.39

  14.08

  14.12

  14.16

  6. DO (mg/l)

  5.5

  6.2

  6.2

  6.4

  6.3

  5.8

  5.3

  5.3

  5.12

  4.8

  14.28

  14

  0.072

  0.062 0.06 0.062

  0.061

  0.069 0.064 0.065

  0.066 13.

  Colifecal (MPN/100 ml)

  3.6

  4

  8.8

  2

  17

  9.5

  1.7

  11

  6.35

  (mg/l) 0.072 0.068 0.075

  12. PO

  4.416 4.416 4.608

  0.33

  4.48

  9. NH

  3 -N (mg/l) 0.161 0.168 0.168 0.166 0.132 0.115 0.115 0.121 0.158 0.163 0.172 0.164

  10 NO

  3

  0.44

  0.325 0.322 0.332

  0.435 0.421 0.442

  0.004

  0.433

  11. NO

  2

  0.006

  0.003 0.003 0.001

  0.002

  0.005 0.005 0.003

  14.28

  14.34

  0.205 0.214 0.205 0.21 0.286 0.312 0.293 0.29 0.198 0.209 0.198 0.20

  27

  2 U1 U2 U3 U1 U2 U3 U1 U2 U3

  1. Suhu (

  C)

  27

  27

  27

  27

  26.9 No Parameter S tasiun 2 (Tidak Ada Aktivitas KJA) Titik S ampling 1 Rata

  27

  27

  27

  27

  27

  27

  2. pH

  2 Titik S ampling 3 Rata

  6.8

  14.22

  4

  10 NO

  3

  0.625 0.601 0.633 0.63 0.814 0.768 0.792 0.79 0.408 0.421 0.418 0.42

  11. NO

  2

  0.005 0.005 0.003 0.004 0.012 0.015 0.012 0.013 0.001 0.003 0.001 0.002

  12. PO

  (mg/l) 0.137 0.132 0.132 0.13 0.182 0.188 0.186 0.18 0.091 0.098 0.098 0.096 13.

  47

  Colifecal (MPN/100 ml)

  24

  25

  24.5

  4

  20

  12

  7.7

  8.1

  8

  0.12

  3.55

  3.52 4.

  Kekeruhan (NT U)

  0.35

  0.42

  0.38

  0.38

  0.15

  3.42

  0.14

  0.14

  0.28

  0.31

  0.31

  0.3

  5. T SS (mg/l)

  3.6

  4.05

  7.9

  7.6

  7.6

  7.9

  8

  7.8

  7.3

  7.5

  7.5 3.

  4.2

  Kecerahan (m)

  3.3

  3.5

  4.63

  3.81

  3.4

  4.55

  27

• N(mg/l) 0.453 0.438 0.442
• N (mg/l) 0.005 0.008 0.005

Lampiran 6. Data Hasil Pengukuran Nilai Parameter Fisika, Kimia dan Biologi Perairan (Sampling 2 Juni 2013). Stasiun 1 (Ada Aktivitas KJA) No Parame te r

  2

  2

  2 Titik Sampling 1 Titik Sampling 2 Titik Sampling 3 Rata Rata Rata U 1 U2 U3 U1 U2 U3 U1 U2 U3

  1. Suhu (

  C)

  26

  26

  26

  27

  27

  27

  27

  27

  27 2. pH

  8.1

  8.3

  8.2

  8

  7.8

  8.3

  8

  8.1

  7.8

  8.2

  8.0

  7.9 Kecerahan

  3. (m)

  4.1

  5.35 5.25 3.175 3.75

  5.2

  3.19

  4.05

  4.9 4.04 4.125 3.8

  Kekeruhan 4. (NT U)

  2.86

  3.16

  2.95

  2.99

  7.13

  6.57

  6.82

  6.84

  0.28

  0.16

  0.22

  0.22

  5. T SS (mg/l)

  15.64 15.22 15.38 15.41 19.36 18.22 19.18 18.92 12.86 12.74 12.68 12.76

  6. DO (mg/l)

  4.7

  4.7

  4.6

  5

  5.1

  5

  6.3

  6.3

  6.2

  5.0

  5.0

  6.3

  7. BOD(mg/l)

  1.3

  1.1

  1

  1.2

  1.8

  1.5

  1

  1

  1.1

  1.1

  1.5

  1.0

  8. COD (mg/l) 5.376 6.144 55.568

  5.696 6.336 6.144 6.144 6.208 4.8 5.376 5.184 5.12

  9. NH -N (mg/l) 0.185

  3 0.204 0.198 0.196 0.268 0.272 0.276 0.272 0.132 0.126 0.122 0.127

  10 NO

  3 -N(mg/l) 0.596 0.757 0.283

  0.601 0.583 0.593 0.752 0.758 0.762 0.291 0.296 0.29

  11. NO

  2 -N (mg/l) 0.003 0.008 0.001

  0.003 0.002 0.003 0.007 0.008 0.008 0.002 0.001 0.0013

  12. PO (mg/l) 0.125

  4 0.122 0.125 0.124 0.186 0.179 0.178 0.181 0.088 0.083 0.085 0.085

  Colifecal 13. (MPN/100 ml)

  4

  17

  1.8

  9.3

  9.3

  23

  10.5

  5.6

  16.2 Stasiun 2 (Tidak Ada Aktivitas KJA)

  2

  2

  2 No Parame te r Titik Sampling 1 Rata Titik Sampling 2 Rata Titik Sampling 3 Rata U1 U2 U3 U1 U2 U3 U1 U2 U3

  1. Suhu (

  C)

  27

  27

  27

  27

  28

  28

  28

  28

  28

  28

  28

  28

  2. pH

  8

  8.1

  8.1

  7.9

  8.1

  8.2

  7.8

  7.8

  7.8

  8.1

  8.1

  7.8 Kecerahan

  3. (m)

  5.2

  5.4

  5.55 4.9 5.575 6.22 4.975 4.075

  4.37

  5.38

  5.57

  4.47 Kekeruhan

  4. (NT U)

  0.48

  0.54

  0.43

  0.21

  0.19

  0.19

  0.34

  0.32

  0.32

  0.48

  0.19

  0.32

  5. T SS (mg/l)

  15.56

  15.78

  15.62

  12.88

  12.84

  12.96

  14.48

  14.36

  14.42

  15.65

  12.89

  14.42

  6. DO (mg/l)

  6.3

  6.2

  6.2

  6.2

  6

  6

  6

  5.5

  5.7

  6.2

  6.1

  5.7

  7. BOD(mg/l)

  0.6

  0.6

  0.5

  0.6

  0.7

  0.5

  0.5

  0.6

  0.4

  0.5

  0.6

  0.5

  8. COD (mg/l) 5.376 5.184 5.184 5.184 4.8 4.608 4.8 4.416 4.608

  5.248 4.864 4.608

  9. NH -N (mg/l) 0.153 0.142 0.146 0.136 0.121 0.126 0.148 0.133 0.142

  3 0.147 0.128 0.141

  10 NO -N(mg/l) 0.461 0.442 0.442 0.306 0.328 0.328 0.427 0.435 0.431

  3 0.448 0.321 0.431

  11. NO -N (mg/l) 0.003 0.003 0.002 0.002 0.002 0.001 0.003 0.002 0.002

  2 0.003 0.002 0.002

  12. PO (mg/l) 0.043 0.052 0.041 0.038 0.04 0.038 0.055 0.053 0.053

  4 0.045 0.039 0.054

  Colifecal (MPN/100 13. ml)

  49

  24

  36.5

  22

  14

  18

  33

  15

  24

Lampiran 7. Metode Pengukuran DO (Michael, 1984; Suin 2002)

  Sampel Air 1 ml KOH-KI 1 ml MnSO

  4 Dikocok Didiamkan Sampel membentuk endapan putih /coklat 1 ml H SO

  2

  4 Dikocok Didiamkan Larutan sampel berwarna Coklat Diambil 100 ml

  Dititrasi Na S O 0,0125 N

  2

  2

  3 Larutan berwarna kuning pucat Ditambah 5 tetes larutan Amilum Larutan berwarna biru

  Dititrasi Na S O 0,0125 N

  2

  2

  3 Larutan bening

Volume Na S O yang terpakai = Nilai DO

  2

  2

  3

Lampiran 8. Metode Pengukuran BOD

  5 (Michael, 1984; Suin 2002)

• Sampel air diukur nilai DO nya langsung di lokasi penelitian (DO awal)

  dengan metode Winkler.
• Sampel air di inkubasi pada suhu 20 C selama 5 hari.
• Selanjutnya setelah di inkubasi nilai DO nya kembali diukur (DO inkubasi)

  5 adalah selisih antara nilai DO awal dengan nilai DO inkubasi

  Sampel Air Sampel Air I Sampel Air II

  DO Awal DO Akhir

  Diinkubasi selama 5 hari pada temperature 20 C

Dihitung DO

Dihitung DO

Keterangan

• Nilai BOD

Lampiran 9. Metode Penentuan Nilai COD (Michael, 1984; Suin 2002)

  Sampel Air KMnO 4 0,1 ml Panaskan selama 1 jam

  Dinginkan 10 menit Tambahkan 10 ml KI 10 % Tambahkan H

  2 SO 4 10 ml Titrasi dengan larutan Triosulfat

  Sampel Berwarna Kuning Pucat Tambahkan larutan Amilum 10%

  Sampel Berwarna Biru Titrasi dengan Larutan Triosulfat

  Sampel Berwarna Bening Nilai COD = Banyaknya Triosulfat yang terpakai

Lampiran 10. Metode Pengukuran Ammonia (NH 3 -N) (Suin 2002)

  25 ml sampel air Disaring, masukkan kedalam gelas beaker Ditambah 1 ml Phenol Solution Ditambah 1 ml Sol Nitroposside Ditambah 2,5 ml Oxidizing Solution

Aduk rata

Tutup dengan aluminium foil Biarkan selama 1 jam

  Diukur dengan panjang gelombang Terbentuk larutan komplek 640 spektofotometer 25 ml sampel air

  Disaring, masukkan kedalam gelas beaker Ditambah 1 ml Phenol Solution Ditambah 1 ml Sol Nitroposside Ditambah 2,5 ml Oxidizing Solution

Aduk rata

Tutup dengan aluminium foil Biarkan selama 1 jam Diukur dengan panjang gelombang

  Terbentuk larutan komplek 640 spektofotometer

  sampel air

  C =

Lampiran 11. Metode Pengukuran Kandungan Nitrat (NO 3 -N) (Michael, 1984; Suin 2002)

  Sampel Air (5 ml) 5 ml H

  2 SO

  4 75 % 4 tetes asam brucine sulfat sulfanic

  Larutan Dipanaskan selama 25 menit Pada suhu 95 C

  Larutan Didinginkan Diukur dengan spektofotometer pada λ = 410 nm

  Hasil (Konsentrasi Nitrat)

Lampiran 12. Metode Pengukuran Nitrit (NO 2 -N) (Suin 2002)

  10 ml sampel air danau Ditambah 4 tetes larutan Sulfanilamide Dikocok dan diamkan selama 2-4 menit Ditambah 4 tetes N (1-napthyl ethylinedeamine)

Tutup dengan aluminium foil

Diamkan selama 20-30 menit

Terbentuk larutan komplek

  Diukur absorban contoh air laut dengan spektofometer pada panjang gelombang 543nm 10 ml aquades Ditambah 4 tetes larutan Sulfanilamide

  Dikocok dan diamkan selama 2-4 menit Ditambah 4 tetes N (1-napthyl ethylinedeamine)

Tutup dengan aluminium foil

Diamkan selama 20-30 menit

  Terbentuk larutan komplek Diukur absorban blanko dengan spektofotometer pada panjang gelombang 543nm

  Ditambah 4 tetes larutan Sulfanilamide Dikocok dan diamkan selama 2-4 menit Ditambah 4 tetes N (1-napthyl ethylinedeamine)

Tutup dengan aluminium foil

Diamkan selama 20-30 menit

Diukur absorban standar dengan spektofotometer pada panjang gelombang 543nm 1.

  Hitung faktor kalibrasi F = C / (Asd

• – Ab) Dimana : F = faktor kalibrasi C = Konsentrasi standar yang digunakan Asd = Absorbsi standar Ab = Absorbsi blanko 2.

  As = Absorbsi contoh air Ab = Absorbsi blanko 10 ml larutan standar

  Terbentuk larutan komplek

Kandungan Ntrit terlarut = F x (As – Ab) Dimana : F = Faktor kalibrasi

• - Lampiran 13. Metode Pengukuran Kandungan Fosfat (PO 4 ) (Michael, 1984; Suin 2002).

  Sampel Air (5 ml) 2 ml Reagen Amstrong 1 ml Asam Askrobat

  Larutan Dibiarkan selama 20 menit Diukur dengan spektofotometer pada

  

λ = 880 nm

Hasil (Konsentrasi Fosfat)

Lampiran 14. Metode Pengujian Fecal Coliform Dengan Metode MPN I

  Uji Perkiraan

• Disiapkan 5 tabung kultur masing-masing berisi media Lauryl Triptose Broth 1,5% sebanyak 5 mL dan 10 tabung kultur lainnya berisi media Lauryl Triptose Broth.
• Tabung Kultur disusun pada rak tabung masing-masing tabung diberi tanda sebagai berikut: 1.

  Nomor contoh uji 2. Volume contoh uji 3. Tanggal pengujian

• Contoh uji dicampur dengan cara digojog memutar.
• Diinokulasikan contoh uji dengan contoh uji diambil dari pipet steril (volume

  10 mL) selanjutnya contoh uji dimasukkan ke dalam tabung kultur 1 sampai 5

  masing- masing sebanyak 10 mL. tabung kultur 1 sampai 10 sebanyak 1 mL

  dan tabung kultur ke 11 sampai dengan 15 sebanyak 0,1 m L dengan pipet 1

  mL.
• Selama proses pengujian inokulasi dilakukan secara aseptis.
• Masing-masing tabung kultur digoyang-goyang agar contoh uji dan media tercampur rata.
• Sampel diinkubasikan di dalam inkubator pada suhu 35 C selama 2 x 24 jam. Selanjutnya diamati pembentukan gas dalam tabung durham
• Catat tabung kultur yang menunjukkan peragian laktosa yaitu dengan terbentuknya gas. Terbentuknya gas dalam tabung durham dinyatakan pertumbuhan positif dan dilanjutkan pada uji penegasan.
• Kultur yang dinyatakan positif pad uji perkiraan, diinokulasikan ke dalam

  tabung kultur yang berisi 10 mL EC Broth masing- masing 1-2 ose. Inokulasi

  selam pengujian dilakukan secara aseptis.
• Inkubasikan tabung kutur pada poin a dengan incubator pada suhu 35 0C selama 2 x 24 jam

  Setelah 48 jam dilakukan pengamatan dengan melihat jumlah tabung kultur

• yang menunjukkan terbentuknya gas (dinyatakan positif) Pembacaan hasil dari uji penegasan dilakukan dnegna menghitung jumlah

• tabung yang positif. Angka yang diperoleh dicocokkan dengan tabel MPN,

  maka akan diperoleh MPN Coliform Misal : Dari inokulasi dengna volume contoh uji 10 mL diperoleh 4 tabung

• EC Broth positif, dari inokulasi dengan volume 1 mL diperoleh tabung EC

  Broth positif dan dari inokulasi dengan volume 0,1 mL diperoleh 0 tabung

  EC Broth posotif.
• setelah dicocokan dengan tabel MPN, diperoleh angka 17, maka MPN/100mL adalah 17 Acuan: Anonim. 2005. Standard Methods for The Examination of Water and Wastewater Smerican Public health Association. Inc. NY 9221 B P.9-48

  Angka yang diperoleh dari tabung kultur yang positif gas adalah 4: 1: 0,