Pengaruh Konsentrasi dan Lama Perendaman Asam Sulfat (H2SO4) Terhadap Viabilitas Benih Delima (Punica granatum L.)

PENGARUH KONSENTRASI DAN LAMA PERENDAMAN ASAM SULFAT (H2SO4) TERHADAP VIABILITAS BENIH DELIMA (Punica granatum L.) SKRIPSI OLEH: ILHAM INDRA SATYA 110301051 AGROEKOTEKNOLOGI
PROGRAM STUDI AGROEKOTEKNOLOGI FAKULTAS PERTANIAN
UNIVERSITAS SUMATERA UTARA MEDAN 2015

PENGARUH KONSENTRASI DAN LAMA PERENDAMAN ASAM SULFAT (H2SO4) TERHADAP VIABILITAS BENIH DELIMA (Punica granatum L.)
SKRIPSI
OLEH: ILHAM INDRA SATYA
110301051 AGROEKOTEKNOLOGI Skripsi sebagai salah satu syarat memperoleh gelar sarjana di Fakultas Pertanian Universitas Sumatera Utara
PROGRAM STUDI AGROEKOTEKNOLOGI FAKULTAS PERTANIAN
UNIVERSITAS SUMATERA UTARA MEDAN 2015

Judul Skripsi
Nama NIM Program Studi Minat

: Pengaruh Konsentrasi dan Lama Perendaman Asam Sulfat (H2SO4) Terhadap Viabilitas Benih Delima (Punica granatum L.)
: Ilham Indra Satya : 110301051 : Agroekoteknologi : Budidaya Pertanian dan Perkebunan

Disetujui Oleh :

(Ir. Haryati, MP) Ketua Komisi Pembimbing


(Ir. Toga Simanungkalit, MP) Anggota Komisi Pembimbing

Diketahui Oleh

(Prof. Dr. Ir. T. Sabrina, MSc) Ketua Program Studi Agroekoteknologi

ABSTRACT
ILHAM INDRA SATYA : Effect of Concentration and Duration of Soaking Sulphuric Acid (H2SO4) on The Viability of Pomegranate Seed (Punica granatum L.). Supervised by HARYATI and TOGA SIMANUNGKALIT.
Pomegranate seed requires dormancy breaking treatment to encourage germination. One of dormancy breaking treatments that can be done is setting the concentration and duration of soaking sulphuric acid (H2SO4) . This study aimed to determine the effect of concentration and duration of soaking sulphuric acid (H2SO4) on the viability of pomegranate seeds. This research was conducted at the Laboratory of Seed Technology Faculty of Agriculture, University of North Sumatra, Medan with a height of ± 25 meters above sea level, in April 2015, using a completely randomized design with 10 degree factor dormancy breaking treatments that seed soaking treatment with H2SO4 (25%, 50%, 75%) with duration of soaking (10 minutes, 15 minutes, and 20 minutes). Parameters measured were moisture content (%), experiment of tetrazolium(%), germination rate (day), normal seedling (%), abnormal seedling (%), seed that has not grown (%), vigor index (seedling in one day), fresh weight (gr), dry weight (gr).
The results showed that seed soaking treatment with 75% H2SO4 for 10 minutes increased the percentage of moisture content (%),germination rate (day), normal seedling (%),vigor index (seedling in one day), fresh weight (g), dry weight (g), but not to experiment of tetrazolium (%).
Keywords: pomegranate seeds, viability, dormancy

ABSTRAK
ILHAM INDRA SATYA : Pengaruh Konsentrasi dan Lama Perendaman Asam Sulfat (H2SO4) Terhadap Viabilitas Benih Delima (Punica granatum L.). Dibimbing oleh HARYATI dan TOGA SIMANUNGKALIT.
Benih delima membutuhkan perlakuan pematahan dormansi untuk mendorong perkecambahannya. Salah satu perlakuan pematahan dormansi yang dapat dilakukan adalah dengan cara mengatur konsentrasi dan lama perendaman asam sulfat (H2SO4). Penelitian ini bertujuan untuk mengetahui pengaruh perlakuan konsentrasi dan lama perendaman asam sulfat (H2SO4) terhadap viabilitas benih delima. Penelitian ini dilaksanakan di Laboratorium Teknologi Benih Fakultas Pertanian Universitas Sumatera Utara Medan dengan ketinggian + 25 meter dpl, bulan April 2015 dengan menggunakan rancangan acak lengkap satu faktor dengan 10 taraf perlakuan pematahan dormansi yaitu perlakuan perendaman benih dengan H2SO4 (25%, 50%, 75%) dengan masing-masing waktu perendaman (10 menit, 15 menit, dan 20 menit). Parameter yang diamati adalah kadar air (%), uji tetrazolium (%), laju perkecambahan (hari), kecambah normal (%), kecambah abnormal (%), benih yang belum tumbuh (%), indeks vigor (benih berkecambah/hari), bobot basah (g), bobot kering (g).
Hasil penelitian menunjukkan bahwa perlakuan perendaman benih dengan H2SO4 75% selama 10 menit berpengaruh meningkatkan kadar air, persentase laju perkecambahan, persentase kecambah normal, indeks vigor, bobot basah, dan bobot kering, tetapi tidak untuk pengujian tetrazolium.
Kata kunci : benih delima, viabilitas, dormansi

RIWAYAT HIDUP
Penulis dilahirkan di Galang pada tanggal 18 Oktober 1992. Anak ke enam dari enam bersaudara dari Bapak Rasimin dan Ibu Supinawaty.

Penulis menyelesaikan Sekolah Dasar di Negeri101891 Galang, pada tahun 2004, Sekolah Menengah Pertama di Negeri 1 Lubuk Pakam pada tahun 2007, Sekolah Menengah Atas di Negeri 1 Lubuk Pakam pada tahun 2010. Pada tahun 2011 penulis diterima di Program Studi Agroekoteknologi Fakultas Pertanian Universitas Sumatera Utara melalui jalur ujian Seleksi Nasional Masuk Perguruan Tinggi Negeri.
Selama duduk dibangku perkuliahan penulis aktif sebagai anggota Himpunan Mahasiswa Agroekoteknologi (HIMAGROTEK), sebagai asisten praktikum Teknologi Benih (2013-2015), sebagai pengurus Pemerintahan Mahasiswa (PEMA) Fakultas Pertanian (2014-2015). Selain itu penulis juga pernah meraih juara II dalam lomba pengamatan tanah dilapangan dalam acara dies natalis IMILTA tahun 2012.

KATA PENGANTAR Puji dan syukur penulis ucapkan kehadirat Tuhan Yang Maha Esa atas berkat dan Rahmat-Nyalah penulis dapat menyelesaikan skripsi ini. Adapun judul dari skripsi ini adalah “Pengaruh Konsentrasi dan Lama Perendaman Asam Sulfat (H2SO4) Terhadap Viabilitas Benih Delima (Punica granatum L.)”. Pada kesempatan ini penulis mengucapkan terima kasih kepada kedua orang tua penulis yang telah berjuang dalam membimbing dan mengajarkan penulis sampai saat ini. Penulis juga mengucapkan terima kasih kepada ibu Ir. Haryati, MP., selaku ketua komisi pembimbing dan bapak Ir. Toga Simanungkalit, MP., selaku anggota komisi pembimbing yang telah banyak membatu penulis dalam memberikan saran dan arahan yang membangun dalam kesempurnaan skripsi ini. Penulis menyadari bahwa skripsi ini masih banyak mengalami kekurangan. Oleh karena itu, penulis mengharapkan saran dan kritik yang bersifat membangun demi kesempurnaan skripsi ini. Akhir kata penulis mengucapkan terima kasih.
Medan, Juni 2015
Penulis

DAFTAR ISI
Hal.
ABSTRACT .................................................................................................................i
ABSTRAK .................................................................................................................ii
RIWAYAT HIDUP....................................................................................................iii
KATA PENGANTAR ...............................................................................................iv
DAFTAR ISI..............................................................................................................v
DAFTAR TABEL......................................................................................................vii
DAFTAR LAMPIRAN..............................................................................................viii
PENDAHULUAN Latar Belakang ...........................................................................................................1 Tujuan Penelitian .......................................................................................................3 Hipotesis Penelitian....................................................................................................3 Kegunaan Penelitian...................................................................................................4
TINJAUAN PUSTAKA Botani Tanaman .........................................................................................................5 Dormansi Benih .........................................................................................................6 Perlakuan Pematahan Dormansi ................................................................................7 Pematahan Dormansi dengan Berbagai Konsentrasi Asam Sulfat (H2SO4) ..............9 Pematahan Dormansi dengan Lama Perendaman Asam Sulfat (H2SO4)...................10 Viabilitas Benih..........................................................................................................11
BAHAN DAN METODE PENELITIAN Tempat dan Waktu Penelitian ...................................................................................13 Bahan dan Alat ..........................................................................................................13 Metode Penelitian ......................................................................................................13
PELAKSANAAN PENELITIAN Persiapan Benih..........................................................................................................15 Persiapan Media Perkecambahan...............................................................................15 Pengukuran Kadar Air................................................................................................15 Aplikasi Perlakuan .....................................................................................................15 Imbibisi Benih............................................................................................................16 Pengecambahan Benih ...............................................................................................16 Pemeliharaan ..............................................................................................................16 Pengamatan Parameter ...............................................................................................17

Kadar Air Benih (%).........................................................................................17

Hal.
Uji Tetrazolium (%)..........................................................................................17 Laju Perkecambahan (hari)...............................................................................17 Uji Daya Kecambah..........................................................................................18
Kecambah Normal (%)............................................................................18 Kecambah Abnormal (%)........................................................................18 Benih yang Belum tumbuh (%)...............................................................19 Indeks Vigor (benih berkeambah/hari).............................................................19 Bobot Segar Kecambah (g)...............................................................................20 Bobot Kering Kecambah (g).............................................................................20
HASIL DAN PEMBAHASAN Hasil ...........................................................................................................................21
Kadar Air Benih (%).........................................................................................21 Uji Tetrazolium (%)..........................................................................................22 Laju Perkecambahan (hari)...............................................................................23 Uji Daya Kecambah..........................................................................................24
Kecambah Normal (%)............................................................................24 Kecambah Abnormal (%)........................................................................25 Benih yang Belum Tumbuh (%) .............................................................26 Indeks Vigor (benih berkecambah/hari) ...........................................................27 Bobot Segar Kecambah (g)...............................................................................28 Bobot Kering Kecambah (g).............................................................................29 Pembahasan................................................................................................................30
KESIMPULAN DAN SARAN Kesimpulan ................................................................................................................37 Saran ..........................................................................................................................37
DAFTAR PUSTAKA
LAMPIRAN

DAFTAR TABEL No Hal. 1. Rataan Persentase Kadar Air......................................................... 21 2. Rataan Persentase Uji Tetrazolium ............................................... 22 3. Rataan Laju Perkecambahan ......................................................... 23 4. Rataan Persentase Kecambah Normal........................................... 24 5. Rataan Persentase Kecambah Abnormal....................................... 25 6. Rataan Persentase Benih Yang Belum Tumbuh ........................... 26 7. Rataan Indeks Vigor Benih ........................................................... 27 8. Rataan Bobot Basah Benih............................................................ 28 9. Rataan Bobot Kering Benih .......................................................... 29

DAFTAR LAMPIRAN No Hal. 1. Kebutuhan Bahan Kimia ............................................................... 41 2. Data Kadar Air .............................................................................. 41 3. Sidik Ragam Kadar Air ................................................................. 41 4. Data Uji Tetrazolium..................................................................... 42 5. Sidik Ragam Uji Tetrazolium ....................................................... 42 6. Data Laju Perkecambahan............................................................. 43 7. Sidik Ragam Laju Perkecambahan ............................................... 43 8. Data Kecambah Normal ................................................................ 44 9. Sidik Ragam Kecambah Normal................................................... 44 10. Transformasi Arcsin Data Kecambah Normal .............................. 45 11. Transformasi Arcsin Sidik Ragam Kecambah Normal................. 45 12. Data Kecambah Abnormal ............................................................ 46 13. Sidik Ragam Kecambah Abnormal............................................... 46 14. Transformasi √(x + 0,5) Data Kecambah Abnormal..................... 47 15. Transformasi √(x + 0,5) Sidik Ragam Kecambah Abnormal ....... 47 16. Data Benih yang Belum Tumbuh.................................................. 48 17. Sidik Ragam Benih yang Belum Tumbuh .................................... 48 18. Transformasi Arcsin Data Benih yang Belum Tumbuh................ 49 19. Transformasi Arcsin Sidik Ragam Benih yang Belum Tumbuh... 49 20. Data Indeks Vigor ....................................................................... 50 21. Sidik Ragam Indeks Vigor ............................................................ 50 22. Data Bobot Basah.......................................................................... 51

Hal. 23. Sidik Ragam Bobot Basah............................................................. 51 24. Data Bobot Kering ........................................................................ 52 25. Sidik Ragam Bobot Kering ........................................................... 52 26. Deskripsi Tanaman........................................................................ 53 27. Jadwal kegiatan ............................................................................. 54 28. Bagan Penanaman ......................................................................... 55 29. Bagan Penelitian............................................................................ 56 30. Gambar Bentuk Benih Setelah Aplikasi H2SO4............................ 57 31. Gambar Benih Setelah Aplikasi Tetrazolium................................ 57 32. Gambar Kecambah 14 Hari Setelah Tanam.................................. 58 33. Gambar Kecambah 30 Hari Setelah Tanam.................................. 60

ABSTRACT
ILHAM INDRA SATYA : Effect of Concentration and Duration of Soaking Sulphuric Acid (H2SO4) on The Viability of Pomegranate Seed (Punica granatum L.). Supervised by HARYATI and TOGA SIMANUNGKALIT.

Pomegranate seed requires dormancy breaking treatment to encourage germination. One of dormancy breaking treatments that can be done is setting the concentration and duration of soaking sulphuric acid (H2SO4) . This study aimed to determine the effect of concentration and duration of soaking sulphuric acid (H2SO4) on the viability of pomegranate seeds. This research was conducted at the Laboratory of Seed Technology Faculty of Agriculture, University of North Sumatra, Medan with a height of ± 25 meters above sea level, in April 2015, using a completely randomized design with 10 degree factor dormancy breaking treatments that seed soaking treatment with H2SO4 (25%, 50%, 75%) with duration of soaking (10 minutes, 15 minutes, and 20 minutes). Parameters measured were moisture content (%), experiment of tetrazolium(%), germination rate (day), normal seedling (%), abnormal seedling (%), seed that has not grown (%), vigor index (seedling in one day), fresh weight (gr), dry weight (gr).
The results showed that seed soaking treatment with 75% H2SO4 for 10 minutes increased the percentage of moisture content (%),germination rate (day), normal seedling (%),vigor index (seedling in one day), fresh weight (g), dry weight (g), but not to experiment of tetrazolium (%).
Keywords: pomegranate seeds, viability, dormancy

ABSTRAK
ILHAM INDRA SATYA : Pengaruh Konsentrasi dan Lama Perendaman Asam Sulfat (H2SO4) Terhadap Viabilitas Benih Delima (Punica granatum L.). Dibimbing oleh HARYATI dan TOGA SIMANUNGKALIT.
Benih delima membutuhkan perlakuan pematahan dormansi untuk mendorong perkecambahannya. Salah satu perlakuan pematahan dormansi yang dapat dilakukan adalah dengan cara mengatur konsentrasi dan lama perendaman asam sulfat (H2SO4). Penelitian ini bertujuan untuk mengetahui pengaruh perlakuan konsentrasi dan lama perendaman asam sulfat (H2SO4) terhadap viabilitas benih delima. Penelitian ini dilaksanakan di Laboratorium Teknologi Benih Fakultas Pertanian Universitas Sumatera Utara Medan dengan ketinggian + 25 meter dpl, bulan April 2015 dengan menggunakan rancangan acak lengkap satu faktor dengan 10 taraf perlakuan pematahan dormansi yaitu perlakuan perendaman benih dengan H2SO4 (25%, 50%, 75%) dengan masing-masing waktu perendaman (10 menit, 15 menit, dan 20 menit). Parameter yang diamati adalah kadar air (%), uji tetrazolium (%), laju perkecambahan (hari), kecambah normal (%), kecambah abnormal (%), benih yang belum tumbuh (%), indeks vigor (benih berkecambah/hari), bobot basah (g), bobot kering (g).
Hasil penelitian menunjukkan bahwa perlakuan perendaman benih dengan H2SO4 75% selama 10 menit berpengaruh meningkatkan kadar air, persentase laju perkecambahan, persentase kecambah normal, indeks vigor, bobot basah, dan bobot kering, tetapi tidak untuk pengujian tetrazolium.
Kata kunci : benih delima, viabilitas, dormansi

PENDAHULUAN Latar Belakang
Delima merupakan salah satu tanaman buah-buahan yang hidup sangat adaptif terhadap berbagai iklim dan kondisi tanah, tanaman ini dapat juga ditanam di berbagai wilayah geografis yang berbeda termasuk daerah Mediterania dan California. Delima sendiri merupakan salah satu buah tertua yang memiliki peran penting dalam keamanan gizi, baik sebagai suplemen, makanan, dan obat-obatan. Buah delima juga memiliki prospek yang baik untuk pasar komersial lokal dan internasional (Holland et al., 2009).
Menurut Holland et al. (2009) temuan-temuan ilmiah baru-baru ini menguatkan penggunaan delima sebagai obat medis dan menunjukkan bahwa jaringan delima dari buah, bunga, kulit kayu, dan daun mengandung phytochemical bioaktif yang antimikroba, mengurangi tekanan darah, dan bertindak terhadap penyakit serius seperti diabetes dan kanker. Delima digunakan untuk pencegahan dan pengobatan sejumlah gangguan kesehatan seperti radang, diabetes, diare, disentri, dan plak gigi serta untuk memerangi infeksi usus dan parasit malaria (Ismail et al., 2012).
Perbanyakan tanaman delima dapat dilakukan secara generatif dan vegetatif. Perbanyakan generatif tidak disarankan untuk produksi delima dalam skala besar, namun diperlukan untuk progam pemuliaan tanaman berupa studi genetik yang dapat menghasilkan varietas baru dan memiliki sifat unggul. Perbanyakan secara generatif delima mempunyai kendala karena benih delima yang memiliki sifat dormansi dimana kulit benihnya sangat keras. Struktur kulit benih yang keras diduga menghalangi embrio keluar dan berkecambah.

Berdasarkan hasil penelitian Olmez et al. (2007) untuk mencapai 8% persentase perkecambahan benih delima diperlukan waktu selama 71 hari.
Untuk mempercepat proses pemecahan dormansi pada tipe benih berkulit tebal dan keras harus dilakukan beberapa cara salah satunya dengan cara merendam benih dalam larutan kimia seperti asam sulfat (H2SO4), asam klorida (HCl), dan hidrogen peroksida (H2O2) (Purnomosidhi et al., 2013).
Tujuan dari perlakuan skarifikasi kimia adalah menjadikan kulit benih lebih mudah dimasuki air pada waktu proses imbibisi. Perendaman pada larutan kimia yaitu asam kuat seperti H2SO4 dan HCl dengan konsentrasi pekat membuat kulit benih menjadi lebih lunak sehingga dapat dilalui oleh air dengan mudah (Fahmi, 2012).
Larutan asam kuat seperti H2SO4 sering digunakan dengan konsentrasi yang bervariasi sampai pekat tergantung jenis benih yang diperlakukan. Lamanya perlakuan larutan asam harus memperhatikan dua hal yaitu kulit biji atau pericarp yang bisa diretakkan untuk memungkinkan imbibisi serta larutan asam tidak mengenai embrio yang menyebabkan benih rusak total (Fahmi, 2012).
Perlakuan pematahan dormansi secara kimia pada benih delima dengan konsentrasi yang berbeda menghasilkan hasil yang berbeda pada perlakuan perendaman 70% H2SO4 selama 15 menit menghasilkan persentase perkecambahan benih delima normal sebesar 90% dengan laju perkecambahan 14,04 hari sedangkan pada perlakuan perendaman 80% dan 90% H2SO4 selama 15 menit mengasilkan persentase perkecambahan benih delima normal sebesar 85,56% pada kedua perlakuan dan dengan laju perkecambahan masing - masing 13,60 hari dan 14,01 hari (Ramadhani, 2014).


Perbedaan hasil persentase daya kecambah dan kecepatan tumbuh pada perlakuan lama perendaman di jelaskan pada penelitian Astari et al. (2014) dimana perlakuan pematahan dormansi pada perendaman 1% H2SO4 selama 10 menit menghasilkan persentase rataan perkecambahan benih mucuna tertinggi yaitu sebesar 91,67 % dengan rataan kecepatan tumbuh benih 7,26 %/etmal sedangkan dengan perendaman 1% H2SO4 selama 15 menit menghasilkan persentase rataan perkecambahan benih mucuna terendah yaitu sebesar 31,67 % dengan rataan kecepatan tumbuh benih 2,66 %/etmal.
Informasi mengenai perlakuan pematahan dormansi dengan pemberian konsentrasi H2SO4 dan lama perendaman H2SO4 pada benih delima dibutuhkan untuk pengujian viabilitas benih guna menghasilkan daya perkecambahan benih dalam waktu yang singkat. Oleh karena itu, penulis tertarik untuk melakukan penelitian tentang pengaruh konsentrasi dan lama perendaman asam sulfat (H2SO4) terhadap viabilitas benih delima (Punica granatum L.). Tujuan Penelitian
Untuk memperoleh perlakuan pematahan dormansi yang terbaik pada benih delima (Punica granatum L.) dengan mengunakan beberapa konsentrasi dan lama perendaman asam sulfat (H2SO4). Hipotesis Penelitian
Ada pengaruh nyata perlakuan pematahan dormansi dengan pemberian beberapa konsentrasi dan lama perendaman asam sulfat (H2SO4) terhadap viabilitas benih delima (Punica granatum L.).

Kegunaan Penulisan Sebagai salah satu syarat untuk memperoleh gelar sarjana di Fakultas
Pertanian Universitas Sumatera Utara dan sebagai bahan informasi bagi pihak yang membutuhkan.

TINJAUAN PUSTAKA Botani Tanaman
Tanaman delima diklasifikasikan sebagai berikut kingdom: Plantae, divisio : Spermatophyta, subdivisio : Angiospermae, kelas : Dicotyledonae, ordo : Myrtales, famili : Punicaceae, genus : Punica, spesies : Punica granatum L. (United States Department of Agriculture, 2011).
Sistem perakaran delima terbagi dua, yaitu perakaran yang tumbuh vertikal dan horizontal. Bagian akar yang aktif adalah pada kedalaman 20 - 90 cm, tergantung pada perbedaan kedalaman tanah dan kelembaban (Levin, 1999).
Cabang-cabang muda dari pertumbuhan vegetatif pada awal pertumbuhan berukuran kecil. Warna kulit cabang muda tergantung pada varietas. Beberapa tanaman delima memiliki warna cabang merah muda ke unguan, selain itu ada yang berwarna hijau muda dengan bintik-bintik merah muda-ungu atau garisgaris. Cabang muda kadang-kadang memiliki duri di ujung yang sudah terlihat pada saat muda. Batang yang muda memiliki cabang poligonal (segi empat). Daun muda cenderung memiliki warna kemerahan yang berubah menjadi hijau saat dewasa (Holland et al., 2009).
Daun delima berukuran panjang sekitar 0,75-3,5 inc dan lebar 0,4-1,2 inc. Memiliki tangkai daun (petiolus) yang pendek. Terdapat tiga daun dalam satu kelompok yang tersusun pada 110-1300. Daun muda berwarna kemerahan dan akan berubah menjadi hijau ketika dewasa. Bagian atas daun berwarna hijau lebih gelap dibanding bagian bawah daun, meskipun tangkai daun tetap berwarna merah (Aston et al., 2006).

Delima merupakan tanaman menyerbuk sendiri sehingga pada satu bunga terdapat alat kelamin jantan dan betina. Bunga delima berbentuk pir, melengkung dan berdaging dengan kaliks yang berbentuk lonceng (mahkota). Terdapat 5-8 daun mahkota yang berkerut (Aston et al., 2006).
Buah delima tergolong dalam buah berry dengan pericarp luar kasar dan banyak biji. Bentuk buah kurang lebih bulat dengan diameter 8-18 cm (hingga 2 cm dalam bentuk kerdil). Buah kadang-kadang bisa lebih atau kurang bergaris. Warna kulit buah bervariasi dari kehijauan sampai merah tua, sangat jarang mendekati hitam. Warna kulit buah bervariasi tergantung pada varietas tanaman (Levin, 1999). Dormansi Benih
Benih dikatakan dorman apabila benih tersebut sebenarnya hidup tetapi tidak berkecambah walaupun diletakkan pada keadaan yang secara umum dianggap telah memenuhi persyaratan bagi suatu perkecambahan. Dormansi pada benih dapat berlangsung selama beberapa hari, semusim, bahkan sampai beberapa tahun tergantung pada jenis tanaman dan tipe dari dormansinya (Sutopo, 2012).
Ahli fisiologi benih menyatakan ada empat tahap perkecambahan : (1) hidrasi atau imbibisi, selama periode tersebut air masuk ke dalam embrio dan membasahi protein dan koloid lain, (2) pengaktifan enzim, yang menyebabkan peningkatan aktivitas metabolik, (3) pemanjangan sel radikel diikuti munculnya radikel dari kulit biji (perkecambahan yang sebenarnya), dan (4) pertumbuhan kecambah selanjutnya. Lapisan yang membungkus embrio yaitu endosperma, kulit biji, dan kulit buah, dapat mengganggu masuknya air dan atau oksigen.


Lapisan itu pun bertindak sebagai penghalang mekanis agar radikula tidak muncul (Salisbury and Ross, 1992).
Dormansi pada beberapa jenis benih disebabkan oleh: 1) struktur benih, misalnya pada kulit benih, braktea, gluma, perikap, dan membran, yang mempersulit keluar masuknya air dan udara; 2) kelainan fisiologis pada embrio; 3) penghambat (inhibitor) perkecambahan atau penghalang lainnya; 4) gabungan dari faktor-faktor diatas (Justice and Louis, 1994).
Dormansi yang penyebabnya berada dalam benih, ada yang morfologis dan fisiologis, dimana: 1) morfologis yang disebabkan oleh embrio yang rudimenter dan 2) fisiologis dikarenakan misalnya kematangan benih tidak terjamin sehingga kemampuannya untuk membentuk zat-zat yang diperlukan bagi perkecambahan menjadi kurang efektif (Kartasapoetra, 2003).
Dipandang dari segi ekonomis terdapatnya keadaan dormansi pada benih dianggap tidak menguntungkan. Oleh karena itu diperlukan cara agar dormansi dapat dipecahkan atau sekurang-kurangnya lama dormansinya dipersingkat. Beberapa cara yang telah diketahui adalah perlakuan mekanis, perlakuan kimia, perlakuan perendaman dengan air, perlakuan pemberian temperatur tertentu dan perlakuan dengan cahaya (Sutopo, 2012). Perlakuan Pematahan Dormansi
Dormansi dapat diatasi dengan melakukan perlakuan sebagai berikut : 1) pemarutan atau penggoresan (skarifikasi ) yaitu dengan cara menghaluskan kulit benih ataupun menggores kulit benih agar dapat dilalui air dan udara; 2) stratifikasi terhadap benih dengan suhu rendah (cold stratification) ataupun suhu yang tinggi (warm stratification), dimana benih yang mengalami dormansi

fisiologis dikarenakan rendah selama waktu tertentu agar benih dapat aktif kembali; 3) perubahan suhu (alternating) dengan tujuan untuk mempercepat perkecambahan dilakukan teknik dengan perubahan-perubahan suhu, artinya direndahkan derajatnya (5oC – 10oC) tergantung dari jenis benih atau ditinggikan derazatnya (20oC – 35oC); 4) penggunaan zat kimia dalam perangsangan perkecambahan benih (Kartasapoetra, 2003).
Faktor-faktor yang menyebabkan hilangnya dormansi pada benih sangat bervariasi tergantung pada jenis tanaman dan tentu saja tipe dormansinya, antara lain yaitu: menipisnya kulit biji. Perlakuan dengan menggunakan bahan-bahan kimia sering pula dilakukan untuk memecahkan dormansi pada benih. Tujuannya adalah menjadikan kulit biji lebih mudah dimasuki oleh air pada waktu proses imbibisi. Larutan asam kuat seperti asam sulfat dan asam nitrat dengan konsentrasi pekat membuat kulit biji menjadi lebih lunak sehingga dapat dilalui oleh air dengan mudah. Bahan kimia lain yang juga sering digunakan adalah : potassium hydroxide, asam hidrochlorit, potassium nitrat, dan thiourea (Sutopo, 2012).
Pada beberapa keadaan, penyimpanan dapat mempengaruhi dormansi. Dormansi pada beberapa spesies tanaman dapat menghilang, bila disimpan selama beberapa bulan pada kondisi suhu dan kelembaban nisbi lingkungan terkendali, asal saja suhunya berada diatas suhu titik beku. Ahli fisiologi benih faham benar akan metode terbaik untu mempertahankan dormansi pada benih, yaitu dengan jalan menyimpan suhu disekitar titik beku (Justice and Louis, 1994).

Pematahan Dormansi dengan Berbagai Konsentrasi Asam Sulfat (H2SO4) Penyebab dan mekanisme dormansi merupakan hal yang sangat penting
diketahui untuk dapat menentukan cara pematahan dormansi yang tepat sehingga benih dapat berkecambah dengan cepat dan seragam. Masa dormansi tersebut dapat dipatahkan dengan skarifikasi mekanik maupun kimia (Fahmi, 2012).
Perlakuan kimia seperti H2SO4 pada prinsipnya adalah membuang lapisan lignin pada kulit biji yang keras dan tebal sehingga biji kehilangan lapisan yang permiabel terhadap gas dan air dapat berdifusi masuk sehingga senyawa-senyawa inhibitor perkecambahan seperti fluoride dan kaumarin larut ke dalam H2SO4 selama proses perendaman (Sadjad et al., 1975).
Perlakuan perendaman dengan H2SO4 tidak mempengaruhi panjang hipokotil, panjang radikula, dan berat kering kecambah dikarenakan biji yang mampu berkecambah setelah perlakuan H2SO4 hanya terpengaruh pada pelunakan kulit benih dan tidak sampai ke embrio sehingga embrio tetap dapat tumbuh dengan normal. Tetapi apabila perlakuan H2SO4 sampai pada embrio benih, maka embrio tidak akan mengalami pertumbuhan sehingga tidak sampai terjadi perkecambahan (Suyatmi et al., 2011).
Penelitian pematahan dormansi secara kimia pada benih delima dengan konsentrasi yang berbeda menghasilkan perlakuan terbaik pada 70% H2SO4 yang direndam selama 15 menit yang menghasilkan persentase perkecambahan benih delima normal sebesar 90% dengan laju perkecambahan 14,04 hari dibandingkan dengan perlakuan yang lainnya (Ramadhani, 2014).
Perendaman benih jati dalam H2SO4 pada konsentrasi 70%, 80%, dan 90% selama 20, 30 dan 40 menit menghasilkan persentase perkecambahan yang lebih

tinggi dari kontrol. Hal ini dikarenakan kombinasi perlakuan ini lebih optimal dan lebih cepat untuk melunakkan kulit benih dari pada benih yang hanya direndam dalam air pada lama perendaman yang sama (Suyatmi et al., 2011). Pematahan Dormansi dengan Lama Perendaman Asam Sulfat (H2SO4)
Secara kimia pemecahan dormansi dapat dilakukan dengan cara merendamkan benih pada larutan asam kuat dengan waktu perendaman yang berbeda tergantung pada bentuk benih, dimana asam kuat sangat efektif untuk mematahkan dormansi pada biji yang memiliki struktur kulit keras dan tebal, asam sulfat (H2SO4) sebagai asam kuat dapat melunakkan kulit biji sehingga dapat dilalui oleh air dengan mudah (Gardner, 1991 dalam Hedty et al., 2014).
Perlakuan konsentrasi asam sulfat yang dikombinasikan dengan lama perendaman akan mempengaruhi banyaknya larutan H2SO4 yang terserap kedalam benih. Semakin pekat asam sulfat yang digunakan maka perendaman sebaiknya dilakukan semakin cepat karena dapat menyebabkan kerusakan pada benih itu sendiri (Harjadi, 1979).

Perbedaan hasil persentase daya kecambah dan kecepatan tumbuh pada perlakuan lama perendaman H2SO4 di jelaskan pada penelitian Dewir et al. (2011) dimana perlakuan pematahan dormansi pada benih Sabal palmetto dalam perendaman 97% H2SO4 selama 5 menit menghasilkan persentase rataan perkecambahan benih tertinggi yaitu sebesar 85 % dengan rataan kecepatan tumbuh benih 4,44 %/etmal sedangkan dengan perendaman 97% H2SO4 selama 15 menit menghasilkan persentase rataan perkecambahan benih Sabal palmetto terendah yaitu sebesar 75 % dengan rataan kecepatan tumbuh benih 3,11 %/etmal dan yang terakhir dengan perendaman 97% H2SO4 selama 30 menit menghasilkan

persentase rataan perkecambahan benih Sabal palmetto terendah yaitu sebesar 60 % dengan rataan kecepatan tumbuh benih 3,67 %/etmal.
Pada pematahan dormansi benih angsana dengan perlakuan perendaman dengan H2SO4 1% selama 10 menit memiliki nilai perkecambahan terbesar yaitu sebesar 1,13 (%/hari) atau sekitar 2 kecambah setiap hari selama pengamatan. Hal ini menunjukkan bahwa pematahan dormansi perendaman dengan H2SO4 1% selama 10 menit paling efektif dalam mematahkan dormansi benih angsana, yaitu dengan melunakkan kulit benih, sehingga air dapat dengan mudah masuk ke dalam benih. Namun, apabila berlebihan dalam hal konsentrasi dan lama waktu pematahan dormansi dapat menyebabkan kerusakan kulit benih atau jaringan embrio seperti halnya nilai perkecambahan pada pematahan dormansi benih angsana pada perendaman H2SO4 1% selama 15 menit yaitu hanya sebesar 0,55 (%/hari) atau sekitar 1 kecambah setiap hari selama pengamatan (Lensari, 2009). Viabilitas Benih
Viabilitas benih atau daya hidup benih dicerminkan oleh dua informasi masing-masing daya kecambah dan kekuatan tumbuh dapat ditunjukkan melalui gejala metabolisme benih dan atau gejala pertumbuhan. Uji viabilitas benih dapat dilakukan secara tak langsung, misalnya dengan mengukur gejala-gejala metabolisme ataupun secara langsung dengan mengamati dan membandingkan unsur-unsur tumbuh penting dari benih dalam suatu periode tertentu. Struktur pertumbuhan yang dinilai terdiri dari akar, batang, daun dan daun lembaga (Sutopo, 2012).
Daya kecambah biji (viability) erat hubungannya dengan pemasakan biji. Perkecambahan biji adalah suatu peristiwa atau proses pada biji yang terjadi

sesudah panen, namun berdasarkan dari penelitian yang mendalam diketahui bahwa biji bisa berkecambah jauh sebelum tercapai kemasakan fisiologis (Physiological maturity) atau sebelum tercapai berat kering maksimum (maximum dry weigth). Daya kecambah (viability) ini kian meningkat dengan bertambah tuanya biji dan mencapai berat kering maksimum jauh sebelum masak fisiologis. Sampai masak fisiologis tercapai “maximum germination” (100%) ini konstan, tetapi sesudah itu akan menurun dengan kecepatan yang sesuai dengan keadaan yang tidak menguntungkan di lapangan (Kamil, 1993).
Berdasarkan pada kondisi lingkungan pengujian viabilitas benih dapat dikelompokkan ke dalam viabilitas benih dalam kondisi lingkungan sesuai (favourable) dan viabilitas benih dalam kondisi lingkungan tidak sesuai (unfavourable). Pengujian viabilitas benih dalam kondisi lingkungan tidak sesuai termasuk kedalam pengujian vigor benih. Perlakuan dengan kondisi lingkungan sesuai sebelum benih dikecambahkan tergolong untuk menduga parameter vigor daya simpan benih sedangkan jika kondisi lingkungan tidak sesuai diberikan selama pengecambahan benih maka tergolong dalam pengujian untuk menduga parameter vigor kekuatan tumbuh benih (Mugnisjah et al., 1994).
Untuk menjaga viabilitas benih yang sebaik-baiknya maka benih harus sehat, cukup masak, dipanen dengan hati-hati, dan pada saat cuaca kering. Cara panen harus saksama mungkin untuk menghindari kerusakan mekanis terhadap benih. Benih yang rusak akan mudah terserang cendawan, bakteri, dan serangga hingga menjadi rusak (Sutopo, 2012).

PELAKSANAAN PENELITIAN

Persiapan Benih

Buah delima yang telah dipanen kemudian dikupas dan biji dikeluarkan.

Biji yang digunakan adalah biji yang ukurannya seragam dan tidak terserang

cendawan patogen. Biji dibersihkan dari aril dengan menggunakan air.


Persiapan Media Perkecambahan

Media perkecambahan yang digunakan adalah media pasir dengan

ketebalan ± 4 cm. Sebelum digunakan, terlebih dahulu pasir diayak dengan

ayakan yang berukuran 20 mesh dan disterilkan dengan cara digongseng selama

+ 30 menit untuk menghilangkan kontaminasi dari cendawan patogen dan bakteri.

Pengukuran Kadar Air

Sebelum diberi perlakuan, benih diukur kadar air awalnya. Pengukuran

kadar air dilakukan dengan cara beberapa benih ditumbuk dengan menggunakan

mortal untuk dihaluskan dan kemudian ditimbang bobot basahnya. Setelah itu benih dimasukkan ke dalam oven pada suhu 1000C selama 24 jam sampai berat

benih konstan. Kadar air benih dihitung dengan menggunakan rumus sebagai


berikut :

Bobot basah – Bobot kering Kadar Air =
Bobot basah

X 100% (Mugnisjah et al.,1994)

Aplikasi Perlakuan

Aplikasi perlakuan pematahan dormansi dilakukan dengan membuat

larutan H2SO4 dengan cara mengencerkan H2SO4 (aq) pekat dengan pelarut air pada

konsentrasi 25 %, 50 %, dan 75 % kemudian ditentukan waktu aplikasinya yaitu

10 menit, 15 menit, dan 20 menit dan kontrol atau tanpa perlakuan.

Benih direndam sesuai urutan perlakuan yaitu :
K0 : Kontrol (tanpa perlakuan) K1 : perendaman benih dengan H2SO4 25 % selama 10 menit K2 : perendaman benih dengan H2SO4 25 % selama 15 menit K3 : perendaman benih dengan H2SO4 25 % selama 20 menit K4 : perendaman benih dengan H2SO4 50 % selama 10 menit K5 : perendaman benih dengan H2SO4 50 % selama 15 menit K6 : perendaman benih dengan H2SO4 50 % selama 20 menit K7 : perendaman benih dengan H2SO4 75 % selama 10 menit K8 : perendaman benih dengan H2SO4 75 % selama 15 menit K9 : perendaman benih dengan H2SO4 75 % selama 20 menit Imbibisi Benih

Imbibisi benih dilakukan setelah semua masing - masing perlakuan selesai,
kemudian dilakukan perendaman dengan aquades selama 12 jam untuk memacu
perkecambahan benih.
Pengecambahan Benih
Pengecambahan benih dilakukan pada bak kecambah dengan ukuran
25 cm x 22 cm x 4 cm sebanyak 30 benih per bak kecambah dengan kedalaman
lubang tanam pada media pasir sedalam 2 cm. Benih dikecambahkan setelah
benih melakukan proses imbibisi selama 12 jam.
Pemeliharaan
Penyiraman dilakukan pada pagi dan sore hari dengan menggunakan
handsprayer hingga media menjadi lembab dan dalam kondisi kapasitas lapang,
dilakukan pemeliharaan setiap hari sampai 30 hari setelah ditanam pada bak
perkecambahan.

Pengamatan Parameter

Kadar Air Benih (%)

Pengamatan kadar benih (%) ini dilakukan pada setiap taraf perlakuan


dilakukan setelah aplikasi. Dengan cara diambil 15 benih setiap perlakuan untuk

dihaluskan kemudian di timbang bobot basahnya dan dimasukkan ke dalam oven yang dipanaskan pada suhu 1000C selama 24 jam untuk mendapatkan bobot

keringnya. Kadar air benih (%) dihitung dengan menggunakan rumus sebagai

berikut :

Bobot basah – Bobot kering Kadar Air =
Bobot basah

X 100% (Mugnisjah et al., 1994)

Uji Tetrazolium (%)

Uji tetrazolium (warna) dilakukan dengan memasukan benih kedalam

larutan tetrazolium, dimana benih yang dimasukan adalah benih yang telah diberi

perlakuan ataupun tidak diberi perlakuan (kontrol). Untuk mengetahui benih yang

akan di uji itu sudah mati atau masih hidup, benih tersebut akan memperlihatkan

perubahan warna. Benih yang sudah mati (tidak berkecambah sama sekali) tidak

terjadi perubahan warna (putih) pada embrio dan hidup sangat aktif berkecambah

yang ditandai dengan warna merah muda pada embrio.

PWE (merah) – TPWE (putih) DBAB =
Total benih yang diuji

X 100%

Keterangan

: DBAB PWE TPWE

: Dugaan benih yang aktif berkecambah : Perubahan warna embrio : Tanpa perubahan warna embrio

Laju Perkecambahan (hari)

Laju perkecambahan diukur dengan menghitung jumlah hari yang

diperlukan untuk munculnya radikula atau plumula. Perhitungan laju

perkecambahan menggunakan formulasi Sutopo (2012) sebagai berikut :

Rata- rata hari =

N1T1 + N2T2 + … … … + NxTx Jumlah total benih berkecambah

Keterangan : N : Jumlah benih yang berkecambah pada satuan waktu tertentu T : Menunjukkan jumlah waktu antara awal pengujian sampai dengan akhir dan interval tertentu suatu pengamatan
Uji Daya Kecambah Analisa daya kecambah atau daya tumbuh dilakukan setelah benih

dikecambahkan selama 30 hari dengan kondisi optimum. Menurut Sutopo (2012)

untuk evaluasi kecambah digunakan kriteria sebagai berikut :

a. Kecambah normal (%).

Kriteria kecambah normal adalah :

1. Kecambah yang memiliki perkembangan sistem perakaran yang baik

terutama akar primer dan untuk tanaman yang secara normal

menghasilkan akar seminal maka akar ini tidak boleh kurang dari dua.

2. Perkembangan hipokotil yang baik dan sempurna tanpa ada kerusakan

pada jaringan-jaringannya.

3. Pertumbuhan plumula yang sempurna dengan daun hijau dan tumbuh baik,

di dalam atau muncul dari koleoptil atau pertumbuhan epikotil yang

sempurna dengan kuncup yang normal.

4. Memiliki satu kotiledon untuk kecambah dari monokotil dan dua bagi

dikotil.

Perhitungan persentase kecambah normal sebagai berikut :

Jumlah kecambah normal

Kecambah normal =

X 100%

Jumlah contoh benih yang diuji

b. Kecambah abnormal (%)

Kriteria kecambah abnormal adalah :

1. Kecambah yang rusak, tanpa kotiledon, embrio yang pecah, dan akar

priemernya yang pendek.

2. Kecambah yang bentuknya cacad, perkembangannya lemah atau kurang

seimbang dari bagian-bagian yang penting. Plumula yang terputar,

hipokotil, epikotil, kotiledon yang membengkok, akar yang pendek,

koleoptil yang pecah atau tidak mempunyai daun, dan kecambah yang

kerdil.

3. Kecambah yang tidak membentuk klorofil serta kecambah yang lunak

4. Untuk benih pohon-pohonan bila dari microphyl keluar daun dan

bukannya akar.

Perhitungan persentase kecambah abnormal sebagai berikut :

Jumlah kecambah abnormal

Kecambah abnormal =

X 100 %

Jumlah contoh benih yang diuji

c. Benih yang belum tumbuh

Kriteria ini ditujukan untuk benih-benih yang belum berkecambah setelah

jangka waktu pengujian yang telah ditentukan.

Perhitungan persentase benih yang belum tumbuh sebagai berikut :

Jumlah benih yang belum tumbuh Benih yang belum tumbuh =
Jumlah contoh benih yang diuji

X 100%

Indeks Vigor (benih berkecambah/hari)

Indeks vigor (IV) dihitung berdasarkan rumus L. O. Copeland (1977)

dalam Kartasapoetra (2003) :

IV = G1 + G2 + G3 + .... + Gn

D1 D2 D3

Dn

Keterangan : IV : Indeks Vigor

G : Jumlah benih yang berkecambah pada hari tertentu

D : Waktu yang bersesuaian dengan G

n : Jumlah hari pada perhitungan terakhir

Bobot Segar Kecambah (g)

Bobot segar kecambah (g) diperoleh dengan cara menimbang masing-

masing kecambah normal setiap perlakuan pada hari ke 30 dengan menggunakan

timbangan analitik. Kecambah yang digunakan masih dalam keadaan segar dan

bersih dari pasir yang melekat.

Bobot Kering Kecambah (g)

Bobot kering kecambah (g) diperoleh dengan cara menimbang berat kering

masing-masing kecambah normal pada perlakuan yang telah dimasukkan ke dalam oven 750 C selama 48 jam sampai berat kecambah konstan. Sebelum

dimasukkan ke dalam oven, terlebih dahulu kecambah dibersihkan dari pasir yang

melekat.

HASIL DAN PEMBAHASAN

Hasil

Berdasarkan hasil sidik ragam, diketahui bahwa pengaruh konsentrasi dan

lama perendaman asam sulfat pada benih delima berpengaruh nyata terhadap

parameter pengamatan kadar air benih (%), laju perkecambahan (hari), kecambah

normal (%), kecambah abnormal (%), benih yang belum tumbuh (%), indeks

vigor benih (benih berkecambah/hari), bobot basah kecambah (g), dan bobot

kering kecambah (g).

Kadar Air Benih (%)

Dari hasil pengamatan diperoleh kadar air benih sebelum diberi perlakuan

adalah 12,59 %. Data pengamatan dan sidik ragam kadar air benih dapat dilihat

pada Lampiran 2 dan 3. Sidik ragam menunjukkan bahwa pengaruh bebaerapa

konsentrasi dan lama perendaman asam sulfat (H2SO4) berpengaruh nyata terhadap kadar air benih delima.

Rataan kadar air pada perlakuan beberapa konsentrasi dan lama

perendaman asam sulfat dapat dilihat pada Tabel 1.

Tabel 1. Kadar air benih delima pada beberapa perlakuan konsentrasi dan lama

perendaman asam sulfat

Perlakuan

Kadar Air Benih (%)

K0 (Kontrol) K1 (H2SO4 25 % 10 menit)

22,74 b 36,50 a

K2 (H2SO4 25 % 15 menit)

37,70 a

K3 (H2SO4 25 % 20 menit) K4 (H2SO4 50 % 10 menit) K5 (H2SO4 50 % 15 menit) K6 (H2SO4 50 % 20 menit)

38,59 a 36,04 a 36,30 a 39,03 a

K7 (H2SO4 75 % 10 menit)

34,99 a

K8 (H2SO4 75 % 15 menit)

35,01 a

K9 (H2SO4 75 % 20 menit)

36,39 a

Keterangan : Angka - angka yang diikuti huruf yang sama menunjukkan tidak berbeda nyata pada

Uji Jarak Berganda Duncan pada taraf 5 %.

Tabel 1 menunjukkan bahwa kadar air benih delima tertinggi pada

perlakuan beberapa konsentrasi dan lama perendaman asam sulfat terdapat pada

perlakuan H2SO4 50 % 20 menit (K6) sebesar 39,03 % yang berbeda nyata dengan perlakuan K0, namun tidak berbeda nyata dengan perlakuan lainnya. Rataan kadar air benih terendah pada perlakuan Kontrol (K0) sebesar 22,74 % yang berbeda nyata dengan perlakuan lainnya.

Uji Tetrazolium (%)

Data hasil pengamatan dan sidik ragam uji tetrazolium benih delima dapat

dilihat pada Lampiran 4 dan 5. Berdasarkan sidik ragam diketahui bahwa

perlakuan beberapa konsentrasi dan lama perendaman asam sulfat tidak

berpengaruh nyata terhadap hasil uji tetrazolium benih delima.

Rataan tetrazolium benih delima pada beberapa perlakuan konsentrasi dan

lama perendaman asam sulfat dapat dilihat pada Tabel 2.

Tabel 2. Hasil uji tetrazolium benih delima pada beberapa perlakuan konsentrasi

dan lama perendaman asam sulfat

Dugaan Benih yang Aktif

Perlakuan

Berkecambah (%)

K0 (Kontrol)

100

K1 (H2SO4 25 % 10 menit)

86,67

K2 (H2SO4 25 % 15 menit)

86,67

K3 (H2SO4 25 % 20 menit)

100

K4 (H2SO4 50 % 10 menit)

100

K5 (H2SO4 50 % 15 menit)

86,67

K6 (H2SO4 50 % 20 menit)

93,33

K7 (H2SO4 75 % 10 menit)

93,33

K8 (H2SO4 75 % 15 menit)

86,67

K9 (H2SO4 75 % 20 menit)

93,33

Keterangan : Angka-angka yang diikuti notasi yang sama menunjukkan tidak berbeda nyata

menurut Uji Jarak Berganda Duncan pada taraf α = 5%.

Tabel 2 menujukkan hasil uji tetrazolium benih delima tertinggi pada

perlakuan beberapa konsentrasi dan lama perendaman asam sulfat terdapat pada

perlakuan kontrol (K0), H2SO4 25 % 20 menit (K3), dan H2SO4 50 % 10 menit

(K4) sebesar 100 % dan rataan hasil uji tetrazolium benih delima terendah

terdapat pada perlakuan K1, K2, K5, dan K8 sebesar 86,67 %.

Laju Perkecambahan (hari)

Data hasil pengamatan dan sidik ragam laju perkecambahan dapat dilihat

pada Lampiran 6 dan 7. Hasil sidik ragam menunjukkan bahwa perlakuan

beberapa konsentrasi dan lama perendaman asam sulfat (H2SO4) berpengaruh

nyata terhadap laju perkecambahan benih delima.

Rataan laju perkecambahan benih delima terhadap beberapa konsentrasi

dan lama perendaman asam sulfat dapat dilihat pada Tabel 3.

Tabel 3. Laju perkecambahan benih delima pada beberapa perlakuan konsentrasi

dan lama perendaman asam sulfat

Perlakuan

Laju Perkecambahan (hari)

K0 (Kontrol)

17,83 a

K1 (H2SO4 25 % 10 menit) K2 (H2SO4 25 % 15 menit) K3 (H2SO4 25 % 20 menit) K4 (H2SO4 50 % 10 menit) K5 (H2SO4 50 % 15 menit)

12,70 b 10,58 c 9,71 c 10,52 c 10,07 c

K6 (H2SO4 50 % 20 menit)

7,45 d

K7 (H2SO4 75 % 10 menit)

6,31 d

K8 (H2SO4 75 % 15 menit)

6,84 d

K9 (H2SO4 75 % 20 menit)

6,63 d

Keterangan : Angka-angka yang diikuti notasi yang sama menunjukkan tidak berbeda nyata

menurut Uji Jarak Berganda Duncan pada taraf α = 5%.

Tabel 3 menunjukkan bahwa laju perkecambahan tercepat terdapat pada

perlakuan H2SO4 75 % 10 menit (K7) sebesar 6,31 hari yang tidak berbeda nyata

dengan perlakuan K6, K8, dan K9 namun berbeda nyata dengan perlakuan lainnya.

Rataan laju perkecambahan terlama pada perlakuan Kontrol (K0) sebesar 17,83

hari yang berbeda nyata dengan perlakuan lainnya..

Uji Daya Kecambah

Kecambah Normal (%)

Data hasil pengamatan dan sidik ragam kecambah normal dapat dilihat

pada Lampiran 8 dan 9. Hasil sidik ragam menunjukkan bahwa pengaruh

beberapa konsentrasi dan lama perendaman asam sulfat (H2SO4) berpengaruh nyata terhadap laju perkecambahan benih delima.

Rataan kecambah normal delima terhadap beberapa konsentrasi dan lama

perendaman asam sulfat dapat dilihat pada Tabel 4.

Tabel 4. Kecambah normal pada perlakuan beberapa konsentrasi dan lama

perendaman asam sulfat

Perlakuan

Kecambah Normal (%)

K0 (Kontrol) K1 (H2SO4 25 % 10 menit) K2 (H2SO4 25 % 15 menit) K3 (H2SO4 25 % 20 menit) K4 (H2SO4 50 % 10 menit) K5 (H2SO4 50 % 15 menit)

6,67 f 72,22 c 67,78 c 81,11 b 58,89 d 88,89 ab

K6 (H2SO4 50 %