Induksi Perkembangan Gonad Betina Ikan Gabus (Channa Striata, Bloch) Dengan Penyuntikan Hormon Hcg Dalam Wadah Budidaya.

INDUKSI PERKEMBANGAN GONAD BETINA
IKAN GABUS (Channa striata, Bloch)
DENGAN PENYUNTIKAN HORMON HCG
DALAM WADAH BUDIDAYA

EUIS RAKHMAWATI

DEPARTEMEN BUDIDAYA PERAIRAN
FAKULTAS PERIKANAN DAN ILMU KELAUTAN
INSTITUT PERTANIAN BOGOR
BOGOR
2015

PERNYATAAN MENGENAI SKRIPSI DAN
SUMBER INFORMASI SERTA PELIMPAHAN HAK CIPTA*
Dengan ini saya menyatakan bahwa skripsi berjudul Induksi
Perkembangan Gonad Betina Ikan Gabus (Channa striata, Bloch) dengan
Penyuntikan Hormon HCG dalam Wadah Budidaya adalah benar karya saya
dengan arahan dari komisi pembimbing dan belum diajukan dalam bentuk apapun
kepada perguruan tinggi mana pun. Sumber informasi yang berasal atau dikutip
dari karya yang diterbitkan maupun tidak diterbitkan dari penulis lain telah

disebutkan dalam teks dan dicantumkan dalam Daftar Pustaka di bagian akhir
skripsi ini.
Dengan ini saya melimpahkan hak cipta dari karya tulis saya kepada Institut
Pertanian Bogor.
Bogor, April 2015

Euis Rakhmawati
NIM C14100047

ABSTRAK
EUIS RAKHMAWATI. Induksi Perkembangan Gonad Betina Ikan Gabus
(Channa striata, Bloch) dengan Penyuntikan Hormon HCG dalam Wadah
Budidaya. Dibimbing oleh MUHAMMAD ZAIRIN JUNIOR and DINAR TRI
SOELISTYOWATI.
Penelitian ini bertujuan untuk mengetahui pengaruh penyuntikan hormon
HCG terhadap perkembangan gonad ikan gabus (Channa striata, Bloch) yang
dipelihara dalam wadah terkontrol. Dua kelompok induk betina; I) sebagai ikan
kontrol dan II) sebagai ikan yang akan diberi induksi hormon, masing-masing
sebanyak tiga ekor dipelihara dalam enam buah akuarium. Induk diberi pakan
benih ikan nila secara ad atiation dua kali sehari. Penyuntikan hormon HCG

dengan dosis 500 IU/kg dilakukan secara intramuskular seminggu sekali selama
tiga minggu pemeliharaan sedangkan penyuntikan larutan fisiologis dilakukan
pada ikan kontrol. Mulai minggu kedua, ikan yang disuntik hormon HCG dengan
dosis 500 IU memiliki jumlah oosit berukuran besar (0,8 -1,2mm) yang lebih
banyak dibandingikan kontrol. Nilai IKG, IHS, fekunditas, dan LPH antara ikan
kontrol dan perlakuan HCG menunjukkan nilai yang tidak berbeda nyata
(P>0,05). Dari hasil yang didapat, dapat dibuktikan bahwa penyuntikan hormon
HCG dengan dosis 500 IU/kg dengan frekuensi penyuntikan tiga kali dapat
mempercepat perkembangan oosit ikan gabus betina.
Kata kunci

: Channa striata, HCG, Ikan gabus, Perkembangan gonad.

ABSTRACT
EUIS RAKHMAWATI. Induction on Development of Female Striped Snakehead
(Channa striata, Bloch) Gonad by Using Injection of HCG Hormone in Rearing
Vessel. Supervised by MUHAMMAD ZAIRIN JUNIOR and DINAR TRI
SOELISTYOWATI.
This experiment was carried out to confirmed the role of HCG injection
towards the gonad development in striped snakehead (Channa striata, Bloch)

reared in controlled container. Two groups of female broodstocks; I) as control
and 2) as fish induced by hormone. Each group contained three fishes were reared
in six aquaria. The fish were fed with tilapia’s seed twice daily. The injection of
HCG 500 IU/kg of body weight was done intramuscularly once a week in three
weeks of rearing period whereas physiological solution was injected to control
fishes. After one week, fishes injected by HCG 500 IU had a greater number of
large group oocytes (0,8 – 1,2 mm) than control. There is no significant difference
(P>0,05) on percentage of IKG, IHS, and also the fecundity and SGR between
HCG injected and control fishes. From the result, it was confirmed that the
injection of HCG 500 IU/kg body weight with three times injection frequencies
could accelerate the oocytes development of female striped snakehead.
Keywords

: Channa striata, Gonad development, HCG, Striped snakehead

INDUKSI PERKEMBANGAN GONAD BETINA
IKAN GABUS (Channa striata, Bloch)
DENGAN PENYUNTIKAN HORMON HCG
DALAM WADAH BUDIDAYA

EUIS RAKHMAWATI

Skripsi
sebagai salah satu syarat untuk memperoleh gelar
Sarjana Perikanan
pada
Departemen Budidaya Perairan

DEPARTEMEN BUDIDAYA PERAIRAN
FAKULTAS PERIKANAN DAN ILMU KELAUTAN
INSTITUT PERTANIAN BOGOR
BOGOR
2015

PRAKATA
Puji dan syukur penulis panjatkan kepada Allah subhanahuwata’ala atas
segala karunia-Nya sehingga penyusunan skripsi yang berjudul “Induksi
Perkembangan Gonad Betina Ikan Gabus (Channa striata, Bloch) dengan
Penyuntikan Hormon HCG dalam Wadah Budidaya” ini berhasil diselesaikan.
Penelitian ini dilaksanakan mulai bulan September hingga Oktober 2014 di

Laboratorium Teaching Farm Kolam Percobaan dan Laboratorium
Pengembangbiakan dan Genetika Ikan, Departemen Budidaya Perairan, Fakultas
Perikanan dan Ilmu Kelautan, Institut Pertanian Bogor. Oleh karena itu, penulis
mengucapkan terima kasih kepada:
1. Bapak Prof. Dr. Ir. Muhammad Zairin Jr, M.Sc dan Ibu Dr. Ir. Dinar Tri
Soelistyowati, DEA selaku Pembimbing Skripsi yang telah memberikan
banyak saran dan dukungan dalam pelaksanaan penelitian dan penyusunan
tugas akhir ini,
2. Dr. Ir. Muhammad Agus Suprayudi, M.Sc. selaku Pembimbing Akademik dan
Dosen Penguji dalam Ujian Akhir Skripsi atas bimbingan selama penulis
menempuh pendidikan sarjana serta masukannya dalam penyusunan skripsi.
3. Dr. Dinamella Wahjuningrum, S.Si.,M.Si. selaku Komisi Pendidikan S1 BDP
atas masukannya dalam penyusunan tugas akhir ini,
4. Bapak Aam, Kak Deni, Kak Wira, Mba Lina, Kang Abe, Bapak Mar, Mba
Yuli, Bapak Henda, dan Bapak Depi yang telah banyak membantu pelaksanaan
penelitian,
5. Orangtua tercinta, Bapak Dikdik Iskandar, Ibu Sholikhah, dan Adik Rizka
NurIsti’anah, serta seluruh keluarga atas segala doa dan dukungan semangat
kepada penulis,
6. Teman-teman seperjuangan PBI 47 terutama Fira, Lilis, Haris, Dwi, Herry,

Ovie, Adri, Linly, Arman, dan Bayyu
7. Sahabat-sahabat terdekat : Shema, Septi, Arum, Diani, Nadia, serta BDP 47
atas semangat, motivasi, kebersamaan, dan kenangannya, serta semua pihak
yang tidak bisa disebutkan satu persatu atas segala bantuan yang telah
diberikan.
Semoga skripsi ini bermanfaat bagi penulis, ilmu pengetahuan,
masyarakat, dan seluruh pihak yang membutuhkan.
Bogor, April 2015

Euis Rakhmawati

DAFTAR ISI

DAFTAR TABEL ................................................................................................ viii
DAFTAR GAMBAR ........................................................................................... viii
DAFTAR LAMPIRAN ........................................................................................ viii
PENDAHULUAN ...................................................................................................1
Latar Belakang .........................................................................................................1
Tujuan ......................................................................................................................2
METODE .................................................................................................................2

Materi Uji .................................................................................................................2
Ikan Uji ........................................................................................................ 2
Hormon........................................................................................................ 2
Rancangan Percobaan ..............................................................................................2
Prosedur Kerja..........................................................................................................3
Pemeliharaan Ikan Uji ................................................................................. 3
Penyuntikan Hormon................................................................................... 3
Metode Pengambilan Sampel ...................................................................... 3
Pengukuran Diameter Telur ........................................................................ 3
Histologi Gonad .......................................................................................... 4
Pengelolaan Kualitas Air ............................................................................. 4
Parameter Uji ...........................................................................................................4
Diameter Telur ............................................................................................ 4
Indeks Kematangan Gonad (IKG)............................................................... 5
Indeks Hepato Somatik (IHS) ..................................................................... 5
Pertumbuhan Bobot Mutlak ........................................................................ 5
Fekunditas ................................................................................................... 5
Analisis Data ........................................................................................................... 6
HASIL DAN PEMBAHASAN ................................................................................6
Perkembangan Diameter Telur .................................................................... 6

Perkembangan Gonad ................................................................................. 7
Pertumbuhan Bobot Mutlak ........................................................................ 9
Kualitas Air ............................................................................................... 10
KESIMPULAN DAN SARAN ..............................................................................10
Kesimpulan................................................................................................ 10
Saran .......................................................................................................... 10
DAFTAR PUSTAKA ............................................................................................11
LAMPIRAN ...........................................................................................................13
RIWAYAT HIDUP ................................................................................................16

DAFTAR TABEL
1 Kualitas air pada pemeliharaan ikan gabus selama 21 hari ……………………4
2 Nilai rata-rata IKG dan IHS ikan perlakuan dengan penyuntikan hormon
HCG secara berkala.………………………………………………................... 7
3 Bobot dan Pertumbuhan bobot mutlak ikan gabus…………………………… 9

DAFTAR GAMBAR
1 Distribusi frekuensi diameter telur ikan gabus pada minggu ke 0-3…………... 6
2 Histologi gonad ikan gabus setelah perlakuan. A: Kontrol (NaCl 0,9%); B:
Perlakuan (HCG 500 IU)..………………………………………………...…........... 8

DAFTAR LAMPIRAN
1
2
3
4
5
6
7
8

Wadah pemeliharaan ikan gabus………………………………………………. 13
Histologi Gonad mengacu pada Gunarso (1989)……………………………… 13
Data frekuensi diameter telur ikan gabus Channa striata perlakuan kontrol…. 14
Indeks Kematangan Gonad ikan gabus minggu ke-3………………………….. 14
Indeks Hepato Somatik ikan gabus minggu ke-3……………………………… 14
Fekunditas ikan gabus minggu ke-3….………………………………................ 15
Bobot ikan gabus sampai minggu ke-3………………………………………… 15
Pertumbuhan bobot mutlak ikan gabus ……………………………………….. 15

1

PENDAHULUAN
Latar Belakang
Ikan gabus (Channa striata, Bloch) merupakan jenis ikan air tawar asli
Indonesia dan terdistribusi hampir di seluruh Asia Tenggara dan India. Ikan gabus
merupakan salah satu ikan konsumsi berekonomis tinggi dengan harga pasaran
yang tinggi. Harga pasaran ikan gabus berkisar antara Rp 42.000 – Rp 45.000 per
kg di pasar lokal dan Rp 250.000 - Rp 300.000 untuk ekspor. Ikan gabus memiliki
keunggulan yaitu daging yang tebal, sedikit duri, dengan kandungan albumin yang
tinggi dalam dagingnya (Marimuthu et al., 2009). Di lingkungan alaminya ikan
gabus dapat bertahan dalam lingkungan yang ekstrim dengan kandungan oksigen
terlarut yang rendah serta amonia yang tinggi (Qin et al. 1997) dan sering
dibudidayakan dalam air yang dangkal.
Menurut KKP (2014) produksi ikan gabus di Indonesia terus mengalami
peningkatan dari 34.017 ton pada 2010 menjadi 40.790 ton pada 2012. Namun
sebagian besar hasil produksi masih berasal dari hasil penangkapan di perairan
umum. Penangkapan ikan gabus di alam dalam jumlah yang besar dan terus
meningkat untuk memenuhi permintaan pasar telah mengakibatkan terjadinya
eksploitasi yang berlebihan, konversi habitat ikan untuk pertanian, perumahan,

industri serta pencemaran perairan, hal ini menyebabkan populasi ikan gabus
semakin berkurang dan dikhawatirkan akan punah. Salah satu masalah dalam
pengembangan budidaya ikan gabus adalah ketersediaan benih. Benih hasil
produksi masal perlu diupayakan, agar tersedia kesinambungan bagi usaha
budidaya.
Informasi perkembangan diameter telur dalam gonad ikan sangat berguna
untuk menduga waktu pemijahan pada ikan gabus sehingga pembudidaya dapat
meningkatkan efisiensi pemijahan dan pembenihan. Secara alami, faktor fisiologis
dan lingkungan umumnya dijadikan pertimbangan sebagai syarat penting dalam
merangsang pemijahan pada ikan teleostei. Pada ikan gabus pemijahan secara
alami terjadi pada awal sampai pertengahan musim penghujan. Perkembangan
gonad yang optimal sampai terjadinya ovulasi pada induk ikan gabus selama ini
telah dilakukan melalui usaha manipulasi ketinggian air dan penyuntikan sGnRHa (salmon gonadotropin releasing hormone - analog) dan antidopamin (Bijaksana
2010). Sedangkan injeksi ekstrak hipofisa secara intramuskular dengan dosis 45
mg/kg pada penyuntikan pertama dan 80 mg/kg pada penyuntikan kedua mampu
menstimulasi ovulasi setelah 9-12 jam (Hossain et al. 2008).
Kematangan gonad pada ikan dipengaruhi oleh faktor luar dan dalam.
Faktor luar yang berpengaruh terhadap kematangan gonad adalah suhu, arus, serta
keberadaan lawan jenis, sedangkan pengaruh faktor dalam yaitu perbedaan dalam
spesies, umur, serta kondisi fisiologis (Lagler et al. 1997). Kendala dalam
pembenihan ikan gabus adalah bahwa ikan ini sulit berkembang gonadnya di
dalam wadah budidaya. Proses domestikasi diduga merupakan penyebab
lambatnya perkembangan gonad akibat hilangnya beberapa sinyal lingkungan
yang berhubungan dengan ritme reproduksi sehingga ikan tidak mampu
bereproduksi dengan optimal dalam wadah budidaya (Zairin 2003). Salah satu
upaya untuk mempercepat perkembangan gonad ikan gabus adalah dengan

2

stimulasi hormonal melalui penyuntikan hormon HCG (Human Chorionic
Gonadotropin) secara berkala.
Hormon HCG adalah hormon gonadotropin yang disekresi oleh wanita
hamil dan disintesis oleh sel-sel sinsitio tropoblas dari plasenta. Stimulasi
hormonal secara buatan dapat memanipulasi sistem hormonal dalam tubuh ikan
sehingga sinyal lingkungan sebagai stimulus alami tidak diperlukan. Penggunaan
hormon HCG secara implan sebelumnya telah digunakan untuk meningkatkan
kematangan gonad di luar musim pemijahan ikan gabus (Selvaraj et al. 2012),
sedangkan penyuntikan dengan dosis 3000 IU/kg juga telah terbukti dapat
merangsang pemijahan (Haniffa et al. 2000). Penggunaan hormon HCG dengan
dosis 500 IU sering digunakan untuk menstimulasi pematangan gonad dan
meningkatkan keseragaman telur pada ikan patin (Pangasius hypophthalmus)
(Legendre et al. 1998). Dosis hormon HCG 500 IU diharapkan juga mampu
menstimulasi perkembangan gonad dari ikan gabus (Channa striata, Bloch)
betina.

Tujuan
Tujuan penelitian ini adalah untuk mengetahui pengaruh penyuntikan
hormon HCG terhadap perkembangan gonad ikan gabus (Channa striata, Bloch)
yang dipelihara dalam wadah budidaya.

METODE
Materi Uji
Ikan Uji
Ikan uji yang digunakan adalah ikan gabus (Channa striata) betina hasil
tangkapan di alam yang belum matang gonad dengan bobot awal rata-rata 200500 gram/ekor. Ikan gabus ini diperoleh dari pengumpul di daerah Parung, Bogor.
Ikan diadaptasikan terlebih dahulu sebelum diseleksi untuk dijadikan ikan uji.
Jumlah ikan yang digunakan untuk penelitian ini sebanyak 6 ekor.
Hormon
Hormon yang digunakan dalam penelitian adalah Human Chorionic
Gonadotropin (HCG) komersial (Chorulon®, Intervet International B.V,
European Union). Hormon HCG tersebut berbentuk serbuk sehingga harus
dilarutkan terlebih dahulu kedalam pelarutnya sebelum disuntikkan pada ikan uji.
Hormon HCG yang telah dilarutkan kemudian disuntikkan kedalam tubuh ikan uji
sesuai dosis.
Rancangan Percobaan
Penelitian dirancang dengan RAL, faktor terdiri dari penyuntikan hormon
Human Chorionic Gonadotropin (HCG) dengan dosis 500 IU/kg dan satu
perlakuan kontrol (larutan fisiologis), masing-masing penyuntikan menggunakan

3

tiga ulangan individu. Penyuntikan dilakukan secara berkala seminggu sekali
sebanyak tiga kali. Perkembangan gonad diamati berdasarkan diameter telur, IKG,
IHS setiap satu minggu paska penyuntikan.
Prosedur Kerja
Pemeliharaan Ikan Uji
Ikan sebelumnya diadaptasikan di dalam bak fiber berbentuk bulat dengan
diameter 1,48 m dan volume 1 ton selama satu bulan, kemudian diseleksi
sebanyak 6 ekor berdasarkan keseragaman ukuran diameter telurnya dan
dipelihara secara individual di dalam wadah percobaan (akuarium) ukuran 95 x 46
x 45 cm3 dengan pengisian air sebanyak 109 liter dari total volume akuarium.
Akuarium pemeliharaan dilapisi plastik hitam untuk mencegah masuknya
cahaya yang berlebihan dan dipasang aerasi pada satu titik. Bagian atas akuarium
diberikan penutup berupa fiber bergelombang kemudian ditindih dengan papan
kayu dan diberi pemberat berupa batu bata di bagian atasnya untuk mencegah ikan
meloncat keluar wadah (Lampiran 1). Ikan gabus diberi pakan berupa ikan nila
(Oreochromis sp.) hidup berukuran 5-6 cm secara ad satiation dengan waktu
pemberian sebanyak dua kali setiap pagi dan sore hari.
Penyuntikan Hormon
Penyuntikan hormon HCG dilakukan dengan dosis 500 IU/kg
menggunakan syringe 3 ml secara intramuskular (penyuntikan melalui otot
punggung) sedangkan pada perlakuan kontrol disuntik dengan larutan fisiologis.
Penyuntikan hormon dilakukan pada minggu ke-0,1, dan 2 (hari ke-0,7, dan 14).
Penanganan ikan pada saat penyuntikan dilakukan dengan menggunakan kain
basah sebagai alas dan ikan yang telah disuntik diletakkan kembali pada akuarium
kemudian diberi antibakteri (Yellow Powder, UENO, Japan) dengan dosis 10 ppm
dan garam 0,1% untuk mengurangi tingkat stres ikan uji.
Metode Pengambilan Sampel
Sampling dilakukan sebanyak 4 kali, yaitu pada hari ke-0, hari ke-7, hari
ke-14, dan hari ke-21 pemeliharaan untuk memperoleh data bobot dan sampel
telur. Penimbangan bobot hati dan gonad, serta histologi gonad dilakukan pada
akhir penelitian (hari ke-21).
Sampling bobot dilakukan dengan menutup mata ikan menggunakan kain
basah. Ikan ditimbang bobot tubuhnya serta diambil sampel telurnya dengan
kateter berdiameter 1 dan 2 mm. Telur-telur yang terambil kemudian ditempatkan
dalam mikrotube dan difiksasi dengan larutan serra yang terdiri dari 60% etanol,
30% formaldehid, dan 10% asam asetat (Slembrouck et al. 2003). Sampling
gonad dan hati dilakukan dengan cara pembedahan dari bagian anus hingga
operkulum, untuk kemudian dilakukan pengambilan gonad dan hati pada akhir
penelitian.
Pengukuran Diameter Telur
Parameter yang umum digunakan dalam menentukan perkembangan
gonad adalah diameter telur (Rottman et al. 1991). Sampel telur untuk pengukuran
diameter telur diambil dengan cara kanulasi setiap 7 hari sekali. Telur-telur

4

sampel sebanyak 90 butir untuk setiap perlakuan ditata sedemikian rupa di atas
kaca preparat. Diameter telur diukur secara fiksatif di bawah mikroskop binokuler
dengan bantuan mikrometer okuler dengan perbesaran 40 kali.
Histologi Gonad
Pengujian pengaruh rangsangan hormonal terhadap perkembangan sel
telur dilakukan melalui pengamatan secara histologis. Pembuatan preparat
histologi dilakukan melalui tahapan fiksasi, dehidrasi, clearing, embedding,
deparafinasi, pewarnaan preparat, dan dehidrasi. Sebelum dilakukan histologi,
gonad difiksasi menggunakan larutan fiksasi Buffer Netral Formalin (BNF) 10%
selama 1-2 hari, kemudian diberi perlakuan trimming dan dimasukkan ke dalam
kaset plastik untuk dibuat blok lilin. Blok lilin yang terbentuk di potong dengan
menggunakan mesin mikrotom dan diletakkan di gelas objek, setelah itu
dilakukan pewarnaan HE (Haematoxillin Eosin) (Lampiran 2).
Pengelolaan Kualitas Air
Parameter kualitas air yang diamati pada penelitian meliputi suhu, pH,
kadar oksigen terlarut, dan total amoniak nitrogen (TAN). Penanganan kualitas air
selama pemeliharaan ikan uji antara lain adalah dengan penyifonan dan pergantian
air setiap tiga hari sekali dilakukan pada pagi hari dengan membuang air sebanyak
80% dan diganti dengan air baru yang berasal dari tempat penampungan air
(tandon). Selama penelitian dilakukan sampling kualitas air pada waktu awal,
tengah, dan akhir penelitian. Berikut adalah hasil pengukuran kualitas air selama
pemeliharaan ikan gabus dapat dilihat pada Tabel 1.
Tabel 1 Kualitas air pada pemeliharaan ikan gabus selama 21 hari
Parameter
Suhu (⁰C)
DO (mg/l)
pH (unit)
Amonia (mg/l)

Kontrol
Min
Max
26
28
4.4
7.9
6
7.8
0.00018
0.002

HCG 500 IU
Min
Max
26
28
2.8
7.6
5.8
7.6
0.00018
0.001

Standar
25-29*
4.2 – 5*
5 – 7*
0.001 - 0.286**

Keterangan: * (Muslim dan Syaifudina 2012)
** (Muslim dan Syaifudinb 2012)

Parameter Uji
Diameter Telur
Telur yang sudah diambil difiksasi dengan larutan serra untuk diamati
menggunakan mikroskop okuler dan dibuat sebaran frekuensi diameter telur
(Tamaru et al. 1991). Diameter telur diukur pada bagian yang terpanjang dengan
perhitungan sebagai berikut:
Y=
Keterangan:
Y = Nilai sebenarnya dalam mm

× 0.01

5

X = Skala pada mikrometer okuler
FK = Faktor koreksi (0,4 untuk perbesaran 40 kali)
Indeks Kematangan Gonad (IKG)
Perubahan secara kuantitatif yang terjadi pada gonad dapat diketahui
melalui pengukuran indeks kematangan gonad (IKG). Nilai IKG merupakan nilai
perbandingan antara berat gonad dengan keseluruhan bobot tubuh ikan. Rumus
yang digunakan dalam parameter IKG menurut Effendi (1997) adalah:
IKG =

× 100%

Indeks Hepato Somatik (IHS)
Selain IKG, parameter lain yang dapat digunakan untuk menilai kualitas
gonad ikan adalah Indeks Hepatosomatik (IHS) yang merupakan nilai persentase
antara bobot hati dengan total bobot tubuh. Rumus yang digunakan dalam
pengamatan IHS menurut Effendi (1997) adalah:
× 100%

IHS =

Pertumbuhan Bobot Mutlak
Pertumbuhan bobot mutlak merupakan pertumbuhan selama waktu
pemeliharaan. Pertumbuhan bobot mutlak dapat dihitung menggunakan rumus
(Zonneveld et al. 1991):
W = Wt - Wo
Keterangan:
W = Pertumbuhan bobot mutlak (gram)
Wt = Bobot akhir rata-rata ikan uji (gram)
W0 = Bobot awal rata-rata ikan uji (gram)

Fekunditas
Fekunditas dihitung dengan metode gravimetrik dengan cara mengambil
sampel telur dalam satu ekor ikan. Jumlah telur dihitung satu per satu dengan
bantuan alat hitung. Fekunditas telur dihitung secara matematis dengan rumus:
Fekunditas =
Keterangan: G = Bobot gonad total (gram)
Q = Berat telur contoh (gram)
X = Jumlah telur contoh (gram)

6

Analisis Data
Data yang diperoleh dari hasil pengamatan diuji dengan t.test berpasangan
dan disajikan dalam bentuk tabel dan gambar. Data diolah dan dianalisis
menggunakan Microsoft Excel 2007 dengan taraf kepercayaan 95% dan dibahas
secara deskriptif.

HASIL DAN PEMBAHASAN
Perkembangan Diameter Telur
Perkembangan diameter rata-rata telur dan distribusi penyebaran ukuran
telurnya dapat digunakan untuk mengetahui tahap kematangan seksual pada ikan
tersebut. Hasil pengamatan diameter telur diklasifikasikan menjadi tiga kisaran
ukuran yaitu kecil (0,0-0,6), sedang (0,6-1,2), dan besar (1,2-1,8). Diameter oosit
ikan kontrol maupun perlakuan hormon mengalami peningkatan ukuran setiap
minggunya, yang ditunjukkan dengan peningkatan frekuensi telur yang
berdiameter sedang dan besar. Pada minggu kedua ikan yang disuntik hormon
HCG dengan dosis 500 IU menunjukkan peningkatan ukuran oosit berukuran
besar (1,2-1,8 mm) lebih cepat dibanding ikan tanpa perlakuan hormon (kontrol),
sedangkan jumlah oosit dengan diameter yang lebih kecil mulai berkurang.
(Gambar 1 dan Lampiran 3).
100%
Frekuensi

80%
60%
40%
20%
0%
Kontrol HCG 500 Kontrol HCG 500 Kontrol HCG 500 Kontrol HCG 500
IU
IU
IU
IU
M0

M1

0.0-0.6

0.6-1.2

M2

M3

1.2-1.8

Keterangan: (kelas diameter telur (mm): 0-0.6; 0.6-1.2;1.2-1,8

Gambar 1 Distribusi frekuensi diameter telur ikan gabus pada minggu ke 0-3
Diameter telur ikan gabus pada minggu ke 0-3 menunjukkan adanya
kecenderungan peningkatan. Pada perlakuan kontrol minggu ke-0 diameter telur
yang berukuran kecil (0,0-0,6) mencapai 70% dan telur yang berukuran sedang
(0,6-1,2) sebanyak 10-30%. Pada pengamatan minggu ke-1 paska perlakuan
penyuntikan dengan HCG 500 IU terdapat peningkatan jumlah telur yang
berukuran sedang hingga 30% dibandingkan dengan kontrol (Gambar 1).
Selanjutnya, pada minggu ke-2 ditemukan telur yang berukuran besar 10-50% dan

7

telur yang berukuran sedang meningkat, sedangkan yang berukuran kecil semakin
sedikit dan tidak lebih dari 15%. Kelompok ikan perlakuan dengan penyuntikan
HCG memiliki oosit dengan diameter 1,2-1,8 sebanyak 50% sedangkan pada
kontrol sebesar 10% (Gambar 1). Pada minggu ke-3 jumlah telur yang berukuran
besar meningkat hingga 80% paska perlakuan penyuntikan HCG dan sudah tidak
ditemukan telur yang berukuran kecil, sedangkan pada kontrol masih ditemukan
telur yang berukuran kecil 10%, berukuran sedang 60%, dan yang besar 30%
(Lampiran 3).
Peningkatan ukuran diameter oosit pada ikan gabus disebabkan oleh
adanya proses vitelogenesis secara hormonal. Vitelogenesis merupakan proses
induksi dan sintesis vitelogenin di hati oleh hormon estradiol-17β yang diikuti
penyerapan vitelogenin tersebut ke dalam oosit melalui aliran darah (Cabrita et al.
2009). Sedangkan vitelogenin adalah bakal kuning telur yang merupakan
komponen utama dari oosit, vitelogenin merupakan glikofosfoprotein yang
mengandung 20% lemak terutama dalam bentuk fosfolipid, trigliserida, dan
kolesterol (Tang dan Affandi 2004). Pada ikan gabus yang diberi perlakuan
stimulasi hormonal secara buatan menggunakan HCG dosis 500 IU, stimulasi
produksi estradiol-17β selain terjadi secara normal oleh hormon gonadotropin dari
kelenjar hipofisa ikan juga distimulasi oleh penambahan hormon gonadotropin
dari luar yakni human chorionic gonadotrophin (HCG).
Jika melihat frekuensi ukuran oosit berukuran besar yang lebih banyak
pada ikan perlakuan HCG, dapat diketahui bahwa pemberian hormon HCG dosis
500 IU lebih efektif untuk menstimulasi proses steroidogenesis pada lapisan
folikel sehingga sekresi estradiol-17β lebih banyak dan menyebabkan diameter
oosit menjadi lebih besar. Perbedaan pola perkembangan oosit terjadi pada
perlakuan kontrol minggu ke-1 (setelah penyuntikan pertama) terlihat jumlah oosit
berdiameter kecil (0-0,6) meningkat sebanyak 10%, hal ini dapat disebabkan oleh
adanya proses atresia yakni penyerapan kembali kuning telur oleh folikel yang
salah satu faktor penyebabnya adalah stres (Lubzens et al. 2010). Faktor stres
diduga merupakan penyebab atresia karena setelah minggu ke-1 saat tingkat stres
ikan diduga telah berkurang perkembangan oosit ikan kontrol terlihat normal
mengikuti pola perkembangan oosit ikan perlakuan HCG yakni oosit berukuran
lebih kecil semakin berkurang dan diikuti oleh bertambahnya oosit yang
berukuran lebih besar.
Perkembangan Gonad
Penyuntikan hormon HCG pada ikan gabus diharapkan dapat memacu
perkembangan gonad ikan. Perkembangan gonad dicirikan oleh besarnya
persentase nilai indeks kematangan gonad (IKG) dan nilai indeks hepatosomatik
(IHS) (Lampiran 4 dan 5). Adanya aktivitas vitelogenin menyebabkan nilai IKG
dan IHS meningkat, biosintesis vitelogenin yang berlangsung di hati dipengaruhi
oleh stimulasi dari hormon estradiol-17β yang dihasilkan oleh sel folikel. Hasil
percobaan stimulasi hormonal menggunakan HCG terhadap perkembangan gonad
ikan gabus kali ini menunjukkan bahwa nilai IKG dan IHS ikan kontrol maupun
perlakuan HCG secara statistik tidak menunjukkan perbedaan nyata (P>0,05)
(Lampiran 4 dan 5). Menurut Dorucu (1999), perkembangan gonad ikan dapat
dipengaruhi oleh kondisi lingkungan, tingkat kematangan gonad, nutrisi, serta
umur ikan. Nilai IKG dan IHS yang tidak berbeda nyata dapat disebabkan oleh

9

Berdasarkan hasil histologi gonad terlihat bahwa gonad pada ikan kontrol
(A) sebagian besar oosit masih berada pada tahap pravitelogenesis sedangkan
gonad perlakuan (B) yaitu dengan penyuntikan hormon HCG dosis 500 IU
menunjukkan sebagian besar oosit telah mencapai tahap vitelogenesis. Pada gonad
yang diberi perlakuan HCG dosis 500 IU (B) memiliki ukuran oosit yang lebih
besar dibanding gonad A (kontrol) serta ukuran oosit yang lebih seragam.
Karakteristik morfologis dari oosit yang distimulasi HCG menunjukkan bahwa
dalam penelitian ini HCG yang digunakan dapat menambah efektivitas stimulasi
hormonal sehingga ukuran diameter oosit lebih besar. Perkembangan ovari pada
teleostei dikontrol oleh keberadaan hormon gonadotropin (GTH), follicle
stimulating hormon (FSH), dan luteinizing hormone (LH). Pada beberapa spesies
teleostei FSH mengatur fase perkembangan oosit. Stimulasi oleh hormon FSH
menyebabkan produksi estradiol-17β untuk meningkatkan produksi vitelogenin.
Setelah pertumbuhan oosit maksimal, terjadi sekresi LH yang menyebabkan
penurunan produksi estradiol-17β dan peningkatan maturation-inducing faktor
(MIH) yang menginduksi terjadinya final oocyte maturation (FOM).
Nagahama (1994) menyatakan bahwa pemberian HCG secara in vitro
terhadap folikel ovarium mampu meningkatkan produksi maturing inducing
hormone (MIH) sehingga dapat meningkatkan kematangan oosit. Saat oosit
mencapai fase vitelogenesis akhir, sitoplasma akan menjadi lebih transparan dan
berisi banyak butiran lemak dan vitelogenin, sedangkan pada fase GVBD butiran
lemak dan kuning telur mulai bergabung dan vesikula germinal mulai bermigrasi
(Cabrita et al. 2009). Histologi gonad juga menunjukkan bahwa seluruh kelas
oosit (mulai dari vitelogenesis awal sampai FOM) dapat ditemukan, hal ini
membuktikan bahwa tipe perkembangan gonad ikan gabus adalah asinkronisme,
dan merupakan golongan ikan yang memijah sepanjang tahun.
Pertumbuhan Bobot Mutlak
Pertumbuhan bobot mutlak ikan gabus antar perlakuan menunjukkan hasil
tidak berbeda nyata (P>0,05) (Tabel 3), Bobot rata-rata ikan kontrol mengalami
kenaikan setiap minggunya, sedangkan bobot rata-rata ikan perlakuan HCG
mengalami penurunan pada minggu kedua.
Tabel 3 Bobot dan Pertumbuhan bobot mutlak
Pertumbuhan
Bobot
Mutlak (g)
0
1
2
3
0,36±0,14 0,38±0,16 0,38±0,16 0,39±0,15 35,00±13,23
0,41±0,17 0,43±0,16 0,42±0,16 0,43±0,16 16,67± 7,64
Bobot rata-rata (kg) minggu ke-

Perlakuan
Kontrol (NaCl 0,9 %)
HCG 500 IU

Pertumbuhan merupakan pertambahan bobot atau panjang dalam waktu
tertentu. Pertumbuhan ikan gabus dalam penelitian ini dilihat dari bobot mutlak
selama pemeliharaan. Hasil penelitian menunjukkan bahwa bobot mutlak ikan
gabus tidak berbeda nyata antar perlakuan (P>0,05) (Lampiran 8). Hal ini
menunjukkan bahwa perlakuan HCG 500 IU tidak mempengaruhi pertumbuhan
ikan gabus betina. Pertumbuhan ikan selama perlakuan diketahui sangat rendah,
laju pertumbuhan yang rendah diduga karena kurangnya nafsu makan akibat stres
selama penanganan sampling bobot, sampling telur, maupun saat proses

10

penyuntikan. Stres saat penanganan sampling yang kurang tepat tersebut
menyebabkan metabolisme ikan terganggu sehingga mempengaruhi
perkembangan gonad (Muchlis 1997). Selain faktor stress, menurut Ramli dan
Rifa’i (2010) ikan gabus dengan kisaran berat 150-1.065 gram sudah masuk
dalam kategori ikan dewasa, sehingga ikan gabus yang digunakan dalam
penelitian ini merupakan ikan dewasa dan pertumbuhannya cenderung lambat
serta sebagian besar nutrisi yang didapat lebih banyak digunakan untuk
perkembangan gonad.
Kualitas Air
Nilai kualitas air untuk semua parameter yakni suhu, pH, kelarutan
oksigen (DO), dan amonia secara umum masih dalam kisaran normal. Nilai DO
(Tabel 1) minimal tercatat sebesar 2,8 mg/l dan lebih rendah dari kisaran normal.
Nilai DO pada penelitian ini cenderung lebih rendah dibandingkan kisaran normal
diduga karena adanya dekomposisi secara aerob bahan organik yakni berupa
limbah hasil metabolisme ikan. Hal ini sesuai dengan Effendi (2003) yang
menyatakan bahwa dekomposisi bahan organik dapat mengurangi kadar oksigen
terlarut, selain itu nilai DO sangat dipengaruhi oleh suhu, pergerakan massa air,
respirasi, dan limbah yang terdapat dalam air tersebut. Pengaruh dari metabolisme
pakan hidup berupa ikan nila (Oreochromis sp.) yang diberikan dapat juga ikut
menambah jumlah konsumsi oksigen di dalam akuarium. Kandungan oksigen
terlarut yang rendah diduga tidak banyak berpengaruh, sebab ikan gabus memiliki
alat pernafasan tambahan berupa ruang suprabranchial dan tubuhnya terlindungi
oleh mukus sehingga dapat bertahan dalam lingkungan yang kandungan oksigen
yang sangat rendah (Courtenay dan Williams 2004).

KESIMPULAN DAN SARAN
Kesimpulan
Penyuntikan hormon HCG dengan dosis 500 IU/kg secara intramuskular
dengan frekuensi penyuntikan sebanyak tiga kali dapat mempercepat
perkembangan diameter oosit dalam gonad ikan gabus betina (Channa striata)
serta meningkatkan jumlah telur yang siap dipijahkan.
Saran
Disarankan pada penelitian selanjutnya agar menggunakan berbagai
tingkatan dosis hormon HCG serta dilakukan dalam waktu perlakuan yang lebih
lama.

11

DAFTAR PUSTAKA

Bijaksana U. 2010. Kajian Fisiologi reproduksi ikan gabus, Channa striata Blkr di
dalam wadah dan perairan rawa sebagai upaya domestikasi [disertasi].
Bogor (ID): Institut Pertanian Bogor
Cabrita E, Robles V, Herraez P. 2009. Methods in Reproductive Aquaculture
Marine and Freshwater Species (US): CRC Press
Courtenay Jr. WR, JD Williams. 2004. Snakeheads (Pisces, Channidae) A
Biological Synopsis and Risk Assessment. Colorado (US): U.S. Geological
Survey
Dorucu M. 1999. Changes in the protein and lipid content of muscle, liver and
ovaries in relation to Diphyllobothrium spp. (Cestoda) infection in powan
(Coregonus lavaretus) from Loch Lomond, Scotland. Turk J Zool 24: 211–
218
Effendi MI. 1997. Metode Biologi Perikanan. Bogor (ID): Institut Pertanian
Bogor.
Effendi H. 2003. Telaah Kualitas Air Bagi Pengelolaan Sumber Daya dan
Lingkungan Perairan.Yogyakarta (ID): Kanisius.
Gunarso W. 1989. Mikroteknik. PAU Ilmu Hayat. Institut Pertanian Bogor. Bogor
Haniffa MA, Merlin T, Mohamed JS. 2000. Induced spawning of the striped
murrel
Channa
striatus
using
pituitary
extracts,
human
chorionicgonadotropin, luteinizing hormone releasing hormone analogue,
and ovaprim. Acta Icht. Piscat, 30: 53-60.
Hossain M, Latifa KA, Rahman MM. 2008. Observations on induced breeding of
snakehead murrels, Channa striatus (Bloch, 1793). Int. J. Sustain. Crop
Prod. 3: 65-68.
Kementrian Kelautan dan Perikanan. 2014. Statistik Perikanan Budidaya Kolam.
http://statistik.kkp.go.id/index.php/statistik/ [27 Januari 2015].
Lagler KF, Bardach JE, Miller RR, Passino DRM. 1997. Ichtyology. New York
(US) John Wiley and Sons Inc.
Legendre, M, Subagja J, Slembrouck J. 1998. Absence of marked seasonal
variations in sexual maturity of Pangasius hypophthalmus brooders held in
ponds at the Sukamandi Station (Java, Indonesia). Proc. Mid-term Catfish
Asia Project, Canto, Vietnam, hal. 91 - 96.
Lubzens E, Young G, Bobe J, Cerda J. 2010. Oogenesis in teleosts: How fish eggs
are formed. General and Comparative Endocrinology, 165: 367–389
Marimuthu K, Arokiaraj J, Haniffa MA. 2009. Effect of diet quality on seed
production of the spotted snakehead Channa punctatus (Bloch). AmericanEurasian Journal of Sustainable Agriculture, 3: 344-347.
Muchlis. 1997. Pengaruh penyuntikan hormon HCG terhadap perkembangan
gonad ikan bala shark (Balantiocheilus melanopterus, Blkr.) [skripsi].
Bogor (ID): Institut Pertanian Bogor
Muslim, Syaifudin Ma. 2012. Domestikasi calon induk ikan gabus (Channa
striata) dalam lingkungan budidaya kolam beton. Jurnal Ilmiah Sriwijaya
edisi Agustus hal. 20-27

12

Muslim, Syaifudin Mb. 2012. Pemeliharaan benih ikan gabus (Channa striata)
pada media budidaya dalam rangka domestikasi. Makalah. Seminar
Nasional Riau 2012
Nagahama Y. 1994. Endocrine regulation of gametogenesis in fish. Int. J. Dev.
Biol. 38: 217-229
Petrova GR, Hamwi N, Petrov I. 2012. Spawning, sex ratio and relationship
between fecundity, length, weight and age of chub (Squalius cephalus L.,
1758) in the Middle Stream of Iskak River (Bulgaria). Acta Zoologica
Bulgarica, 64: 191-197.
Qin JA, Fast W, Kal AT. 1997. Tolerance of snakehead Channa striatus to
ammonia at different pH. Journal of the World Aquaculture Society, 28: 8790.
Ramli HR, Rifa’i MA. 2010. Telaah food habits, parasit dan bio-limnologi fasefase kehidupan ikan gabus (Channa striata) di perairan umum Kalimantan
Selatan. Ecosystem 10: 76-84
Rottman RW, Shireman JV, Chapman FA. 1991. Determining sexual of
broodstock for induced spawning of fish. Southern Regional Aquaculture
Center 423
Selvaraj S, Francis T, Venkatasamy M, Santhoshkumar S. 2012. Effect of HCG
implants on change in testosterone and estradiol level in blood serum of
murrel, Channa striatus. Tamilnadu J. Veterinary & Animal Sciences. 8:
290-298
Slembrouck J, Subagja J, Day D, Legendre M. 2003. Larval rearing in technical
manual for artificial propagation of the Indonesia catfish Pangasius jambal.
Slembruck J, Komarudin O, Maskur, Legendre M, editor.Jakarta(ID): IRD
dan Departemen Kelautan dan Perikanan.. hlm 207-222.
Tamaru CS, Kelly CD, Lee CS, Aida K, Hanyu I, Goetz F. 1991. Steroid profiles
during maturation and induced spawning of the stripped mullet, Mugil
cephalus L. Aquaculture 95: 149-168
Tang UM, Affandi R. 2004. Biologi Reproduksi. Pekanbaru (ID): Unri Press
Witthames PR, Walker MG, Dinis MT, Whiting CL. 1995. The geographical
variation in the potential annual fecundity of dover sole, Solea solea, from
European shelf waters during 1991. Neth. J. Sea Res 34: 45-58
Zairin M Jr. 2003. Endokrinologi dan peranannya bagi masa depan perikanan
Indonesia. Orasi Ilmiah Guru Besar Tetap Ilmu Fisiologi Reproduksi dan
Endokrinologi Hewan Air. Fakultas Perikanan dan Ilmu Kelautan IPB
Zonneveld N, Huissman EA, Boon JH. 1991. Prinsip-prinsip Budidaya Ikan.
Jakarta(ID): Gramedia Pustaka Umum.

14

6. Pewarnaan preparat dilakukan dengan merendam dalam haematoksilin selama
7 menit kemudian dibilas pada air (aquadest) mengalir selama 5 menit.
Selanjutnya kembali direndam dalam eosin selama 3 menit
7. Dehidrasi kembali dilakukan dengan merendam preparat dalam alkohol 50%,
alkohol 70%, alkohol 85%, alkohol 90%, alkohol absolut I, dan alkohol
absolut II masing-masing selama 3 menit
8. Selanjutnya preparat direndam dalam larutan xylol I dan xylol II masingmasing selama 3 menit
9. Preparat yang telah diwarnai dilapisi perekat berupa entellan neu kemudian
ditutup dengan cover glass.
Lampiran 3 Data frekuensi diameter telur ikan gabus Channa striata
Minggu ke-

Kelas
Ukuran

0
K
64
26
0

0.0-0.6
0.6-1.2
1.2-1.8
0.0-0.6
0.6-1.2
1.2-1.8

1
P
86
4
0

K
78
12
0

71.11% 95.56% 86.67%
28.89% 4.44% 13.33%
0.00% 0.00% 0.00%

2
P
K
65
14
25
65
0
11
Prosentase
72.22% 15.56%
27.78% 72.22%
0.00% 12.22%

3
P
6
40
44

K
9
52
29

6.67% 10.00%
44.44% 57.78%
48.89% 32.22%

Keterangan: K = kontrol dan P= HCG 500 IU

Lampiran 4 Indeks Kematangan Gonad ikan gabus minggu ke-3
Ulangan ke1
2
3
Rata-rata
Standar deviasi

Indeks Kematangan Gonad (%)
Kontrol*
HCG 500 IU*
0,52
1,00
1,11
0,61
1,35
0,98
a
0,99
0,86a
0,43
0,22

*huruf yang sama menunjukkan data tidak berbeda nyata (p>0,05)

Lampiran 5 Indeks Hepato Somatik ikan gabus minggu ke-3
Ulangan ke1
2
3
Rata-rata
Standar deviasi

Indeks Kematangan Gonad (%)
Kontrol*
HCG 500 IU*
0,73
0,81
0,75
0,66
0,71
0,71
a
0,73
0,73a
0,02
0,08

*huruf yang sama menunjukkan data tidak berbeda nyata (p>0,05)

P
0
22
68
0.00%
24.44%
75.56%

15

Lampiran 6 Fekunditas ikan gabus minggu ke-3
Ulangan ke1
2
3
Rata-rata
Standar deviasi

Fekunditas (butir)
Kontrol*
784
2318
707
1270a
499

HCG 500 IU*
2072
1199
1217
1496a
908,7

*huruf yang sama menunjukkan data tidak berbeda nyata (p>0,05)

Lampiran 7 Bobot ikan gabus sampai minggu ke-3
Perlakuan/Ulangan
K1
K2
K3
Rerata
Standar deviasi
P1
P2
P3
Rerata
Standar deviasi

0
240
315
520
358.33
144,94
510
505
220
411,67
166,01

Bobot (g) minggu ke1
2
245
245
320
320
560
560
375
375
164,54
164,54
545
520
500
500
240
240
428,33
420
164,64
156,21

Lampiran 8 Pertumbuhan bobot mutlak ikan gabus
Ulangan ke1
2
3
Rata-rata
Standar deviasi

Pertumbuhan Bobot Mutlak (g)
Kontrol*
HCG 500 IU*
20
10
45
15
40
25
a
35
16,67a
13,23
7,64

*huruf yang sama menunjukkan data tidak berbeda nyata (p>0,05)

3
260
360
560
393.33
152,75
520
520
245
428,33
158,77

16

RIWAYAT HIDUP
Penulis dilahirkan di Rembang, pada tanggal 17 November 1992 dari Bapak
Dikdik Iskandar dan Ibu Sholikhah merupakan anak pertama dari dua bersaudara.
Penulis mempunyai satu orang adik perempuan yaitu Rizka Nur Isti’anah.
Pendidikan formal yang dilalui penulis mulai dari TK Masyitoh Rembang
(1996-1998), SD Negeri Leteh 3 Rembang (1998-2004), SMP Negeri 2 Rembang
(2004-2007) dan menamatkan jenjang SMA di SMA Negeri 1 Rembang (20072010). Penulis diterima menjadi mahasiswa Program Studi Teknologi dan
Manajemen Perikanan Budidaya, Departemen Budidaya Perairan, Fakultas
Perikanan dan Ilmu Kelautan, Institut Pertanian Bogor melalui jalur Undangan
Seleksi Masuk Institut Pertanian Bogor (USMI) pada tahun 2010.
Selama mengikuti perkuliahan, penulis aktif menjadi anggota Organisasi
Mahasiswa Rembang di Bogor (2010-2015), anggota divisi komisi penegak
kedisiplinan Orientasi Mahasiswa Baru Fakultas Perikanan dan Ilmu Kelautan
(2012) serta anggota divisi Advokasi dan Kesejahteraan Mahasiswa, Badan
Eksekutif Mahasiswa Fakultas Perikanan dan Ilmu Kelautan (2012-2013). Penulis
merupakan penerima beasiswa PPA periode 2012-2014. Penulis pernah mengikuti
magang liburan di Balai Pengembangan Budidaya Air Tawar di Subang, Jawa
Barat tahun 2013. Praktek Kerja Lapang penulis dilakukan di Balai
Pengembangan Budidaya Air Payau di Situbondo, Jawa Timur tahun 2013.
Penulis juga menjadi asisten mata kuliah Fisiologi Reproduksi Organisme
Akuatik (2012-2013), dan mata kuliah Industri Perbenihan Organisme Akuatik
(2013-2014). Tugas Akhir dalam pendidikan tinggi sarjana diselesaikan oleh
penulis dengan menyusun skripsi yang berjudul “Induksi Perkembangan Gonad
Betina Ikan Gabus (Channa striata, Bloch) dengan Penyuntikan Hormon
HCG dalam Wadah Budidaya’’.