Daya Kecambah dan Pertumbuhan Mucuna bracteata Melalui Pematahan Dormansi Dan Pemberian Zat Pengatur Tumbuh Giberelin (GA3)

69 DAYA KECAMBAH DAN PERTUMBUHAN Mucuna bracteata
MELALUI PEMATAHAN DORMANSI DAN PEMBERIAN ZAT PENGATUR TUMBUH GIBERELIN (GA3) SKRIPSI Oleh : HARDIANTI PUTRI SARI 080301017 / BDP-AGRONOMI
PROGRAM STUDI AGROEKOTEKNOLOGI FAKULTAS PERTANIAN
UNIVERSITAS SUMATERA UTARA 2013
Universitas Sumatera Utara

70 DAYA KECAMBAH DAN PERTUMBUHAN Mucuna bracteata
MELALUI PEMATAHAN DORMANSI DAN PEMBERIAN ZAT PENGATUR TUMBUH GIBERELIN (GA3)
SKRIPSI Oleh :
HARDIANTI PUTRI SARI 080301017 / BDP-AGRONOMI Skripsi sebagai salah satu syarat untuk memperoleh gelar sarjana di Fakultas Pertanian Universitas Sumatera Utara, Medan.
PROGRAM STUDI AGROEKOTEKNOLOGI FAKULTAS PERTANIAN
UNIVERSITAS SUMATERA UTARA 2013
Universitas Sumatera Utara

71

Judul Skripsi : Daya Kecambah dan Pertumbuhan Mucuna bracteata Melalui

Pematahan Dormansi Dan Pemberian Zat Pengatur Tumbuh

Giberelin (GA3)


Nama

: Hardianti Putri Sari

NIM : 080301017

Program Studi : Agroekoteknologi

Minat

: Agronomi

Disetujui Oleh Komisi Pembimbing

(Dr. Dra. Ir. Chairani Hanum, MS.) Ketua

(Ir. Charloq, MP.) Anggota

Mengetahui,

(Ir. T. Sabrina M. Agr. Sc. Ph.D) Ketua Program Studi Agroekoteknologi

Universitas Sumatera Utara

72
ABSTRAK HARDIANTI PUTRI SARI: Daya Kecambah dan Pertumbuhan Mucuna bracteata Melalui Pematahan Dormansi dan Pemberian Zat Pengatur Tumbuh Giberelin (GA3), dibimbing oleh CHAIRANI HANUM dan CHARLOQ.
Perbanyakan Mucuna bracteata secara generatif sangat sulit dilakukan dan memerlukan perlakuan khusus untuk berkecambah. Pematahan dormansi pada biji mucuna bertujuan untuk meningkatkan daya berkecambah. Penelitian dilakukan di lahan masyarakat jalan Tanjung Selamat, Kabupaten Deli Serdang, mulai bulan November 2012 sampai Februari 2013, menggunakan Rancangan Acak Kelompok faktorial dengan 2 faktor. Faktor pertama adalah pematahan dormansi (kontrol, pengguntingan kulit benih, penggosokan menggunakan kertas amplas dan perendaman air panas) sedangkan faktor kedua adalah zat pengatur tumbuh giberelin (GA3) (0, 150, 300, 450 ppm). Parameter yang diamati adalah daya perkecambahan, tinggi tanaman, jumlah daun, bobot basah tajuk, bobot kering tajuk, bobot basah akar, bobot kering akar, shoot root ratio.
Hasil penelitian diperoleh bahwa perlakuan pematahan dormansi berpengaruh nyata terhadap semua parameter. Pemberian zat pengatur tumbuh berpengaruh nyata pada daya perkecambahan, bobot basah tajuk dan bobot kering tajuk. Sedangkan interaksi antara pematahan dormansi dan zat pengatur tumbuh berpengaruh nyata pada daya perkecambahan, bobot basah tajuk dan bobot kering tajuk. Kata kunci: pematahan dormansi, giberelin , daya kecambah, Mucuna bracteata.
Universitas Sumatera Utara

73
ABSTRACT HARDIANTI PUTRI SARI : Germination and Growth of Mucuna bracteata by Dormancy Fracturing and Giving Growing Regulatory Substances of Gibberellins (GA3), supervised by CHAIRANI HANUM and CHARLOQ.
The generative propagation of Mucuna bracteata is very difficult and requires special treatment to germinate. Dormancy fracturing in hard seed of Mucuna purpose to enhance germination. The research was conducted at the public land, Tanjung Selamat, Deli Serdang from November 2012 to February 2013, using a randomized block design with 2 factors and 3 replications. The first factor was the dormancy fracturing (control, cutting the seed coat, polished with sand paper, and hot water soaking) and the second factor was gibberellin (GA3) (0, 150, 300 and 450 ppm). The parameters observed were the germination, plant height, number of leaves, fresh weight shoot, dry weight shoot, fresh weight root, dry weight root, shoot root ratio.
The result showed that the dormancy fracturing significantly affected to all parameters. Giving of Gibberellins (GA3) significantly affected to the germination, fresh weight shoot and dry weight shoot. Interaction between dormancy fracturing and Gibberellins significantly affected to the germination, fresh weight shoot and dry weight shoot. Keywords : dormancy fracturing, gibberellins, germination, Mucuna bracteata.
Universitas Sumatera Utara

74 RIWAYAT HIDUP Hardianti Putri Sari dilahirkan di Medan pada tanggal 27 September 1990 dari ayahanda Khairadi, SE dan Ibunda Hartati Rosa Nasution. Penulis merupakan anak ke 2 dari 3 bersaudara. Tahun 2008 penulis lulus dari SMA Harapan 3 Medan dan pada tahun yang sama masuk ke Fakultas Pertanian USU melalui jalur PMP (Pemanduan Minat dan Prestasi). Penulis memilih Program Studi Agronomi jurusan Budidaya Pertanian. Selama mengikuti perkuliahan penulis melaksanakan Praktek Kerja Lapangan (PKL) di PTPN IV unit Kebun Bah Jambi Kabupaten Simalungun pada bulan Juni sampai dengan Juli 2011.
Universitas Sumatera Utara

75

KATA PENGANTAR Puji dan syukur penulis panjatkan kepada Tuhan Yang Maha Esa karena atas berkat dan rahmatNya penulis dapat menyelesaikan skripsi yang berjudul “Daya Kecambah dan Pertumbuhan Mucuna bracteata Melalui Pematahan Dormansi dan Pemberian Zat Pengatur Tumbuh Giberelin (GA3)” yang merupakan salah satu syarat untuk dapat memperoleh gelar sarjana di Fakultas Pertanian Universitas Sumatera Utara, Medan. Pada kesempatan ini penulis mengucapkan terima kasih kepada Ibu Dr. Dra. Ir. Chairani Hanum, MP selaku ketua dan Ibu Ir. Charloq, MP selaku anggota komisi pembimbing yang telah banyak memberikan bimbingan dalam pembuatan skripsi ini. Penulis menyampaikan ucapan terima kasih kepada kedua orang tua penulis yang telah membesarkan dan mendidik penulis selama ini. Disamping itu, penulis juga mengucapkan terima kasih kepada semua staf pengajar di Program Studi Agroekoteknologi, serta semua rekan mahasiswa yang tidak dapat disebutkan satu per satu disini yang telah banyak membantu penulis dalam menyelesaikan skripsi ini. Semoga skripsi ini bermanfaat.
Medan, Februari 2013
Penulis
Universitas Sumatera Utara

76

DAFTAR ISI

ABSTRAK ....................................................................................................
ABSTRACT ....................................................................................................
RIWAYAT HIDUP.......................................................................................
KATA PENGANTAR ..................................................................................
DAFTAR ISI.................................................................................................
DAFTAR TABEL.........................................................................................
DAFTAR GAMBAR ....................................................................................
DAFTAR LAMPIRAN.................................................................................
PENDAHULUAN
Latar Belakang .............................................................................................. Tujuan Percobaan.......................................................................................... Hipotesa Percobaan....................................................................................... Kegunaan Percobaan.....................................................................................
TINJAUAN PUSTAKA

Botani Tanaman ............................................................................................ Syarat Tumbuh ..............................................................................................
Iklim ....................................................................................................... Tanah...................................................................................................... Perkecambahan Biji ...................................................................................... Dormansi ....................................................................................................... Perlakuan Pematahan Dormansi ................................................................... Perlakuan Mekanis ........................................................................................ Perlakuan Kimia............................................................................................ Zat Pengatur Tumbuh Giberelin (GA3).........................................................
BAHAN DAN METODE
Tempat dan Waktu Percobaan ...................................................................... Bahan dan Alat.............................................................................................. Metode Percobaan......................................................................................... Pelaksanaan Percobaan .................................................................................
Persiapan Media Tanam......................................................................... Pembuatan Bak Perkecambahan ............................................................ Seleksi Biji ............................................................................................. Perlakuan Benih ..................................................................................... Perendaman ZPT Giberelin (GA3)......................................................... Persemaian ............................................................................................. Persiapan Naungan................................................................................. Pengisian Media Tanam ke Polibag....................................................... Pemupukan............................................................................................. Penanaman .............................................................................................

Hal.
i
ii
iii
iv
v
vi
vii
viii
1 4 4 4
5 6 6 6 7 9 10 10 11 12
14 14 14 17 17 17 17 17 18 18 18 18 18 18

Universitas Sumatera Utara


77

Pemeliharaan Tanaman ................................................................................. Pengajiran............................................................................................... Penyiraman............................................................................................. Penyiangan .............................................................................................
Pengamatan Parameter .................................................................................. Daya Perkecambahan (%)...................................................................... Panjang Sulur (cm)................................................................................. Jumlah Daun (Helai) .............................................................................. Bobot Basah Tajuk (g) ........................................................................... Bobot Kering Tajuk (g)......................................................................... Bobot Basah Akar (g) ............................................................................ Bobot Kering Akar (g) ........................................................................... Shoot Ratio.............................................................................................
HASIL DAN PEMBAHASAN
Hasil ................................................................................................ Pembahasan.....................................................................................
KESIMPULAN DAN SARAN
Kesimpulan ..................................................................................... Saran ...............................................................................................
DAFTAR PUSTAKA
LAMPIRAN

19 19 19 19 19 19 20 20 20 20 20 20 20
21 21
64 64

Universitas Sumatera Utara

78 DAFTAR TABEL No. Hal. 1. Rataan panjang sulur terhadap perlakuan pematahan dormansi dan pemberian GA3 pada 1 – 10 MSPT ......................................................... 28 2. Rataan jumlah daun terhadap perlakuan pematahan dormansi dan pemberian GA3 pada 1 – 10 MSPT......................................................... 33 3. Rataan bobot basah tajuk terhadap perlakuan pematahan dormansi dan pemberian GA3 pada 10 MSPT........................................................ 36 4 Rataan bobot kering tajuk terhadap perlakuan pematahan dormansi dan pemberian GA3 pada 10 MSPT........................................................ 42 5. Rataan bobot basah akar terhadap perlakuan pematahan dormansi dan pemberian GA3 pada 10 MSPT........................................................ 49 6. Rataan bobot kering akar terhadap perlakuan pematahan dormansi dan pemberian GA3 pada 10 MSPT........................................................ 53 7. Rataan shoot root ratio terhadap perlakuan pematahan dormansi dan pemberian GA3 pada 10 MSPT....................................................... 57
Universitas Sumatera Utara


79
DAFTAR GAMBAR
No. Hal.
1. Hubungan persentase daya perkecambahan terhadap pematahan dormansi pada 3 – 7 HST........................................................................ 21
2. Hubungan persentase daya perkecambahan terhadap konsentrasi giberelin pada 3 – 7 HST ........................................................................ 25
3. Hubungan panjang sulur terhadap pematahan dormansi pada 10 MSPT ................................................................................................. 29
4. Hubungan panjang sulur terhadap zat pengatur tumbuh GA3 pada 10 MSPT ................................................................................................. 31
5. Hubungan jumlah daun terhadap pematahan dormansi pada 10 MSPT ................................................................................................. 34
6. Hubungan jumlah daun terhadap zat pengatur tumbuh GA3 pada 10 MSPT ................................................................................................. 35
7. Hubungan bobot basah tajuk terhadap pematahan dormansi pada 10 MSPT ................................................................................................. 38
8. Hubungan bobot basah tajuk terhadap pemberian GA3 pada 10 MSPT ................................................................................................. 39
9. Hubungan bobot basah tajuk dengan interaksi antara pematahan dormansi dan GA3 pada 10 MSPT .......................................................... 41
10. Hubungan bobot kering tajuk terhadap pematahan dormansi pada 10 MSPT ................................................................................................. 44
11. Hubungan bobot kering tajuk terhadap pemberian GA3 pada 10 MSPT ................................................................................................. 45
12. Hubungan bobot kering tajuk dengan interaksi antara pematahan dormansi dan GA3 pada 10 MSPT ......................................................... 47
13. Hubungan bobot basah akar terhadap pematahan dormansi pada 10 MSPT ................................................................................................. 50
14. Hubungan bobot basah akar terhadap pemberian GA3 pada 10 MSPT ................................................................................................. 52
15. Hubungan bobot kering akar terhadap pematahan dormansi pada 10 MSPT ................................................................................................. 54
Universitas Sumatera Utara


80 16. Hubungan bobot kering akar terhadap pemberian GA3 pada
10 MSPT ................................................................................................. 56 17. Hubungan shoot root ratio terhadap pematahan dormansi pada
10 MSPT ................................................................................................. 58 18. Hubungan shoot root ratio terhadap pemberian GA3 pada
10 MSPT ................................................................................................. 60 19. Hubungan shoot root ratio dengan interaksi antara pematahan
dormansi dan GA3 pada 10 MSPT .......................................................... 62
Universitas Sumatera Utara

81
DAFTAR LAMPIRAN No. Hal. 1. Data daya perkecambahan 3 HST........................................................... 69 2. Data panjang sulur 1 MSPT .................................................................... 69 3. Data transformasi panjang sulur 1 MSPT √X + 0,5................................ 70 4. Sidik ragam data transformasi panjang sulur 1 MSPT √X + 0,5 ............ 70 5. Data panjang sulur 2 MSPT .................................................................... 71 6. Data transformasi panjang sulur 2 MSPT √X......................................... 71 7. Sidik ragam data transformasi panjang sulur 2 MSPT √X ..................... 72 8. Data panjang sulur 3 MSPT .................................................................... 72 9. Data transformasi panjang sulur 3 MSPT √X......................................... 73 10. Sidik ragam data transformasi panjang sulur 3 MSPT √X ..................... 73 11. Data panjang sulur 4 MSPT .................................................................... 74 12. Data transformasi panjang sulur 4 MSPT √X......................................... 74 13. Sidik ragam data transformasi panjang sulur 4 MSPT √X ..................... 75 14. Data panjang sulur 5 MSPT .................................................................... 75 15. Data transformasi panjang sulur 5 MSPT √X......................................... 76 16. Sidik ragam data transformasi panjang sulur 5 MSPT √X ..................... 76 17. Data panjang sulur 6 MSPT .................................................................... 77 18. Data transformasi panjang sulur 6 MSPT √X......................................... 77 19. Sidik ragam data transformasi panjang sulur 6 MSPT √X ..................... 78 20. Data panjang sulur 7 MSPT .................................................................... 78 35. Data transformasi panjang sulur 7 MSPT √X......................................... 79 36. Sidik ragam data transformasi panjang sulur 7 MSPT √X ..................... 79
Universitas Sumatera Utara

82
37. Data panjang sulur 8 MSPT .................................................................... 80 38. Data transformasi panjang sulur 8 MSPT √X......................................... 80 39. Sidik ragam data transformasi panjang sulur 8 MSPT √X ..................... 81 40. Data panjang sulur 9 MSPT .................................................................... 81 41. Data transformasi panjang sulur 9 MSPT √X......................................... 82 42. Sidik ragam data transformasi panjang sulur 9 MSPT √X ..................... 82 43. Data panjang sulur 10 MSPT .................................................................. 83 44. Data transformasi panjang sulur 10 MSPT √X....................................... 83 45. Sidik ragam data transformasi panjang sulur 10 MSPT √X ................... 84 46. Data jumlah daun 2 MSPT...................................................................... 84 47. Data transformasi jumlah daun 2 MSPT √X + 0,5 ................................. 85 48. Sidik ragam data transformasi jumlah daun 2 MSPT √X + 0,5.............. 85 49. Data jumlah daun 3 MSPT...................................................................... 86 50. Data transformasi jumlah daun 3 MSPT √X + 0,5 ................................. 86 51. Sidik ragam data transformasi jumlah daun 3 MSPT √X + 0,5.............. 87 52. Data jumlah daun 4 MSPT...................................................................... 87 53. Data transformasi jumlah daun 4 MSPT √X + 0,5 ................................. 88 54. Sidik ragam data transformasi jumlah daun 4 MSPT √X + 0,5.............. 88 55. Data jumlah daun 5 MSPT...................................................................... 89 56. Data transformasi jumlah daun 5 MSPT √X + 0,5 ................................. 89 57. Sidik ragam data transformasi jumlah daun 5 MSPT √X + 0,5.............. 90 58. Data jumlah daun 6 MSPT...................................................................... 90 59. Data transformasi jumlah daun 6 MSPT √X + 0,5 ................................. 91 60. Sidik ragam data transformasi jumlah daun 6 MSPT √X + 0,5.............. 91
Universitas Sumatera Utara

83
61. Data jumlah daun 7 MSPT...................................................................... 92 62. Data transformasi jumlah daun 7 MSPT √X + 0,5 ................................. 92 63. Sidik ragam data transformasi jumlah daun 7 MSPT √X + 0,5.............. 93 64. Data jumlah daun 8 MSPT...................................................................... 93 65. Data transformasi jumlah daun 8 MSPT √X + 0,5 ................................. 94 66. Sidik ragam data transformasi jumlah daun 8 MSPT √X + 0,5.............. 94 67. Data jumlah daun 9 MSPT...................................................................... 95 68. Data transformasi jumlah daun 9 MSPT √X + 0,5 ................................. 95 69. Sidik ragam data transformasi jumlah daun 9 MSPT √X + 0,5.............. 96 70. Data jumlah daun 10 MSPT.................................................................... 96 71. Data transformasi jumlah daun 10 MSPT √X + 0,5 ............................... 97 72. Sidik ragam data transformasi jumlah daun 10 MSPT √X + 0,5............ 97 73. Data bobot basah tajuk 10 MSPT ........................................................... 98 74. Data transformasi bobot basah tajuk 10 MSPT √X ............................... 98 75. Sidik ragam data transformasi bobot basah tajuk 10 MSPT
√X ........................................................................................................... 99 76. Data bobot kering tajuk 10 MSPT .......................................................... 99 77. Data transformasi bobot kering tajuk 10 MSPT √X ............................... 100 78. Sidik ragam data transformasi bobot kering tajuk 10 MSPT
√X ........................................................................................................... 100 79. Data bobot basah akar 10 MSPT............................................................. 101 80. Data transformasi bobot basah akar 10 MSPT √X + 0,5 ........................ 101 81. Sidik ragam data transformasi bobot basah akar 10 MSPT

√X + 0,5 .................................................................................................. 102 82. Data bobot kering akar 10 MSPT ........................................................... 102 83. Data transformasi bobot kering akar 10 MSPT √X + 0,5 ....................... 103
Universitas Sumatera Utara

84 84. Sidik ragam data transformasi bobot kering akar 10 MSPT
√X + 0,5 .................................................................................................. 103 85. Data shoot root ratio 10 MSPT ............................................................... 104 86. Data transformasi shoot root ratio 10 MSPT √X ................................... 104 87. Sidik ragam data transformasi shoot root ratio 10 MSPT
√X ........................................................................................................... 105 88. Bagan penanaman pada plot ................................................................... 106 89. Bagan plot penelitian .............................................................................. 107 90. Jadwal kegiatan pelaksanaan penelitian.................................................. 108 91. Zat pengatur tumbuh giberelin................................................................ 109 92. Perlakuan perendaman ZPT giberelin..................................................... 109 93. Perendaman dengan air panas ................................................................. 109 94. Lahan Penelitian...................................................................................... 110 95. Pertumbuhan mucuna di pembibitan....................................................... 111
Universitas Sumatera Utara

72
ABSTRAK HARDIANTI PUTRI SARI: Daya Kecambah dan Pertumbuhan Mucuna bracteata Melalui Pematahan Dormansi dan Pemberian Zat Pengatur Tumbuh Giberelin (GA3), dibimbing oleh CHAIRANI HANUM dan CHARLOQ.
Perbanyakan Mucuna bracteata secara generatif sangat sulit dilakukan dan memerlukan perlakuan khusus untuk berkecambah. Pematahan dormansi pada biji mucuna bertujuan untuk meningkatkan daya berkecambah. Penelitian dilakukan di lahan masyarakat jalan Tanjung Selamat, Kabupaten Deli Serdang, mulai bulan November 2012 sampai Februari 2013, menggunakan Rancangan Acak Kelompok faktorial dengan 2 faktor. Faktor pertama adalah pematahan dormansi (kontrol, pengguntingan kulit benih, penggosokan menggunakan kertas amplas dan perendaman air panas) sedangkan faktor kedua adalah zat pengatur tumbuh giberelin (GA3) (0, 150, 300, 450 ppm). Parameter yang diamati adalah daya perkecambahan, tinggi tanaman, jumlah daun, bobot basah tajuk, bobot kering tajuk, bobot basah akar, bobot kering akar, shoot root ratio.
Hasil penelitian diperoleh bahwa perlakuan pematahan dormansi berpengaruh nyata terhadap semua parameter. Pemberian zat pengatur tumbuh berpengaruh nyata pada daya perkecambahan, bobot basah tajuk dan bobot kering tajuk. Sedangkan interaksi antara pematahan dormansi dan zat pengatur tumbuh berpengaruh nyata pada daya perkecambahan, bobot basah tajuk dan bobot kering tajuk. Kata kunci: pematahan dormansi, giberelin , daya kecambah, Mucuna bracteata.
Universitas Sumatera Utara

73
ABSTRACT HARDIANTI PUTRI SARI : Germination and Growth of Mucuna bracteata by Dormancy Fracturing and Giving Growing Regulatory Substances of Gibberellins (GA3), supervised by CHAIRANI HANUM and CHARLOQ.
The generative propagation of Mucuna bracteata is very difficult and requires special treatment to germinate. Dormancy fracturing in hard seed of Mucuna purpose to enhance germination. The research was conducted at the public land, Tanjung Selamat, Deli Serdang from November 2012 to February 2013, using a randomized block design with 2 factors and 3 replications. The first factor was the dormancy fracturing (control, cutting the seed coat, polished with sand paper, and hot water soaking) and the second factor was gibberellin (GA3) (0, 150, 300 and 450 ppm). The parameters observed were the germination, plant height, number of leaves, fresh weight shoot, dry weight shoot, fresh weight root, dry weight root, shoot root ratio.
The result showed that the dormancy fracturing significantly affected to all parameters. Giving of Gibberellins (GA3) significantly affected to the germination, fresh weight shoot and dry weight shoot. Interaction between dormancy fracturing and Gibberellins significantly affected to the germination, fresh weight shoot and dry weight shoot. Keywords : dormancy fracturing, gibberellins, germination, Mucuna bracteata.
Universitas Sumatera Utara


85
PENDAHULUAN Latar Belakang
Mucuna bracteata adalah salah satu jenis Leguminosae Cover Crop (LCC) yang merambat dan ditemukan pertama di areal hutan Tri Pura, India Utara dan sudah meluas sebagai penutup tanah di perkebunan karet di Kerala India Selatan. Mucuna bracteata ini juga banyak digunakan di perkebunan di Indonesia, legum ini memiliki biomassa yang tinggi dibandingkan dengan penutup tanah lainnya. Perkebunan kelapa sawit dan perkebunan karet selalu menggunakan legum penutup tanah ini pada areal peremajaan (Siagian, 2003).
Penanaman penutup tanah kacangan di perkebunan karet beralih dari LCC konvensional (campuran dari Pueraria javanica, Calopogonium caeruleum, dan Centrosema pubescens) ke LCC Mucuna bracteata. LCC konvensional yang selama ini banyak ditanam di perkebunan karet, mempunyai kelemahan antara lain kurang mampu berkompetisi dengan gulma terutama Mikania, Asystasia, dan rumput lainnya. Mucuna bracteata nyata lebih unggul dibandingkan dengan LCC konvensional. Penanaman mucuna tersebut di perkebunan besar, baik karet maupun kelapa sawit, cukup pesat (Siagian dan Tistama, 2005).
Mucuna bracteata dinilai relatif lebih mampu menekan pertumbuhan gulma pesaing, selain itu memiliki keunggulan antara lain pertumbuhan yang cepat, serta menghasilkan biomassa yang tinggi, mudah ditanam dengan input yang rendah, toleran terhadap serangan hama dan penyakit, memiliki perakaran yang dalam sehingga dapat memperbaiki sifat fisik tanah, dan menghasilkan serasah yang tinggi sebagai humus yang terurai lambat sehingga menambah kesuburan tanah dan mengurangi laju erosi tanah, serta leguminosa yang dapat
Universitas Sumatera Utara

86
menambat N bebas dari udara (Harahap dkk., 2008). Mucuna bracteata kurang disukai ternak, penyebabnya adalah senyawa kandungan fenolik yang tinggi (Vissoh dkk., 2005) tetapi mucuna sudah digunakan sebagai tanaman pakan ternak dengan pengolahan menjadi bentuk tepung (melalui penjemuran dan penggilingan) (Sirait dkk., 2009).
Karakteristik benih Mucuna bracteata memiliki kulit yang keras dan liat sehingga sulit untuk berkecambah. Perlakuan menghilangkan kulit benih (testa) dan membuang sebagian testa bertujuan agar embrio dapat segera tumbuh tanpa hambatan. Namun, pelaksanaan percobaan ini tidak mudah dilakukan terutama karena ukuran benihnya yang kecil, kulit keras, dan liat. Sutopo (2002) menyatakan bahwa kulit biji yang keras dan kedap menjadi penghalang mekanis terhadap masuknya air dan gas. Pengambilan air terhalang kulit biji yang mempunyai struktur terdiri dari lapisan sel-sel serupa palisade berdinding tebal terutama dipermukaan paling luar dan bagian dalamnya mempunyai lapisan lilin dari bahan kutikula.
Permasalahan yang timbul dalam usaha perbanyakan Mucuna bracteata melalui biji adalah persentase daya kecambah yang sangat rendah. Perbanyakan Mucuna bracteata secara generatif sangat sulit dikarenakan kulit keras dan untuk berkecambah perlu dilakukan skarifikasi pada bijinya dan jika dilakukan perkembangbiakan kecambah, persentase kecambahnya hanya 12% (Siagian dan Tistama, 2005).
Keluhan para pekebun yang sering dilontarkan adalah benih LCC mucuna yang sangat rendah daya kecambahnya. Upaya yang perlu dilakukan untuk mengatasi hal tersebut adalah dengan cara menguji daya kecambah benih kacangan sebelum penanaman. Rendahnya daya kecambah LCC
Universitas Sumatera Utara

87
Mucuna bracteata dapat disebabkan karena mutunya kurang baik, disimpan oleh suplier terlalu lama dan adanya infeksi penyakit dan hama (Karyudi dan Siagian, 2001).
Keragaman daya kecambah Mucuna bracteata diduga juga disebabkan oleh tingkat kematangan benih yang berbeda dari sumber benihnya. Tingkat kematangan benih akan memberikan perbedaan indeks vigor, waktu yang digunakan untuk mulai berkecambah dan persentase perkecambahan. Penyerapan air pada benih yang telah matang penuh lebih cepat dari pada benih belum matang. Semakin cepat air terserap, maka proses biokimia dalam benih akan lebih cepat dimulai sehingga embrio lebih cepat berkembang dan benih dapat cepat berkecambah (Sutopo, 2002).
Usaha mempercepat dan meningkatkan daya berkecambah memerlukan perlakuan-perlakuan yang sesuai dengan kondisi atau sifat benih mucuna. Beberapa upaya mengatasi kulit biji yang keras telah dilakukan seperti pengguntingan kulit biji (skarifikasi), perendaman dengan air panas dan asam sulfat pekat dengan konsentrasi 85% selama 30 menit (Sebayang dkk., 2004).
Pengaruh giberelin terhadap biji dapat mendorong pemanjangan sel sehingga radikula dapat menembus endosperm kulit biji yang membatasi pertumbuhannya. Efek fisiologis giberelin antara lain adalah mendorong aktivitas enzim-enzim hidrolitik dan pembentukan amilase serta enzim yang mengubah lipid menjadi sukrosa pada proses perkecambahan (Salisbury dan Ross, 1995 dalam Murni, 2008).
Dormansi Mucuna bracteata dapat diatasi dengan perlakuan pemarutan atau penggoresan (skarifikasi) yaitu dengan cara menghaluskan kulit benih

Universitas Sumatera Utara

88
ataupun menggores kulit benih agar dapat menyerap air dan udara (Kartasapoetra, 2003).
Berdasarkan hal ini maka perlu dilakukan pematahan dormansi mucuna dengan kombinasi secara kimia dan fisik dengan cara pengguntingan kulit benih, skarifikasi dengan menggosok menggunakan kertas amplas, perendaman dengan air panas (suhu 850C) dan pemberian zat pengatur tumbuh giberelin (GA3) sehingga diharapkan dapat memecahkan dormansi benih pada biji mucuna serta pertumbuhan dan daya berkecambah mucuna dapat meningkat.
Tujuan Percobaan Untuk mendapatkan pematahan dormansi yang tepat dan pemberian zat
pengatur tumbuh giberelin (GA3) yang optimal terhadap pertumbuhan dan daya kecambah Mucuna bracteata.
Hipotesis Penelitian Ada perbedaan respons pertumbuhan dan daya kecambah mucuna akibat
perlakuan pematahan dormansi dan pemberian zat pengatur tumbuh giberelin (GA3) serta interaksi kedua faktor tersebut. Kegunaan Penelitian
Sebagai salah satu syarat untuk memperoleh gelar Sarjana Pertanian di Fakultas Pertanian Universitas Sumatera Utara, Medan dan untuk mendapatkan informasi tentang pematahan dormansi yang tepat dan dosis pemberian zat pengatur tumbuh giberelin (GA3) yang optimal.
Universitas Sumatera Utara

89
TINJAUAN PUSTAKA Botani Tanaman
Mucuna bracteata memiliki perakaran tunggang yang berwarna putih kecoklatan, dan memiliki bintil akar berwarna merah muda segar dan sangat banyak, pada nodul dewasa terdapat kandungan leghaemoglobin yaitu hemeprotein monomerik yang terdapat pada bintil akar leguminosae yang terinfeksi oleh bakteri Rhizobium. Laju pertumbuhan akar relatif cepat pada umur di atas tiga tahun dimana pertumbuhan akar utamanya dapat mencapai 3 meter ke dalam tanah (Harahap dan Subronto, 2004).
Batang tanaman ini berwarna hijau kecoklatan umumnya batang tumbuh menjalar, merambat dan membelit. Diameter batang dewasa dapat mencapai 0,4 - 1,5 cm dan pada umumnya memiliki buku-buku dengan panjang dapat mencapai 25 - 35 cm. Batang Mucuna bracteata pada umumnya tidak berbulu, bertekstur cukup lunak, lentur dan mengandung serat dan berair (Mugnisjah dan Setiawan, 2001).
Daun berbentuk oval berwarna hijau dan muncul di setiap ruas batang. Jika suhu meningkat maka helaian daun dapat menutup sehingga mengurangi respirasi pada permukaan daun (Harahap dkk., 2008).
Bunga tanaman Mucuna bracteata berbentuk tandan menyerupai anggur. Panjang tangkai bunga dapat mencapai 20 - 35 cm dan termasuk ke dalam jenis monoceous. Bunga berwarna biru terong dan dapat mengeluarkan bau yang menyengat sehingga dapat menarik perhatian kumbang penyerbuk (Harahap dan Subronto, 2004).
Universitas Sumatera Utara


90
Biji berbentuk bulat oval berwarna hitam dan pada umumya memiliki kulit biji yang tebal sehingga perbanyakan melalui biji dapat dilakukan dengan perlakuan benih melalui skarifikasi dan penggunaan larutan kimia. Bobot biji dapat mencapai 0,5 - 1 g/biji (Harahap dan Subronto, 2004). Syarat Tumbuh
Iklim Mucuna bracteata dapat tumbuh di berbagai daerah baik dataran tinggi
maupun dataran rendah. Tetapi untuk dapat melakukan pertumbuhan generatif atau berbunga tanaman ini memerlukan ketinggian di atas 1000 m dpl, jika berada di bawah 1000 m dpl maka pertumbuhan akan jagur tetapi tidak dapat terjadi pembentukan bunga (Harahap dan Subronto, 2004).
Untuk dapat melakukan pembungaan tanaman ini memerlukan suhu harian berkisar antara 120C - 180C. Apabila suhu berada diatas 180C maka pembungaan akan sulit terjadi (Mugnisjah dan Setiawan, 2001).
Curah hujan yang dibutuhkan agar pertumbuhan tanaman Mucuna bracteata dapat tumbuh dengan baik berkisar antara 1000 – 2500 mm/tahun dan 3 - 10 merupakan hari hujan setiap bulannya dengan kelembaban tanaman ini adalah 80%. Jika kelembaban terlalu tinggi akan berakibat bunga menjadi busuk. Untuk panjang penyinaran, mucuna membutuhkan lama penyinaran antara 6 - 7 jam/hari (Harahap dan Subronto, 2004). Tanah
Mucuna bracteata dapat tumbuh baik hampir setiap jenis tanah, pertumbuhan akan lebih baik apabila tanah mengandung bahan organik yang cukup tinggi, gembur dan tidak jenuh. Apabila mucuna ditanam pada tanah yang
Universitas Sumatera Utara

91
tergenang akan mengakibatkan pertumbuhan vegetatif terganggu. Untuk pertumbuhan Mucuna bracteata secara umum dapat tumbuh baik pada kisaran pH 4,5 - 6,5 (Harahap dan Subronto, 2004).
Mucuna bracteata mampu tumbuh dengan baik pada kondisi tanah asam (pH 5) sampai basa (pH 8), dengan kondisi tanah yang miskin hara tanaman ini mampu menghasilkan bahan organik dari sisa-sisa tanaman sebesar 1,75 ton/ha (Setiawan, 2008).
Perkecambahan Biji Perkecambahan benih secara fisiologi adalah muncul dan berkembangnya
struktur-struktur penting dari embrio benih dengan akar menembus kulit benih. Proses metabolisme perkecambahan benih sampai ditentukan oleh faktor genetik dan lingkungan. Faktor genetik yang berpengaruh terhadap perkecambahan benih adalah sifat dormansi dan komposisi kimia benih. Faktor lingkungan yang berpengaruh terhadap perkecambahan benih adalah air, gas, suhu dan cahaya (Copeland dan Mc Donald, 2001).
Tahap suatu perkecambahan benih dimulai dengan proses penyerapan air oleh benih, melunaknya kulit benih dan hidrasi dari protoplasma. Tahap kedua dimulai dengan kegiatan-kegiatan sel dan enzim-enzim serta naiknya tingkat respirasi benih. Tahap ketiga merupakan tahap dimana terjadi penguraian bahanbahan seperti karbohidrat, lemak dan protein menjadi bentuk-bentuk yang melarut dan ditranslokasikan ke titik-titik tumbuh. Tahap keempat adalah asimilasi dari bahan-bahan yang telah diuraikan tadi di daerah meristem untuk menghasilkan energi bagi kegiatan pembentukan komponen dan pertumbuhan sel-sel baru. Tahap kelima adalah pertumbuhan dari kecambah melalui proses
Universitas Sumatera Utara

92
pembelahan, pembesaran dan pembagian sel-sel pada titik-titik tumbuh (Copeland dan McDonald, 1985; Sutopo, 1998 dalam Haryati 2002).
Proses perkecambahan benih dipengaruhi oleh faktor genetik dan lingkungan. Faktor genetik yang berpengaruh adalah susunan kimiawi benih yang berhubungan dengan daya hidup benih. Sifat ketahanan ini meliputi masalah kadar air benih, aktivitas enzim dalam benih dan sifat fisik atau biokimiawi dari kulit benih. Sedangkan faktor lingkungan yang sangat berpengaruh adalah air, gas dan suhu (Bewley and Black, 1982 dalam Miranda, 2005).
Proses-proses perkecambahan sangat dipengaruhi oleh ketersediaan faktorfaktor lingkungan seperti air, oksigen, cahaya dan suhu. Air berperan dalam melunakkan kulit biji, memfasilitasi masuknya oksigen, pengenceran protoplasma untuk aktivasi fungsi, dan alat transportasi makanan. Suhu berperan dalam pematahan dormansi, aplikasi fluktuasi yang tinggi berhasil mematahkan dormansi pada banyak spesies, terutama yang mengalami termodormansi. Aplikasi fluktuasi suhu ini dapat berupa chilling/alternating temperatur maupun pembakaran permukaan. Oksigen dibutuhkan pada proses oksidasi untuk membentuk energi perkecambahan. Cahaya mempengaruhi perkecambahan melalui tiga macam bentuk yaitu intensitas cahaya, panjang gelombang dan fotoperiodisitas (Sutopo, 2004).
Salah satu faktor penghambat perkecambahan adalah dormansi benih. Dormansi pada benih dapat disebabkan oleh kulit benih yang keras dan keadaan fisiologis embrio. Benih yang dorman dan benih yang mati dapat diketahui melalui uji perkecambahan. Bila volume benih pada akhir perkecambahan sama
Universitas Sumatera Utara

93
dengan keadaan sebelum dikecambahkan maka benih dalam keadaan dorman (Saenong dkk., 1989).
Dormansi Dormansi benih pada umumnya diartikan sebagai benih yang tidak
berkecambah walaupun kondisi lingkungan optimum untuk proses perkecambahan. Schimdt (2000) menyatakan bahwa dormansi adalah suatu strategi menunda proses perkecambahan pada kondisi optimum dimana benih tidak mati.
Bewley dan Black (1982) membagi dormansi menjadi dua jenis, yaitu dormansi embrio dan dormansi kulit. Dormansi embrio adalah jenis dormansi yang pengendaliannya berada dalam embrio benih. Dormansi kulit adalah dormansi yang disebabkan oleh struktur yang melindungi embrio. Kulit benih menghalangi embrio untuk tumbuh karena mengganggu proses pengambilan air dan pertukaran gas, mengandung zat penghambat pertumbuhan, berperan sebagai penghalang keluarnya zat penghambat tumbuh embrio, dan membatasi cahaya mencapai embrio.
Benih dalam keadaan normal belum tentu mati, karena benih tersebut dapat dirangsang untuk berkecambah dengan berbagai perlakuan. Benih yang dorman dan benih yang mati dapat diketahui melalui uji perkecambahan. Bila volume benih pada akhir perkecambahan sama dengan keadaan sebelum dikecambahkan maka benih dalam keadaan dorman. Sebaliknya, volume benih menunjukkan perubahan, misalnya mengecil, ditumbuhi cendawan atau bila dipijat terasa lembek, berarti benih tersebut mati (Saenong dkk., 1989 dalam Sinambela, 2008).
Universitas Sumatera Utara

94
Beberapa jenis benih tetap dorman disebabkan oleh kulit benihnya yang cukup kuat untuk menghalangi pertumbuhan dari embrio. Kulit benih tidak dapat dilalui air atau udara karena keras atau tertutup oleh gabus maupun lilin. Jika kulit benih dihilangkan maka akan terjadi perkecambahan. (Schmidt, 2000).
Hambatan perkecambahan benih dapat terjadi karena kulit benih dan dapat pula karena kandungan bahan kimia. Bahan kimia tersebut dapat menciptakan suasana osmotik yang tidak menguntungkan pertumbuhan, dapat pula merangsang pembentukan zat-zat penghambat pertumbuhan yang membatasi pertumbuhan, atau dapat mengadakan sistem-sistem biokemis lebih kompleks yang berhubungan dengan kepekaan benih terhadap cahaya (Purba, 2000).
Perlakuan Pematahan Dormansi Perlakuan Mekanis
Beberapa cara perlakuan mekanis untuk memecahkan dormansi benih yang disebabkan oleh impermiabilitas kulit biji baik terhadap air atau gas yaitu: 1. Skarifikasi
Skarifikasi dapat dilakukan dengan aberasi yaitu menggosok kulit benih dengan benda yang kasar atau kikir dan kertas pasir. Tujuan untuk menipiskan kulit biji yang keras sehingga lebih permiabel terhadap air atau gas (Salisbury dan Ross, 1995). 2. Perendaman Air Panas
Perendaman biji dalam air panas bertujuan untuk memperbaiki permeabilitas kulit benih sehingga dapat mempermudah masuknya air dan gas, sehingga dapat meningkatkan persentase biji berkecambah. Telah dilaporkan, bahwa pemanasan biji legum pada suhu 100°C selama 1,5 menit atau pada air
Universitas Sumatera Utara

95
panas dapat mengurangi biji yang keras dan pemberian panas 100°C selama 5-20 detik dapat menyebabkan terbukanya pleurogram dan menghasilkan perkecambahan 95-100% (Olvera dkk, 1982 dalam Gardner dkk, 1991).
Hasil penelitian menunjukan perlakuan perendaman air panas 85°C merupakan perlakuan yang lebih baik dan menghasilkan daya kecambah yang tertinggi dibandingkan perlakuan lainnya yang memungkinkan bahwa suhu 85°C ideal untuk pematahan dormansi benih mucuna yang secara fisik memiliki seed coat yang tebal. Adapun untuk perlakuan air biasa dan perendaman bahan kimiawi lainnya dapat menjadi bahan penelitian lanjutan untuk mencari konsentrat dan lama perendaman yang ideal untuk pematahan dormansi benih mucuna (Sulaiman dkk., 2009). 3. Pengguntingan Kulit Biji
Pengguntingan kulit biji dilakukan dengan cara menggunting salah satu sisi biji dengan gunting kuku sehingga kulit terkupas dan air dapat dengan mudah masuk ke dalam biji. Pengguntingan ini harus dilakukan dengan hati-hati jangan sampai merusak embrio biji. Persentase perkecambahan dengan cara ini lebih tinggi dibandingkan dengan cara skarifikasi yaitu mencapai 95%, namun pengerjaannya lebih sulit dibandingkan dengan perlakuan yang pertama (Harahap dkk., 2008). Perlakuan Kimia
Perlakuan kimia sering dipakai untuk memecahkan dormansi pada benih, tujuannya agar kulit benih lebih mudah dimasuki air pada waktu proses imbibisi. Bahan kimia yang biasa dipakai adalah Potassium nitrat, Potassium hydroxide, asam nitrat dan thiourea (Sutopo, 2004).
Universitas Sumatera Utara

96
Zat Pengatur Tumbuh Giberelin (GA3) Hormon tumbuh yang biasa dipakai untuk mematahkan dormansi antara
lain: sitokinin, giberelin dan auksin (Sutopo, 2004). Hormon tumbuh ada yang bersifat alami dan ada yang bersifat sintesis.
Giberelin merupakan hormon tumbuh pada tanaman yang bersifat sintesis dan berperan mempercepat perkecambahan. Penggunaan giberelin untuk mempercepat perkecambahan telah banyak dilakukan (Bey dkk., 2006). Penelitian Murniati dan Zuhri (2002) mengungkapkan bahwa giberelin mampu mempercepat perkecambahan kopi.
Asam giberelat dapat mempengaruhi membran sel dengan naiknya permeabilitas sel, sehingga tekanan osmotik naik dan sel menjadi mengembang dan memanjang. Proses ini sangat dipengaruhi oleh enzim ɑ-amilase, sehingga akan mempengaruhi membran sel untuk merangsang RNA dan sintesa protein sampai terjadi proses pembelahan dan pemanjangan sel (Krishnamoorthy, 1981 dalam Widiastoety, 1990).
Asam giberelat merupakan hormon tanaman yang mempunyai efek fisiologis, dapat mempengaruhi diferensiasi kambium dalam proses pembentukan berkas pengankut. Pemberian GA dapat meningkatkan jumlah floem yang terbentuk. Selulosa dan lignin sebagai penyusun dinding sel akan meningkat jumlahnya seiring peningkatan jumlah floemnya. Selulosa dan lignin merupakan penentu kualitas serat. Hormon ini juga dapat memacu pertumbuhan dan perkembangan tanaman serta memperpendek siklus hidup tanaman (Davies, 1995 dalam Mudyantini, 2008).
Universitas Sumatera Utara

97 Kucera dkk. (2005) melaporkan bahwa ada dua fungsi giberelin selama perkecambahan benih, pertama giberelin diperlukan untuk meningkatkan potensi tumbuh dari embrio dan sebagai promotor perkecambahan, dan kedua diperlukan untuk mengatasi hambatan mekanik oleh lapisan penutup benih karena terdapatnya jaringan di sekeliling radikula. Giberelin aktif menunjukkan banyak efek fisiologi, masing-masing tergantung pada tipe giberelin dan juga spesies tanaman. Beberapa proses fisiologi yang dipengaruhi oleh giberelin adalah merangsang pemanjangan batang dengan merangsang pembelahan sel dan pemanjangan, merangsang pembungaan pada hari panjang, memecah dormansi pada beberapa tanaman yang menghendaki cahaya untuk merangsang perkecambahan, merangsang produksi enzim (ɑ-amilase) dalam mengecambahkan tanaman sereal untuk mobilisasi cadangan benih, menyebabkan berkurangnya bunga jantan pada bunga dicious (sex expression), dapat menyebabkan perkembangan buah partenokarpi (tanpa biji) dan dapat menunda penuaan pada daun dan buah jeruk (Salisbury dan Ross, 1985).
Universitas Sumatera Utara

98
BAHAN DAN METODE Tempat dan Waktu Penelitian
Penelitian ini dilaksanakan di lahan masyarakat Jl. Tj. Selamat, Kabupaten Deli Serdang dengan ketinggian ± 57 meter di atas permukaan laut. Penelitian ini dilaksanakan pada bulan November 2012 sampai dengan Februari 2013.
Bahan dan Alat Bahan dalam penelitian ini adalah biji Mucuna bracteata, air panas,
Zat Pengatur Tumbuh Giberelin (GA3), top soil, pasir, alkohol, pupuk rock phospat (RP) dan polibeg ukuran 20 x 30 cm.
Alat-alat yang digunakan dalam penelitian ini adalah kertas pasir (waterproof abrasive paper No 120), gunting kuku, termometer, cangkul, beacker glass, gembor, meteran, gunting/cutter, pacak sampel, timbangan analitik, amplop, oven dan alat tulis.
Metode Penelitian Adapun rancangan yang digunakan dalam penelitian ini adalah Rancangan
Acak Kelompok (RAK) Faktorial dengan 2 faktor perlakuan, yaitu: Faktor I: Pematahan dormansi dengan 4 taraf, yaitu:
M0 = Tidak diberi perlakuan (Kontrol) M1 = Pengguntingan Kulit Benih M2 = Skarifikasi dengan menggosok menggunakan kertas amplas M3 = Perendaman dengan air panas (suhu 85°C) sampai air setara dengan
suhu ruangan (suhu 27°C) selama 2 jam.
Universitas Sumatera Utara

Faktor II: Konsentrasi ZPT Giberelin (GA3) dengan 4 taraf, yaitu:

G0 = 0 ppm

G1 = 150 ppm

G2 = 300 ppm G3 = 450 ppm Sehingga diperoleh kombinasi perlakuan sebagai berikut :

M0G0

M1G0

M2G0

M3G0

M0G1

M1G1

M2G1

M3G1

M0G2

M1G2

M2G2

M3G2

M0G3

M1G3

M2G3

M3G3

Jumlah Ulangan

:3

Junlah Plot

: 48

Jumlah Polibag/plot

: 6 tanaman

Jumlah Sampel/plot

: 4 tanaman

Jumlah Total Sampel

: 192 tanaman

Jumlah Tanaman Seluruhnya

: 288 tanaman

Ukuran Plot

: 120 cm x 80 cm

Jarak Antar Plot

: 30 cm

Jarak Antar Blok

: 50 cm

Jarak Antar Polibag

: 40 cm

Jarak Pinggir

: 50 cm

Luas Lahan Penanaman

: 1830 cm x 560 cm

99

Universitas Sumatera Utara

100
Data hasil penelitian dianalisa dengan menggunakan sidik ragam berdasarkan model linier sebagai berikut :
Yijk = μ + ρi + αj + βk + (αβ)jk + εijk i = 1,2,3 j = 1,2,3 k = 1, 2, 3, 4 Yijk = Hasil pengamatan pada blok ke-i dengan perlakuan pematahan dormansi pada taraf ke-j dan zat pengatur tumbuh pada taraf ke-k μ = Nilai tengah umum ρi = Pengaruh blok ke-i αj = Pengaruh perlakuan pematahan dormansi pada taraf ke-j βk = Pengaruh perlakuan zat pengatur tumbuh pada taraf ke-k (αβ)jk = Pengaruh interaksi antara perlakuan pematahan dormansi pada taraf ke-j dan zat pengatur tumbuh pada taraf ke-k εijk = Pengaruh galat pada blok ke-i yang mendapat perlakuan pematahan dormansi pada taraf ke-j dan zat pengatur tumbuh pada taraf ke-k Pengolahan sidik ragam untuk hasil pengamatan 0 (tidak ada yang berkecambah atau belum berkecambah) dilakukan transformasi √X + 0,5 dan √X. Hasil penelitian yang menunjukkan pengaruh nyata akan dilanjutkan dengan uji Jarak Berganda Duncan (DMRT) pada taraf 5% (Steel and Torrie, 1995).
Universitas Sumatera Utara

101
Pelaksanaan Penelitian Persiapan Media Tanam
Media tanam yang digunakan adalah pasir pada saat perkecambahan. Pasir terlebih dahulu disterilisasi dengan cara digongseng dan ditaburkan dengan insektisida (Sevin dengan bahan aktif Karbaril 85%) dan fung

Dokumen yang terkait

Pengaruh Teknik Aplikasi Zat Pengatur Tumbuh dan Umur Pindah Tanam Bibit TSS (True Shallot Seeds) terhadap Pertumbuhan dan Hasil Bawang Merah (Allium ascaloicum L.)

6 85 199

Pengaruh Berbagai Level Zat Pengatur Tumbuh Dekamon 22,43 L Dan Pupuk Kandang Domba Terhadap Produksi Dan Pertumbuhan Legum Stylo (Stylosanthes Gractlis)

0 34 66

Pengaruh Pemberian Zat Pengatur Tumbuh Hydrasil Dan Pupuk Nitrophoska Terhadap Pertumbuhan Dan Produksi Tanaman Semangka (Citrullus Vulgaris Schard)

0 41 71

Pengaruh Pemberian Pupuk Stadya Daun Dan Zat Pengatur Tumbuh Atonik 6,5 L Terhadap Pertumbuhan Bibit Kakao (Theobroma Cacao L.)

0 41 96

Pengaruh Berbagai Level Zat Pengatur Tumbuh Dekamon 22,43 L dan Pupuk Kandang Domba Terhadap Kualitas Legum Stylo (Stylosanthes gracilis)

1 56 64

Pengarah campuran media tanam dan zat pengatur tumbuh Giberellin terhadap pertumbuhan bibit mengkudu (Morinda citrifolia L.)

0 27 84

Pengaruh Konsentrasi Zat Pengatur Tumbuh Atonik dan Dosis Pupuk Urea terhadap Pertumbuhan dan Produksi Tanaman Jahe Muda (Zingiber officinale Rosc.)

4 51 92

Komposisi Media Pembibitan tl-m Zat Pengatur Tumbuh Dekamon 22,43 L Mempengaruhi Pertumbuhan Bibit Enten Tanaman Durian (Durio zibhethinus M u n*) Dibawah Naungan Tanaman Pepaya.

0 61 50

Pengaruh Zat Pengatur Tumbuh Akar Dan Media Tanam Terhadap Keberhasilan Dan Pertumbuhan Setek Kamboja Jepang (Adenium Obesum)

8 73 80

Pengaruh pematahan dormansi terhadap persentase daya kecambah dan pertumbuhan vegetatif tanaman mucuna.

2 35 74