Pengaruh Beberapa Jenis Pakan Terhadap Pertumbuhan Rotifera (Brachionus sp)
LAMPIRAN
Universitas Sumatera Utara
1. Alat dan Bahan
Alat
Botol Ukuran 250 ml
Mikroskop Cahaya
Aerator
Bohlam 5 Watt
Haemocytometer
Akuarium Mini
Universitas Sumatera Utara
Termometer
Corong
Pipet Tetes
pH Meter
Tisu
Jarum Suntik
Universitas Sumatera Utara
Kertas Label
Spidol
Bahan
Vitamin B Kompleks Cair
Ragi Roti
Ampas Tahu
Universitas Sumatera Utara
Aquadest
Alkohol 70 %
Universitas Sumatera Utara
2.
Prosedur Penelitian
Bibit dari Alam
Proses Pemasukan Bibit
Yang Sudah Dikultur
Pemberian Pakan Ragi Roti dan Vitamin B Kompleks
Universitas Sumatera Utara
Media Uji
Tampilan Media Siap Untuk Diuji
Universitas Sumatera Utara
3.
Rotifera (Brachionus sp)
Universitas Sumatera Utara
4. Tabel Pengamatan Pertumbuhan Harian Brachionus sp
Perlakuan
A (Fitoplankton)
B (Ampas Tahu)
C (Ragi Roti)
D (Vit. B Kompleks)
Pengamatan
Ulangan
1
2
3
Jumlah
Rata-rata
1
2
3
Jumlah
Rata-rata
1
2
3
Jumlah
Rata-rata
1
2
3
Jumlah
Rata-rata
Awal
1 (Hari ke-2)
2 (Hari ke-4)
3 (Hari k3-6)
4 (Hari k3-8)
5 (Hari ke-10)
0.001
0.001
0.001
0.003
0.001
0.001
0.001
0.001
0.003
0.001
0.001
0.001
0.001
0.003
0.001
0.001
0.001
0.001
0.003
0.001
2
1
1
4
1.33
2
3
3
8
2.67
1
0.3
0.3
1.6
0.53
2
2
2
6
2.00
2
1
1
4
1.33
12
15
10
37
12.33
1
0.3
1
2.3
0.77
15
25
10
50
16.67
2
1
2
5
1.67
22
16
15
53
17.67
5
1
1
7
2.33
5
5
5
15
5.00
2
2
2
6
2.00
60
18
25
103
34.33
40
30
20
90
30.00
3
5
80
88
29.33
1
1
1
3
1.00
50
15
20
85
28.33
30
20
15
65
21.67
2
2
60
64
21.33
Universitas Sumatera Utara
5. Tabel Hasil Pertumbuhan Populasi dan Pertumbuhan Harian Brachionus
sp pada Perlakuan
Pertumbuhan Populasi Brachionus sp
Perlakuan
I
8
96
47
25
A (Fitoplankton)
B ( Ampas Tahu)
C ( Ragi Roti)
D ( Vit. B Kompleks )
Ulangan
II
III
5
6
52
53
31.6
22.3
37
97
Jumlah
Rata-rata
19
201
100.9
159
6.33
67
33.63
53
Pertumbuhan Harian Populasi Brachionus sp Pada Setiap Perlakuan.
Media Perlakuan
Waktu Pengamatan
Fitoplankton
Ampas Tahu
Ragi Roti
Vitamin B Kompleks
Hari Pertama
0.001
0.001
0.001
0.001
Hari Ke-2
1.33
2.67
0.53
2.00
Hari Ke-4
1.33
12.33
0.77
16.67
Hari Ke-6
1.67
17.67
2.33
5.00
Hari Ke-8
2.00
34.33
30.00
29.33
Hari ke 10
1.00
18.33
15.00
9.66
Universitas Sumatera Utara
6. Tabel Analisis Anova Sidik Ragam Pertumbuhan Populasi Rotifera
(Brachionus sp)
Perlakuan
A (Fitoplankton)
B ( Ampas Tahu)
C ( Ragi Roti)
D ( Vit. B Kompleks )
Jumlah
Rata-rata
I
8
96
47
25
176
44
Ulangan
II
5
52
31.6
37
125.6
31.4
III
6
53
22.3
97
178.3
44.575
∑
Ẋ
19
201
100.9
159
479.9
6.33
67
33.63
53
39.99
DB Total
= Jumlah seluruh observasi- 1 = n – 1 = 12 – 1 = 11
DB Perlakuan
= Banyaknya perlakuan – 1 = 4 – 1 = 3
DB Galat
= DB total - DB perlakuan
= t (r –1) = (Jumlah perlakuan) (jumlah ulangan – 1)
= 11 – 3 = 8
Faktor Koreksi (FK)
= (GT)2 = (479,9)2 = 230304,01 = 19192,00
n
12
12
JK Total
= (n-observasi total )2 – FK
= {(8)2 + (5)2 + (6)2 + (96)2 + (52)2 + (53)2 + (47)2 +
(31,6)2
+(22,3)2 +(25)2+ (37)2 + (97)2 } –
19192,00
= 10769,85
JK Perlakuan
= ∑ (total perlakuan)2 – FK
r
= (19)2 + (201)2 + (100.9)2 + (159)2 – 19192,00
3
= 6215,9366
Universitas Sumatera Utara
JK Galat
= JK Total – JK Perlakuan
= 10769,85 – 6215,9366
= 4553,91
KT Perlakuan
= JK Perlakuan = 6215,9366 = 2071.9788
DB Perlakuan
3
KT Galat
= JK Galat = 4553,91 = 569.2387
T (r - 1)
8
F Hitung Perlakuan
= KT Perlakuan = 2071.9788
KT Galat
F Hitung Ulangan
= KT Ulangan
KT Galat
JK
= 221.78083
Sumber Variasi
DB
KT
PERLAKUAN
3
6215.9366 2071.9788
ULANGAN
GALAT
TOTAL
2
8
11
443.56167 221.78083
4553.91
569.2387
10769.85
F hit
3.63991204
0.38960954
F tabel
5%
4.76
Universitas Sumatera Utara
1%
9.78
7. Hasil Analisis Anova Menggunakan Program SPSS 17
Correlations
Notes
Output Created
20-Nov-2013 09:50:19
Comments
Input
Active Dataset
DataSet0er
Filter
Weight
Split File
N of Rows in Working Data File
Missing Value Handling
Definition of Missing
4
User-defined missing values are treated as
missing.
Cases Used
Statistics for each pair of variables are based
on all the cases with valid data for that pair.
Syntax
CORRELATIONS
/VARIABLES=Fitoplankton AmpasTahu
RagiRoti VitaminBKompleks
/PRINT=TWOTAIL NOSIG
/STATISTICS DESCRIPTIVES
/MISSING=PAIRWISE.
Resources
Processor Time
0:00:00.000
Elapsed Time
0:00:00.032
[DataSet0]
Descriptive Statistics
Mean
Std. Deviation
N
Fitoplankton
6.33
1.528
3
Ampas Tahu
67.00
25.120
3
Ragi Roti
33.633
12.4749
3
Vit. B Kompleks
53.000
38.5746
3
Universitas Sumatera Utara
Correlations
Fitoplankton
Fitoplankton
Pearson Correlation
Ampas Tahu
1
.755
-.339
.200
.455
.780
3
3
3
3
Pearson Correlation
.951
1
.920
-.613
Sig. (2-tailed)
.200
.256
.580
N
N
Ragi Roti
3
3
3
3
Pearson Correlation
.755
.920
1
-.873
Sig. (2-tailed)
.455
.256
3
3
3
3
-.339
-.613
-.873
1
.780
.580
.324
3
3
3
N
Vit. B Kompleks
Pearson Correlation
Sig. (2-tailed)
N
REGRESSION
LISTWISE
Vit. B Kompleks
.951
Sig. (2-tailed)
Ampas Tahu
Ragi Roti
/DESCRIPTIVES MEAN STDDEV CORR SIG N
.324
/MISSING
/STATISTICS COEFF OUTS R ANOVA COLLIN TOL CHANGE ZPP
/CRITERIA=PIN(.05) POUT(.10)
/NOORIGIN
/DEPENDENT Fitoplankton
/METHOD=ENTER AmpasTahu RagiRoti VitaminBKompleks
/RESIDUALS
HIST(ZRESID) NORM(ZRESID).
Universitas Sumatera Utara
3
Regression
Notes
Output Created
20-Nov-2013 09:51:15
Comments
Input
Active Dataset
DataSet0
Filter
Weight
Split File
N of Rows in Working Data File
Missing Value Handling
Definition of Missing
4
User-defined missing values are treated as
missing.
Cases Used
Statistics are based on cases with no
missing values for any variable used.
Syntax
REGRESSION
/DESCRIPTIVES MEAN STDDEV CORR
SIG N
/MISSING LISTWISE
/STATISTICS COEFF OUTS R ANOVA
COLLIN TOL CHANGE ZPP
/CRITERIA=PIN(.05) POUT(.10)
/NOORIGIN
/DEPENDENT Fitoplankton
/METHOD=ENTER AmpasTahu RagiRoti
VitaminBKompleks
/RESIDUALS HIST(ZRESID)
NORM(ZRESID).
Resources
Processor Time
0:00:00.063
Elapsed Time
0:00:00.077
Memory Required
Additional Memory Required for
1956 bytes
640 bytes
Residual Plots
[DataSet
Universitas Sumatera Utara
Warnings
For the final model with dependent variable Fitoplankton, the variance- covariance matrix is singular.
Influence statistics cannot be computed.
Descriptive Statistics
Mean
Std. Deviation
N
Fitoplankton
6.33
1.528
3
Ampas Tahu
67.00
25.120
3
Ragi Roti
33.633
12.4749
3
Vit. B Kompleks
53.000
38.5746
3
Correlations
Fitoplankton
Pearson Correlation
N
Ragi Roti
Vit. B Kompleks
Fitoplankton
1.000
.951
.755
-.339
Ampas Tahu
.951
1.000
.920
-.613
Ragi Roti
.755
.920
1.000
-.873
-.339
-.613
-.873
1.000
Fitoplankton
.
.100
.228
.390
Ampas Tahu
.100
.
.128
.290
Ragi Roti
.228
.128
.
.162
Vit. B Kompleks
.390
.290
.162
.
Fitoplankton
3
3
3
3
Ampas Tahu
3
3
3
3
Ragi Roti
3
3
3
3
Vit. B Kompleks
3
3
3
3
Vit. B Kompleks
Sig. (1-tailed)
Ampas Tahu
Universitas Sumatera Utara
b
Model Summary
Change Statistics
Std. Error of the
Model
R
R Square
a
1
1.000
Adjusted R Square
1.000
Estimate
.
R Square Change
.
1.000
F Change
df1
.
df2
2
Sig. F Change
0
.
a. Predictors: (Constant), Vit. B Kompleks, Ampas Tahu
b. Dependent Variable: Fitoplankton
Model
1
Variables Entered Variables Removed
Vit. B Kompleks,
Method
. Enter
a
Ampas Tahu
a. Tolerance = .000 limits reached.
Universitas Sumatera Utara
ANOVAb
Model
1
Sum of Squares
Regression
Residual
Total
df
Mean Square
F
4.667
2
2.333
.000
0
.
4.667
2
Sig.
.
.
a
a. Predictors: (Constant), Vit. B Kompleks, Ampas Tahu
b. Dependent Variable: Fitoplankton
Coefficientsa
Standardized
Unstandardized Coefficients
Model
B
1(Constant)
Coefficients
Std. Error
Correlations
Beta
.663
.000
Ampas Tahu
.072
.000
Vit. B Kompleks
.015
.000
t
Sig.
Zero-order
Partial
Collinearity Statistics
Part
Tolerance
VIF
.
.
1.191
.
.
.951
1.000
.941
.624
1.602
.390
.
.
-.339
1.000
.308
.624
1.602
a. Dependent Variable: Fitoplankton
Universitas Sumatera Utara
b
Excluded Variables
Collinearity Statistics
Minimum
Model
1
Beta In
Ragi Roti
t
.
a
Sig.
.
Partial Correlation
.
Tolerance
.
VIF
.000
Tolerance
.
.000
a. Predictors in the Model: (Constant), Vit. B Kompleks, Ampas Tahu
b. Dependent Variable: Fitoplankton
Collinearity Diagnostics
a
Variance Proportions
Dimensio
Model
n
Eigenvalue
Condition Index
(Constant)
Ampas Tahu
Vit. B Kompleks
1
1
2.701
1.000
.00
.01
.02
2
.281
3.101
.00
.07
.36
3
.018
12.114
.99
.93
.62
a. Dependent Variable: Fitoplankton
Universitas Sumatera Utara
a
Residuals Statistics
Minimum
Maximum
Mean
Std. Deviation
N
Predicted Value
5.00
8.00
6.33
1.528
3
Residual
.000
.000
.000
.000
3
-.873
1.091
.000
1.000
3
.
.
.
.
0
Std. Predicted Value
Std. Residual
a. Dependent Variable: Fitoplankton
Universitas Sumatera Utara
Universitas Sumatera Utara
DAFTAR PUSTAKA
Agustina., D. K. 2008. Perkembangan Koloni Lebah Madu Apis mellifera L. Yang
Mendapat Polen Pengganti Dari Tiga Jenis Kacang dengan dan Tanpa
Vitamin B Komplek [Skripsi]. Program Studi Teknologi Produksi Ternak.
Fakultas Peternakan Institut Pertanian Bogor.
Aprilia., T. 2008. Aplikasi Pengkayaan Rotifera dengan Asam Amino Bebas
Untuk Larva Kerapu Bebek Cromileptes altivelis. [Skripsi]. Program Studi
Teknologi dan Manajemen Akukultur.Fakultas Perikanan dan Ilmu
Kelautan. Institut Pertanian. Bogor.
Barus, T. 2004. Pengantar Limnologi Studi Tentang Ekosistem Air Daratan. USU
Press. Medan.
Chilmawati, D. dan Suminto. 2009. Pengaruh Penggunaan Ragi Roti, Vitamin
B12, Vitamin C Sebagai Bahan Pengkaya Pakan Terhadap Populasi
Brachionus plicatilis. Jurnal Saintek Perikanan Vol. 5 No. 2, 2010. 42-48.
Dahril, T., 1996. Biologi Rotifer Dan Pemanfaatannya. Penerbit UNRI Press.
Pekanbaru.
Dikkurahman. 2003. Pertumbuhan Populasi Rotifera (Brachionus sp.) dengan
Pemberian Pakan Alami Mikroalgae Monospesies dan Multispesies.
[Skripsi]. Program Sudi Manajemen Sumberdaya Perairan. Fakultas
Perikanan dan Ilmu Kelautan. Institut Pertanian Bogor.
Erlina, A., Amini, S., Endrawati, H., Zainuri, M. 2004. Kajian Nutritif
Phytoplankton Pakan Alami pada Sistem Kultivasi Massal. lmu Kelautan.
Desember 2004. Vol. 9 (4) : 206 - 210ISSN 0853 – 7291.
Erlania., wiladja.F., Adiwilaga. E. M. 2010. Penyimpanan Rotifera Instan
(Branchionus rotundifomis) Pada Suhu Yang Berbeda dengan Pembenihan
Pakan Mikroalga Konsentrasi. J. RIS Akukultur Vol.5 No2. Bogor.
Fernando, R. R. 2011. Pengaruh Penggunaan Campuran Dedak dan Ampas Tahu
Fermentasi dengan Monascus Purpureus Dalam Ransum Terhadap Bobot
Hidup, Persentase Karkas dan Kolesterol Daging Broiler. [Skripsi].
Universitas Andalas, Padang.
Isnansetyo dan Kurniastuty. 1995. Teknik Kultur Phytoplankton dan Zooplankton
Pakan Alami Untuk Pembenihan Organisme Laut. Penerbit Kanisius,
Yogyakarta.
Universitas Sumatera Utara
Karmila. S., 2011.Kandungan Mineral, Vitamin A, B12, dan Komponen Bioaktif
Sotong (Sepia Recurvirostra).[Skripsi].Fakultas Perikanan dan Ilmu
Kelautan Institut Pertanian Bogor.
Kaswinarni, F. 2007. Kajian Teknis Pengolahan Limbah Padat Dan Cair Industri
Tahu, Studi Kasus Industri Tahu Tandang Semarang, Sederhana Kendal
dan Gagak Sipat Boyolali [Tesis]. Program Studi Magister Ilmu
Lingkungan Program Pasca Sarjana Universitas Diponegoro Semarang.
Noor, T.F.D. 2012. Pemanfaatan Tepung Ampas Tahu Pada Pembuatan Produk
Cookies dan Pie Lemon Cookies. [Skripsi]. Fakultas Teknik. Universitas
Negeri Yogyakarta
Ozhan., D dan Oguzkurt.,D.2008. Seasonal Succes and Distribution Of Rotifer in
Karakaya Dam Lake in Eastern. Inono University Faculty of Science and
art. Departement Biologi. Malatya.Turkey.
Pranata, A. 2009. Laju Pertumbuhan Populasi Rotifera (Brachionus sp.) pada
Media Kombinasi Kotoran Ayam, Pupuk Urea dan Pupuk TSP, serta
Penambahan beberapa Variasi Ragi Roti. [Skiripsi]. Fakultas Matematika
dan Ilmu Pengetahuan Alam. Universitas Sumatera Utara.
Rahmadhani., Y. S. 2008. Efektifitas Pemberian Multivitamin dan Kajian
Gambaran Darah Merah pada Domba Priangan (Ovis Aries) Yang Diberi
Stres Transportasi. [Skripsi] Fakultas Kedokteran hewan. Institut
Pertanian Bogor.
Redjeki, S. 1999. Budidaya Rotifera. Jurnal Penelitian Volume XXIV No. 2 1999
: 27-43. Bojonegara. Serang.
Sutomo., Komala, R.,Wahyuni, E.R.,Panggabean,M.G.L.2007. Pengaruh Jenis
Pakan Mikroalga Yang Berbeda Terhadap Pertumbuhan Populasi Rotifer,
Brachionus Rotundiformis. Jurnal Oseanologi dan Limnologi di Indonesia
(2007) 33: 159 – 176.
Suwignyo, S., B. Widigdo., Y. Wardiatno., M. Krisanti. 2005. Avertebrata Air
Jilid2. Penerbit Penebar Swadaya. Jakarta.
Yuliartati, E., 2011. Tingkat SErangan Ektoparasit Pada Ikan Patin (Pangasius
djambal) Pada Beberapa Pembudidaya Ikan di Kota Makasar, [Skripsi].
Fakultas Ilmu Kelautan Dan Perikanan Universitas Hasanudin. Makasar.
Universitas Sumatera Utara
dan Suminto, 2009).
METODE PENELITIAN
Waktu Dan Tempat
Penelitian ini dilaksanakan pada bulan Juli-September 2013 di
Labolatorium Budidaya dan Labolatorium Terpadu Program Studi Manajemen
Sumberdaya Perairan Fakultas Pertanian Universitas Sumatera Utara.
Alat dan Bahan
Peralatan yang digunakan adalah botol plastik transparan, dengan volume
air bisa menampung 250 ml sebagai media uji, aquarium sebagai tempat media,
lampu 5 watt untuk menjaga suhu agar tidak dingin, aerator pemasok oksigen,
pipet tetes 0,5 ml, pH meter untuk mengukur derajat keasaman media, spidol,
kertas label, corong, tisu, termometer untuk mengukur suhu, kamera,
haemocytometer dan mikroskop cahaya untuk melihat rotifera. Adapun bahan
yang diperlukan dalam penelitian ini adalah: rotifera (Brachionus sp) sebagai
hewan uji, aquadest, alkohol 70 % untuk proses pencucian, ampas tahu, ragi roti,
dan fitoplankton dan vitamin B kompleks sebagai perlakuan (Lampiran 1).
Metode Penelitian
Metode yang digunakan dalam penelitian ini yakni metode eksprimen
dengan melakukan pengamatan langsung dari perkembangan rotifera dibawah
mikroskop. Rotifera yang diamati di bawah mikroskop diambil secara acak di
media penelitian. Data yang diamati adalah perbandingan jumlah rotifera per
hari.
Universitas Sumatera Utara
Rancangan penelitian
Rancangan penelitian menggunakan Rancangan Acak Lengkap (RAL)
dengan 4 perlakuan media dan 3 ulangan. Perlakukan penelitian ini adalah berupa
jenis pakan yang diberikan pada rotifera. Jenis pakan yang akan dijadikan
perlakukan adalah fitoplankton, ampas tahu, ragi roti dan vitamin B kompleks.
Adapun perlakuan yang diberikan adalah :
Perlakuan A = Rotifera + Fitoplankton 16 ml
Perlakuan B = Rotifera + Ampas Tahu 2 gr
Perlakuan C = Rotifera + Ragi Roti 0,06 gr
Perlakuan D = Rotifera + Vitamin B kompleks 2 ml
Penempatan media di perlakuan dan ulangan disusun secara acak pada
tempat yang telah disediakan. Susunan media uji dapat dilihat pada Gambar 2.
C2
B2
A1
B3
D1
C1
A3
D3
B1
A2
D2
C3
Gambar 2. Posisi Media Uji
Persiapan
Sebelum melakukan penelitian terlebih dahulu rotifera dikembangkan
pada media ukuran 1 liter. Cara yang dilakukan dalam mengembangkan rotifera
Universitas Sumatera Utara
adalah bibit yang didapat di alam dikembangkan pada media yang telah
dipersiapkan. Media yang dipakai adalah air yang telah steril. Setelah itu rotifera
dimasukan kedalam media kultur. Selama pemeliharaan rotifera diberi pakan ragi
roti selama 10 hari. Pemberian ragi roti ini dilakukan karena praktis dan mudah
didapat. Setelah dianggap padat maka rotifera sudah dapat dimasukan kedalam
media uji.
Media uji yang dipakai adalah botol plastik yang transparan dengan
volume 300 ml. Sebelum rotifera uji dimasukan ke dalam media, terlebih dahulu
media dan batu aerasi serta slang aerasi terlebih dahulu dicuci bersih dan dibilas
dengan alkohol 70 %. Alkohol 70 % ini mempunyai kegunaan untuk bahan proses
Washing, Rehidrasi dan Dehidrasi (Yuliartati, 2011).
Pembilasan
dilakukan
untuk
menghilangkan
atau
mematikan
mikroorganisme yang mungkin masih menempel dan tidak bersih saat pencucian.
Setelah dianggap steril, maka botol dimasukan air sebanyak 250 ml, kemudian
media diberi aerasi lemah. setelah itu rotifera uji siap untuk ditebarkan.
Pelaksanaan
Media yang telah siap dimasukan rotifera uji sebanyak 100 ekor. Jumlah
rotifera uji dihitung dengan cara sampling dari volume yang di hitung. Rotifera
yang telah dimasukan kedalam media uji langsung diberi pakan sesuai dengan
perlakuan.
Jumlah pakan yang diberikan adalah fitoplankton sebanyak 16 ml, ampas
tahu sebanyak 2 gr, ragi roti sebanyak 0,06 gr dan vitamin B kompleks cair
sebanyak 2 ml. Pakan itu merupakan total keseluruhan jumlah yang diberikan
pada Brachionus sp selama hari pengamatan.
Universitas Sumatera Utara
Pengamatan kualitas air sudah dilakukan pada hari pertama dan
selanjutnya dilakukan dua hari sekali, dilakukan pada pagi hari.
Selama
penelitian media uji diberi aerasi agar tidak kekurangan oksigen.
Pengamatan
Pengamatan dilakukan dua hari sekali dalam 10 hari atau (5x pengamatan)
dimana setiap perlakuan diulang sebanyak 3 kali. Semua yang diamati akan
dicatat. Data-data yang akan dikumpulkan yaitu:
1.
Pertambahan populasi Brachionus sp
Pengamatan hanya melihat pertambahan jumlah dari populasi rotifera per
media uji. Cara menghitung rotifera adalah :
a. Diambil air media secara acak sebanyak tiga kali ulangan dengan
menggunakan pipet 0,5 ml.
b. Dikocok pipet yang berisi rotifera uji tersebut dengan gerakan seirama,
tujuannya adalah agar rotifera dalam larutan bercampur secara merata.
c. Diambil haemocytometer lengkap dengan cover glass. Kemudian ditetesi
satu tetes media yang ada di pipet ke dalam kamar hitung yang ada di
haemocytometer untuk pemeriksaan selanjutnya.
d. Kemudian lihat di bawah mikroskop, dalam kotak-kotak besar dan kotakkotak kecil. Dalam 1 kotak besar terdapat 16 kotak kecil. Hitunglah
jumlah rotifera yang terdapat dalam 80 kotak kecil (5 kotak besar).
2.
Pertumbuhan harian dan puncak populasi pertumbuhan Brachionus sp
3.
Kualitas air dan hubungan kualitas air terhadap pertumbuhan populasi
Brachionus sp
Kualitas air yang diamati hanya suhu dan derajat keasaman. Kualitas
air di amati setiap pagi hari dan diukur selama dua hari sekali. Kualitas air
Universitas Sumatera Utara
akan mendukung pertumbuhan. Jika kualitas air terhitung dalam keadaan
baik maka pertumbuhan dihasilkan akan baik juga.
Analisis Data
Hasil pengamatan pertumbuhan rotifera dari masing-masing perlakukan di
tabulasi kedalam bentuk tabel secara menyeluruh, sehingga dapat mengetahui
puncak dari pertumbuhan rotifera dari masing-masing perlakuan.
Data yang dikumpul kemudian dianalisis dengan uji statistik Anova
menggunakan program SPSS 17.00. Uji statistik ini untuk mengetahui perbedaan
dari masing-masing perlakuan. Untuk membahas perlakuan ini maka hasil analisis
ini akan dideskripsikan dengan data pendukung lain.
Universitas Sumatera Utara
HASIL DAN PEMBAHASAN
Hasil
1. Populasi Brachionus sp
Berdasarkan hasil penelitian didapatkan perbedaan pertumbuhan dari Brachionus
sp terhadap jenis pakan. Data perbedaan populasi Brachionus sp disajikan pada
Gambar 3. Pertumbuhan yang paling tinggi pada Brachionus sp terdapat pada
perlakuan ampas tahu dengan jumlah 201 ekor/pengamatan, sedangkan yang
paling rendah terdapat pada perlakuan pakan fitoplankton dengan jumlah 19
ekor/pengamatan.
Gambar 3. Perbandingan Populasi Brachionus sp antar Perlakuan
2. Pertumbuhan Harian Brachionus sp
Hasil pengamatan selama penelitian, terlihat ada pertambahan populasi
dari tiap perlakukan. Pertambahan puncak populasi Brachionus sp terjadi pada
hari ke delapan. Data puncak populasi pertumbuhan disajikan pada Gambar 4
berikut ini.
Universitas Sumatera Utara
Pertumbuhan tiap perlakukan tidak sama, namun yang tertinggi terdapat
pada ampas tahu, kemudian diikuti dengan perlakuan vitamin B komplek, ragi roti
dan yang terendah pada perlakuan fitoplankton.
Gambar 4. Laju Pertumbuhan Harian Brachionus sp
3. Kualitas Air
Kualitas air sangat mendukung untuk pertumbuhan organisme air.
Kualitas air yang diamati adalah suhu dan derajad keasaman. Untuk mengetahui
suhu air keasaman air selama penelitian disajikan pada Tabel 2.
Tabel 2. Kualitas Air Selama Penelitian
Perlakuan
Hari
Pengamatan
Awal
PI
P II
P III
P IV
PV
Kisaran
kualitas air
A
Suhu
29
29
30
30
30
31
29 – 31
B
pH
7.2
7.6
7.8
7.8
7.9
C
D
7.9
Suhu
29
29
30
30
30
31
pH
7,3
7.5
7.5
7.6
7.7
7.8
Suhu
29
29
30
30
30
31
pH
7.4
7.5
7.7
7.7
7.8
7.8
Suhu
29
29
30
30
31
31
pH
4.9
5.7
7,3
7.5
7,8
7.8
7.2 - 7.9
29 – 31
7.3 - 7.6
29 – 31
7,4 - 7,8
29 - 31
4,9 - 7,8
Universitas Sumatera Utara
Pembahasan
Populasi Brachionus sp
Hasil pengamatan terlihat ada perbedaan antar perlakuan, pertumbuhan
yang terbaik adalah pada perlakuan B (ampas tahu), kemudian di ikuti oleh
perlakuan D (vitamin B kompleks), perlakuan C (ragi roti) dan yang terendah
adalah pada perlakuan A (fitoplankton). Terjadinya perbedaan dari masingmasing perlakuan disebabkan oleh pengaruh unsur nutrient yang ada dalam
media. Pakan yang mengunakan ampas tahu merupakan jenis pakan yang terbaik
bagi pertumbuhan rotifera (disajikan pada lampiran 5).
Populasi dari masing-masing perlakuan adalah perlakuan ampas tahu
mencapai 201 ekor/pengamatan, perlakuan vitamin B kompleks mencapai 159
ekor/pengamatan, perlakuan ragi roti mencapai 100 ekor/pengamatan. Sedangkan
populasi terendah terdapat pada perlakuan fitoplankton dengan jumlah populasi
hanya sebanyak 19 ekor/pengamatan.
Jika dilihat dari pertumbuhan populasi rotifera (Brachionus sp) pakan
yang menggunakan ampas tahu jauh lebih bagus jika dibandingkan dengan
pelakuan lainnya. Tingginya pertumbuhan populasi dengan mengunakan ampas
tahu dikarenakan oleh komposisi nutrient yang kandung ampas tahu masih tinggi.
Ditinjau dari komposisi kimianya ampas tahu dapat digunakan sebagai
sumber protein. Sesuai dengan laporan Departemen Kelautan dan Perikanan RI
(2005) menyatakan bahwa kandungan ampas tahu masih mengandung protein
8,66%; lemak 3,79%; air 51,63% dan abu 1,21%. Unsur ini akan dimanfaatkan
oleh makluk hidup untuk pertumbuhan. Kemudian dijelaskan lagi oleh Prabowo
(1983) diacu oleh Noor (2012) ampas tahu lebih tinggi kualitasnya dibandingkan
Universitas Sumatera Utara
dengan kacang kedelai, protein ampas tahu mempunyai nilai biologis lebih tinggi
dari pada protein biji kedelai dalam keadaan mentah, karena bahan ini berasal dari
kedelai yang telah dimasak. Widjatmoko (1996) menambahkan bahwa ampas
tahu juga mengandung unsur-unsur mineral mikro maupun makro yaitu untuk
mikro; Fe 200-500 ppm, Mn 30-100 ppm, Cu 5-15 ppm, Co kurang dari 1 ppm,
Zn lebih dari 50 ppm. Ampas tahu dalam keadaan segar berkadar air sekitar 84,5
% dari bobotnya.
Pada pakan jenis ragi roti yang diberikan kepada rotifera ini belum
memberikan pertumbuhan yang sangat optimal. Sebenarnya menurut Wanusuari
1993 diacu oleh Pratana (2009) Ragi roti dapat membantu penguraian karbohidrat
didalam saluran pencernaan juga merangsang kerja dari amylase dan sebagai
protein. Ragi roti juga dapat berperan sebagai probiotik dan menurunkan aflatoksi
pada pakan. Namun aktivitas ragi dapat bekerja baik bila dikombinasikan dengan
pakan lain seperti bakteri, pupuk dan fitoplankton. Menurut Dahril (1996) bahwa
ragi roti ini memiliki nilai gizi yang dihasilkannya rendah dan tidak mendukung
pertumbuhan. Bahkan rotifer ini tidak ada yang mampu bertelur jika tidak
dikombinasikan dengan jenis pakan lain seperti bakteri. Oleh karena itu
dianjurkan agar keberadaan ragi roti sebagai pakan rotifera harus diseimbangkan
dengan jenis pakan lain agar memiliki perkembangan yang baik dan ideal untuk
hidup Brachionus sp ini.
Pakan vitamin B kompleks yang diberikan pada rotifera mengalami
pertumbuhan yang juga belum dikatakan optimal. Padahal vitamin merupakan
asupan penting bagi pertumbuhan. Menurut Menurut Poedjiadi (1994) dalam
Rahmadhani (2008) Vitamin adalah senyawa organik tertentu yang dibutuhkan
Universitas Sumatera Utara
dalam jumlah kecil dalam diet pakan tetapi esensial untuk reaksi metabolisme
dalam sel dan penting untuk melangsungkan pertumbuhan normal serta
memelihara kesehatan. Pada golongan ini adalah, vitamin B komplek (tiamin,
rivoflavin, niasin, asam pantotenat, piridoksin, biotin, asam folat dan kobalamin)
dan vitamin C. Namun Keberadaan vitamin B kompleks ini dapat serasi jika
diseimbangkan dengan jenis pakan lain misalnya ragi roti. Karena kondisi yang
diharapkan bukan sebagai pakan utama tapi sebagai asupan vitamin untuk
pertumbuhan rotifera. Seperti yang diungkapkan Dahril (1996), bahwa vitamin
bukan merupakan makanan bagi rotifer, namun rotifer sangat membutuhkan
vitamin bagi pertumbuhan dan kelangsungan hidupnya.
Pertumbuhan rotifera pada pakan fitoplankton sangat rendah, namun
tergolong masih bisa tumbuh hidup. Hal ini disebabkan kurangnya kepadatan
fitoplankton yang diberikan kepada rotifera. Kepadatan fitoplankton juga sangat
mempengaruhi pertumbuhan rotifera ini. Seperti yang dikatakan Dahril (1996)
bahwa kepadatan fitoplankton dapat mempengaruhi pertumbuhan rotifer. Akan
tetapi apabila kepadatan fitoplankton telah mencapai batas optimal, maka
pertumbuhan rotifera akan tetap.
Sesuai pendapat yang telah disampaikan diatas, maka rendahnya
pertumbuhan Rotifera (Brachionus sp) pada perlakuan fitoplankton disebabkan
oleh populasi fitoplanktonnya masih rendah sehingga asupan pakan tidak
terpenuhi,
begitu juga dengan perlakuan ragi roti, karena ragi roti dapat
menghambat pembentukan telur sehingga Brachionus sp tidak dapat berkembang
biak. Sedangkan pada perlakuan vitamin B kompleks, disebabkan oleh vitamin
bukanlah asupan makan utama dari Brachionus sp akan tetapi merupakan salah
Universitas Sumatera Utara
satu vitamin yang dibutuhkan dalam pakan. Akibatnya Brachionus sp tidak dapat
berkembang secara baik.
Secara keseluruhan hasil analisis menunjukan bahwa F tabel lebih kecil
dari pada F hitung sehingga tidak terdapat perbedaan yang nyata dari perlakuan,
namun setelah diuji lebih dalam dengan perbandingan antar perlakuan maka
hasilnya sebagai berikut:
terdapat perbedaan yang nyata antar perlakuan
fitoplankton dan ampas tahu, fitoplankton dan vitamin B kompleks, sedangkan
antara perlakuan fitoplankton dengan ragi roti, perlakuan ampas tahu dengan ragi
roti, perlakuan ragi roti dengan vitamin B kompleks dan perlakuan vitamin B
kompleks dengan ampas tahu tidak terdapat perbedaan yang nyata. Hasil analisis
disajikan pada Lampiran 6 dan Lampiran 7.
Hasil analisis menunjukan bahwa penggunaan ampas tahu dan vitamin B
komplek jauh lebih baik jika dibandingkan dengan pengunaan fitoplankton dan
ragi roti. Jadi dapat disimpulkan bahwa untuk membudidayakan Brachionus sp
sebaiknya mengunakan pakan yang berasal dari ampas tahu. Hal ini disebabkan
selain pertumbuhannya lebih cepat juga mudah didapat serta biayanya murah.
2.
Pertumbuhan Harian Brachionus sp
Selama pengamatan puncak pertumbuhan populasi terjadi pada hari ke-8.
Jika diamati pada hari ke dua pertumbuhannya masih lambat, sedangkan pada hari
ke-4 pertumbuhan perlakuan ampas tahu dan vitamin B kompleks sudah mulai
naik lebih tinggi jika dibandingkan dengan perlakuan fitoplankton dan ragi roti.
Walau terjadi kenaikan pada perlakuan vitamin B kompleks pada hari ke-4,
namun pada hari ke-6 terjadi penurunan yang tajam, kemudian pada hari ke-8
terjadi kenaikan yang lebih tajam, begitu juga dengan perlakuan ampas tahu dan
Universitas Sumatera Utara
ragi roti, sedangkan perlakuan fitoplankton masih rendah jika dibandingan dengan
perlakuan lainnya ( disajikan pada Gambar 4 ).
Pertambahan populasi rotifera sudah tampak pada hari ke-2 sedangkan
puncaknya terjadi pada hari ke-8. Hal ini disebabkan adanya batas masa
pertumbuhan dari rotifer ini. Menurut Dahril (1996) pada penelitian yang dia
lakukan bahwa Brachionus Calyciflorus yang dipelihara selama delapan hari
dengan kepadatan yang tertinggi pada hari kedelapan.
Sutomo dkk. (2007)
menambahkan hasil penelitian yang dilakukan bahwa pertumbuhan rotifer
Brachionus rotundiformis yang diperkaya dari jenis pakan mikroalga yang
berbeda terjadi puncak populasi pada hari ke-7 diikuti pada hari ke-8.
Pertumbuhan yang baik terjadi pada pakan jenis ampas tahu. Ampas tahu
yang diberikan kepada rotifera (Brachionus sp) yang berupa ampas tahu dalam
keadaan basah berjumlah 2 gr. Untuk pemberian makanan dilakukan secara rutin
selama 10 hari. Jumlah populasi rotifera dari hari ke-2 sampai ke-8 mengalami
perkembangan yang sangat baik (disajikan pada Gambar 4).
Ampas tahu
merupakan produk kedelai yang kemungkinan sifat proteinnya sama dengan
protein kedelai walaupun telah banyak mengalami perubahan. Ampas tahu itu
memiliki kandungan protein. Menurut koeswara (1992) diacu oleh Yulisnawati
(2006) Protein kedelai itu sebagian besar adalah Globulin, protein ini tidak larut
dalam air di sekitar titik isoelektriknya.
Pada pakan vitamin B kompleks ini terjadi proses pertumbuhan yang
mengalami penaikan dan penurunan. Pada Hari ke-2 jumlahnya sedikit kemudian
pada hari ke-4 meningkat, pada hari ke-6 menurun kembali dan pada hari ke-8
kembali meningkat. Hal itu disebabkan pada cara pemberian makan yang terlalu
Universitas Sumatera Utara
berlebihan sehingga menjadi racun bagi perkembangan Brachionus sp ini. Pada
hari ke empat dilakukan pemberian vitamin B komplek,
diduga pemberian
vitamin melebihi dosis karena mungkin di dalam media masih banyak namun
karena perlakuan maka tetap diberikan. Seperti yang diungkapkan Dahril (1996)
apabila vitamin diberikan dalam konsentrasi tinggi dapat menimbulkan keracunan
bagi rotifera. Begitu pula dengan vitamin B kompleks yang tidak dicampur
dengan jenis pakan lain akan terlalu larut dalam kondisi yang asam dan
berindikasi buruk bagi rotifera.
Pemberian pakan ragi roti belum berkembang dengan baik karena peran
ragi roti tidak bisa bekerja sendiri harus ditambahi dengan pakan lain seperti
bakteri, pupuk dan fitoplankton. Padahal Kandungan yang ada didalam ragi roti
ini sangat banyak. Menurut wanusuria (1993) Ragi roti membantu dalam
penguraian karbohidrat didalam saluran pencernaan juga merangsang kerja dari
amylase dan sebagai protein sehingga akan memperkaya kandungan protein.
Menurut Dahril (1996) tidak ada satu pun yang mampu melepaskan telur namun
jika ragi roti dikombinasikan dengan bakteri atau dengan fitoplankton di kolam
peliharaan dapat memberikan pertumbuhan yang baik bagi rotifera.
Pada pakan perlakuan fitoplankton pertumbuhan populasi Brachionus sp
masih rendah. Hal ini diduga akibat kepadatan fitoplankton sebagai pakan masih
rendah, sehingga berpengaruh terhadap perkembangan populasi rotifera. Namun
walau dalam jumlah rendah dan pertumbuhannya lambat puncak populasi terjadi
pada hari ke-8. Kepadatan fitoplankton dalam media akan mempengaruhi
pertumbuhan populasi Brachionus sp.
Universitas Sumatera Utara
Rendahnya pertumbuhan pada awal penelitian disebabkan karena pada
awalnya jumlah populasi masih sedikit dan Brachionus sp masih melakukan
adaptasi, sehingga belum melakukan perkembangbiakan, namun seiring dengan
pertambahan waktu dan sudah beradaptasinya Brachionus sp dengan media maka,
Brachionus sp akan melakukan pemijahan. Menurut Dahril (1996) keberadaan
rotifer di suatu perairan sangat ditentukan oleh fekunditas. Fekunditas yang
dimaksud disini adalah kemampuan satu individu rotifer untuk menghasilkan
telur atau keturunan. Selama masa hidupnya angka fekunditas untuk jenis
Brachionus Calyciflorus adalah 29,7 butir untuk amiktik dan 12,5 butir untuk
induk miktik. Bagi betina amiktik dari jenis Brachionus Plicatilis ditemukan
fekunditas sebesar 21.2 butir, betina miktik menghasilkan 21,8 butir telur haploid
dan telur dorman 2,8 butir. Balai Penelitian dan Pengembangan Laut (2005)
menjelaskan bahwa daur hidup Brachionus Plicatilis unik, dimana dalam keadaan
normal Brachionus Plicatilis berkembang secara parthogenesis (bertelur tanpa
kawin). Brachionus Plicatilis betina yang amiktik akan menghasilkan telur yang
berkembang amiktik pula. Namun dalam keadaan yang tidak normal, misalnya
terjadi perubahan salinitas, suhu air, intensitas cahaya, dan kualitas pakan maka
telur Brachionus Plicatilis amiktik tadi dapat menetas menjadi betina miktik.
Betina miktik ini kemudian akan menghasilkan telur yang kemudian akan
berkembang menjadi hewan jantan. Bila Brachionus Plicatilis jantan dan betina
miktik kawin maka akan menghasilkan telur kista. Telur kista akan dapat menetas
lagi bila perairan sudah kembali normal.
Adapun puncak populasi terjadi pada hari kedelapan ini terbukti dengan
penelitian Dahril (1996) terhadap Brachionus Calyciflorus yang dipelihara selama
Universitas Sumatera Utara
delapan hari dengan kepadatan yang tertinggi pada hari kedelapan mencapai 976,8
individu/ml dan jumlah telur yang dihasilkan mencapai 124,2 butir/ml.
3.
Kualitas Air
Kualitas air mempunyai peranan penting terhadap laju perkembangan
makhluk hidup, terutama pada rotifera ini. Parameter yang diamati pada kualitas
air ini yaitu suhu dan pH.
Hasil pengamatan untuk parameter suhu air, kisaran yang diperoleh masih
dalam ambang optimal bagi pertumbuhan rotifera (Brachionus sp) yakni dalam
kisaran 29 – 31 0C. seperti yang dikatakan Hirayama dan Kusono diacu oleh
Dahril (1996), bahwa diperkirakan suhu optimal untuk pertumbuhan Brachionus
berkisar antara 25 s/d 30
0
C. sedangkan pada suhu 10 s/d 150 C rotifera tidak
dapat bergerak tumbuh secara optimal. pH yang diperoleh pada pengamatan juga
masih dalam kisaran yang baik untuk pertumbuhan rotifera. Kisaran pH yakni
untk fitoplankton 7,7 – 7,9, untuk pakan jenis ampas tahu yaitu 7,3 – 7,6, untuk
pakan ragi roti yakni 7,4 – 7,8 dan untuk pakan vitamin B komplek yaitu 4,9 –
7,8. Untuk semua media perlakuan dapat dikatakan baik. Untuk lebih jelas
hubungan kualitas air terhadap populasi pertumbuhan rotifera (Brachionus sp)
disajikan pada Gambar 5 untuk pengukuran suhu dan untuk pengukuran pH pada
Gambar 6.
Universitas Sumatera Utara
31.5
2.50
40.00
35.00
30.00
25.00
20.00
15.00
10.00
5.00
0.00
31.5
31
2.00
31
30
1.50
30.5
29.5
1.00
30.5
30
29
29.5
29
0.50
28.5
28
0.00
H-0
H-2
H-4
H-6
H-8
28.5
28
H-10
H-0
H-2
H-4
H-6
H-8
H-10
A
B
Suhu
Jumlah Rotifera
Suhu
Jumlah Rotifera
5.a
5.b
31.5
35.00
31
30.00
30.5
25.00
30
20.00
29.5
15.00
29
10.00
28.5
5.00
28
31.5
31
30.5
30
29.5
29
28.5
28
0.00
H-0
H-2
H-4
H-6
35.00
30.00
25.00
20.00
15.00
10.00
5.00
0.00
H-0
H-2
H-4
H-6
H-8
H-10
H-8 H-10
D
C
Suhu
Jumlah Rotifera
5.c
Suhu
Jumlah Rotifera
5.d
Gambar 5. Hubungan Suhu Terhadap Populasi Brachionus sp Pada Setiap
Perlakuan
Gambar 5.a untuk perlakuan fitoplankton terjadi peningkatan populasi
pada hari ke-8 dengan suhu adalah 300 C.
Pada Gambar 5.b untuk perlakuan
ampas tahu terjadi peningkatan populasi dengan suhu 300 C . Pada Gambar 5.c
juga terjadi peningkatan populasi dengan suhu 300 C . Selanjutnya untuk Gambar
5.d juga terjadi puncak populasi pada hari ke-8 dengan suhu 300 C. Suhu yang
baik akan memberikan perkembangan yang baik bagi rotifera ini. Untuk itu pada
pertumbuhan Brachionus sp yang baik dan cepat berkembang terjadi pada suhu
optimal 300C. Menurut Isnansetyo & Kurniastuti (1995) Brachionus Plicatilis
bersifat euthermal pada suhu 150 C masih bisa tumbuh, tapi tidak bisa beristirahat.
Universitas Sumatera Utara
Kenaikan suhu antara 15-350 C akan menaikkan laju reproduksinya. Kisaran suhu
antara 22-300 C merupakan kisaran suhu optimum untuk pertumbuhan dan
reproduksi.
8
2.50
7.8
2.00
7.6
1.50
7.4
1.00
7.2
0.50
7
6.8
0.00
H-0
H-2
H-4
H-6
H-8
7.9
7.8
7.7
7.6
7.5
7.4
7.3
7.2
7.1
7
40.00
35.00
30.00
25.00
20.00
15.00
10.00
5.00
0.00
H-10
H-0
H-2
H-4
A
pH
pH
6.b
7.9
7.8
7.7
7.6
7.5
7.4
7.3
7.2
35.00
30.00
25.00
20.00
15.00
10.00
5.00
0.00
H-4
H-6
H-8 H-10
35.00
30.00
25.00
20.00
15.00
10.00
5.00
0.00
9
8
7
6
5
4
3
2
1
0
H-0
H-2
C
pH
Jumlah Rotifera
6.c
H-10
Jumlah Rotifera
6.a
H-2
H-8
B
Jumlah Rotifera
H-0
H-6
H-4
H-6
H-8 H-10
D
Jumlah Rotifera
pH
6.d
Gambar 6. Hubungan pH dengan Pertumbuhan Brachionus sp pada Setiap
Perlakuan
Jika diamati pada grafik diatas bahwa kita lihat pada Gambar 6.a
pertumbuhan puncak sudah dimulai pada hari ke-6 dan hari ke-8 dengan keadaan
pH 7,7 – 7,8.
Pada Gambar 6.b untuk perlakuan ampas tahu pH pada
pertumbuhan puncak yang sudah dimulai hari ke-6 dan hari ke-8 yakni 7,6 -7,7.
Pada Gambar 6.c untuk perlakuan ragi roti sudah terjadi pertumbuhan meningkat
Universitas Sumatera Utara
pada hari ke 6 dan di puncak populasi terjadi pada hari ke-8 dengan pH 7,7 – 7,8.
Pada Gambar D peningkatan populasi pada hari ke-8 dengan pH 7,8. Penurunan
yang terjadi pada hari ke-6 bukan faktor pH yang buruk akan tetapi karena
pemberian dosis pakan yang diberikan terlalu banyak. Terjadi pertumbuhan itu
didukung oleh adanya pengaruh pH air terhadap pertumbuhan populasi
Brachionus. Pertumbuhan populasi akan terjadi jika pH mendekati normal. Hal
itu terjadi pada hari ke 6 dan ke 8 pertumbuhan Brachionus terjadi baik dengan
kisaran pH 7-7,8. Hal ini Sesuai yang diungkapkan Schluler dan Groeneweg
(1981) diacu oleh Dahril (1996) yaitu populasi rotifera tertinggi dapat ditemukan
dalam keadaan pH 6 s/d 8. Sedangkan populasi rotifera semakin menurun apabila
dalam keadaan pH dibawah 4,5 dan diatas 9,5. Oleh karena itu didalam
pengamatan kisaran pH baik bagi lingkungan hidup rotifera.
Universitas Sumatera Utara
KESIMPULAN DAN SARAN
Kesimpulan
1.
Pakan yang cocok untuk pertumbuhan rotifera (Brachionus sp) yakni ampas
tahu dengan kadar protein yang tinggi dengan jumlah populasi paling tinggi
mencapai 201 ekor/pengamatan.
2.
Waktu puncak pertumbuhan rotifera (Brachionus sp) untuk setiap masingmasing perlakuan pakan yang diberikan yakni terjadi pada hari ke-8
(delapan).
Saran
1.
Rotifera (Brachionus sp) dapat tumbuh optimal dengan pakan ampas tahu.
Oleh sebab itu para pembudidaya sudah bisa untuk membudidayakan rotifera
ini dengan ekonomis.
2.
Sebaiknya dilakukan penelitian populasi Brachionus sp didukung dengan
kualitas air yang lebih banyak lagi.
Universitas Sumatera Utara
TINJAUAN PUSTAKA
Deskripsi Umum Rotifera
Rotifera
merupakan sejenis organisme air yang memiliki klasifikasi
menurut Ruutner dan Kolisko (1974) diacu oleh Dikkurahman (2003) sebagai
berikut
Phylum
: Rotifera
Kelas
: Monogonta
Ordo
: Ploima
Famili
: Brachionidae
Sub Famili
: Brachioninae
Genus
: Brachionus
Tubuh rotifera terbagi menjadi tiga bagian, yaitu: kepala (head),
badan (trunk), dan kaki atau ekor mot. Bagian kepala dilengkapi dengan silia
yang kelihatan seperti spiral
dan
disebut korona
yang
berfungsi
untuk
memasukkan makanan ke dalam mulut. Bentuk badan bulat atau silindris, pada
bagian badan (trunk) terdapat tiga buah tonjolan kecil yaitu sebuah atau sepasang
antena dorsal dan 2 buah antenna lateral. Pada ujung antenna biasanya terdapat
bulul-bulu sebagai alat indera. Brachionus merupakan rotifera yang paling banyak
dibudidayakan sebagai makanan alami untuk larva ikan dan udang. Di daerah
tropis Brachionus mulai bertelur pada umur 28 jam, dan setelah 24 jam telur
menetas. Selama hidupnya yang 11 hari seekor Brachiounus menghasilkan 20
butir telur (Suwignyo dkk., 2005).
Universitas Sumatera Utara
Rotifera merupakan salah satu golongan zooplankton yang banyak
dimanfaatkan dalam bidang pembenihan, terutama dimanfaatkan sebagai
biokapsul alami bagi larva berbagai fauna laut. Hal itu disebabkan oleh ciri
biologisnya, antara lain ukurannya yang relatif kecil (100-300 µm) sehingga
cocok dengan bukaan mulut larva dari kebanyakan fauna laut, bersifat planktonis
dengan laju renang yang lamban sehingga mudah ditangkap oleh larva, dan
memiliki laju reproduksi dan nutrisi yang tinggi (Sutomo dkk., 2007).
Penggunaan rotifera sebagai pakan alami mempunyai beberapa
keuntungan, diantaranya adalah :
1.
Rotifera adalah hewan yang sangat toleran terhadap kondisi basa, asam, dan
kondisi air terkontaminasi.
2.
Dapat hidup di berbagai kedalaman air, baik itu dipermukaan, tengah
maupun dasar perairan.
3.
Merupakan pengganti Artemia sp. yang mahal harganya.
4.
Mengurangi peranan fitoplankton terutama Chaetoceros calcitrans, yang
relatif tidak tahan terhadap perubahan kondisi cuaca, terutama musim hujan.
Rotifera merupakan salah satu jenis makanan alami (live food) bagi
kebanyakan larva hewan air. Rotifera memiliki berbagai keunggulan antara lain
ukurannya yang kecil, berkadar gizi tinggi dan disukai ikan (Snell dkk 1987 diacu
oleh Dahril 1996).
Untuk mempertahankan kelangsungan hidup, setiap makhluk memiliki
kemampuan untuk berkembang biak. Rotifer yang termasuk dalam ordo Ploima
berkembang biak dengan dua cara yaitu : dengan cara kawin dan tidak kawin atau
partthenogenesis. Untuk menetukan apakah rotifer berada dalam kondidi baik atau
Universitas Sumatera Utara
tidak, ada dua indikator yang biasanya dipakai yaitu aktivitas renang dan rasio
telur yang dihasilkan (jumlah telur per satu ekor betina) (Snell dkk 1987 diacu
oleh Dahril 1996). Kecepatan renang rotifer ditentukan melalui pengukuran
kecepatan gerak rotifer melewati garis-garis di wadah ukur.
Daur hidup Brachionus Plicatilis unik, dimana dalam keadaan normal
Brachionus Plicatilis berkembang secara parthogenesis (bertelur tanpa kawin).
Brachionus Plicatilis betina yang amiktik akan menghasilkan telur yang
berkembang amiktik pula. Namun dalam keadaan yang tidak normal, misalnya
terjadi perubahan salinitas, suhu air, intensitas cahaya, dan kualitas pakan maka
telur B. Plicatilis amiktik tadi dapat menetas menjadi betina miktik. Betina miktik
ini kemudian akan menghasilkan telur yang kemudian akan berkembang menjadi
hewan jantan. Bila Brachionus Plicatilis jantan dan betina miktik kawin maka
akan menghasilkan telur kista. Telur kista akan dapat menetas lagi bila perairan
sudah kembali normal (Balai Penelitian dan Pengembangan Laut 2005)
Pada awalnya betina miktik menghasilkan 1-6 telur kecil. Betina miktik
adalah betina yang dapat dibuahi. Telur yang dihasilkan betina miktik akan
menetas menjadi hewan jantan. Jantan ini akan membuahi betina miktik dan
beristirahat. Telur ini mengalami masa istirahat sebelum menetas menjadi betina
miktik. Betina amiktik adalah betina yang tidak dapat dibuahi. Dari betina amiktik
yang terjadi ini maka reproduksi seksual akan terjadi lagi. Betina miktik hanya
akan menghasilkan telur miktik demikian juga sebaliknya dengan betina amiktik
akan menghasilkan telur amiktik. Antara betina miktik dan betina amiktik tidak
dapat dibedakan secara eksternal (Isnansetyo dan Kurniastuti, 1995).
Universitas Sumatera Utara
Walaupun banyak literatur yang menerangkan adanya perubahan antara
betina amiktik menjadi betina miktik ini, namun pembiakan secara sexual belum
banyak diketahui secara jelas. Untuk beberapa genus dari famili Brachionidae
diketahui bahwa kondisi yang menentukan seekor betina menjadi amiktik atau
miktik terjadi beberapa saat sebelum telur mulai membelah. Hal ini menunjukkan
bahwa yang mengontrol produksi betina miktik ini pada umumnya adalah kondidi
lingkungan (faktor luar) dan bukan faktor dalam semata (Dahril, 1996).
Pada umumnya berbagai faktor lingkungan mempunyai pengaruh terhadap
pertumbuhan populasi Brachionus. Faktor lingkungan yang dimaksud antara lain:
suhu, derajat keasaman dan salinitas. Pada suhu 15°C Brachionus plicatilis masih
dapat tumbuh, tetapi tidak dapat bereproduksi, sedangkan pada suhu di bawah
10°C akan terbentuk telur istirahat. Kenaikan suhu antara 15-35°C akan
menaikkan laju reproduksinya. Kisaran suhu antara 22-30°C merupakan kisaran
suhu optimum untuk pertumbuhan dan reproduksi. Keasaman air turut
mempengaruhi kehidupan rotifera. Rotifera Brachionus plicatilis ini masih dapat
bertahan hidup pada pH 5 dan pH 10, sedangkan pH optimum untuk pertumbuhan
dan reproduksi berkisar antara 7,5-8,0 (Isnansetyo & Kurniastuty, 1995).
Populasi rotifera tertinggi dapat ditemukan dalam keadaan pH 6 s/d 8.
Sedangkan populasi rotifera semakin menurun apabila dalam keadaan pH
dibawah 4,5 dan diatas 9,5 (Schluler dan Groeneweg 1981 dalam Dahril 1996).
Rotifera termasuk salah satu jenis hewan pemakan segala (omnivora)
yang makan dengan cara menyaring (filter feeder) makanan dapat berupa jasat
renik seperti fitoplankton, ragi dan bakteri yang tersuspensi dalam air. Rotifera
dapat dibudidayakan secara massal di labolatorium ataupun di balai benih
Universitas Sumatera Utara
bersamaan dengan larva peliharaan. Banyak jenis rotifer yang dapat dijadikan
sebagai makan alami larva dan anak ikan (Dahril, 1996).
Faktor yang mempengaruhi pertumbuhan populasi Rotifer ialah faktor
internal yang (genetik) dan faktor eksternal antara lain faktor pakan. Pengaruh
faktor seperti suhu dan salinitas terhadap pertumbuhan populasi rotifera telah
banyak diteliti. Sedangkan untuk pakan, beberapa hormon mikroalga sebagai
pakan rotifera sebagian telah diteliti (Ozhan dan Oguzukurt, 2008).
Fitoplankton
Fitoplankton merupakan kelompok yang memegang peranan sangat
penting dalam ekosistem air, karena kelompok ini dengan adanya kandungan
klorofil mampu melakukan fotosintesis. Proses fotosintesis pada ekosistem air
yang dilakukan oleh fitoplankton (produsen) merupakan sumber nutrisi utama
bagi kelompok organisme air lainnya yang membentuk rantai makanan. Dalam
ekosistem air hasil dari fotosintesis yang dilakukan oleh fitoplankton bersama
dengan tumbuhan air lainnya disebut sebagai produktivitas primer (Barus, 2004).
Fitoplankton atau mikroalge mempunyai peran mensistesa bahan organik
dalam lingkungan perairan. Di perairan alami mikroalgae dominan memberikan
kontribusi untuk prodiksi biomassa dalam sistem perairan laut, estuari, dan
sungai. Potensi phytoplankton sebagai pakan alami telah dikenali pada upaya
kultivasi benih udang dan ikan di hatchery. Jenis-jenis phytoplankton pakan alami
seperti Skeletonema costatum, Dunaliella sp, Tetraselmis chuii, Chlorella sp.
Chaetoceros calcitrans dan lain – lain telah dikenali sebagai pakan potensial pada
tahap-tahap awal ( Erlina dkk., 2004).
Universitas Sumatera Utara
Ragi Roti
Ragi roti atau biasanya disebut dengan ‘Yeast’ merupakan semacam
tumbuh-tumbuhan bersel satu yang tergolong dalam keluarga cendawan. Ragi roti
dapat membentu penguraian karbohidrat didalam saluran pencernaan juga
merangasang kerja dari amylase dan sebagai protein. Ragi roti juga dapat berperan
sebagai probiotik dan menurunkan aflatoksi pada pakan (Wanusuari 1993 diacu
oleh Pranata 2009).
Ragi roti terdiri dari 2 jenis yang ada dipasaran yaitu ragi padat dan ragi
kering. Jenis ragi kering ini ada yang berbentuk butiran kecil-kecil dan ada juga
yang berupa bubuk halus (Roosharo 2006 dalam Pranata 2009 ).
Ragi roti selain dapat membantu penguraian karbohidrat didalam saluran
pencernaan juga merangsang kerja dari amylase dan sebagai protein sehingga
akan memperkaya kandugan protein dari Brachionus plicatilis. Fungsi lain ragi
roti adalah untuk membentuk zat-zat anti bakteri dan dalam pembentukan asam
amino (Chilmawati dan Suminto, 2009).
Ampas Tahu
Ampas tahu merupakan limbah padat yang diperoleh dalam proses
pembuatan tahu dari kedelai. Sedangkan yang dibuat tahu adalah cairan atau susu
yang kedelai yang lolos dari kain saring. Ditinjau dari komposisi kimianya ampas
tahu dapat digunakan sebagai sumber protein. Kandungan protein dan lemak pada
ampas tahu yang cukup tinggi namun kandungan itu berbeda tiap tempat dan cara
pemrosesnya. Terdapat laporan bahwa bahwa kandungan ampas tahu masih
mengandung protein 8,66%; lemak 3,79%; air 51,63% dan abu 1,21%, maka
Universitas Sumatera Utara
sangat memungkinkan ampas tahu diolah menjadi makanan ternak (Departemen
Kelautan dan Perikanan RI, 2005)
Ampas tahu merupakan limbah dalam bentuk padatan dari bubur kedelai
yang diperas sebagai sisa dalam pembuatan tahu. Ampas tahu dapat dijadikan
sebagai sumber nitrogen pada media fermentasi dan dapat dijadikan sebagai bahan
pakan sumber protein karena mengandung protein kasar cukup tinggi yaitu
27,55% dan kandungan zat nutrien lain adalah lemak 4,93%, serat kasar 7,11%,
BETN 44,50% (Nuraini dkk 2009 dalam Fernando 2011) .
Ampas tahu lebih tinggi kualitasnya dibandingkan dengan kacang kedelai,
protein ampas tahu mempunyai nilai biologis lebih tinggi dari pada protein biji
kedelai dalam keadaan mentah, karena bahan ini berasal dari kedelai yang telah
dimasak ( Prabowo 1983 diacu oleh Noor 2012)..
Vitamin B Kompleks
Vitamin adalah senyawa organik tertentu yang dibutuhkan dalam jumlah
kecil dalam diet seseorang tetapi esensial untuk reaksi metabolisme dalam sel
dan penting untuk melangsungkan pertumbuhan normal serta memelihara
kesehatan. Vitamin dibagi ke dalam dua golongan, golongan pertama disebut
prakoenzim, dan bersifat larut dalam air, tidak disimpan tubuh, tidak beracun,
diekresikan dalam urine. Yang termasuk golongan ini adalah, vitamin B komplek
(tiamin, rivoflavin, niasin, asam pantotenat, piridoksin, biotin, asam folat dan
kobalamin) dan vitamin C (Poedjiadi 1994 dalam Rahmadhani 2008).
Vitamin B komplek sangat beragam, didalamnya yaitu terdapat thiamin,
asam phantotenat, ribovlafin, pyridoxin dan lain-lain. Vitamin dianggap penting
karena
diimplikasikan
dapat
membantu
dalam
menghasilkan
kelenjar
Universitas Sumatera Utara
hypopharing dan perkembangan anakan (Somerville, 2005).
Vitamin B1 atau tiamin merupakan komplek basa nitrogen yang
mengandung cincin pirimidin. Vitamin ini merupakan koenzim dekarboksilase
dan aldehidtranferase, karenanya sangat penting dalam metabolisme karbohidrat
(Manalu 1999 dalam Rahmadhani 2008).
Vitamin B2 (riboflavin dan niasin) merupakan koenzim flavin, berikatan
dengan asam fosfat dan bekerja sebagai pembawa hidrogen dalam sistem
oksidatif mitokondria yang penting, banyak terdapat pada ragi, padi-padian, hati,
ginjal, keju dan susu (Poedjiadi 1994 dalam Rahmadh
Universitas Sumatera Utara
1. Alat dan Bahan
Alat
Botol Ukuran 250 ml
Mikroskop Cahaya
Aerator
Bohlam 5 Watt
Haemocytometer
Akuarium Mini
Universitas Sumatera Utara
Termometer
Corong
Pipet Tetes
pH Meter
Tisu
Jarum Suntik
Universitas Sumatera Utara
Kertas Label
Spidol
Bahan
Vitamin B Kompleks Cair
Ragi Roti
Ampas Tahu
Universitas Sumatera Utara
Aquadest
Alkohol 70 %
Universitas Sumatera Utara
2.
Prosedur Penelitian
Bibit dari Alam
Proses Pemasukan Bibit
Yang Sudah Dikultur
Pemberian Pakan Ragi Roti dan Vitamin B Kompleks
Universitas Sumatera Utara
Media Uji
Tampilan Media Siap Untuk Diuji
Universitas Sumatera Utara
3.
Rotifera (Brachionus sp)
Universitas Sumatera Utara
4. Tabel Pengamatan Pertumbuhan Harian Brachionus sp
Perlakuan
A (Fitoplankton)
B (Ampas Tahu)
C (Ragi Roti)
D (Vit. B Kompleks)
Pengamatan
Ulangan
1
2
3
Jumlah
Rata-rata
1
2
3
Jumlah
Rata-rata
1
2
3
Jumlah
Rata-rata
1
2
3
Jumlah
Rata-rata
Awal
1 (Hari ke-2)
2 (Hari ke-4)
3 (Hari k3-6)
4 (Hari k3-8)
5 (Hari ke-10)
0.001
0.001
0.001
0.003
0.001
0.001
0.001
0.001
0.003
0.001
0.001
0.001
0.001
0.003
0.001
0.001
0.001
0.001
0.003
0.001
2
1
1
4
1.33
2
3
3
8
2.67
1
0.3
0.3
1.6
0.53
2
2
2
6
2.00
2
1
1
4
1.33
12
15
10
37
12.33
1
0.3
1
2.3
0.77
15
25
10
50
16.67
2
1
2
5
1.67
22
16
15
53
17.67
5
1
1
7
2.33
5
5
5
15
5.00
2
2
2
6
2.00
60
18
25
103
34.33
40
30
20
90
30.00
3
5
80
88
29.33
1
1
1
3
1.00
50
15
20
85
28.33
30
20
15
65
21.67
2
2
60
64
21.33
Universitas Sumatera Utara
5. Tabel Hasil Pertumbuhan Populasi dan Pertumbuhan Harian Brachionus
sp pada Perlakuan
Pertumbuhan Populasi Brachionus sp
Perlakuan
I
8
96
47
25
A (Fitoplankton)
B ( Ampas Tahu)
C ( Ragi Roti)
D ( Vit. B Kompleks )
Ulangan
II
III
5
6
52
53
31.6
22.3
37
97
Jumlah
Rata-rata
19
201
100.9
159
6.33
67
33.63
53
Pertumbuhan Harian Populasi Brachionus sp Pada Setiap Perlakuan.
Media Perlakuan
Waktu Pengamatan
Fitoplankton
Ampas Tahu
Ragi Roti
Vitamin B Kompleks
Hari Pertama
0.001
0.001
0.001
0.001
Hari Ke-2
1.33
2.67
0.53
2.00
Hari Ke-4
1.33
12.33
0.77
16.67
Hari Ke-6
1.67
17.67
2.33
5.00
Hari Ke-8
2.00
34.33
30.00
29.33
Hari ke 10
1.00
18.33
15.00
9.66
Universitas Sumatera Utara
6. Tabel Analisis Anova Sidik Ragam Pertumbuhan Populasi Rotifera
(Brachionus sp)
Perlakuan
A (Fitoplankton)
B ( Ampas Tahu)
C ( Ragi Roti)
D ( Vit. B Kompleks )
Jumlah
Rata-rata
I
8
96
47
25
176
44
Ulangan
II
5
52
31.6
37
125.6
31.4
III
6
53
22.3
97
178.3
44.575
∑
Ẋ
19
201
100.9
159
479.9
6.33
67
33.63
53
39.99
DB Total
= Jumlah seluruh observasi- 1 = n – 1 = 12 – 1 = 11
DB Perlakuan
= Banyaknya perlakuan – 1 = 4 – 1 = 3
DB Galat
= DB total - DB perlakuan
= t (r –1) = (Jumlah perlakuan) (jumlah ulangan – 1)
= 11 – 3 = 8
Faktor Koreksi (FK)
= (GT)2 = (479,9)2 = 230304,01 = 19192,00
n
12
12
JK Total
= (n-observasi total )2 – FK
= {(8)2 + (5)2 + (6)2 + (96)2 + (52)2 + (53)2 + (47)2 +
(31,6)2
+(22,3)2 +(25)2+ (37)2 + (97)2 } –
19192,00
= 10769,85
JK Perlakuan
= ∑ (total perlakuan)2 – FK
r
= (19)2 + (201)2 + (100.9)2 + (159)2 – 19192,00
3
= 6215,9366
Universitas Sumatera Utara
JK Galat
= JK Total – JK Perlakuan
= 10769,85 – 6215,9366
= 4553,91
KT Perlakuan
= JK Perlakuan = 6215,9366 = 2071.9788
DB Perlakuan
3
KT Galat
= JK Galat = 4553,91 = 569.2387
T (r - 1)
8
F Hitung Perlakuan
= KT Perlakuan = 2071.9788
KT Galat
F Hitung Ulangan
= KT Ulangan
KT Galat
JK
= 221.78083
Sumber Variasi
DB
KT
PERLAKUAN
3
6215.9366 2071.9788
ULANGAN
GALAT
TOTAL
2
8
11
443.56167 221.78083
4553.91
569.2387
10769.85
F hit
3.63991204
0.38960954
F tabel
5%
4.76
Universitas Sumatera Utara
1%
9.78
7. Hasil Analisis Anova Menggunakan Program SPSS 17
Correlations
Notes
Output Created
20-Nov-2013 09:50:19
Comments
Input
Active Dataset
DataSet0er
Filter
Weight
Split File
N of Rows in Working Data File
Missing Value Handling
Definition of Missing
4
User-defined missing values are treated as
missing.
Cases Used
Statistics for each pair of variables are based
on all the cases with valid data for that pair.
Syntax
CORRELATIONS
/VARIABLES=Fitoplankton AmpasTahu
RagiRoti VitaminBKompleks
/PRINT=TWOTAIL NOSIG
/STATISTICS DESCRIPTIVES
/MISSING=PAIRWISE.
Resources
Processor Time
0:00:00.000
Elapsed Time
0:00:00.032
[DataSet0]
Descriptive Statistics
Mean
Std. Deviation
N
Fitoplankton
6.33
1.528
3
Ampas Tahu
67.00
25.120
3
Ragi Roti
33.633
12.4749
3
Vit. B Kompleks
53.000
38.5746
3
Universitas Sumatera Utara
Correlations
Fitoplankton
Fitoplankton
Pearson Correlation
Ampas Tahu
1
.755
-.339
.200
.455
.780
3
3
3
3
Pearson Correlation
.951
1
.920
-.613
Sig. (2-tailed)
.200
.256
.580
N
N
Ragi Roti
3
3
3
3
Pearson Correlation
.755
.920
1
-.873
Sig. (2-tailed)
.455
.256
3
3
3
3
-.339
-.613
-.873
1
.780
.580
.324
3
3
3
N
Vit. B Kompleks
Pearson Correlation
Sig. (2-tailed)
N
REGRESSION
LISTWISE
Vit. B Kompleks
.951
Sig. (2-tailed)
Ampas Tahu
Ragi Roti
/DESCRIPTIVES MEAN STDDEV CORR SIG N
.324
/MISSING
/STATISTICS COEFF OUTS R ANOVA COLLIN TOL CHANGE ZPP
/CRITERIA=PIN(.05) POUT(.10)
/NOORIGIN
/DEPENDENT Fitoplankton
/METHOD=ENTER AmpasTahu RagiRoti VitaminBKompleks
/RESIDUALS
HIST(ZRESID) NORM(ZRESID).
Universitas Sumatera Utara
3
Regression
Notes
Output Created
20-Nov-2013 09:51:15
Comments
Input
Active Dataset
DataSet0
Filter
Weight
Split File
N of Rows in Working Data File
Missing Value Handling
Definition of Missing
4
User-defined missing values are treated as
missing.
Cases Used
Statistics are based on cases with no
missing values for any variable used.
Syntax
REGRESSION
/DESCRIPTIVES MEAN STDDEV CORR
SIG N
/MISSING LISTWISE
/STATISTICS COEFF OUTS R ANOVA
COLLIN TOL CHANGE ZPP
/CRITERIA=PIN(.05) POUT(.10)
/NOORIGIN
/DEPENDENT Fitoplankton
/METHOD=ENTER AmpasTahu RagiRoti
VitaminBKompleks
/RESIDUALS HIST(ZRESID)
NORM(ZRESID).
Resources
Processor Time
0:00:00.063
Elapsed Time
0:00:00.077
Memory Required
Additional Memory Required for
1956 bytes
640 bytes
Residual Plots
[DataSet
Universitas Sumatera Utara
Warnings
For the final model with dependent variable Fitoplankton, the variance- covariance matrix is singular.
Influence statistics cannot be computed.
Descriptive Statistics
Mean
Std. Deviation
N
Fitoplankton
6.33
1.528
3
Ampas Tahu
67.00
25.120
3
Ragi Roti
33.633
12.4749
3
Vit. B Kompleks
53.000
38.5746
3
Correlations
Fitoplankton
Pearson Correlation
N
Ragi Roti
Vit. B Kompleks
Fitoplankton
1.000
.951
.755
-.339
Ampas Tahu
.951
1.000
.920
-.613
Ragi Roti
.755
.920
1.000
-.873
-.339
-.613
-.873
1.000
Fitoplankton
.
.100
.228
.390
Ampas Tahu
.100
.
.128
.290
Ragi Roti
.228
.128
.
.162
Vit. B Kompleks
.390
.290
.162
.
Fitoplankton
3
3
3
3
Ampas Tahu
3
3
3
3
Ragi Roti
3
3
3
3
Vit. B Kompleks
3
3
3
3
Vit. B Kompleks
Sig. (1-tailed)
Ampas Tahu
Universitas Sumatera Utara
b
Model Summary
Change Statistics
Std. Error of the
Model
R
R Square
a
1
1.000
Adjusted R Square
1.000
Estimate
.
R Square Change
.
1.000
F Change
df1
.
df2
2
Sig. F Change
0
.
a. Predictors: (Constant), Vit. B Kompleks, Ampas Tahu
b. Dependent Variable: Fitoplankton
Model
1
Variables Entered Variables Removed
Vit. B Kompleks,
Method
. Enter
a
Ampas Tahu
a. Tolerance = .000 limits reached.
Universitas Sumatera Utara
ANOVAb
Model
1
Sum of Squares
Regression
Residual
Total
df
Mean Square
F
4.667
2
2.333
.000
0
.
4.667
2
Sig.
.
.
a
a. Predictors: (Constant), Vit. B Kompleks, Ampas Tahu
b. Dependent Variable: Fitoplankton
Coefficientsa
Standardized
Unstandardized Coefficients
Model
B
1(Constant)
Coefficients
Std. Error
Correlations
Beta
.663
.000
Ampas Tahu
.072
.000
Vit. B Kompleks
.015
.000
t
Sig.
Zero-order
Partial
Collinearity Statistics
Part
Tolerance
VIF
.
.
1.191
.
.
.951
1.000
.941
.624
1.602
.390
.
.
-.339
1.000
.308
.624
1.602
a. Dependent Variable: Fitoplankton
Universitas Sumatera Utara
b
Excluded Variables
Collinearity Statistics
Minimum
Model
1
Beta In
Ragi Roti
t
.
a
Sig.
.
Partial Correlation
.
Tolerance
.
VIF
.000
Tolerance
.
.000
a. Predictors in the Model: (Constant), Vit. B Kompleks, Ampas Tahu
b. Dependent Variable: Fitoplankton
Collinearity Diagnostics
a
Variance Proportions
Dimensio
Model
n
Eigenvalue
Condition Index
(Constant)
Ampas Tahu
Vit. B Kompleks
1
1
2.701
1.000
.00
.01
.02
2
.281
3.101
.00
.07
.36
3
.018
12.114
.99
.93
.62
a. Dependent Variable: Fitoplankton
Universitas Sumatera Utara
a
Residuals Statistics
Minimum
Maximum
Mean
Std. Deviation
N
Predicted Value
5.00
8.00
6.33
1.528
3
Residual
.000
.000
.000
.000
3
-.873
1.091
.000
1.000
3
.
.
.
.
0
Std. Predicted Value
Std. Residual
a. Dependent Variable: Fitoplankton
Universitas Sumatera Utara
Universitas Sumatera Utara
DAFTAR PUSTAKA
Agustina., D. K. 2008. Perkembangan Koloni Lebah Madu Apis mellifera L. Yang
Mendapat Polen Pengganti Dari Tiga Jenis Kacang dengan dan Tanpa
Vitamin B Komplek [Skripsi]. Program Studi Teknologi Produksi Ternak.
Fakultas Peternakan Institut Pertanian Bogor.
Aprilia., T. 2008. Aplikasi Pengkayaan Rotifera dengan Asam Amino Bebas
Untuk Larva Kerapu Bebek Cromileptes altivelis. [Skripsi]. Program Studi
Teknologi dan Manajemen Akukultur.Fakultas Perikanan dan Ilmu
Kelautan. Institut Pertanian. Bogor.
Barus, T. 2004. Pengantar Limnologi Studi Tentang Ekosistem Air Daratan. USU
Press. Medan.
Chilmawati, D. dan Suminto. 2009. Pengaruh Penggunaan Ragi Roti, Vitamin
B12, Vitamin C Sebagai Bahan Pengkaya Pakan Terhadap Populasi
Brachionus plicatilis. Jurnal Saintek Perikanan Vol. 5 No. 2, 2010. 42-48.
Dahril, T., 1996. Biologi Rotifer Dan Pemanfaatannya. Penerbit UNRI Press.
Pekanbaru.
Dikkurahman. 2003. Pertumbuhan Populasi Rotifera (Brachionus sp.) dengan
Pemberian Pakan Alami Mikroalgae Monospesies dan Multispesies.
[Skripsi]. Program Sudi Manajemen Sumberdaya Perairan. Fakultas
Perikanan dan Ilmu Kelautan. Institut Pertanian Bogor.
Erlina, A., Amini, S., Endrawati, H., Zainuri, M. 2004. Kajian Nutritif
Phytoplankton Pakan Alami pada Sistem Kultivasi Massal. lmu Kelautan.
Desember 2004. Vol. 9 (4) : 206 - 210ISSN 0853 – 7291.
Erlania., wiladja.F., Adiwilaga. E. M. 2010. Penyimpanan Rotifera Instan
(Branchionus rotundifomis) Pada Suhu Yang Berbeda dengan Pembenihan
Pakan Mikroalga Konsentrasi. J. RIS Akukultur Vol.5 No2. Bogor.
Fernando, R. R. 2011. Pengaruh Penggunaan Campuran Dedak dan Ampas Tahu
Fermentasi dengan Monascus Purpureus Dalam Ransum Terhadap Bobot
Hidup, Persentase Karkas dan Kolesterol Daging Broiler. [Skripsi].
Universitas Andalas, Padang.
Isnansetyo dan Kurniastuty. 1995. Teknik Kultur Phytoplankton dan Zooplankton
Pakan Alami Untuk Pembenihan Organisme Laut. Penerbit Kanisius,
Yogyakarta.
Universitas Sumatera Utara
Karmila. S., 2011.Kandungan Mineral, Vitamin A, B12, dan Komponen Bioaktif
Sotong (Sepia Recurvirostra).[Skripsi].Fakultas Perikanan dan Ilmu
Kelautan Institut Pertanian Bogor.
Kaswinarni, F. 2007. Kajian Teknis Pengolahan Limbah Padat Dan Cair Industri
Tahu, Studi Kasus Industri Tahu Tandang Semarang, Sederhana Kendal
dan Gagak Sipat Boyolali [Tesis]. Program Studi Magister Ilmu
Lingkungan Program Pasca Sarjana Universitas Diponegoro Semarang.
Noor, T.F.D. 2012. Pemanfaatan Tepung Ampas Tahu Pada Pembuatan Produk
Cookies dan Pie Lemon Cookies. [Skripsi]. Fakultas Teknik. Universitas
Negeri Yogyakarta
Ozhan., D dan Oguzkurt.,D.2008. Seasonal Succes and Distribution Of Rotifer in
Karakaya Dam Lake in Eastern. Inono University Faculty of Science and
art. Departement Biologi. Malatya.Turkey.
Pranata, A. 2009. Laju Pertumbuhan Populasi Rotifera (Brachionus sp.) pada
Media Kombinasi Kotoran Ayam, Pupuk Urea dan Pupuk TSP, serta
Penambahan beberapa Variasi Ragi Roti. [Skiripsi]. Fakultas Matematika
dan Ilmu Pengetahuan Alam. Universitas Sumatera Utara.
Rahmadhani., Y. S. 2008. Efektifitas Pemberian Multivitamin dan Kajian
Gambaran Darah Merah pada Domba Priangan (Ovis Aries) Yang Diberi
Stres Transportasi. [Skripsi] Fakultas Kedokteran hewan. Institut
Pertanian Bogor.
Redjeki, S. 1999. Budidaya Rotifera. Jurnal Penelitian Volume XXIV No. 2 1999
: 27-43. Bojonegara. Serang.
Sutomo., Komala, R.,Wahyuni, E.R.,Panggabean,M.G.L.2007. Pengaruh Jenis
Pakan Mikroalga Yang Berbeda Terhadap Pertumbuhan Populasi Rotifer,
Brachionus Rotundiformis. Jurnal Oseanologi dan Limnologi di Indonesia
(2007) 33: 159 – 176.
Suwignyo, S., B. Widigdo., Y. Wardiatno., M. Krisanti. 2005. Avertebrata Air
Jilid2. Penerbit Penebar Swadaya. Jakarta.
Yuliartati, E., 2011. Tingkat SErangan Ektoparasit Pada Ikan Patin (Pangasius
djambal) Pada Beberapa Pembudidaya Ikan di Kota Makasar, [Skripsi].
Fakultas Ilmu Kelautan Dan Perikanan Universitas Hasanudin. Makasar.
Universitas Sumatera Utara
dan Suminto, 2009).
METODE PENELITIAN
Waktu Dan Tempat
Penelitian ini dilaksanakan pada bulan Juli-September 2013 di
Labolatorium Budidaya dan Labolatorium Terpadu Program Studi Manajemen
Sumberdaya Perairan Fakultas Pertanian Universitas Sumatera Utara.
Alat dan Bahan
Peralatan yang digunakan adalah botol plastik transparan, dengan volume
air bisa menampung 250 ml sebagai media uji, aquarium sebagai tempat media,
lampu 5 watt untuk menjaga suhu agar tidak dingin, aerator pemasok oksigen,
pipet tetes 0,5 ml, pH meter untuk mengukur derajat keasaman media, spidol,
kertas label, corong, tisu, termometer untuk mengukur suhu, kamera,
haemocytometer dan mikroskop cahaya untuk melihat rotifera. Adapun bahan
yang diperlukan dalam penelitian ini adalah: rotifera (Brachionus sp) sebagai
hewan uji, aquadest, alkohol 70 % untuk proses pencucian, ampas tahu, ragi roti,
dan fitoplankton dan vitamin B kompleks sebagai perlakuan (Lampiran 1).
Metode Penelitian
Metode yang digunakan dalam penelitian ini yakni metode eksprimen
dengan melakukan pengamatan langsung dari perkembangan rotifera dibawah
mikroskop. Rotifera yang diamati di bawah mikroskop diambil secara acak di
media penelitian. Data yang diamati adalah perbandingan jumlah rotifera per
hari.
Universitas Sumatera Utara
Rancangan penelitian
Rancangan penelitian menggunakan Rancangan Acak Lengkap (RAL)
dengan 4 perlakuan media dan 3 ulangan. Perlakukan penelitian ini adalah berupa
jenis pakan yang diberikan pada rotifera. Jenis pakan yang akan dijadikan
perlakukan adalah fitoplankton, ampas tahu, ragi roti dan vitamin B kompleks.
Adapun perlakuan yang diberikan adalah :
Perlakuan A = Rotifera + Fitoplankton 16 ml
Perlakuan B = Rotifera + Ampas Tahu 2 gr
Perlakuan C = Rotifera + Ragi Roti 0,06 gr
Perlakuan D = Rotifera + Vitamin B kompleks 2 ml
Penempatan media di perlakuan dan ulangan disusun secara acak pada
tempat yang telah disediakan. Susunan media uji dapat dilihat pada Gambar 2.
C2
B2
A1
B3
D1
C1
A3
D3
B1
A2
D2
C3
Gambar 2. Posisi Media Uji
Persiapan
Sebelum melakukan penelitian terlebih dahulu rotifera dikembangkan
pada media ukuran 1 liter. Cara yang dilakukan dalam mengembangkan rotifera
Universitas Sumatera Utara
adalah bibit yang didapat di alam dikembangkan pada media yang telah
dipersiapkan. Media yang dipakai adalah air yang telah steril. Setelah itu rotifera
dimasukan kedalam media kultur. Selama pemeliharaan rotifera diberi pakan ragi
roti selama 10 hari. Pemberian ragi roti ini dilakukan karena praktis dan mudah
didapat. Setelah dianggap padat maka rotifera sudah dapat dimasukan kedalam
media uji.
Media uji yang dipakai adalah botol plastik yang transparan dengan
volume 300 ml. Sebelum rotifera uji dimasukan ke dalam media, terlebih dahulu
media dan batu aerasi serta slang aerasi terlebih dahulu dicuci bersih dan dibilas
dengan alkohol 70 %. Alkohol 70 % ini mempunyai kegunaan untuk bahan proses
Washing, Rehidrasi dan Dehidrasi (Yuliartati, 2011).
Pembilasan
dilakukan
untuk
menghilangkan
atau
mematikan
mikroorganisme yang mungkin masih menempel dan tidak bersih saat pencucian.
Setelah dianggap steril, maka botol dimasukan air sebanyak 250 ml, kemudian
media diberi aerasi lemah. setelah itu rotifera uji siap untuk ditebarkan.
Pelaksanaan
Media yang telah siap dimasukan rotifera uji sebanyak 100 ekor. Jumlah
rotifera uji dihitung dengan cara sampling dari volume yang di hitung. Rotifera
yang telah dimasukan kedalam media uji langsung diberi pakan sesuai dengan
perlakuan.
Jumlah pakan yang diberikan adalah fitoplankton sebanyak 16 ml, ampas
tahu sebanyak 2 gr, ragi roti sebanyak 0,06 gr dan vitamin B kompleks cair
sebanyak 2 ml. Pakan itu merupakan total keseluruhan jumlah yang diberikan
pada Brachionus sp selama hari pengamatan.
Universitas Sumatera Utara
Pengamatan kualitas air sudah dilakukan pada hari pertama dan
selanjutnya dilakukan dua hari sekali, dilakukan pada pagi hari.
Selama
penelitian media uji diberi aerasi agar tidak kekurangan oksigen.
Pengamatan
Pengamatan dilakukan dua hari sekali dalam 10 hari atau (5x pengamatan)
dimana setiap perlakuan diulang sebanyak 3 kali. Semua yang diamati akan
dicatat. Data-data yang akan dikumpulkan yaitu:
1.
Pertambahan populasi Brachionus sp
Pengamatan hanya melihat pertambahan jumlah dari populasi rotifera per
media uji. Cara menghitung rotifera adalah :
a. Diambil air media secara acak sebanyak tiga kali ulangan dengan
menggunakan pipet 0,5 ml.
b. Dikocok pipet yang berisi rotifera uji tersebut dengan gerakan seirama,
tujuannya adalah agar rotifera dalam larutan bercampur secara merata.
c. Diambil haemocytometer lengkap dengan cover glass. Kemudian ditetesi
satu tetes media yang ada di pipet ke dalam kamar hitung yang ada di
haemocytometer untuk pemeriksaan selanjutnya.
d. Kemudian lihat di bawah mikroskop, dalam kotak-kotak besar dan kotakkotak kecil. Dalam 1 kotak besar terdapat 16 kotak kecil. Hitunglah
jumlah rotifera yang terdapat dalam 80 kotak kecil (5 kotak besar).
2.
Pertumbuhan harian dan puncak populasi pertumbuhan Brachionus sp
3.
Kualitas air dan hubungan kualitas air terhadap pertumbuhan populasi
Brachionus sp
Kualitas air yang diamati hanya suhu dan derajat keasaman. Kualitas
air di amati setiap pagi hari dan diukur selama dua hari sekali. Kualitas air
Universitas Sumatera Utara
akan mendukung pertumbuhan. Jika kualitas air terhitung dalam keadaan
baik maka pertumbuhan dihasilkan akan baik juga.
Analisis Data
Hasil pengamatan pertumbuhan rotifera dari masing-masing perlakukan di
tabulasi kedalam bentuk tabel secara menyeluruh, sehingga dapat mengetahui
puncak dari pertumbuhan rotifera dari masing-masing perlakuan.
Data yang dikumpul kemudian dianalisis dengan uji statistik Anova
menggunakan program SPSS 17.00. Uji statistik ini untuk mengetahui perbedaan
dari masing-masing perlakuan. Untuk membahas perlakuan ini maka hasil analisis
ini akan dideskripsikan dengan data pendukung lain.
Universitas Sumatera Utara
HASIL DAN PEMBAHASAN
Hasil
1. Populasi Brachionus sp
Berdasarkan hasil penelitian didapatkan perbedaan pertumbuhan dari Brachionus
sp terhadap jenis pakan. Data perbedaan populasi Brachionus sp disajikan pada
Gambar 3. Pertumbuhan yang paling tinggi pada Brachionus sp terdapat pada
perlakuan ampas tahu dengan jumlah 201 ekor/pengamatan, sedangkan yang
paling rendah terdapat pada perlakuan pakan fitoplankton dengan jumlah 19
ekor/pengamatan.
Gambar 3. Perbandingan Populasi Brachionus sp antar Perlakuan
2. Pertumbuhan Harian Brachionus sp
Hasil pengamatan selama penelitian, terlihat ada pertambahan populasi
dari tiap perlakukan. Pertambahan puncak populasi Brachionus sp terjadi pada
hari ke delapan. Data puncak populasi pertumbuhan disajikan pada Gambar 4
berikut ini.
Universitas Sumatera Utara
Pertumbuhan tiap perlakukan tidak sama, namun yang tertinggi terdapat
pada ampas tahu, kemudian diikuti dengan perlakuan vitamin B komplek, ragi roti
dan yang terendah pada perlakuan fitoplankton.
Gambar 4. Laju Pertumbuhan Harian Brachionus sp
3. Kualitas Air
Kualitas air sangat mendukung untuk pertumbuhan organisme air.
Kualitas air yang diamati adalah suhu dan derajad keasaman. Untuk mengetahui
suhu air keasaman air selama penelitian disajikan pada Tabel 2.
Tabel 2. Kualitas Air Selama Penelitian
Perlakuan
Hari
Pengamatan
Awal
PI
P II
P III
P IV
PV
Kisaran
kualitas air
A
Suhu
29
29
30
30
30
31
29 – 31
B
pH
7.2
7.6
7.8
7.8
7.9
C
D
7.9
Suhu
29
29
30
30
30
31
pH
7,3
7.5
7.5
7.6
7.7
7.8
Suhu
29
29
30
30
30
31
pH
7.4
7.5
7.7
7.7
7.8
7.8
Suhu
29
29
30
30
31
31
pH
4.9
5.7
7,3
7.5
7,8
7.8
7.2 - 7.9
29 – 31
7.3 - 7.6
29 – 31
7,4 - 7,8
29 - 31
4,9 - 7,8
Universitas Sumatera Utara
Pembahasan
Populasi Brachionus sp
Hasil pengamatan terlihat ada perbedaan antar perlakuan, pertumbuhan
yang terbaik adalah pada perlakuan B (ampas tahu), kemudian di ikuti oleh
perlakuan D (vitamin B kompleks), perlakuan C (ragi roti) dan yang terendah
adalah pada perlakuan A (fitoplankton). Terjadinya perbedaan dari masingmasing perlakuan disebabkan oleh pengaruh unsur nutrient yang ada dalam
media. Pakan yang mengunakan ampas tahu merupakan jenis pakan yang terbaik
bagi pertumbuhan rotifera (disajikan pada lampiran 5).
Populasi dari masing-masing perlakuan adalah perlakuan ampas tahu
mencapai 201 ekor/pengamatan, perlakuan vitamin B kompleks mencapai 159
ekor/pengamatan, perlakuan ragi roti mencapai 100 ekor/pengamatan. Sedangkan
populasi terendah terdapat pada perlakuan fitoplankton dengan jumlah populasi
hanya sebanyak 19 ekor/pengamatan.
Jika dilihat dari pertumbuhan populasi rotifera (Brachionus sp) pakan
yang menggunakan ampas tahu jauh lebih bagus jika dibandingkan dengan
pelakuan lainnya. Tingginya pertumbuhan populasi dengan mengunakan ampas
tahu dikarenakan oleh komposisi nutrient yang kandung ampas tahu masih tinggi.
Ditinjau dari komposisi kimianya ampas tahu dapat digunakan sebagai
sumber protein. Sesuai dengan laporan Departemen Kelautan dan Perikanan RI
(2005) menyatakan bahwa kandungan ampas tahu masih mengandung protein
8,66%; lemak 3,79%; air 51,63% dan abu 1,21%. Unsur ini akan dimanfaatkan
oleh makluk hidup untuk pertumbuhan. Kemudian dijelaskan lagi oleh Prabowo
(1983) diacu oleh Noor (2012) ampas tahu lebih tinggi kualitasnya dibandingkan
Universitas Sumatera Utara
dengan kacang kedelai, protein ampas tahu mempunyai nilai biologis lebih tinggi
dari pada protein biji kedelai dalam keadaan mentah, karena bahan ini berasal dari
kedelai yang telah dimasak. Widjatmoko (1996) menambahkan bahwa ampas
tahu juga mengandung unsur-unsur mineral mikro maupun makro yaitu untuk
mikro; Fe 200-500 ppm, Mn 30-100 ppm, Cu 5-15 ppm, Co kurang dari 1 ppm,
Zn lebih dari 50 ppm. Ampas tahu dalam keadaan segar berkadar air sekitar 84,5
% dari bobotnya.
Pada pakan jenis ragi roti yang diberikan kepada rotifera ini belum
memberikan pertumbuhan yang sangat optimal. Sebenarnya menurut Wanusuari
1993 diacu oleh Pratana (2009) Ragi roti dapat membantu penguraian karbohidrat
didalam saluran pencernaan juga merangsang kerja dari amylase dan sebagai
protein. Ragi roti juga dapat berperan sebagai probiotik dan menurunkan aflatoksi
pada pakan. Namun aktivitas ragi dapat bekerja baik bila dikombinasikan dengan
pakan lain seperti bakteri, pupuk dan fitoplankton. Menurut Dahril (1996) bahwa
ragi roti ini memiliki nilai gizi yang dihasilkannya rendah dan tidak mendukung
pertumbuhan. Bahkan rotifer ini tidak ada yang mampu bertelur jika tidak
dikombinasikan dengan jenis pakan lain seperti bakteri. Oleh karena itu
dianjurkan agar keberadaan ragi roti sebagai pakan rotifera harus diseimbangkan
dengan jenis pakan lain agar memiliki perkembangan yang baik dan ideal untuk
hidup Brachionus sp ini.
Pakan vitamin B kompleks yang diberikan pada rotifera mengalami
pertumbuhan yang juga belum dikatakan optimal. Padahal vitamin merupakan
asupan penting bagi pertumbuhan. Menurut Menurut Poedjiadi (1994) dalam
Rahmadhani (2008) Vitamin adalah senyawa organik tertentu yang dibutuhkan
Universitas Sumatera Utara
dalam jumlah kecil dalam diet pakan tetapi esensial untuk reaksi metabolisme
dalam sel dan penting untuk melangsungkan pertumbuhan normal serta
memelihara kesehatan. Pada golongan ini adalah, vitamin B komplek (tiamin,
rivoflavin, niasin, asam pantotenat, piridoksin, biotin, asam folat dan kobalamin)
dan vitamin C. Namun Keberadaan vitamin B kompleks ini dapat serasi jika
diseimbangkan dengan jenis pakan lain misalnya ragi roti. Karena kondisi yang
diharapkan bukan sebagai pakan utama tapi sebagai asupan vitamin untuk
pertumbuhan rotifera. Seperti yang diungkapkan Dahril (1996), bahwa vitamin
bukan merupakan makanan bagi rotifer, namun rotifer sangat membutuhkan
vitamin bagi pertumbuhan dan kelangsungan hidupnya.
Pertumbuhan rotifera pada pakan fitoplankton sangat rendah, namun
tergolong masih bisa tumbuh hidup. Hal ini disebabkan kurangnya kepadatan
fitoplankton yang diberikan kepada rotifera. Kepadatan fitoplankton juga sangat
mempengaruhi pertumbuhan rotifera ini. Seperti yang dikatakan Dahril (1996)
bahwa kepadatan fitoplankton dapat mempengaruhi pertumbuhan rotifer. Akan
tetapi apabila kepadatan fitoplankton telah mencapai batas optimal, maka
pertumbuhan rotifera akan tetap.
Sesuai pendapat yang telah disampaikan diatas, maka rendahnya
pertumbuhan Rotifera (Brachionus sp) pada perlakuan fitoplankton disebabkan
oleh populasi fitoplanktonnya masih rendah sehingga asupan pakan tidak
terpenuhi,
begitu juga dengan perlakuan ragi roti, karena ragi roti dapat
menghambat pembentukan telur sehingga Brachionus sp tidak dapat berkembang
biak. Sedangkan pada perlakuan vitamin B kompleks, disebabkan oleh vitamin
bukanlah asupan makan utama dari Brachionus sp akan tetapi merupakan salah
Universitas Sumatera Utara
satu vitamin yang dibutuhkan dalam pakan. Akibatnya Brachionus sp tidak dapat
berkembang secara baik.
Secara keseluruhan hasil analisis menunjukan bahwa F tabel lebih kecil
dari pada F hitung sehingga tidak terdapat perbedaan yang nyata dari perlakuan,
namun setelah diuji lebih dalam dengan perbandingan antar perlakuan maka
hasilnya sebagai berikut:
terdapat perbedaan yang nyata antar perlakuan
fitoplankton dan ampas tahu, fitoplankton dan vitamin B kompleks, sedangkan
antara perlakuan fitoplankton dengan ragi roti, perlakuan ampas tahu dengan ragi
roti, perlakuan ragi roti dengan vitamin B kompleks dan perlakuan vitamin B
kompleks dengan ampas tahu tidak terdapat perbedaan yang nyata. Hasil analisis
disajikan pada Lampiran 6 dan Lampiran 7.
Hasil analisis menunjukan bahwa penggunaan ampas tahu dan vitamin B
komplek jauh lebih baik jika dibandingkan dengan pengunaan fitoplankton dan
ragi roti. Jadi dapat disimpulkan bahwa untuk membudidayakan Brachionus sp
sebaiknya mengunakan pakan yang berasal dari ampas tahu. Hal ini disebabkan
selain pertumbuhannya lebih cepat juga mudah didapat serta biayanya murah.
2.
Pertumbuhan Harian Brachionus sp
Selama pengamatan puncak pertumbuhan populasi terjadi pada hari ke-8.
Jika diamati pada hari ke dua pertumbuhannya masih lambat, sedangkan pada hari
ke-4 pertumbuhan perlakuan ampas tahu dan vitamin B kompleks sudah mulai
naik lebih tinggi jika dibandingkan dengan perlakuan fitoplankton dan ragi roti.
Walau terjadi kenaikan pada perlakuan vitamin B kompleks pada hari ke-4,
namun pada hari ke-6 terjadi penurunan yang tajam, kemudian pada hari ke-8
terjadi kenaikan yang lebih tajam, begitu juga dengan perlakuan ampas tahu dan
Universitas Sumatera Utara
ragi roti, sedangkan perlakuan fitoplankton masih rendah jika dibandingan dengan
perlakuan lainnya ( disajikan pada Gambar 4 ).
Pertambahan populasi rotifera sudah tampak pada hari ke-2 sedangkan
puncaknya terjadi pada hari ke-8. Hal ini disebabkan adanya batas masa
pertumbuhan dari rotifer ini. Menurut Dahril (1996) pada penelitian yang dia
lakukan bahwa Brachionus Calyciflorus yang dipelihara selama delapan hari
dengan kepadatan yang tertinggi pada hari kedelapan.
Sutomo dkk. (2007)
menambahkan hasil penelitian yang dilakukan bahwa pertumbuhan rotifer
Brachionus rotundiformis yang diperkaya dari jenis pakan mikroalga yang
berbeda terjadi puncak populasi pada hari ke-7 diikuti pada hari ke-8.
Pertumbuhan yang baik terjadi pada pakan jenis ampas tahu. Ampas tahu
yang diberikan kepada rotifera (Brachionus sp) yang berupa ampas tahu dalam
keadaan basah berjumlah 2 gr. Untuk pemberian makanan dilakukan secara rutin
selama 10 hari. Jumlah populasi rotifera dari hari ke-2 sampai ke-8 mengalami
perkembangan yang sangat baik (disajikan pada Gambar 4).
Ampas tahu
merupakan produk kedelai yang kemungkinan sifat proteinnya sama dengan
protein kedelai walaupun telah banyak mengalami perubahan. Ampas tahu itu
memiliki kandungan protein. Menurut koeswara (1992) diacu oleh Yulisnawati
(2006) Protein kedelai itu sebagian besar adalah Globulin, protein ini tidak larut
dalam air di sekitar titik isoelektriknya.
Pada pakan vitamin B kompleks ini terjadi proses pertumbuhan yang
mengalami penaikan dan penurunan. Pada Hari ke-2 jumlahnya sedikit kemudian
pada hari ke-4 meningkat, pada hari ke-6 menurun kembali dan pada hari ke-8
kembali meningkat. Hal itu disebabkan pada cara pemberian makan yang terlalu
Universitas Sumatera Utara
berlebihan sehingga menjadi racun bagi perkembangan Brachionus sp ini. Pada
hari ke empat dilakukan pemberian vitamin B komplek,
diduga pemberian
vitamin melebihi dosis karena mungkin di dalam media masih banyak namun
karena perlakuan maka tetap diberikan. Seperti yang diungkapkan Dahril (1996)
apabila vitamin diberikan dalam konsentrasi tinggi dapat menimbulkan keracunan
bagi rotifera. Begitu pula dengan vitamin B kompleks yang tidak dicampur
dengan jenis pakan lain akan terlalu larut dalam kondisi yang asam dan
berindikasi buruk bagi rotifera.
Pemberian pakan ragi roti belum berkembang dengan baik karena peran
ragi roti tidak bisa bekerja sendiri harus ditambahi dengan pakan lain seperti
bakteri, pupuk dan fitoplankton. Padahal Kandungan yang ada didalam ragi roti
ini sangat banyak. Menurut wanusuria (1993) Ragi roti membantu dalam
penguraian karbohidrat didalam saluran pencernaan juga merangsang kerja dari
amylase dan sebagai protein sehingga akan memperkaya kandungan protein.
Menurut Dahril (1996) tidak ada satu pun yang mampu melepaskan telur namun
jika ragi roti dikombinasikan dengan bakteri atau dengan fitoplankton di kolam
peliharaan dapat memberikan pertumbuhan yang baik bagi rotifera.
Pada pakan perlakuan fitoplankton pertumbuhan populasi Brachionus sp
masih rendah. Hal ini diduga akibat kepadatan fitoplankton sebagai pakan masih
rendah, sehingga berpengaruh terhadap perkembangan populasi rotifera. Namun
walau dalam jumlah rendah dan pertumbuhannya lambat puncak populasi terjadi
pada hari ke-8. Kepadatan fitoplankton dalam media akan mempengaruhi
pertumbuhan populasi Brachionus sp.
Universitas Sumatera Utara
Rendahnya pertumbuhan pada awal penelitian disebabkan karena pada
awalnya jumlah populasi masih sedikit dan Brachionus sp masih melakukan
adaptasi, sehingga belum melakukan perkembangbiakan, namun seiring dengan
pertambahan waktu dan sudah beradaptasinya Brachionus sp dengan media maka,
Brachionus sp akan melakukan pemijahan. Menurut Dahril (1996) keberadaan
rotifer di suatu perairan sangat ditentukan oleh fekunditas. Fekunditas yang
dimaksud disini adalah kemampuan satu individu rotifer untuk menghasilkan
telur atau keturunan. Selama masa hidupnya angka fekunditas untuk jenis
Brachionus Calyciflorus adalah 29,7 butir untuk amiktik dan 12,5 butir untuk
induk miktik. Bagi betina amiktik dari jenis Brachionus Plicatilis ditemukan
fekunditas sebesar 21.2 butir, betina miktik menghasilkan 21,8 butir telur haploid
dan telur dorman 2,8 butir. Balai Penelitian dan Pengembangan Laut (2005)
menjelaskan bahwa daur hidup Brachionus Plicatilis unik, dimana dalam keadaan
normal Brachionus Plicatilis berkembang secara parthogenesis (bertelur tanpa
kawin). Brachionus Plicatilis betina yang amiktik akan menghasilkan telur yang
berkembang amiktik pula. Namun dalam keadaan yang tidak normal, misalnya
terjadi perubahan salinitas, suhu air, intensitas cahaya, dan kualitas pakan maka
telur Brachionus Plicatilis amiktik tadi dapat menetas menjadi betina miktik.
Betina miktik ini kemudian akan menghasilkan telur yang kemudian akan
berkembang menjadi hewan jantan. Bila Brachionus Plicatilis jantan dan betina
miktik kawin maka akan menghasilkan telur kista. Telur kista akan dapat menetas
lagi bila perairan sudah kembali normal.
Adapun puncak populasi terjadi pada hari kedelapan ini terbukti dengan
penelitian Dahril (1996) terhadap Brachionus Calyciflorus yang dipelihara selama
Universitas Sumatera Utara
delapan hari dengan kepadatan yang tertinggi pada hari kedelapan mencapai 976,8
individu/ml dan jumlah telur yang dihasilkan mencapai 124,2 butir/ml.
3.
Kualitas Air
Kualitas air mempunyai peranan penting terhadap laju perkembangan
makhluk hidup, terutama pada rotifera ini. Parameter yang diamati pada kualitas
air ini yaitu suhu dan pH.
Hasil pengamatan untuk parameter suhu air, kisaran yang diperoleh masih
dalam ambang optimal bagi pertumbuhan rotifera (Brachionus sp) yakni dalam
kisaran 29 – 31 0C. seperti yang dikatakan Hirayama dan Kusono diacu oleh
Dahril (1996), bahwa diperkirakan suhu optimal untuk pertumbuhan Brachionus
berkisar antara 25 s/d 30
0
C. sedangkan pada suhu 10 s/d 150 C rotifera tidak
dapat bergerak tumbuh secara optimal. pH yang diperoleh pada pengamatan juga
masih dalam kisaran yang baik untuk pertumbuhan rotifera. Kisaran pH yakni
untk fitoplankton 7,7 – 7,9, untuk pakan jenis ampas tahu yaitu 7,3 – 7,6, untuk
pakan ragi roti yakni 7,4 – 7,8 dan untuk pakan vitamin B komplek yaitu 4,9 –
7,8. Untuk semua media perlakuan dapat dikatakan baik. Untuk lebih jelas
hubungan kualitas air terhadap populasi pertumbuhan rotifera (Brachionus sp)
disajikan pada Gambar 5 untuk pengukuran suhu dan untuk pengukuran pH pada
Gambar 6.
Universitas Sumatera Utara
31.5
2.50
40.00
35.00
30.00
25.00
20.00
15.00
10.00
5.00
0.00
31.5
31
2.00
31
30
1.50
30.5
29.5
1.00
30.5
30
29
29.5
29
0.50
28.5
28
0.00
H-0
H-2
H-4
H-6
H-8
28.5
28
H-10
H-0
H-2
H-4
H-6
H-8
H-10
A
B
Suhu
Jumlah Rotifera
Suhu
Jumlah Rotifera
5.a
5.b
31.5
35.00
31
30.00
30.5
25.00
30
20.00
29.5
15.00
29
10.00
28.5
5.00
28
31.5
31
30.5
30
29.5
29
28.5
28
0.00
H-0
H-2
H-4
H-6
35.00
30.00
25.00
20.00
15.00
10.00
5.00
0.00
H-0
H-2
H-4
H-6
H-8
H-10
H-8 H-10
D
C
Suhu
Jumlah Rotifera
5.c
Suhu
Jumlah Rotifera
5.d
Gambar 5. Hubungan Suhu Terhadap Populasi Brachionus sp Pada Setiap
Perlakuan
Gambar 5.a untuk perlakuan fitoplankton terjadi peningkatan populasi
pada hari ke-8 dengan suhu adalah 300 C.
Pada Gambar 5.b untuk perlakuan
ampas tahu terjadi peningkatan populasi dengan suhu 300 C . Pada Gambar 5.c
juga terjadi peningkatan populasi dengan suhu 300 C . Selanjutnya untuk Gambar
5.d juga terjadi puncak populasi pada hari ke-8 dengan suhu 300 C. Suhu yang
baik akan memberikan perkembangan yang baik bagi rotifera ini. Untuk itu pada
pertumbuhan Brachionus sp yang baik dan cepat berkembang terjadi pada suhu
optimal 300C. Menurut Isnansetyo & Kurniastuti (1995) Brachionus Plicatilis
bersifat euthermal pada suhu 150 C masih bisa tumbuh, tapi tidak bisa beristirahat.
Universitas Sumatera Utara
Kenaikan suhu antara 15-350 C akan menaikkan laju reproduksinya. Kisaran suhu
antara 22-300 C merupakan kisaran suhu optimum untuk pertumbuhan dan
reproduksi.
8
2.50
7.8
2.00
7.6
1.50
7.4
1.00
7.2
0.50
7
6.8
0.00
H-0
H-2
H-4
H-6
H-8
7.9
7.8
7.7
7.6
7.5
7.4
7.3
7.2
7.1
7
40.00
35.00
30.00
25.00
20.00
15.00
10.00
5.00
0.00
H-10
H-0
H-2
H-4
A
pH
pH
6.b
7.9
7.8
7.7
7.6
7.5
7.4
7.3
7.2
35.00
30.00
25.00
20.00
15.00
10.00
5.00
0.00
H-4
H-6
H-8 H-10
35.00
30.00
25.00
20.00
15.00
10.00
5.00
0.00
9
8
7
6
5
4
3
2
1
0
H-0
H-2
C
pH
Jumlah Rotifera
6.c
H-10
Jumlah Rotifera
6.a
H-2
H-8
B
Jumlah Rotifera
H-0
H-6
H-4
H-6
H-8 H-10
D
Jumlah Rotifera
pH
6.d
Gambar 6. Hubungan pH dengan Pertumbuhan Brachionus sp pada Setiap
Perlakuan
Jika diamati pada grafik diatas bahwa kita lihat pada Gambar 6.a
pertumbuhan puncak sudah dimulai pada hari ke-6 dan hari ke-8 dengan keadaan
pH 7,7 – 7,8.
Pada Gambar 6.b untuk perlakuan ampas tahu pH pada
pertumbuhan puncak yang sudah dimulai hari ke-6 dan hari ke-8 yakni 7,6 -7,7.
Pada Gambar 6.c untuk perlakuan ragi roti sudah terjadi pertumbuhan meningkat
Universitas Sumatera Utara
pada hari ke 6 dan di puncak populasi terjadi pada hari ke-8 dengan pH 7,7 – 7,8.
Pada Gambar D peningkatan populasi pada hari ke-8 dengan pH 7,8. Penurunan
yang terjadi pada hari ke-6 bukan faktor pH yang buruk akan tetapi karena
pemberian dosis pakan yang diberikan terlalu banyak. Terjadi pertumbuhan itu
didukung oleh adanya pengaruh pH air terhadap pertumbuhan populasi
Brachionus. Pertumbuhan populasi akan terjadi jika pH mendekati normal. Hal
itu terjadi pada hari ke 6 dan ke 8 pertumbuhan Brachionus terjadi baik dengan
kisaran pH 7-7,8. Hal ini Sesuai yang diungkapkan Schluler dan Groeneweg
(1981) diacu oleh Dahril (1996) yaitu populasi rotifera tertinggi dapat ditemukan
dalam keadaan pH 6 s/d 8. Sedangkan populasi rotifera semakin menurun apabila
dalam keadaan pH dibawah 4,5 dan diatas 9,5. Oleh karena itu didalam
pengamatan kisaran pH baik bagi lingkungan hidup rotifera.
Universitas Sumatera Utara
KESIMPULAN DAN SARAN
Kesimpulan
1.
Pakan yang cocok untuk pertumbuhan rotifera (Brachionus sp) yakni ampas
tahu dengan kadar protein yang tinggi dengan jumlah populasi paling tinggi
mencapai 201 ekor/pengamatan.
2.
Waktu puncak pertumbuhan rotifera (Brachionus sp) untuk setiap masingmasing perlakuan pakan yang diberikan yakni terjadi pada hari ke-8
(delapan).
Saran
1.
Rotifera (Brachionus sp) dapat tumbuh optimal dengan pakan ampas tahu.
Oleh sebab itu para pembudidaya sudah bisa untuk membudidayakan rotifera
ini dengan ekonomis.
2.
Sebaiknya dilakukan penelitian populasi Brachionus sp didukung dengan
kualitas air yang lebih banyak lagi.
Universitas Sumatera Utara
TINJAUAN PUSTAKA
Deskripsi Umum Rotifera
Rotifera
merupakan sejenis organisme air yang memiliki klasifikasi
menurut Ruutner dan Kolisko (1974) diacu oleh Dikkurahman (2003) sebagai
berikut
Phylum
: Rotifera
Kelas
: Monogonta
Ordo
: Ploima
Famili
: Brachionidae
Sub Famili
: Brachioninae
Genus
: Brachionus
Tubuh rotifera terbagi menjadi tiga bagian, yaitu: kepala (head),
badan (trunk), dan kaki atau ekor mot. Bagian kepala dilengkapi dengan silia
yang kelihatan seperti spiral
dan
disebut korona
yang
berfungsi
untuk
memasukkan makanan ke dalam mulut. Bentuk badan bulat atau silindris, pada
bagian badan (trunk) terdapat tiga buah tonjolan kecil yaitu sebuah atau sepasang
antena dorsal dan 2 buah antenna lateral. Pada ujung antenna biasanya terdapat
bulul-bulu sebagai alat indera. Brachionus merupakan rotifera yang paling banyak
dibudidayakan sebagai makanan alami untuk larva ikan dan udang. Di daerah
tropis Brachionus mulai bertelur pada umur 28 jam, dan setelah 24 jam telur
menetas. Selama hidupnya yang 11 hari seekor Brachiounus menghasilkan 20
butir telur (Suwignyo dkk., 2005).
Universitas Sumatera Utara
Rotifera merupakan salah satu golongan zooplankton yang banyak
dimanfaatkan dalam bidang pembenihan, terutama dimanfaatkan sebagai
biokapsul alami bagi larva berbagai fauna laut. Hal itu disebabkan oleh ciri
biologisnya, antara lain ukurannya yang relatif kecil (100-300 µm) sehingga
cocok dengan bukaan mulut larva dari kebanyakan fauna laut, bersifat planktonis
dengan laju renang yang lamban sehingga mudah ditangkap oleh larva, dan
memiliki laju reproduksi dan nutrisi yang tinggi (Sutomo dkk., 2007).
Penggunaan rotifera sebagai pakan alami mempunyai beberapa
keuntungan, diantaranya adalah :
1.
Rotifera adalah hewan yang sangat toleran terhadap kondisi basa, asam, dan
kondisi air terkontaminasi.
2.
Dapat hidup di berbagai kedalaman air, baik itu dipermukaan, tengah
maupun dasar perairan.
3.
Merupakan pengganti Artemia sp. yang mahal harganya.
4.
Mengurangi peranan fitoplankton terutama Chaetoceros calcitrans, yang
relatif tidak tahan terhadap perubahan kondisi cuaca, terutama musim hujan.
Rotifera merupakan salah satu jenis makanan alami (live food) bagi
kebanyakan larva hewan air. Rotifera memiliki berbagai keunggulan antara lain
ukurannya yang kecil, berkadar gizi tinggi dan disukai ikan (Snell dkk 1987 diacu
oleh Dahril 1996).
Untuk mempertahankan kelangsungan hidup, setiap makhluk memiliki
kemampuan untuk berkembang biak. Rotifer yang termasuk dalam ordo Ploima
berkembang biak dengan dua cara yaitu : dengan cara kawin dan tidak kawin atau
partthenogenesis. Untuk menetukan apakah rotifer berada dalam kondidi baik atau
Universitas Sumatera Utara
tidak, ada dua indikator yang biasanya dipakai yaitu aktivitas renang dan rasio
telur yang dihasilkan (jumlah telur per satu ekor betina) (Snell dkk 1987 diacu
oleh Dahril 1996). Kecepatan renang rotifer ditentukan melalui pengukuran
kecepatan gerak rotifer melewati garis-garis di wadah ukur.
Daur hidup Brachionus Plicatilis unik, dimana dalam keadaan normal
Brachionus Plicatilis berkembang secara parthogenesis (bertelur tanpa kawin).
Brachionus Plicatilis betina yang amiktik akan menghasilkan telur yang
berkembang amiktik pula. Namun dalam keadaan yang tidak normal, misalnya
terjadi perubahan salinitas, suhu air, intensitas cahaya, dan kualitas pakan maka
telur B. Plicatilis amiktik tadi dapat menetas menjadi betina miktik. Betina miktik
ini kemudian akan menghasilkan telur yang kemudian akan berkembang menjadi
hewan jantan. Bila Brachionus Plicatilis jantan dan betina miktik kawin maka
akan menghasilkan telur kista. Telur kista akan dapat menetas lagi bila perairan
sudah kembali normal (Balai Penelitian dan Pengembangan Laut 2005)
Pada awalnya betina miktik menghasilkan 1-6 telur kecil. Betina miktik
adalah betina yang dapat dibuahi. Telur yang dihasilkan betina miktik akan
menetas menjadi hewan jantan. Jantan ini akan membuahi betina miktik dan
beristirahat. Telur ini mengalami masa istirahat sebelum menetas menjadi betina
miktik. Betina amiktik adalah betina yang tidak dapat dibuahi. Dari betina amiktik
yang terjadi ini maka reproduksi seksual akan terjadi lagi. Betina miktik hanya
akan menghasilkan telur miktik demikian juga sebaliknya dengan betina amiktik
akan menghasilkan telur amiktik. Antara betina miktik dan betina amiktik tidak
dapat dibedakan secara eksternal (Isnansetyo dan Kurniastuti, 1995).
Universitas Sumatera Utara
Walaupun banyak literatur yang menerangkan adanya perubahan antara
betina amiktik menjadi betina miktik ini, namun pembiakan secara sexual belum
banyak diketahui secara jelas. Untuk beberapa genus dari famili Brachionidae
diketahui bahwa kondisi yang menentukan seekor betina menjadi amiktik atau
miktik terjadi beberapa saat sebelum telur mulai membelah. Hal ini menunjukkan
bahwa yang mengontrol produksi betina miktik ini pada umumnya adalah kondidi
lingkungan (faktor luar) dan bukan faktor dalam semata (Dahril, 1996).
Pada umumnya berbagai faktor lingkungan mempunyai pengaruh terhadap
pertumbuhan populasi Brachionus. Faktor lingkungan yang dimaksud antara lain:
suhu, derajat keasaman dan salinitas. Pada suhu 15°C Brachionus plicatilis masih
dapat tumbuh, tetapi tidak dapat bereproduksi, sedangkan pada suhu di bawah
10°C akan terbentuk telur istirahat. Kenaikan suhu antara 15-35°C akan
menaikkan laju reproduksinya. Kisaran suhu antara 22-30°C merupakan kisaran
suhu optimum untuk pertumbuhan dan reproduksi. Keasaman air turut
mempengaruhi kehidupan rotifera. Rotifera Brachionus plicatilis ini masih dapat
bertahan hidup pada pH 5 dan pH 10, sedangkan pH optimum untuk pertumbuhan
dan reproduksi berkisar antara 7,5-8,0 (Isnansetyo & Kurniastuty, 1995).
Populasi rotifera tertinggi dapat ditemukan dalam keadaan pH 6 s/d 8.
Sedangkan populasi rotifera semakin menurun apabila dalam keadaan pH
dibawah 4,5 dan diatas 9,5 (Schluler dan Groeneweg 1981 dalam Dahril 1996).
Rotifera termasuk salah satu jenis hewan pemakan segala (omnivora)
yang makan dengan cara menyaring (filter feeder) makanan dapat berupa jasat
renik seperti fitoplankton, ragi dan bakteri yang tersuspensi dalam air. Rotifera
dapat dibudidayakan secara massal di labolatorium ataupun di balai benih
Universitas Sumatera Utara
bersamaan dengan larva peliharaan. Banyak jenis rotifer yang dapat dijadikan
sebagai makan alami larva dan anak ikan (Dahril, 1996).
Faktor yang mempengaruhi pertumbuhan populasi Rotifer ialah faktor
internal yang (genetik) dan faktor eksternal antara lain faktor pakan. Pengaruh
faktor seperti suhu dan salinitas terhadap pertumbuhan populasi rotifera telah
banyak diteliti. Sedangkan untuk pakan, beberapa hormon mikroalga sebagai
pakan rotifera sebagian telah diteliti (Ozhan dan Oguzukurt, 2008).
Fitoplankton
Fitoplankton merupakan kelompok yang memegang peranan sangat
penting dalam ekosistem air, karena kelompok ini dengan adanya kandungan
klorofil mampu melakukan fotosintesis. Proses fotosintesis pada ekosistem air
yang dilakukan oleh fitoplankton (produsen) merupakan sumber nutrisi utama
bagi kelompok organisme air lainnya yang membentuk rantai makanan. Dalam
ekosistem air hasil dari fotosintesis yang dilakukan oleh fitoplankton bersama
dengan tumbuhan air lainnya disebut sebagai produktivitas primer (Barus, 2004).
Fitoplankton atau mikroalge mempunyai peran mensistesa bahan organik
dalam lingkungan perairan. Di perairan alami mikroalgae dominan memberikan
kontribusi untuk prodiksi biomassa dalam sistem perairan laut, estuari, dan
sungai. Potensi phytoplankton sebagai pakan alami telah dikenali pada upaya
kultivasi benih udang dan ikan di hatchery. Jenis-jenis phytoplankton pakan alami
seperti Skeletonema costatum, Dunaliella sp, Tetraselmis chuii, Chlorella sp.
Chaetoceros calcitrans dan lain – lain telah dikenali sebagai pakan potensial pada
tahap-tahap awal ( Erlina dkk., 2004).
Universitas Sumatera Utara
Ragi Roti
Ragi roti atau biasanya disebut dengan ‘Yeast’ merupakan semacam
tumbuh-tumbuhan bersel satu yang tergolong dalam keluarga cendawan. Ragi roti
dapat membentu penguraian karbohidrat didalam saluran pencernaan juga
merangasang kerja dari amylase dan sebagai protein. Ragi roti juga dapat berperan
sebagai probiotik dan menurunkan aflatoksi pada pakan (Wanusuari 1993 diacu
oleh Pranata 2009).
Ragi roti terdiri dari 2 jenis yang ada dipasaran yaitu ragi padat dan ragi
kering. Jenis ragi kering ini ada yang berbentuk butiran kecil-kecil dan ada juga
yang berupa bubuk halus (Roosharo 2006 dalam Pranata 2009 ).
Ragi roti selain dapat membantu penguraian karbohidrat didalam saluran
pencernaan juga merangsang kerja dari amylase dan sebagai protein sehingga
akan memperkaya kandugan protein dari Brachionus plicatilis. Fungsi lain ragi
roti adalah untuk membentuk zat-zat anti bakteri dan dalam pembentukan asam
amino (Chilmawati dan Suminto, 2009).
Ampas Tahu
Ampas tahu merupakan limbah padat yang diperoleh dalam proses
pembuatan tahu dari kedelai. Sedangkan yang dibuat tahu adalah cairan atau susu
yang kedelai yang lolos dari kain saring. Ditinjau dari komposisi kimianya ampas
tahu dapat digunakan sebagai sumber protein. Kandungan protein dan lemak pada
ampas tahu yang cukup tinggi namun kandungan itu berbeda tiap tempat dan cara
pemrosesnya. Terdapat laporan bahwa bahwa kandungan ampas tahu masih
mengandung protein 8,66%; lemak 3,79%; air 51,63% dan abu 1,21%, maka
Universitas Sumatera Utara
sangat memungkinkan ampas tahu diolah menjadi makanan ternak (Departemen
Kelautan dan Perikanan RI, 2005)
Ampas tahu merupakan limbah dalam bentuk padatan dari bubur kedelai
yang diperas sebagai sisa dalam pembuatan tahu. Ampas tahu dapat dijadikan
sebagai sumber nitrogen pada media fermentasi dan dapat dijadikan sebagai bahan
pakan sumber protein karena mengandung protein kasar cukup tinggi yaitu
27,55% dan kandungan zat nutrien lain adalah lemak 4,93%, serat kasar 7,11%,
BETN 44,50% (Nuraini dkk 2009 dalam Fernando 2011) .
Ampas tahu lebih tinggi kualitasnya dibandingkan dengan kacang kedelai,
protein ampas tahu mempunyai nilai biologis lebih tinggi dari pada protein biji
kedelai dalam keadaan mentah, karena bahan ini berasal dari kedelai yang telah
dimasak ( Prabowo 1983 diacu oleh Noor 2012)..
Vitamin B Kompleks
Vitamin adalah senyawa organik tertentu yang dibutuhkan dalam jumlah
kecil dalam diet seseorang tetapi esensial untuk reaksi metabolisme dalam sel
dan penting untuk melangsungkan pertumbuhan normal serta memelihara
kesehatan. Vitamin dibagi ke dalam dua golongan, golongan pertama disebut
prakoenzim, dan bersifat larut dalam air, tidak disimpan tubuh, tidak beracun,
diekresikan dalam urine. Yang termasuk golongan ini adalah, vitamin B komplek
(tiamin, rivoflavin, niasin, asam pantotenat, piridoksin, biotin, asam folat dan
kobalamin) dan vitamin C (Poedjiadi 1994 dalam Rahmadhani 2008).
Vitamin B komplek sangat beragam, didalamnya yaitu terdapat thiamin,
asam phantotenat, ribovlafin, pyridoxin dan lain-lain. Vitamin dianggap penting
karena
diimplikasikan
dapat
membantu
dalam
menghasilkan
kelenjar
Universitas Sumatera Utara
hypopharing dan perkembangan anakan (Somerville, 2005).
Vitamin B1 atau tiamin merupakan komplek basa nitrogen yang
mengandung cincin pirimidin. Vitamin ini merupakan koenzim dekarboksilase
dan aldehidtranferase, karenanya sangat penting dalam metabolisme karbohidrat
(Manalu 1999 dalam Rahmadhani 2008).
Vitamin B2 (riboflavin dan niasin) merupakan koenzim flavin, berikatan
dengan asam fosfat dan bekerja sebagai pembawa hidrogen dalam sistem
oksidatif mitokondria yang penting, banyak terdapat pada ragi, padi-padian, hati,
ginjal, keju dan susu (Poedjiadi 1994 dalam Rahmadh