Pertumbuhan Pohon dan Kualitas Kayu (1)

LAPORAN AKHIR PRAKTIKUM
PERTUMBUHAN POHON DAN KUALITAS KAYU

AGRIAN MAULANA
D1D013059
DOSEN PENGAMPU
Dr.forst. Bambang Irawan S.P,. M.Sc
Ana Agustina S.Hut,. M.Si
Rince Muryunika S.P,. M.Si

PROGRAM STUDIKEHUTANAN
FAKULTAS KEHUTANAN
UNIVERSITAS JAMBI
2015

1

KATA PENGANTAR
Puji syukur kami panjatkan kehadirat Allah SWT Tuhan Yang Maha Esa,
karena atas segala limpahan rahmat dan karuniaNya, kami dapat menyelesaikan
laporan praktikum untuk mata kuliah pertumbuhan pohon dan kualitas kayu.

Laporan praktikum dibuat sebagai bagian dari kegiatan belajar pada mata
kuliah pertumbuhan pohon dan kualitas kayu.
Saya mengucapkan banyak terima kasih kepada dosen dan asdos serta
teman-teman sejawat yang telah banyak memberikan masukan ilmu, masukan dan
saran sehingga laporan praktikum ini dapat diselesaikan.
Saya menyadari, laporan praktikum ini masih jauh dari sempurna, oleh
karena itu saran dan kritik yang bersifat membangun sangat diharapkan guna
menyempurnakan dan pencapaian yang lebih terarah.
Akhirnya, semoga laporan praktikum ini dapat berguna bagi pihak-pihak
yang memerlukannya.
Jambi, 21 November 2015

Penulis

2

DAFTAR ISI
Halaman
KATA PENGANTAR...............................................................................................i
DAFTAR ISI...................................................................................................ii & iii

KARBOHIDRAT DALAM TANAMAN..............................................................1
BAB I PENDAHULUAN........................................................................................2
1.1. Latar Belakang.......................................................................................2
1.2. Tujuan Praktikum..................................................................................2
BAB II METODE PRAKTIKUM...........................................................................3
2.1. Waktu dan Tempat.................................................................................3
2.2. Alat dan Bahan......................................................................................3
2.3. Prosedur Kerja......................................................................................3
BAB III HASIL DAN PEMBAHASAN..................................................................4
3.1. Hasil.......................................................................................................4
3.2. Pembahasan...........................................................................................4
BAB IV KESIMPULAN DAN SARAN.................................................................5
PENGARUH SUHU TERHADAP RESPIRASI KECAMBAH........................6
BAB I PENDAHULUAN........................................................................................7
1.1. Latar Belakang.......................................................................................7
1.2. Tujuan Praktikum..................................................................................7
BAB II METODE PRAKTIKUM...........................................................................8
2.1. Waktu dan Tempat.................................................................................8
2.2. Alat dan Bahan......................................................................................8
2.3. Prosedur Kerja................................................................................8 & 9

BAB III HASIL DAN PEMBAHASAN................................................................10
3.1. Hasil.....................................................................................................10
3.2. Pembahasan.........................................................................................11
BAB IV KESIMPULAN DAN SARAN...............................................................12
JARINGAN PENGANGKUT AIR.....................................................................13
BAB I PENDAHULUAN......................................................................................14
1.1. Latar Belakang.....................................................................................14
1.2. Tujuan Praktikum................................................................................14
BAB II METODE PRAKTIKUM.........................................................................15
2.1. Waktu dan Tempat...............................................................................15
2.2. Alat dan Bahan....................................................................................15
2.3. Prosedur Kerja............................................................................15 & 16
BAB III HASIL DAN PEMBAHASAN................................................................17
3.1. Hasil.....................................................................................................17
3.2. Pembahasan.........................................................................................17
BAB IV KESIMPULAN DAN SARAN...............................................................18
3

PENETAPAN POTENSIAL AIR JARINGAN TUMBUHAN.........................19
BAB I PENDAHULUAN......................................................................................20

1.1. Latar Belakang.....................................................................................20
1.2. Tujuan Praktikum................................................................................20
BAB II METODE PRAKTIKUM.........................................................................21
2.1. Waktu dan Tempat...............................................................................21
2.2. Alat dan Bahan....................................................................................21
2.3. Prosedur Kerja............................................................................21 & 22
BAB III HASIL DAN PEMBAHASAN................................................................23
3.1. Hasil.....................................................................................................23
3.2. Pembahasan.........................................................................................23
BAB IV KESIMPULAN DAN SARAN...............................................................24
PENGARUH OSMOTIK KONSENTRASI HARA TERHADAP ABSORBSI
AIR DAN PERTUMBUHAN TANAMAN........................................................25
BAB I PENDAHULUAN......................................................................................26
1.1. Latar Belakang.....................................................................................26
1.2. Tujuan Praktikum................................................................................27
BAB II METODE PRAKTIKUM.........................................................................28
2.1. Waktu dan Tempat...............................................................................28
2.2. Alat dan Bahan....................................................................................28
2.3. Prosedur Kerja............................................................................28 & 29
BAB III HASIL DAN PEMBAHASAN................................................................30

3.1. Hasil.....................................................................................................30
3.2. Pembahasan................................................................................30 & 31
BAB IV KESIMPULAN DAN SARAN...............................................................32
AUKSIN DAN ABSISI BAGIAN ATAU ORGAN TUMBUHAN...................33
BAB I PENDAHULUAN......................................................................................34
1.1. Latar Belakang.....................................................................................34
1.2. Tujuan Praktikum................................................................................35
BAB II METODE PRAKTIKUM.........................................................................36
2.1. Waktu dan Tempat...............................................................................36
2.2. Alat dan Bahan....................................................................................36
2.3. Prosedur Kerja.....................................................................................36
BAB III HASIL DAN PEMBAHASAN................................................................37
3.1. Hasil.....................................................................................................37
3.2. Pembahasan................................................................................37 & 38
BAB IV KESIMPULAN DAN SARAN...............................................................39
DAFTAR PUSTAKA.............................................................................................40
LAMPIRAN..................................................................................................41 & 42

4

PRAKTIKUM KE-1
KARBOHIDRAT DALAM TANAMAN

BAB I
PENDAHULUAN

1.1. LATAR BELAKANG
Daun tanaman mempunyai pigmen klorofil yang meru[akan pigmen utama
untuk aktivitas fotosintesis. Didalam proses footosintesis akan dihasilkan
karbohidrat berupa pati yang untuk sementara disimpan / ditimbun pada adaun.
Selanjutnya pada saat gelap akan ditranslokasikan ke organ-organ lain dan
digunakan sebagai bahan dasar proses metabolisme lain (baik katabolisme
maupun anabolisme). Dengan demikian pada saat pagi harinya timbunan pati pada
jaringan daun telah habis.
Pigmen klorofil tidak larut dalam air akan tetapi larut dalam alkohol.
Dengan demikian hejala klorosis sering terjadipada tanaman yang sistem
perakarannya mengalami keadaan anaerob ( misalnya tergenang air), karena
terjadiproses respirasi anaerob yang menghasilkan alkohol yang diakumulasikan
didalam daun. Pati (amilum) memiliki sifat yang khas antara lain apabila
ditambahkan dengan larutan yodium akan berwarna biru (ungu).

Karbohidrat merupakan suatu golongan senyawa yang terdiri dari atau
dapat dihidrolisis menjadipolisakarida aldehid dan keton. Karbohidrat dalam
tanaman adalah tepung atau amilum atau pati. Amilum adalah homopolimer dari
glukosa yang digabung oleh mata rantai yang sama dengan maltosa.
1.2. TUJUAN PRAKTIKUM
Untuk mengamati simpanan amilum dalam daun.

BAB II
METODE PRAKTIKUM
2.1. WAKTU DAN TEMPAT
Praktikum ini dilaksanakan pada hari selasa, 6 Oktober 2015 diLab.
Klimatologi Fakultas Pertanian, Universitas Jambi.
2.2. ALAT DAN BAHAN
- Alat
Daun tanaman segar yang sebagian besar telah ditutup kertas aluminium
foil saat matahari belum terbit dan siang hari.
Alkohol 95% dan larutan J-KJ
-

Bahan

Aluminium foil/kertas timah
Penjepit
Waterbath
Petridisk

2.3. PROSEDUR KERJA
- Daun yang terkena cahaya matahari sebagian ditutup dengan kertas timah
dan dijepit rapat sehingga tidaka ada kemungkinan ada cahaya yang masuk
-

kedalam lalu biarkan selama beberapa jam disinari matahari
Daun tersebut kemudian dipotong, masukkan kedalam alkohol panas

-

(ditangas didalam waterbath) selama kurang lebih 20 menit
Cuci daun tersebut kedalam ait panas , masukkan kedalam larutan J-KJ

-

pada petridisk selama beberapa menit
Cuci dengan air dingin agar J-KJ yang menempel pada bagian permukaan
daun larut lalu bentangkan. Adanya warna ungu tua menunjukkan adanya
amilum didalam daun (warna yang terdapat pada bagian yang ditutup
berwarna pucat, bagian yang terkena cahaya matahari berwarna ungu tua).

BAB III
HASIL DAN PEMBAHASAN
Adapun hasil yang diperoleh dari praktikum kali ini adalah:
3.1. HASIL

Hasil yang diperoleh dari praktikum yang dilakukan terhadap daun
tanaman yang telah diberi perlakuan dengan penutupan oleh amilum dibagian
daun pada pagi dan malam hari, diperoleh hasil sebagai berikut:
Pada umumnya daun sawit dan daun mahoni berwarna kecoklatan dan
keungu-unguan pada daun yang dilapisi aluminium foil. Dengan hal itu kita dapat
mengetahui simpanan amilum dalam daun.
Disaat daun dicelupkan alkohiol 95% warna daun menjadicoklat kepucatpucatan. Setelah dicelupkan larutan J-KJ warna daun kecoklatan.
3.2. PEMBAHASAN
Daun yang telah ditutupi dengan aluminium foil pada malam dan pagi hari

menunjukkan adanya perbedaan hasil yang tidak terlalu signifikan seperti pada
warna hijau daun tidak mengalami perubahan hanya saja daun terlihat pada bagian
daun yang ditutupi dengan aluminium foil menjadilebih pucat dan menunjukkan
adanya bercak berwarna abu-abu.
Pada bagian yang tidak tertutup tidak mengalami perubahan warna yang
terlalu besar setelah direndam didalam alkohl hal ini bisa jadikarena faktor cuaca
yang dapat mempengaruhi karena disaat proses praktikum berlangsung kondisi
cuaca berasap dengan sedikit sekali adanya cahaya matahari sehingga
menyebabkan tanaman yang membutuhkan cahaya matahari yang dibutuhkan
dalam proses fotosintesis tidak berlangsung sempurna seperti menerima cahaya
matahari penuh dan tidak berjalan dengan sempurna nya aktivitas-aktivitas
biologis tanaman yang dapat mengganggu aktivitas dan proses lainnya didalam
jaringan tumbuhan.

BAB IV
KESIMPULAN DAN SARAN
Pada praktikum kali ini dapat disimpulkan dengan perubahan warna yang
terjadipada daun yang ditutupi aluminium foil maka tersimpan amilum yang ada
pada daun yang ditutupi. Pati yang terkandung didalam daun pada tumbuhan

apabila ditambahkan dengan yodium akan berubha menjadiwarna biru/ ungu.
Namun faktor-faktor lain juga dapat mempengaruhi seperti suhu dan cahaya yang
dapat menjadisalah satu faktor didalam berjalannya proses fotosintesis yang
berpengaruh terhadap proses lainnya pada tumbuhan seperti yang telah dilakukan
pada praktikum kandungan pati yang terkandung pada daun tanaman. Pada saat
praktikum sebaiknya dengan hati-hati dan dilakukan sesuai dengan prosedur.

PRAKTIKUM KE-2
PENGARUH SUHU TERHADAP RESPIRASI KECAMBAH

BAB I
PENDAHULUAN

1.1. LATAR BELAKANG

Proses respirasi merupakan proses katabolisme atau penguraian senyawasenyawa organik menjadisenywa anorganik. Proses respirasi sebagai proses
oksidasi bahan organik yang terjadididalam sel dan berlangsung secara aerobik
dan anaerbik. Dalam respirasi aerob diperlukan oksigen dan dihasilkan
karbondioksida serta energi. Sedangkan dalam respirasi anaerob dimana oksigen
tidak atau kurang tersedia dan dihasilkan senyawa selain karbondioksida seperti
alkohol, asam asetat dan sedikit energi.
Proses respirasi diawali dengan adanya penangkapan O2 dari lingkungan.
Proses transport gas-gas dalam tumbuhan secara keseluruhan berlangsung secara
difusi.
Oksigen yang digunakan dalam respirasi masuk kedalam setiap sel
tumbuhan dengan jalan difusi melalui ruang antar sel, dinding sel, sitoplasma dan
membran sel.
Salah satu faktor yang menajdipengaruh terhadap proses respirasi adalah
suhu. Suhu merupakan faktor yang sangat berpengaruh terhadap kecepatan reaksi
biokimia didalam tanaman. Dengan semakin meningkatnya suhu maka reaksi
akan berlangsung lebih cepat. Sebagai contoh fotosintesis akan meningkat
aktifitasnya sampai dengan suhu tertentu (sekitar 30 derajat) dan setelah itu akan
menurun lagi. Pada saat aktifitas biosintesis menurun akibat peningkatan respirasi
(perombakan). Jadihasil fotosintesis dapat merupakan substrat untuk respirasi.
Dalam suatu bahan tanaman aktifitas respirasi dapat dideteksi dengan jumlah CO2
yang dihasilkan.
1.2. TUJUAN PRAKTIKUM
Untuk mengamati pengaruh suhu terhadap kecapatan respirasi kecambah.

BAB II
METODE PRAKTIKUM
2.1. WAKTU DAN TEMPAT

Praktikum ini dilaksanakan pada hari selasa, 6 Oktober 2015 diLab.
Klimatologi Fakultas Pertanian, Universitas Jambi.
2.2. ALAT DAN BAHAN
- Alat
Kecambah kacang hijau (phaseolus radiatus)
NaOH 0,5 N
HCl 0,5 N
Phenolptalin
-

Bahan
Botol ukuran 200ml
Kain kasa
Benang

2.3. PROSEDUR KERJA
- Kecambah ditimbang seberat 10 gram, kemudian dibungkus kain kasa
- Isi masing-masing 2 botol sebanyak 30 ml dengan larutan NaOH 0,5 N
- Gantungkan bungkusan kain kasa berisi kecambah tersebut kedalam botol
yang telah berisi larutan NaOH dengan bantuan benang lalu ditutup rapat
-

dan diisolasi sehingga tidak ada udara keluar masuk kedalam botol.
Simpanlah botol tersebut dan kontrolnya ( botol berisi larutan NaOH tanpa

-

kecambah) pada suhu kamar
Setelah 24 jam larutan NaOh dalam botol diambil 5ml, masukkan kedalam
erlemeyer dan tambahkan 2,5 ml larutan BaCl2. Tetesi 2 tetes phenolptalin
dan selanjutnya lakukan titrasi dengan HCl 0,05 N. Titrasi dihentikan
setelah warna merah tepat hiolang. Ulangi titrasi 3x dan ambil hasil rata-

-

ratanya
Dari hasil titrasi tersebut hitunglah banyaknya CO2 yang dibebaskan pada

-

respirasi kecambah tersebut pada temperature yang berbeda
Lakukan nuga titrasi dengan menggunakan larutan NaOH blanko (tanpa
kecambah/ kontrol)

BAB III
HASIL DAN PEMBAHASAN
Adapun hasil yang diperoleh dari praktikum kali ini adalah:
3.1. HASIL
Hasil yang diperoleh dari perhitungan terhadap suhu blanko, suku kamar
dan suhu kulkas, maka:
Diketahui suhu blanko = 44,6 sebagai standar perhitungan bagi suhu
kamar dan suhu kulkas.
Untuk suhu kamar dengan rumus:

Mol HCL blanko – ml HCL kecambah = Δ0 ml HCL
Mol HCL = Δml HCL x kHCL (0,05)
Mol CO2 x Bm CO2 (44)
44,6 – 31 = 13,6
Mol HCL = 13,6 x 0,05 = 0,68
Mol CO2 = 2 (0,68)
= 1,36
gr CO2 = 1,36 x 44
= 59,84
Untuk suhu kulkas dengan rumus:
Mol HCL blanko – ml HCL kecambah = Δ0 ml HCL
Mol HCL = Δml HCL x kHCL (0,05 N)
Mol CO2 = 2 mol HCL
gr CO2 = mol CO2 x Bm CO2 (44)
Δ Mol HCL = 44,6 – 34,5 = 10,1
Mol CO2 = 2 (0,505)
= 1,01
gram CO2 = 1,01 x 44
= 44,44
3.2. PEMBAHASAN
Jadi, dari hasil yang diperoleh dapat diketahui suhu blanko tanpa diberi
perlakuan dengan kecambah, suhu diperoleh sebesar 44,6. Untuk suhu kamar

dengan diberikan perlakuan dengan kecambah diperoleh hasil gr CO2 = 59,84 , Δ0
ml HCL = 13,6 , mol HCL = 0,68 dan mol CO2 1,36.
Untuk suhu kulkas yang diberi perlakuan sama dengan suhu kamar, hanya
saja pada suhu kulkas diberi perlakuan, selama 24 jam diletakan dilemari es, lalu
ketiga perlakuan ini dilakukan titrasi dan diperoleh hasil untuk suhu kulkas,
Δ0 mol HCL = 10,1
Mol HCL = 0,505
Mol CO2 = 1,01
gram CO2 = 1,01 x 44
= 44,44

BAB IV
KESIMPULAN DAN SARAN
Jadi, dari ketiga perlakuan yang dilakukan sesuai prosedur praktikum,
untuk mengamati dan mengetahui pengaruh suhu terhadap kecepatan respirasi
kecambah sesuai hasil yang diperoleh yaitu:
Suhu blanko =

suhu kamar

=

suhu kulkas

gram CO2

=

gram CO2

=

gram CO2

44,6

<

59,84

>

44,44

Diharapkan pada praktikum yang selanjutnya dapat dilengkapi dengan alat
dan bahan yang lengkap, sehingga setiap masing-masing kelompok dapat
menggunakan alat yang dibutuhkan sehingga tidak menghambat jalannya
praktikum, terutama untuk kebutuhan air yang terbatas, karena air sangat
dibutuhkan untuk membersihkan peralatan laboratorium yang digunakan

PRAKTIKUM KE-4
JARINGAN PENGANGKUT AIR

BAB I
PENDAHULUAN

1.1. LATAR BELAKANG
Pada tumbuhan berpembuluh, pengangkutan air serta garam tanah maupun
hasil fotosintesi dilakukan oleh jaringan pembuluh yang terdiri dari dua kelompok

sel yang asallnya sama namun berbeda bentuk, struktur dinding, serta isi sel nya.
Kedua kelompok sel tersebut adalah :
-

Xylem fungsi utamanya adalah mengangkut air dari tanah serta zat yang

-

terlarut didlaamnya ke bagian tumbuhan.
Floem fungsi utamanya adalah mengangkut zat makanan hasil fotosintesis.
Baik kelompok sel xylem maupun kelompok sel floem membentuk berkasi

dalam tubuh tumbuhan dan biasanya sejajar dengan sumbu organ yang
menjaditempatnya. Pada batang, berkas xylem umumnya bergabung dengan
berkasi floem dalmam satu ikatan berkas pembuluh. Kombinasi xylem dan floem
itu membentuk sistem jaringan pembuluh yang sinambung diseluruh tubuh
tumbuhan, termasuk semua cabang dan akar.
Xylem merupakan suatu jaringan pengangkut yang kompleks dan terdiri
dari berbagai macam bentuk sel.
Pada umumnya sel-sel penyusun xylem merupakan sel-sel yang telah mati
dengan dinding sel yang sangat tebal dan tersusun dari lignin yang juga berfungsi
sebagai penguat.
1.2. TUJUAN PRAKTIKUM
Untuk mengamati jaringan pengangkut air pada tumbuhan tingkat tinggi.

BAB II
METODE PRAKTIKUM
2.1. WAKTU DAN TEMPAT
Praktikum ini dilaksanakan pada hari selasa,
Klimatologi Fakultas Pertanian, Universitas Jambi.
3.3. ALAT DAN BAHAN

Oktober 2015 diLab.

-

-

Alat
Pisau potong
Botol bening (5 botol)
Gelas ukur
Spidol permanen
Bahan
Cabang tanaman allamanda catartica (bagian ujung dengan diameter,

jumlah ruas, jumlah daun dan umur yang sama).
Aquades
Vaselin
Gabus penutup botol
2.2. PROSEDUR KERJA
- Isi botol dengan air ¾ dari volumenya.
- Pilih ujung tanaman yang sama ; panjangnya, diameternya, jumlah ruas,
-

jumlah daun dan umurnya.
Kupas kulit dan kambiumnya kira-kira 2 cm dari pangkalnya.
Siapkan gabus penutup botol dan di lubangi ditengahnya untuk
memasukan tanaman dan perkirakan pangkal tanaman tersebut masuk

-

kedalam botol kira-kira 1cm dari dasar botol.
Setelah tanaman dimasukan ke lubang gabus, bagian xylem ditutup dengan
vaselin (dari floem di biarkan terbuka) dan segera dimasukan ke dalam

-

botol yang telah diisi dengan air.
Olesi dengan vaselin gabus penutup botol hingga tidak terjadi kebocoran

-

(penguapan air melalui celah botol)
Seperti perlakuan (e), tetapi yang ditutup floemnya (sedangkan xylem

-

dibiarkan terbuka).
Tandai permukaan tinggi air pada botol dengan spidol. Bila airnya
berkurang, tambahakan air dengan mengunakan gelas ukur sampai
ketinggian semula. Catatlah jumlah air yang ditambahkan, selain itu juga
perhatikan keadaan morfologi tanaman pada setiap pengamatan (misalnya,
terbentuk akar, layu, dan lain-lain).

BAB III
HASIL DAN PEMBAHASAN
3.1. HASIL
No

Perlakuan

Jumlah penambahan

.
1
2
3
4

Xylem
Floem
Kontrol
Xylem/floem

3/4
3/4
3/4
3/4

No

Perlakuan

Jumlah penambahan

.
1
2
3

Xylem
Floem
Kontrol

5,2
13,2
-

Keadaan tanaman
Tinggi
Jumlah daun
14
14
14
14

8
8
8
8

Keadaan tanaman
Tinggi
Jumlah daun
-

6
8
4/mati

4

Xylem/floem

5,4

-

3

3.2. PEMBAHASAN
Jadi, dari hasil yang diperoleh dapat diketahui bahwa perlakuan xilem/
floem ditutup terdapat 3 jumlah daun dengan penambahan air 5 ml dengan tinggi
awal dari bahan Alamanda 14cm. Pada perlakuan xilem mengalami penambahan
air yang significan dengan hasil 13,2 ml dengan jumlah 8 daun. Pada perlakuan
control dengan tinggi 14 cm tanaman Alamanda layu dan mati dengan 4 daun layu
menghitam. Pada perlakuan floem

dengan tinggi 14 cm mengalami 5,2 ml

dengan jumlah 6 daun.

BAB IV
KESIMPULAN DAN SARAN
Jadi, dari hasil praktikum yang dilakukan dapat disimpulkan bahwa setiap
perlakuan yang diberikan pada bahan Alamanda mengalami perubahan dan
keadaan tumbuh pada bentuk semula. Maka dapat dilihat sistem jaringan
pembuluh ditubuh tumbuhan terbentuk dari kombinasi xilem dan floem.
Diharapkan praktikum yang dilaksanakan dapat dilakukan dengan hati-hati
dan sesuai prosedur.

PRAKTIKUM KE-5
PENETAPAN POTENSIAL AIR JARINGAN TUMBUHAN

BAB I
PENDAHULUAN
1.1. LATAR BELAKANG
Keadaan fisiologi aktif dalam satu individu sel dan seluruh sel-sel dalam
tumbuhan bergantung pada beberapa keadaan yang relatif konstan, salah satunya
adalah keseimbangan air. Potensial kimia air atau biasanya dinyatakan sebagai
potensial air (ψ = Psi) pentingnya untuk diketahui agar dapat mengerti pergerakan
air di dalam sistem tumbuhan, tanah dan udara. Potensial air adalah perbedaan
dalam energi bebas atau potensial kimia per satuan molal volume antara air murni
pada tekanan atmosfer adalah nol, dan potensial air di dalam sel dan larutan
kurang dari nol atau negatif.
Komponen-komponen potensial air sel atau jaringan adalah sebagai berikut:
Dimana : ψw = ψs+ψp+ψm
Ψw= potensial air suatu sel tumbuhan
Ψs = potensial osmotik
Ψp = potensial tekanan

Ψm= potensia matriks

Potensial osmotik adalah potensial yang disebabkan oleh zat-zat terlarut,
tandanya selalu negatif. Potensial tekanan adalah potensial yang disebabkan oleh
tekanan hidrostatik isi sel pada dinding sel, penilainyanya selalu di tandai dengan
bilangan positif atau dapat juga negatif. Penambahan tekanan (terbentuk tekanan
turgor) mengakibatkan potensial tekanan lebih positif.
1.2. TUJUAN PRAKTIKUM
Mengukur nilai potensial air larutan umbi kentang

BAB II
METODE PRAKTIKUM
2.1. WAKTU DAN TEMPAT
Praktikum ini dilaksanakan pada hari selasa,

Oktober 2015 diLab.

Klimatologi Fakultas Pertanian, Universitas Jambi.
2.2. ALAT DAN BAHAN
-

-

Alat
Pisau silet
Timbagan analitik
12 buah gelas piala
Tissue
Bahan
Umbi kentang (solanum tuberosum)
Larutan sukrosa

2.3. PROSEDUR KERJA
- Siapkan 12 tabung reaksi/gela piala (150 atau 250 ml), masing-masing
diisi 100 ml dan larutan berikut : air destilata; 0,05; 0,10; 0,15; 0,20; 0,25;
0,30; 0,40;

-

Tahap-tahap ini harus dilakukan dengan cepat. Buatlah 12 balok umbi
kentang dalam pisau silet dengan panjang 4 cm, hilangkan bagian kulitnya.

-

Letakkan di dalam sebuah wadah tertutup.
Dengan pisau silet, potonglah setiap balok kentangmenjadi insan-insan

-

tipis dengan tebal 1-2 mm.
Bilas irisan kentang dengan air destilata dengan cepat, keringkan dengan
kertas dan kemudian di timbang. Selanjutnya masukkan kedalam salah
satu larutan sukrosa yang telah dipisahkan. Lakukan ini pada tiap-tiap

-

silinder kentang untuk masing-masing larutan sukrosa berikutnya.
Setelah tepat 30 jam direndam, keluarkan irisan-irisan tersebut dari
masing-masing tabung, lalu keringkan dengan kertas dan timbang.
Lakukan ini untuk semua contoh percobaan.
Untuk menghitung perubahan berat, gunakan rumus :
perubahan berat=

berat akhir−bera t awal
x 100
berak awal

BAB III
HASIL DAN PEMBAHASAN
3.1. HASIL
No

Perlakuan

Berat awal

Berak akhir

Persen (%)

.
1
2
3
4
5
6
7
8
9
10
11

Aquades
Sukrosa 0,05
Sukrosa 0,10
Sukrosa 0,20
Sukrosa 0,25
Sukrosa 0,30
Sukrosa 0,50
Sukrosa 0,40
Sukrosa 0,45
D3
A3

0,4
0,4
0,3
0,3
0,3
0,6
0,5
0,4
0,6
0,6
0,5

0,5
0,4
0,3
0,2
0,3
0,6
0,4
0,4
0,6
0,6
0,3

25
0
0
-33
0
0
-33
0
0
0
-40

3.2. PEMBAHASAN
Jadi, dari hasil diperoleh dapat diketahui bahwa dengan perlakuan diatas
seperti pemberian dan perendaman didalam aquades selama 30 menit terjadi
perubahan dari berat awal 0,4 menjadi 0,5. Pada pemberian dan perendaman
sukrosa 0,05; 0,10; 0,25; 0,6; 0,40; 0,45; D3 tidak terjadi perubahan berat pada
bahan yang digunakan yaitu irisan dari umbi kentang. Sedangkan pada pemberian
dan perendaman pada sukrosa 0,20; 0,50; A3 mengalami penurunan berat pada
bahan yang digunakan dari berat awal saat ditimbang.

BAB IV
KESIMPULAN DAN SARAN
Jadi, dapat disimpulkan bahwa dalam perlakuan terhadap pengukuran nilai
potensial air larutan umbi kentang dapat dipengaruhi dengan konsentrasi larutan
dari tingkat molar larutan sukrosa yang berbeda-beda. Dan dari hasil yang
diperoleh kita dapat mengetahui presentase perubahan awal dan berat akhir
berdasarkan konsentrasi larutan sukrosa yang diberikan terhadap perlakuan pada
bahan yang digunakan yaitu umbi kentang.
Diharapkan pada saat praktikum berlangsung untuk setiap kelompok
diawasi dan dituntun apabila ada kesulitan ditengah berlangsungnya praktikum.

PRAKTIKUM KE-6
PENGARUH OSMOTIK KONSENTRASI GARAM HARA
TERHADAP ABSORBSI AIR DAN PERTUMBUHAN
TANAMAN

BAB I
PENDAHULUAN

1.1. LATAR BELAKANG
Akar mengabsorbsi air dengan cara osmosis. Oleh karena itu absorbsi air
oleh tanaman mungkin dilakukan dengan mengendalikan potensial air larutan
dimana akar itu berada. Jika potensial osmotik larutan luar lebih rendah dari
potensial osmotik sel-sel akar, maka air dapat masuk dari larutan luar ke dalam
sistem akar. Dengan meningkatnya konsentrasi zat-zat terlarut maka masuknya air
ke dalam akar akan menjadilebih lambat sampai arah pergerakan air mungkin
akan terbalik.
Apabila potensial air larutan luar sangat rendah sehingga menghambat
absorbsi air oleh akar maka akibatnya pertumbuhan tanaman akan terhambat.
Mengembangnya sel selama proses pembesaran terjadiakibat tekana air yang
masuk sebagai respon terhadap potensial air. Air yang masuk ini akan menekan
dinding sel ke arah luar, sehingga dinding sel merentang menjadilebih besar.
Pada percobaan 3 ini, walaupun akar terendam dalam larutan, tanaman
tidak mampu menyerap cukup air, karena beda potensial air tidak cukup besar
antara larutan diluar dengan didalam akar. Keadaan ini disebut kekeringan
fisiologis. Berbeda dengan kekeringan karena kehabisan air, kekeringan ini
disebabkan oleh ketidak mampuan akar mengabsorbsi air karena keadaan osmotik
meskipun air tersedia cukup. Keadaan ini sering dijumpai pada tanah-tanah
dengan kadar garam tinggi dan tanah-tanah basa. Biasanya potensial osmotik
larutan tanah dari tanah-tanah pertanian baik yang irigainya sekitar 0,5 bar atau
kurang. Pada tanah-tanah beragam tinggi atau basa, konsentrasi solut sangat tinggi
sehingga potensial airnya menjadirendah. Apabila tanah-tanah seperti ini akan

dijadikan tanah pertanian, maka diperlukan langkah-langkah untuk menetralisir
kandungan garam ya tinggi terlebih dahulu sebelum ditanami.
1.2. TUJUAN PRAKTIKUM
Melihat pengaruh osmotik dari konsentrasi garam hara terhadap absorbsi
air dan pertumbuhan tanaman.

BAB II
METODE PRAKTIKUM
2.1. WAKTU DAN TEMPAT
Praktikum ini dilaksanakan pada hari selasa, 20 Oktober 2015 diLab.
Klimatologi Fakultas Pertanian, Universitas Jambi.
2.2. ALAT DAN BAHAN
- Alat
7 buah botol kultur dengan penyumbat yang telah dilubangi sebanyak 2
lubang.
Kapas
Aquades 1 botol
-

Tissue
Bahan
14 kecambah kacang hijau (Phaseolus radiatus) yang berumur 10 hari

(Media pasir)
1000 ml larutan kalsium klorida 0,5 m
2.3. PROSEDUR KERJA
- Dari larutan baku CaCl 0,5 m buatlah masing-masing 150 ml larutan 0,01;
-

0,02; 0,03; 0,05; 0,1; 0,2; dan 0,5.
Masukan masing-masing larutan ke dalam botol kultur dan beri label. Stu

-

botol dipakai sebagai kontrol isilah dengan air destilata saja.
Ambil 14 kecambah kacang hijau berumur ± 10 hari. Pilih yang sehat dan

-

baik pertumbuhannya.
Kedua lubang pada tutup botol masing-masing dimasukan 1 kecambah
kacang hijau. Untuk mengganjal tanaman agar tegak dengan akar
terendam dalam larutan pergunakan kapas. Jaga agar kapas tidak mengenai

-

larutan. Lakukan hal ini untuk semua botol kultur.
Ukur dan catat panjang batang diatas kotiledon dengan penggaris

-

milimeter.
Berilah tanda tingginya cairan pada tiap botol kultur.
Setiap 2 hari lihat keadaan cairan. Tambahkan larutan baku CaCl 2 sesuai
konsentrasi perlakuan sampai pada tingkat semula. Catatlah volume
larutan yang ditambahkan. Amati penampilan tanaman.

-

Setelah 1 minggu keluarkan tanaman dan tentukan panjang batang diatas
kotiledon, amati keadaan tanaman dan tentukan juga total larutan yang
ditambahkan.

Buatlah

tabel

yang

menunjukan

hubungan

antara

pertumbuhan batang dan banyaknya larutan yang terserap pada masingmasing perlakuan.

BAB III
HASIL DAN PEMBAHASAN
Adapun hasil yang diperoleh dari praktikum kali ini adalah:

3.1. HASIL
No

Larutan

Tanaman

Tinggi Awal

Tinggi Akhir

.
1.

Aquades

1

4,8 cm

9,6 cm

CaCl2 0,01m

2
1

4,6 cm
10 cm

10,7 cm
10, 4 cm

3.

CaCl2 0,03m

2
1

9,5 cm
10,4 cm

9,5 cm
11,4 cm

4.

CaCl2 0,05m

2
1

9,1 cm
2,8 cm

7,5 cm
11,4 cm

5.

CaCl2 0,06m

2
1

5,6 cm
4 cm

7, 5 cm
Mati

CaCl2 0,1m

2
1

3,8 cm
7,1 cm

Mati
Mati

CaCl2 0,2m

2
1

7,1 cm
4,5 cm

Mati
Mati

2

6,6 cm

Mati

2.

6.
7.

3.2. PEMBAHASAN
Jadi, dapat dilihat dari perlakuan yang dilakukan terhadap kecambah
kacang hijau yang diletakan pada larutan aquades mengalami penambahan tinggi
dari tanaman 1 = 4,8 cm menjadi 9,6 cm dan tanaman 2 = 4,6 cm menjadi 10,7
cm. Begitu pula pada kecambah yang diletakan pada larutan CaCl2 0,01 m
mengalami peningkatan dari tanaman 1 = 10 cm menjadi 10,4 cm dan tanaman 2
tidak mengalami peningkatan. Sama halnya dengan CaCl2 0,05 m juga mengalami
penambahan tinggi namun kecambah ini mengalami peningkatan yang begitu
significan yaitu tanaman 1 = 2,8 cm menjadi 11,4 cm dan tanaman 2 = 7,5 cm.
Namun berbeda halnya dengan kecambah yang diberi perlakuan dengan larutan
CaCl2 0,03 ; 0,06 ; 0,1 m ; dan 0,2 m tidak mengalami penambahan tinggi
disebabkan kecambah kayu dan mati.

BAB IV
KESIMPULAN DAN SARAN
Jadi, dapat disimpulkan bahwa pengaruh osmotik dari konsentrasi garam
hara terhadap absorbsi air dan pertumbuhan tanaman dapat dipengaruhi dari jenis

larutan dan konsentrasi larutan yang dapat memberikan pengaruh khusus terhadap
pertumbuhan tanaman seperti yang dilakukan pada praktikum terhadap
pertumbuhan kecambah kacang hijau. Apabila potensial air larutan sangat rendah
maka dapat menghambat absorbsi air oleh akar yang akibatnya pertumbuhan
tanaman akan terhambat. Dari percobaan ini akar yang terendam didalam larutan
tanaman tidak mampu menyerap cukup air karena beda potensial air tidak cukup
besar antara larutan diluar dan didalam akar.

PRAKTIKUM KE-7
AUKSIN DAN ABSISI BAGIAN ATAU ORGAN TUMBUHAN

BAB I
PENDAHULUAN

1.1. LATAR BELAKANG
Berbagai bagian atau organ tumbuhan dapat mengalami absisi
(Keguguran) misalnya daun, cabang atau ranting, daun mahkota bunga, bunga dan
buah. Proses ini berada dibawah pengaruh auksin.
Absisi daun (daun bagian tumbuhan lainnya) terjadikarena berlangsungnya
diferensiasi pada suatu lapisan sel tertentu (daerah absisi) pada pangkal petiol,
disusul dengan larutnya (hilangnya) senyawa-senyawa pektat sehingga sel-sel
terpisah satu dengan lainnya, kecuali sel-sel jaringan pembuluh. Selanjutnya daun
akan gugur secara mekanis, baik karena gaya berat maupun karena angin, hujan
dan lain-lain.
Pembentukan daerah absisi dipengaruhi oleh aliran (suplai) auksin dari
helai daun ke batang. Selama suplai auksin cukup, daerah absisi tidak terbentuk.
Tetapi jika suplai auksin ini berkurang atau hilang karena berbagai sebab (daun
menua, helaian daun rusak atau mati secara berangsur-angsur) maka daerah absisi
mulai terbentuk.
Kenyataan bahwa auksin dapat mengontrol proses absisi memungkinkan
dilakukannya tindakan-tindakan untuk mengontrol gugur daun, bunga dan buah.
Apakah suatu perlakuan dengan suatu zat pengatur tumbuh tertentu efektif untuk
mengontrol absisi bergantung pada jenis tumbuhan, waktu, konsentrasi, bentuk
auksin yang diberikan dan sebagainya. Belum ada cara yang baik untuk semua
keperluan. Prosedur yang baik haruslah dibuat untuk tujuan yang hendak dicapai
pada keadaan yang berlaku. Selain itu, perlu pula diingat bahwa auksin termasuk
senyawa yang sangat kuat (efektif pada konsentrasi rendah), sehingga perlu
dihindarkan kemungkinan pencemaran yang akan berpengaruh terhadap tumbuhan
lain.
Kini berbagai cara telah banyak digunakan pada tanaman budidaya, baik
untuk merangsang maupun menghambat absisi. Untuk mencegah absisi dau kol
pada masa panen, dapat digunakan penyemprotan 2,4-D dengan konsentrasi 25
ppm. Gugur buah apel yang sedang mengalami pematangan dapat dihambat
dengan penyemprotan NAA 5-10 ppm. Selain itu beberapa tindakan dilakukan

untuk mengurangi kandungan auksin dalam organ, sehingga absisi dipercepat.
Misalnya untuk memudahkan panen kapas secara mekanis, menjelang panen
tanaman kapas disemprot dengan senyawa tertentu yang dapat mematikan helai
daun. Lain halnya lagi dengan tanaman buah-buahan yang berbuah terlalu lebat.
Untuk mengusahakan produksi buah yang optimum (agar tanaman tidak merana).
Tanaman dapat disemprot NAA 10-20 ppm pada saat bunga meka. Diduga, bahwa
dengan perlakuan ini gugur buah muda yang normal tertunda, sehingga kemudian
terjadiabsisi buah yang lebih banyak tindakan penjarangan menjadilebih efektif.
1.2. TUJUAN PRAKTIKUM
Meneliti pengaruh auksin terhadap absisi daun.

BAB II
METODE PRAKTIKUM
2.1. WAKTU DAN TEMPAT

Praktikum ini dilaksanakan pada hari selasa, 20 Oktober 2015 diLab.
Klimatologi Fakultas Pertanian, Universitas Jambi.
2.2. ALAT DAN BAHAN
- Alat
Kertas label
Pisau silet (cutter)
Sudip untuk memberikan pasta
- Bahan
Tanaman Coleus sp dalam pot
Pasta 1AA 1000 ppm
Pasta lanolin
2.3. PROSEDUR KERJA
- Pilih 3 pasang daun (enam daun) dan potong dengan pisau silet pada
-

pangkal helai daunnya, serta biarkan petiolnya.
Bubuhkan pasta lanolin pada ujung 3 petiol, dan pasta 1AA pada ujung 3
petiollannya. Dengan demikian maka salah satu petiol dari setiap pasangan
mendapat perlakuan 1AA, sedangkan yang lainnya tidak mendapat

-

perlakuan.
Setiap petiol pada label sesuai dengan perlakuannya
Ukur panjang petiol pada saat percobaan dimulai, dan setiap minggu sekali

-

selama 3 minggu.
Catat kapan petiol gugur. Untuk ini diperlukan diadakan pengamatan
setiap 2 hari sekali.

BAB III
HASIL DAN PEMBAHASAN
Adapun hasil yang diperoleh dari praktikum kali ini adalah:
3.1. HASIL
Jenis
perlaku
an
IAA 1

Ting
gi
awal
0,6

Coleus 1
Pengukur Pengukur
an 1
an 2
1,2 cm

1,2 cm

Pengukur
an 3
Gugur

Ting
gi
awal
0,9

Coleus 2
Pengukur Pengukur
an 1
an 2
0,9 cm

1 cm

Pengukur
an 3
Gugur

IAA 3

cm
0,3
cm
1 cm

Vaselin
1
Vaselin
2
Vaselin
3

0,5
cm
0,7
cm
1,2
cm

IAA 2

0,5 cm

Gugur

Gugur

1 cm

1 cm

1,2 cm

Gugur

Gugur

Gugur

0,8 cm

Gugur

Gugur

1,2 cm

1,3 cm

Gugur

cm
0,8
cm
1,5
cm
1,3
cm
0,6
cm
1,3
cm

Gugur
1,5 cm

Gugur
1,5 cm

Gugur
1,5 cm

Gugur

Gugur

Gugur

0,6 cm

0,7 cm

Gugur

1,3 cm

1,3 cm

Gugur

3.2. PEMBAHASAN
Jadi, dari hasil yang diperoleh dapat dilihat bahwa pada tanaman coleus 1
dengan perlakuan IAA 1 dengan tinggi awal 0,6 cm mengalami penambahan
tinggi pada pengukuran 1 dan 2 dengan tinggi 1,2 cm, namun pada pengukuran
ke-3 tanaman coleus mati. Sedangkan pada coleus 2 dengan perlakuan yang sama
tidak mengalami tinggi pada pengukuran ke-1 namun mengalami penambahan
tinggi pada pengukuran ke-2 dan gugur pada pengukuran ke-3. Pada perlakuan
IAA 2 coleus 1 hanya mengalami penambahan tinggi pada pengukuran ke-1 dan
selanjutnya gugur. Sedangkan coleus 2 gugur dari awal. Namun, sangat berbeda
pada perlakuan IAA 3 karena pada coleus 1 dan 2 tetap hidup dan tidak
mengalami penambahan tinggi yang significan. Untuk perlakuan Vaselin 1 coleus
1 dan 2 gugur. Pada perlakuan Vaselin 2 coleus mengalami penambahan tinggi
pada pengukuran 1 dan gugur dipengukuran ke-2, begitupun pada coleus 2 dengan
perlakuan yang sama dan gugur pada pengukuran ke-3. Pada perlakuan Vaselin 3
coleus 1 dengan tinggi 1,2 cm mengalami penambahan tinggi pada pengukuran
ke-2 dan gugur dipengukuran ke-3. Sedangkan pada coleus 2 dengan tinggi 1,3
tidak mengalami penambahan tinggi pada pengukuran ke-2 dan gugur
dipengukuran ke-3.

BAB IV
KESIMPULAN DAN SARAN
Jadi, dapat disimpulkan bahwa perlakuan yang diberikan kepada tanaman
coleus dengan perlakuan yang berbeda dapat mempengaruhi auksin pada tanaman
yang akan menghambat pembentukan daerah absisi karena sel alami tumbuhan.
Pemberian IAA berpengaruh terhadap proses absisi karena IAA mampu
menghambat proses pembentukan daerah absisi daun, sehingga proses

pengguguran daun lebih lama. Diharapkan dalam praktikum ini dilaksanakan
dengan serius dan melaksanakannya sesuai dengan buku panduan dan prosedur
kerja yang telah diarahkan.

DAFTAR PUSTAKA
Anonim,___2015 http://blogtaria.blogspot.co.id/2015/03/pengaruh-zat-pengaturtumbuh-terhadap.html
Anonim,_____2012

http://elfajr24.blogspot.co.id/2012/08/laporan-praktikum-

fisiologi-tumbuhan_3871.html
Anonim,

2014

http://andialdiempe.blogspot.co.id/2014/01/laporan-praktikum-

fisiologi-tumbuhan_2841.html

Anonim,____http://dokumen.tips/documents/pengaruh-suhu-terhadap-kecepatanrespirasi-kecambah.html
Wordpress,_____2012

https://yuerna25.wordpress.com/2012/12/22/penentuan-

potensial-air-jaringan-tumbuhan/
Wordpress,_2010 https://arcturusarancione.wordpress.com/2010/06/28/penetapanpotensial-air-jaringan-tumbuhan/
Anonim,______2012http://hbwhiteningoriginalindonesia.blogspot.co.id/2012/03/l
aporan-praktikum-pengaruh-osmotik.html
Anonim,__________2014

http://andialdiempe.blogspot.co.id/2014/01/laporan-

praktikum-fisiologi-tumbuhan_12.html
Anonim,___2015

http://andyfahreza.blogspot.co.id/2015/03/laporan-pratikkun-

fisiologi-tumbuhan_80.html

LAMPIRAN