ISOLASI DAN MODIFIKASI SENYAWA ARTONIN-E DARI Artocarpus rigida MENGGUNAKAN AlCl3 (ISOLATION AND MODIFICATION OF ARTONIN-E COMPOUND FROM Artocarpus rigida USING AlCl3)

ABSTRAK

ISOLASI DAN MODIFIKASI SENYAWA ARTONIN-E DARI
Artocarpus rigida MENGGUNAKAN AlCl3

Oleh

Mychell Dendiko Pratangga

Artocarpus rigida merupakan salah satu spesies Artocarpus dari famili Moraceae
yang dikenal dengan nama kenangkan. Tumbuhan ini diketahui sebagai sumber
utama senyawa derivat flavonoid, dan juga memiliki aktivitas biologi sebagai
antibakteri, antikanker, dan lain-lain. Penelitian ini bertujuan untuk mengisolasi
dan memodikasi senyawa artonin-E yang terkandung dalam kulit batang
tumbuhan A. rigida yang diperoleh dari Desa Keputran Kecamatan Sukoharjo
Kabupaten Pringsewu. Tahapan penelitian yang dilakukan meliputi persiapan
sampel kemudian ekstraksi, isolasi, pemurnian, dan modifikasi senyawa
menggunakan AlCl3, sedangkan analisis struktur molekul senyawa ditentukan
berdasarkan data fisika dan spektroskopi (UV dan IR). Hasil penelitian
menunjukkan bahwa telah berhasil diisolasi dan diidentifikasi senyawa flavonoid,
artonin-E dari kulit batang tumbuhan kenangkan (A. rigida), selanjutnya

dimodifikasi menggunakan AlCl3, membentuk komplek AlCl3–artonin-E dengan
adanya puncak serapan IR pada daerah 1369 cm-1 menunjukkan adanya gugus Al
yang membentuk kompleks dengan gugus hidroksil pada posisi C5 dan gugus
karbonil (C=O) dari artonin-E, sedangkan pada panjang gelombang 841 cm-1
merupakan serapan dari ikatan Al-OH. Terbentuknya kompleks ditunjukkan pula
dari spektrum UV yang menunjukkan serapan maksimum pada maks 278 nm dan
405 nm.

ABSTRACT

ISOLATION AND MODIFICATION OF ARTONIN-E COMPOUND
FROM Artocarpus rigida USING AlCl3

By

Mychell Dendiko Pratangga

Artocarpus rigida is one of the Artocarpus species of Moraceae family, also
known as kenangkan. This plant is known as a major source of flavonoid
compound derivatives, and also has biological activities as antibacterial,

anticancer, and other. This research aimed to isolate and modificate the artonin-E
compound contained in the stem bark of A. rigida plant obtained from Keputran
village, Pringsewu, Sukoharjo district. Stages of the research was conducted on
the sample preparation and then the extraction, isolation, purification, and
modification of compounds using AlCl3, whereas analysis of the molecular
structure of the compound is determined based on the data of physics and
spectroscopy (UV and IR). The result of the research show that a flavonoid
compound, artonin-E, have been isolated and identified from the stem bark of
Kenangkan plant (A. rigida). Next, the artonin-E compound is modified using
AlCl3, forms an AlCl3-artonin-E complex with analysis of the absorption peak at
1369 cm-1 area shows the Al group that make up the complex with hydroxyl group
at the C5 position and the carbonyl group (C=O) of artonin-E, at wavelength 841
cm-1 is the absorption of the Al-OH bond. The formation of complex also shown
from the UV spectrum that showed maximum absorption at maks 278 nm and 405
nm.
Key Words : Isolation and modification, artonin-E, complex artonin-E-AlCl3.

i

DAFTAR ISI

Halaman
DAFTAR ISI .................................................................................................... iii
DAFTAR TABEL ............................................................................................ iv
DAFTAR GAMBAR ....................................................................................... v
I.

PENDAHULUAN ............................................................................... 1
A. Latar Belakang ............................................................................... 1
B. Tujuan Penelitian ........................................................................... 4
C. Manfaat Penelitian ......................................................................... 4

II.

TINJAUAN PUSTAKA ...................................................................... 5
A. Moraceae ........................................................................................ 5
B. Artocarpus ...................................................................................... 6
1. Kenangkan (Artocarpus rigida) ............................................... 7
2. Senyawa Flavonoid .................................................................. 9
2.1.Klasifikasi Flavonoid ........................................................ 9

2.2.Biosintesis Flavonoid ........................................................ 11
2.3.Flavonoid pada Artocarpus rigida .................................... 13
3. Manfaat Flavonoid ................................................................... 13
C. Ekstraksi dan Isolasi Flavonoid ..................................................... 14
1. Pemisahan Senyawa Secara Kromatografi................................ 15

ii

1. 1 Kromatografi Lapis Tipis (KLT) ....................................... 16
1. 2. Kromatografi Cair Vakum (KCV).................................... 17
1. 3. Kromatografi Kolom (KK) ............................................... 18
1. 4. Kromatografi Flash ........................................................... 19
2. Analisis Kemurnian................................................................... 20
D. Transformasi Senyawa Flavonoid .................................................. 21
1. Modifikasi Gugus Fungsi ......................................................... 22
2. Pereaksi AlCl3 .......................................................................... 23
3. Efek AlCl3 ................................................................................ 23
E. Identifikasi Senyawa dan Penentuan Struktur ............................... 25
1. Identifikasi Secara Spektroskopi ............................................... 25
1.1 Spektroskopi Inframerah (IR) ............................................ 26

1.2 Spektroskopi Ultraungu-tampak (UV-VIS) ....................... 27
III.

METODELOGI PENELITIAN ........................................................... 30
A. Waktu dan Tempat Penelitian ........................................................ 30
B. Alat dan Bahan ............................................................................... 30
1. Alat-alat yang digunakan ................................................... 30
2. Bahan-bahan yang digunakan ............................................ 31
C. Prosedur Penelitian ........................................................................ 31
1. Pengumpulan dan persiapan sampel .................................. 31
2. Ekstraksi dengan metanol .................................................. 32
3. Kromatografi Cair Vakum (KCV) ..................................... 32
4. Kromatografi Flash ............................................................ 33
5. Kromatografi Lapis Tipis (KLT) ....................................... 33

iii

6. Kromatografi Kolom (KK) ................................................ 34
7. Analisis kemurnian............................................................. 34
8. Modifikasi gugus fungsi dengan pereaksi AlCl3 ................ 35

9. Spektrofotometri Inframerah (IR) ...................................... 36
10. Spektrofotometri Ultraungu-tampak (UV-VIS) ................. 36
IV.

HASIL DAN PEMBAHASAN ............................................................ 37
A. Isolasi Senyawa Flavonoid............................................................. 37
B. Penentuan Titik Leleh .................................................................... 45
C. Analisa Spektrofotometri ............................................................... 46
1. Analisis Spektrofotometri Ultraviolet-tampak ................... 46
2. Analisis Spektrofotometri Inframerah ............................... 52
D. Modifikasi Gugus Fungsi ............................................................... 54

V.

SIMPULAN DAN SARAN ................................................................. 62
A. Simpulan ........................................................................................ 62
B. Saran............................................................................................... 63

DAFTAR PUSTAKA

I. PENDAHULUAN

A. Latar Belakang

Indonesia dikenal sebagai negara yang kaya akan keanekaragaman hayati
(biodiversity). Hampir semua jenis tumbuhan dapat tumbuh di wilayah negeri
ini. Hal itu juga berarti, yang memungkinkan terkandung di dalamnya
keanekaragaman senyawa kimia (chemodiversity). Keragaman jenis tumbuhan
menjadi salah satu sumber senyawa organik yang dapat dimanfaatkan dalam
kehidupan, tidak hanya digunakan sebagai bahan pangan ataupun untuk dinikmati
keindahannya saja, tapi dapat juga bermanfaat dalam bidang kesehatan.

WHO (World Health Organization) pada tahun 1985 memprediksi bahwa
sekitar 80% penduduk dunia telah memanfaatkan tumbuhan obat untuk
pemeliharaan kesehatan primernya (Peters and Whitehouse, 2000). Kandungan
senyawa kimia yang beragam pada berbagai tumbuhan dijumpai secara tersebar
ataupun terpusat pada organ tubuh tumbuhan seperti daun, bunga, buah, biji, akar,
rimpang, atau kulit batang (Hornok, 1992).

Di Indonesia spesies tumbuhan yang banyak dimanfaatkan sebagai obat salah

satunya berasal dari famili Moraceae. Beberapa genus yang terpenting dari
famili Moraceae di antaranya Ficus, Artocarpus, Morus, dan Cudraina (Achmad,
1986).

2

Artocarpus adalah salah satu genus penting dari Famili Moraceae. Tumbuhan
kelompok ini tersebar luas di daerah tropika dan subtropika. Pemanfaatan
tumbuhan Artocarpus sebagai obat tradisional secara konvensional telah banyak
dilakukan oleh masyarakat dan mengingat tumbuhan Artocarpus banyak
mengandung senyawa flavonoid yang berpotensi sebagai senyawa obat
(Nurachman, 2002), maka perlu dilakukan penelitian terhadap tumbuhan
Artocarpus.

A. rigida atau A. rigidus yang dikenal sebagai buah kenangkan sudah pernah
diteliti sebelumnya, dan diperoleh beberapa derivat flavonoid seperti artonin E,
sikloartobilosanton, dan artobilosanton (Nomura et al., 1990). Di dalamnya juga
telah diketahui kandungan derivat flavonoid lain yang telah dimanfaatkan sebagai
obat untuk asma-bronkitis dan sebagainya.

Sampel yang digunakan pada penelitian ini adalah kulit batang tumbuhan
kenangkan. Pemilihan kulit batang tumbuhan kenangkan (A. rigida) pada
penelitian ini dikarenakan pada kulit batang diperkirakan memiliki senyawa hasil
metabolit sekunder yang lebih bervariasi dan lebih kompleks. Hal ini disebabkan
karena bagian batang merupakan bagian yang digunakan oleh tumbuhan untuk
berinteraksi secara langsung dengan lingkungan dalam memenuhi kelangsungan
hidup tanaman.

Jumlah kandungan senyawa metabolit sekunder dalam tumbuhan terdistribusi
pada berbagai bagian tumbuhan, dan dalam masing-masing bagian itu
mempunyai jenis dan kuantitas senyawa yang relatif tidak sama (Mursito, 2002).
Dengan memperhatikan faktor di atas maka akan dilakukan penelitian terhadap

3

tumbuhan kenangkan (A. rigida) yang tumbuh di desa Keputran Sukoharjo
Kabupaten Pringsewu Lampung.

Pada penelitian terdahulu, dilaporkan satu jenis senyawa flavonoid, yaitu berupa
senyawa Artonin-E yang memiliki aktivitas sebagai antikanker, yang berhasil

diisolasi dan dikarakterisasi dari tumbuhan A. rigida. Sedangkan pada penelitian
kali ini akan digunakan pelarut metanol (MeOH). Karena mempunyai sejumlah
gugus hidroksil atau suatu gula, flavonoid merupakan senyawa polar, dan seperti
prinsipnya “suatu golongan akan melarutkan golongannya sendiri”, maka
umumnya flavonoid larut cukup banyak dalam pelarut polar seperti metanol
(Markham, 1988).

Senyawa hasil isolasi yang didapat berupa kristal murni dari senyawa artonin-E
masih memiliki beberapa kelemahan di antaranya senyawa tersebut kurang stabil
dan mudah teroksidasi. Oleh sebab itu pada penelitian kali ini akan dilakukan
modifikasi gugus fungsi terhadap senyawa artonin-E dengan menggunakan
pereaksi aluminium triklorida (AlCl3) agar didapat senyawa komplek yang
nantinya diharapkan memiliki aktivitas yang lebih baik dari hasil isolasi
sebelumnya sebagai anti kanker.

4

B. Tujuan Penelitian
Tujuan penelitian ini adalah
1. Mengisolasi senyawa artonin-E dari kulit batang tumbuhan Kenangkan

(Artocarpus rigida) yang tumbuh di Desa Keputran Sukoharjo Kabupaten
Pringsewu Provinsi Lampung.
2. Modifikasi senyawa artonin-E menjadi komplek artonin-E-AlCl3.

C. Manfaat Penelitian
Hasil penelitian ini diharapkan dapat memberikan informasi mengenai
transformasi flavonoid membentuk senyawa komplek artonin-E-AlCl3.

5

II. TINJAUAN PUSTAKA

Secara tradisional kimia bahan alam berhubungan dengan isolasi, penentuan
struktur, dan sintesis senyawa-senyawa organik yang berasal dari sumber alam
hayati. Namun, isolasi, penentuan struktur, dan sintesis bukanlah akhir kegiatan
kimia bahan alam. Dengan berkembangnya tekhnik-tekhnik spektroskopi maka,
saat ini, penentuan struktur senyawa-senyawa alam bioaktif merupakan titik awal
semata. Penjelasan tentang interaksi antar molekul, substrat yang kecil, dengan
reseptor biopolimer pada tingkat molekuler adalah langkah-langkah
berikutnya.Contoh mengenai perkembangan kimia bahan alam akan
dikemukakan, termasuk penelitian ini yang berhubungan dengan tumbuhan
tropika famili Moreceae yang endemik Indonesia (Achmadet al., 2006).

A. Moraceae

Salah satu famili tumbuhan di hutan tropis yang berpotensi sebagai sumber bahan
kimia bioaktif dan jumlahnya relatif besar adalah Moreceae yang terdiri dari 60
genus yang meliputi 1400 spesies (Hakimet al., 2006).Tumbuhan yang termasuk
pada famili Moraceae merupakan tumbuhan yang berbatang, berkayu, dan
menghasilkan getah. Daun tunggal duduk tersebar, seringkali dengan daun
penumpu besar yang memeluk batang atau merupakan suatu selaput bumbung.
Bunga telanjang atau dengan tenda bunga, berkelamin tunggal. Buah berupa buah

6

keras, seringkali terkumpul, merupakan buah majemuk atau buah semu
(Tjitrosoepomo, 1994). Genus utama dari famili Moraceae adalah Artocarpus,
berdasarkan studi literatur diketahui bahwa sejumlah spesies Artocarpus telah
menghasilkan senyawa fenolik terprenilasi, khususnya flavonoid dengan variasi
struktur yang beragam seperti flavonon, flavon, santon, adduct Diels-Alder,
calkon, serta stilbena. Gugus prenil pada flvonoid tersebut ada pada posisi C-3
dan cincin B teroksigenasi pada posisi C-4’ atau C-2’, C-4’ dan C-2’, C-4’,C-5’.
Selain itu prenilasi juga dapat terjadi pada posisi C-6, C-8, dan C-3’. Pola yang
demikian sangat jarang ditemukan pada famili selain Moreceae. Struktur
flavonoid pada Artocarpus menghasilkan efek fisiologi yang luas sebagai
promotor antitumor, antibakteri, antifungal, antiinflamatori, antikanker dan lainlain (Hakimet al., 2006).

B. Artocarpus

Tumbuhan Artocarpus merupakan salah satu genus dari tumbuhan famili
Moreceae. Tumbuhan dari genus ini terdiri 50 species dan 40 species diantaranya
terdapat di Indonesia. Tumbuhan ini digunakan oleh masyarakat sebagai bahan
bangunan (kayu batang), dan bahan makanan (buah) (Hakimet al., 2006).Genus
Artocarpus tidak hanya dimanfaatkan buahnya sebagai bahan pangan atupun
batangnya sebagai bahan bangunan, tetapi kulit batang dan daunnya juga
dimanfaatkan sebagai obat tradisional, misalnya untuk obat demam, disentri, atau
malaria. Kandungan senyawa metabolit sekunder digunakan untuk mengatasi
berbagai penyakit yang disebabkan oleh berbagai mikroorganisme seperti bakteri
dan virus (Herbert,1996). Beberapa spesies yang termasuk dalam Genus

7

Artocarpus antara lain cempedak (A. champeden), keluwih (A. altilis), benda (A.
elastica) dan salah satu species tumbuhan dalam genus Artocarpus yang belum
diteliti seluruh bagiannya adalah buah kenangkan (A. rigida )(Hernawan, 2008).

1. Kenangkan(Artocarpus rigida)

Tumbuhan ini merupakan tumbuhan hutan, mempunyai batang yang kokoh,
dengan tinggi dapat mencapai 20 m, berkayu keras, kulit kayunya berserat kasar
dan menghasilkan getah yang banyak. Daunnya tidak lebar, menjalar dan berbulu
kasar. Buahnya yang masih muda berwarna kuning pucat, apabila buah tersebut
sudah masak menjadi berwarna lembayung. Buah ini bisa dimakan tetapi
memiliki rasa yang masam dan kurang enak.Dalam taksonomi, tumbuhan ini
diklasifikasikan sebagai berikut :
Superregnum

: Eukaryota

Regnum

: Plantae

Divisi

: Magnoliophyta

Kelas

: Magnoliopsida

Ordo

: Urticales

Famili

: Moraceae

Sub famili

: Artocarpeae

Genus

: Artocarpus

Spesies

: Artocarpus rigidus atau Artocarpus rigida

Sumber :Tjitrosoepomo (1993).

8

Nama lain dari buah ini adalah peusar atupun tempunik (Rukmana, 1997). Saat ini
sudah sangat sulit untuk menemukan tumbuhan ini, karena itu tumbuhan ini dapat
dikategorikan sebagai tumbuhan langka. Buah ini dikenal di masyarakat dengan
nama yang berbeda-beda. Pohon dan buah ini dikenal dengan nama mandalika.Di
Sukoharjo Pringsewu buah ini dikenal dengan nama kenangkan karena memiliki
ciri-ciri yang sifatnya mirip dengan nangka.

Gambar 1. Batang Utama Tumbuhan Kenangkan ( A. Rigida)

Analisis senyawa kimia dari akar A. rigidatelah berhasil didapatkan senyawa
dengan struktur senyawa fenolik. Termasuk dua senyawa baru dengan kerangka
flavonoid yang dimodifikasi yaitu 7-demitoartonol E dan kromon artorigidus,
bersama dengan beberapa senyawa fenolik yang telah diketahui meliputi santon

9

ortonol B, flavonoid sikloartobilosanton, dan santon artoindoesianin C.
Senyawasanton artoindoesianin C ini mempunyai aktivitas sebagai antiplasmodial
terhadap Plasmodium falciparum. Semua senyawa ini menunjukan aktivitas
antimikrobakterial terhadap Mycobacterium tuberculosisdari A. rigidayang ada di
Indonesia(Namdaunget al., 2006). Dua senyawa baru dari flavon terisoprenilasi
yaitu artonin G dan H diisolasi bersama dengan tiga senyawa flavon
terisoprenilasi yang telah diketahui, yaitu artonin E, sikloartobilosanton, dan
artobilosanton (Nomuraet al., 1990).

2. Senyawa Flavonoid

Flavonoid adalah sebuah kelas tanamanmetabolit sekunder.Senyawa flavonoid
terdapat pada semua bagian tumbuhan termasuk akar, daun, kayu, kulit, tepung
sari, bunga, buah, dan biji (Markham, 1988).

2.1.Klasifikasi Flavonoid

Flavonoid mempunyai kerangka dasar karbon yang terdiri dari 15 atom
karbon. Atom karbon ini membentuk dua cincin benzena dan satu rantai
propana dengan susunan C6-C3-C6 . Susunan ini dapat menghasilkan tiga jenis
struktur, yaitu flavonoid (1,3-diaril propana), isoflavonoid (1,2-diaril
propana), neoflavonoid (1,1-diaril propana) seperti ditunjukkan pada
Gambar 2.

10

Gambar 2. Tiga jenis flavonoid (Achmad, 1986).
Istilah flavonoid yang diberikan untuk senyawa fenolik ini berasal dari kata
flavon, yaitu nama dari salah satu jenis flavonoid yang terbesar jumlahnya dan
yang paling umum ditemukan. Flavon mempunyai tingkat oksidasi yang
terendah sehingga senyawa ini dianggap sebagai senyawa induk dalam tata
nama senyawa-senyawa turunan flavon seperti yang ditunjukkan pada
Gambar 3.
3'
4'

2'
8
9

7

O
2

6

10
5

5'
6'

3
4

Gambar 3. Kerangka dasar flavon (Manitto,1992).

Senyawa flavonoid terdiri dari beberapa jenis, tergantung pada tingkat
oksidasi rantai propana dari sistem 1,3-diaril propana. Beberapa jenis struktur
flavonoid alami beserta tingkat oksidasinya ditunjukkan pada Gambar 4.

11

Gambar 4. Tingkat oksidasi senyawa flavonoid (Manitto,1992).

2.2. Biosintesis Flavonoid
Menurut Birch, pada tahap pertama biosintesis flavonoid, satu unit C6C3berkombinasi dengan tiga unit C2 menghasilkan unit C6C3(C2+C2+C2). Kerangka
C15 yang dihasilkan sudah mempunyai gugus fungsi oksigen pada posisi
tertentu. Cincin A dari struktur flavonoid berasal dari jalur poliketida, yaitu
kondensasi dari tiga unit asam asetat atau malonat. Sedangkan cincin B dan
tiga atom karbon dari rantai propana berasal dari jalur fenil propanoid (jalur
shikimat) seperti terlihat pada Gambar 5 (Achmad, 1986).

12

3CH3CO-SCoA
HO

HO
CoAS

C
O

C
O

C
O

O

O

O

OH

O
HO

O
Flavanon

OH

OH O
Calkon

Gambar 5. Tahap pertama biosintesis flavonoid (Achmad, 1986).

Dalam berbagai tumbuhan Artocarpus telah ditemukan berbagai senyawa
turunan flavonoid, seperti Morusin, Artonin E, Sikloartobilosanton, dan
Artonol B. Senyawa-senyawa tersebut memiliki hubungan kekerabatan
molekul, seperti pada saran jalur reaksi biogenesis pembentukan senyawasenyawa flavonoid pada genus Artocarpus, seperti pada Gambar 6.

Gambar 6.Jalur biogenesis pembentukan senyawa-senyawa flavonoid
dalam genus Artocarpus (Ersam, 2004).

13

2.1. Flavonoid pada Artocarpus rigida
Hasil isolasi dari akar Artocarpus mengandung sembilan prenilasi flavon yaitu
sikloartokarpin (1), artokarpin (2), dan khaplashin (3), morusin (4),
kudraflavon B (5), sikloartobilosanton (6), artonin E (7), kudraflavon C (8)
dan artobilosanton (9). Struktur senyawa flavonoid yang telah diisolasi dari
tanaman Artocarpus dapat dilihat pada Gambar 7.

Gambar 7. Senyawa-senyawa flavonoid dalam tumbuhan A. rigida
(Hakim, 2010).

3. Manfaat flavonoid

Flavonoid terdistribusi secara luas dalam tanaman dan memiliki berbagai fungsi.
Flavonoid merupakan pigmen yang paling penting untuk menghasilkan warna

14

bunga kuning, merah atau biru dalam pigmentasi kelopak bunga. Senyawa ini
juga melindungi tanaman dari serangan mikroba dan serangga.
Flavonoid telah disebut sebagai "respon biologis pengubah alami" karena bukti
eksperimental kuat melekat pada kemampuan untuk memodifikasi reaksi tubuh
terhadap alergi,virus, karsinogen, serta menunjukkan anti-alergi,anti inflamasi,
anti-mikroba dan anti-kanker.Beberapa turunan flavonoid dari isoflavon, misalnya
rotenone, merupakan insektisida alam yang kuat (Harborne, 1996).
C.Ekstraksi dan Isolasi Flavonoid

Tumbuhan segar merupakan bahan awal yang ideal untuk menganalisis flavonoid,
tetapi pada tumbuhan yang telah lama dikeringkan, ada kecenderungan flavonoid
glikosida diubah menjadi aglikon karena pengaruh jamur. Sedangkan aglikon
yang peka akan teroksidasi. Aglikon flavonoid adalah polifenol dan karena itu
mempunyai sifat kimia senyawa fenolik yaitu bersifat asam. Sifat asam ini
disebabkan oleh stabilisasi muatan negatif pada atom oksigen oleh resonansi.
Sifat yang agak asam ini menyebabkan flavonoid dapat larut dalam basa, akan
tetapi bila dibiarkan dalam larutan basa, banyak yang akan terurai dan teroksidasi.
Selanjutnya, tumbuhan yang telah dikeringkan digiling menjadi serbuk halus
untuk diekstraksi dengan pelarut (Markham, 1988). Ekstraksidilakukan
menggunakan metode maserasi. Maserasi merupakan proses perendaman sampel
dengan pelarut organik yang digunakan pada temperature ruangan. Proses ini
sangat menguntungkan dalam isolasi senyawa bahan alam karena dengan
perendaman sampel tumbuhan akan terjadi pemecahan dinding dan membran sel
akibat perbedaan tekanan antara didalam dan diluar sel sehingga senyawa

15

metabolit sekunder yang ada dalam sitoplasma akan terlarut dalam pelarut organik
dan ekstrasi senyawa akan sempurna karena dapat diatur lama perendaman yang
dilakukan (Lenny, 2006).
Proses ini dilakukan beberapa kali dan ekstrak kemudian disatukan lalu diuapkan
dengan menggunakan penguap-putar vakum (Markham, 1988). Setelah dilakukan
proses ekstraksi, tahap isolasi selanjutnya adalah analisis senyawa dengan
menggunakan beberapa jenis kromatografi.

1. Pemisahan Senyawa secara Kromatografi

Kromatografi merupakan pemisahan suatu senyawa yang didasarkan atas
perbedaan laju perpindahan dari komponen-komponen dalam
campuran.Pemisahan dengan metode kromatografi dilakukan dengan cara
memanfaatkan sifat-sifat fisik dari sampel, seperti kelarutan, adsorbsi, keatsirian
dan kepolaran.Kelarutan merupakan kecenderungan molekul untuk melarut dalam
cairan.Adsorpsi penjerapan adalah kecenderungan molekul untuk melekat pada
permukaan serbuk halus (Johnson dan Stevenson, 1991).Berdasarkan jenis fasa
diam dan fasa gerak yang dipartisi, kromatografi dapat digolongkan menjadi
beberapa golongan (Tabel 1).

16

Tabel1. Penggolongan kromatografi berdasarkan fasa diam dan fasa gerak.

Fasa diam

Fasa gerak

Sistem kromatografi

Padat

Cair

Cair – adsorpsi

Padat

Gas

Gas – adsorpsi

Cair

Cair

Cair – partisi

Cair

Gas

Gas – partisi

Sumber: Johnson and Stevenson (1991).

1.1 Kromatografi Lapis Tipis (KLT)

Kromatografi Lapis Tipis ialah metode pemisahan fisikokimia. yang terdiri
atas bahan berbutir-butir (fase diam), ditempatkanpada penyangga berupa
pelat gelas, logam, atau lapisan yang cocok.Campuranyang akan dipisah,
berupa larutan, ditotolkan berupa bercak atau pita. Setelahpelat atau lapisan
diletakan di dalam bejana tertutup rapat yang berisi larutanpengembang yang
cocok (fase gerak), pemisahan terjadi selama perambatankapiler
(pengembangan). Selanjutnya, senyawa yang tidak berwarna
harusditampakkan (dideteksi) (Stahl, 1985).

Kromatogarafi Lapis Tipis merupakan cara analisis cepat yang memerlukan
bahan yang sedikit.Untuk peneliti pendahuluan kandungan flavonoid suatu
ekstrak, sudah menjadi kebiasaan umum untuk menggunakan pengembang
beralkohol pada pengembangan pertama dengan kromatografi lapis tipis,
misalnya butanol-asam asetat-air (Markham, 1988).

17

Kromatografi Lapis Tipis digunakan untuk memisahkan senyawa-senyawa
yang sifatnya hidrofob seperti lipida-lipida dan hidrokarbon. Sebagai fase
diamdigunakan senyawa yang tak bereaksi seperti silica gel atau
alumina.Silica gelbiasa diberi pengikat yang dimaksudkan untuk memberikan
kekuatan pada lapisan dan menambah adesi pada gelas penyokong. Pengikat
yang biasa digunakan adalah kalsium sulfat (Sastrohamidjojo, 2002).
Metode sederhana dalam KLT adalah dengan menggunakan nilai Retardation
factor (Rf) yang didefinisikan dengan persamaan :

Tetapi pada gugus-gugus yang besar dari senyawa-senyawa yangsusunannya
mirip, seringkali harga Rf berdekatan satu sama lainnya (Sastroshamidjojo,
2002).

1.2 Kromatografi Cair Vakum (KCV)

Teknik KCV dilakukan dengan suatu sistem yang bekerja pada kondisi vakum
secara terus-menerus sehingga diperoleh kerapatan kemasan yang maksimum
atau menggunakan tekanan rendah untuk meningkatkan laju alir fasa gerak.
Urutan eluen yang digunakan dalam kromatografi cair diawali dari eluen yang
mempunyai tingkat kepolaran rendah kemudian kepolarannya ditingkatkan
secara perlahan-lahan.Urutan eluen yang digunakan dalam kromatografi
diawali dari eluen yang mempunyai tingkat kepolaran rendah kemudian
kepolarannya ditingkatkan secara perlahan-lahan (Hosstetmannet al.,

18

1995).Berikut ini merupakan urutan eluen pada kromatografi berdasarkan
kenaikan tingkat kepolarannya:
n-heksana
Sikloheksana
Karbon tetraklorida
Benzena
Toluena
Metilen klorida
Kloroform
Etil asetat
Aseton
n-propanol
Etanol
Asetonitril
Metanol
Air

Non-Polar

Polar

Sumber: Gritter dkk. (1991).

1.3 Kromatogafi Kolom (KK)

Pada prinsipnya Kromatografi Kolom(KK) digunakan untuk pemisahan
campuran beberapa senyawa yang diperoleh dari isolasi tumbuhan. Dengan
menggunakan fase padat dan fasa cair maka fraksi-fraksi senyawa akan
menghasilkan kemurnian yang cukup tinggi.
Teknik KK, pada dasarnya sama dengan KCV, yaitu merupakan kromatografi
cair-adsorpsi, hanya saja KK dilakukan pada sistem yang bekerja pada kondisi
normal tanpa vakum. Waktu yang dibutuhkan dalam pelaksanaannya lebih
lama, namun diharapkan akan mendapat hasil dengan pemisahan yang lebih
baik dan lebih murni.

19

1.4 Kromatografi Flash

Kromatografi Flash merupakan kromatografi yang teratur dengan tekanan
rendah (pada umumnya < 20 p.s.i.) digunakan sebagai kekuatan bagi elusi
bahan pelarut melalui suatu ruangan atau kolom yang lebih cepat. Ini
menghasilkan kualitas yang sedang, tetapi pemisahan berlangsung cepat (1015 menit).Pemisahan ini tidak sesuai untuk pemisahan suatu campuran yang
terdiri dari macam-macam zat, tetapi sangat baik untuk memisahkan sedikit
reaktan dari komponen utama dalam sintesa organik.Tergantung dari ukuran
kolom, berapa gram sample dapat dilapisi dalam satu waktu (Still et al., 1978).
Terdapat suatu pengaturan umum untuk tekanan-tekanan yang lebih kecil dari
20 p.s.i dengan kontrol (pengawasan) manual pada aliran dan terdapat
pengaturan tekanan-takanan yang lebih besar 50 p.s.i dengan suatu ukuran
tekanan yang mengikat untuk mengukur aliran.

Keistimewaan dari kolom-kolomnya adalah panjangnya 30 sampai 45 cm,
perubahan persediaan dari 250 ml ke 3000 ml dan untuk unit-unit dengan
telananyang lebih besar disediakan martel epoksi untuk
keselamatan.Pembungkus kolombiasanya silica gel.Komponen-komponen ini
biasanya dijaga oleh pengapit ataudisekrup bersama-sama.Setidak-tidaknya,
pemisahan ini harus dilakukandibelakang pelindung keselamatan. Gelas atau
kaca frits tidak digunakan pada alas kolom karena terlalu banyak volume yang
macet di bawahnya. Serat kaca danpasir tidak digunakan sebagai pengganti.

20

2. Analisis Kemurnian
Analisis kemurnian senyawa hasil isolasidilakukan dengan kromatografi lapis
tipis (KLT) danuji titik lebur. KLT dilakukandengan mengelusi larutan sampel
yang ditotolkan pada lempeng silica gel 60 F254 denganfase gerak berupa eluen
etil asetat-heksan (4 : 6).Bercak yangada diamati dengan sinar tampak, UV254
dan UV366.Kemurnian senyawa ditetapkan secara semikuantitatif dengan
densitometer pada maks =347 nm (Margono dan Zendrato, 2006).Senyawa hasil
analisis dikatakan murni apabila memberikan peak tunggal pada KLT dengan
berbagai Fase gerak (Setyowati et al., 2007).

Sedangkan titik lebur merupakan ciri penting senyawa organik padat.Titik lebur
memiliki arti penting dalam identifikasi dan pengukuran kemurnian.Penggunaan
untuk identifikasi didasarkan pada fakta bahwa semua senyawa murni mempunyai
titik lebur yang tajam, atau mempunyai titik temperatur yang sangat kecil ketika
berubah sempurna dari padat ke cair. Selain itu, penggunaan titik lebur untuk
identifikasi juga didasarkan pada fakta bahwa senyawa yang tidak murni
menunjukkan 2 fenomena, pertama yaitu suhu lebur yang lebih rendah, dan kedua
memiliki jarak lebur yang lebih lebar. Alat yang digunakan untuk menguji titik lebur
suatu senyawa adalah termopan.Untuk identifikasi kualitatif, titik lebur merupakan
tetapan fisika yang penting terutama untuk suatu senyawa hasil sintesis, isolasi,
maupun kristalisasi (Hadiprabowo, 2009).

Rentang titik lebur suatu senyawa merupakan petunjuk kemurnian dari suatu
senyawa.Sebaliknya jika rentangan lebih besar dari harga tersebut, dapat dikatakan
bahwa senyawa tersebut kurang murni dan dapat dilakukan tahap-tahap pemurnian
lebih lanjut, misal rekristalisasi.Titik lebur suatu kristal padat adalah suhu ketika

21

padatan mulai berubah menjadi cairan pada tekanan udara 1 atm. Jika suhu dinaikkan,
molekul senyawa akan menyerap energi. Makin tinggi suhu makin banyak energi
yang diserap maka akan menaikkan gerakan vibrasi dan rotasi molekul. Jika suhu
terus dinaikkan mengakibatkan rusaknya molekul dan berubah dari padatan menjadi
cairan.Pada keadaan cairan molekul masih terikat satu dengan yang lainnya tetapi
sudah tidak teratur lagi (Hadiprabowo, 2009).

D. Transformasi Senyawa Flavonoid

Sejumlah studi mengenai kompleks organologam, yaitu kompleks yang memiliki
paling tidak satu ikatan logam-karbon secara langsung. Kompleks organologam
menarik perhatian para ahli karena memiliki berbagai sifat yang sangat penting,
antara lain adalah kemampuannya untuk mengkatalis atau mendorong reaksi
transformasi bermacam- macam senyawa organik (Purwoko, 2007).

1. Modifikasi Gugus Fungsi

Hakekat perkembangan kimia organik bahan alam dari tradisional ke modern,
meliputi isolasi dan penentuan struktur namun haltersebut bukan akhir dari
kegiatan kimia bahan alam. Selain itu pula dengan berkembangnya teknik-teknik
spektroskopi maka, saat ini penentuan struktur senyawa-senyawa alam bioaktif
merupakan titik awal semata. Selanjutnya, dari paparan di atas terungkap pula
bahwa nilai-nilai kimia dan biologi tumbuhan atau bioresource lainnya dapat
ditingkatkan melalui rekayasa biologi (Hakimet al., 2005), ataupun modifikasi
suatu senyawa yang akan menjadi landasan baru perkembangan kimia bahan alam
seperti tercantum dalam Gambar 8.

22

Gambar 8. Peluang pengembangan Kimia Bahan Alam dari masa ke masa
(Achmadet al., 2006).
Salah satu terobosan yang dapat dilakukan dalam perkembangan Kimia
BahanAlam adalah pengembangan modifikasi kimianya (Kaban, 2009).
Modifikasi Kimia dalam hal ini didefinisikan sebagai reaksi antara beberapa
bagian reaktif dari polimer dinding sel lignoselulosa dengan kimia tunggal baik
dengan katalis ataupun tanpa katalis untuk membentuk ikatan kovalen antar
keduanya. Modifikasi dalam hal ini bertujuan untuk meningkatkan sifat-sifat
biologis nya maupun karakterisasi dari senyawa tersebut (Rowellet al., 1993).
Modifikasi kimia menjadi sangat penting dengan melibatkan penggunaan suatu
agen penghubung (coupling agent).Agen penghubung digunakan karena
mengandung senyawa kimia dimana agen ini akan bereaksi dengan gugus fungsi

23

maupun metriks dari senyawa tersebut (Kaban, 2009). Modifikasi kimia dalam
kimia bahan alam khususnya pada senyawa organik dapat digunakan agen
penghubung berupa pereaksi AlCl3.
2. Pereaksi AlCl3
Aluminium triklorida(AlCl3). Kristal tak bewarna (titik leleh 190 oC (2.5 atm)
dan (titik didih. 183 oC) yang tersublimasi bila dipanaskan. AlCl3 melarut dalam
etanol dan eter. AlCl3 adalah Asam Lewis dan dapat bereaksi dengan berbagai
basa. AlCl3dalam cairan dan gas terdiri atas molekul yang berupa dimer
aluminiumtetrakoordinasi dengan jembatan klorin (Gambar 9), dan berstruktur
lamelar bila dalam bentuk kristalin. AlCl3 digunakan dalam katalis asam lainnya
(Saito, 1996).

Gambar 9. Struktur Aluminium klorida (Saito, 1996).

3. Efek AlCl3
Pereaksi ini dapat membentuk kompleks tahan asam antara gugus hidroksil
dan keton yang bertetangga dan membentuk kompleks tak tahan asam dengan
gugus orto sehingga dapat digunakan untuk mendeteksi kedua gugus tersebut
(Markham, 1988)

24

Gambar 10.Kompleks tahan asam antara Al3+ dan –OH
(Prima dan Taufiqurrohmah, 2006).

Gugus OH pada C3 dan C5 pada flavon dan flavonol akanmembentuk kompleks
yang stabil dengan adanya AlCl3. Sebaliknya kompleksyang terbentuk antara
AlCl3 dengan gugus orto dihidroksi bersifat tidak stabil sehingga dengan
penambahan asam akan terdekomposisi. Sedangkan kompleks antara AlCl3
dengan C-4 keto dan 3 atau 5 –OH tetap stabil dengan adanya asam.

Reaksiantara AlCl3 dengan golongan flavonoidmembentuk kompleks antara
gugushidroksil dan keton yang bertetanggayang tahan asam atau dengan gugus
ortohidroksil yang tidak tahan asam danbertetangga seperti pada Gambar
11(Markham, 1988).

Gambar 11. Struktur kompleks Flavon-AlCl3(Markham, 1988).

25

Adanya gugus ortodihidroksi pada cincin B dapat diketahui jika pada penambahan
asam terhadap spektra kompleks AlCl3 menghasilkan pergeseran hipsokromik
sebesar 30-40 nm pada pita I (atau pita Ia jika pita I terdiri dari 2 puncak). Dengan
adanya pergeseran batokromik pada pita I (dalam AlCl3/HCl) dibandingkan
dengan pita I (dalam metanol) 35-55 nm, menunjukkan adanya 5-OH flavon atau
flavonol 3-OH tersubstitusi (Mabry et al.,1970).

E. Identifikasi Senyawa dan Penentuan Struktur

Suatu senyawa bahan alam hasil isolasi akan diidentifikasi berdasarkan sifat
fisika, sifat kimia dan identifikasi dengan spektroskopi. Isolasi menggunakan
metode standar tidak semua senyawa akan terekstrak secara utuh, seperti yang
terdapat dalam tumbuhan tersebut.Hal ini antara lain disebabkan karena struktur
molekul dari senyawa-senyawa yang dihasilkan oleh organisme mempunyai
variasi yang sangat luas. Kenyataan ini dapat pula digunakan untuk mendalami
pengetahuan mengenai reaksi-reaksi organik(Achmadet al., 2006).Identifikasi
senyawa metabolit sekunder dan elusidasi struktur senyawamerupakan pekerjaan
yang sangat menetukan dalam proses mengenal, mengetahui, dan pada akhirnya
menetapkan rumus molekul yang sebenar nya dari senyawa tersebut.

1. Identifikasi secara Spektroskopi

Spektroskopi merupakan ilmu yang mempelajari tentang cara menganalisis
spektrum suatu senyawa dan interaksi antara radiasi elektromagnetik. Teknik
spektroskopi adalah berdasarkan absorpsi dari suatu senyawa organik dapat
digunakan untuk menentukan struktur dari senyawa organik tersebut (Hernawan,

26

2008). Metode spektroskopi yang dipakai pada penelitian ini yaitu, spektroskopi
inframerah (IM), danspektroskopi ultraungu-tampak (UV-VIS).
1.1 Spektoskopi Inframerah (IR)
Pada spektroskopi inframerah (IR), senyawa organik akan menyerap berbagai
frekuensi radiasi elektromagnetik inframerah. Molekul-molekul senyawa
akan menyerap sebagian atau seluruh radiasinya. Penyerapan ini
berhubungan dengan adanya sejumlah vibrasi yang terkuantisasi dari atomatom yang berikatan secara kovalen pada molekul-molekul itu.Penyerapan ini
juga berhubungan dengan adanya perubahan momen dipol dari ikatan kovalen
pada waktu terjadinya vibrasi (Supriyanto, 1999).
Penggunaan spektrum inframerah dalam menentukan struktur senyawa
organik berada antara 650-4000 cm-1. Daerah di bawah frekuensi 650 cm -1
dinamakan daerah infra merah jauh dan daerah di atas frekuensi 4000 cm -1
dinamakan infra merah dekat (Sudjadi, 1983). Daerah antara 1400-4000 cm -1
merupakan daerah khusus yang berguna untuk identifikasi gugus fungsional.
Daerah ini menunjukkan absorpsi yang disebabkan oleh vibrasi uluran.
Daerah antara 1400-700 cm -1 (daerah sidik jari) seringkali sangat rumit
karena menunjukkan absorpsi yang disebabkan oleh vibrasi uluran dan
tekukan (Fessenden dan Fessenden, 1986).Karakteristik frekuensi uluran
beberapa gugus molekul ditunjukkan pada Tabel 2.

27

Tabel 2. Karakteristik frekuensi uluran beberapa gugus fungsi
Serapan (cm-1)

Gugus

Ar

OH

3600

NH 2

3400

CH

3300

H

3060
3030

Gugus

Serapan(cm-1)
2930

CH 2

2860
1470

C

O

1200-1000

C

1650

C N

1600

C

2870
CH

2

1460
1375
C

C

N

1200-1000

O

1750-1600

C

C

1200-1000

Sumber : Banwell and McCash (1994).
Spektrum inframerah senyawa flavonoid memberikan puncak serapan untuk
gugus hidroksil dengan vibrasi pada bilangan gelombang 3400 cm-1, vibrasi
ulur gugus C=O dari sistem karbonil terkonjugasi terdapat pada daerah
serapan 1700-1600 cm-1, dan vibrasi ulur CH alifatik ditunjukkan oleh serapan
pada daerah 3000-2800 cm-1 (Ihsan, 2000).
1.2 Spektroskopi Ultraungu-tampak (UV-VIS)

Dalam spektoskopi UV-VIS penyerapan sinar tampak dan ultraviolet oleh
suatu molekul akan menghasilkan transisi diantara tingkat energi elektronik

28

molekul tersebut. Transisi tersebut pada umumnya antara orbital ikatan,
orbital non-ikatan atau orbital anti-ikatan. Panjang gelaombang serapan yang
muncul merupakan ukuran perbedaan tingkat-tingkat energi dari orbital suatu
molekul (Sudjadi, 1983).
Metode spektroskopi ini berguna untuk mengetahui jenis flavonoid. Selain
itu, kedudukan gugus fungsi hidroksil pada inti flavonoid dapat ditentukan
dengan cara menambahkan pereaksi geser ke dalam larutan cuplikan dan
mengamati pergeseran puncak yang terjadi. Spektrum khas flavonoid terdiri
dari dua pita yaitu pada rentang 240-285 nm (Pita II) dan 300-550 nm (Pita I).
Letak serapan pita tepat dan kekuatan dari pita tersebut akan memberikan
informasi yang berguna mengenai sifat flavonoid. Rentang utama yang
diperkirakan untuk setiap jenis flavonoid dapat dilihat pada (Tabel 3).
Tabel 3. Rentang serapan spektrum ultraungu-tampak untuk flavonoid.

Pita II (nm)

Pita I (nm)

Jenis Flavonoid

250-280

310-350

Flavon

250-280

330-360

Flavonol (3-OH tersubstitusi)

250-280

350-385

Flavonol (3- OH bebas)

245-275

310-330

Isoflavon

275-295

300-390

Flavanon dan dihidroflavon

230-270

340-390

Calkon

230-270

380-430

Auron

270-280

465-560

Antosianidin dan antosianin

Sumber: Markham (1988).
Dengan menggunakan data yang diperoleh dari analisis berdasarkan
spektrofotometer ultraviolet-visible ini kita dapat mengetahui absorptivitas

29

molar senyawa yang diperoleh. Absorptivitas molar senyawa dihitung dengan
menggunakan persamaan Lambert-Beer berikut :
A = b c atau
Dimana

A

=

= absorbansi
= absorptivitas molar

b

= tebal sel (cm)

c

= konsentrasi (mol/liter)

Absorbansi (A) ini diperoleh dari data spektrum dimana terdapat puncakpuncak serapannya. Tebal sel (b) adalah ketebalan sel dalam alat yang
digunakan, sedangkan konsentrasi (c) dapat diperoleh dengan menggunakan
persamaan :

Konsentrasi (c)
Dimana

=

!"

g

= Massa senyawa hasil isolasi (gram)

BM

= Berat molekul relatif (gram/mol)

L

= Volume larutan yang digunakan (L)

30

III. METODELOGI PENELITIAN

A. Waktu dan Tempat Penelitian
Penelitian ini dilakukan pada bulan April 2012 - Januari 2013, bertempat di
Laboratorium Kimia Organik Jurusan Kimia Fakultas MIPA Universitas
Lampung. Penghalusan kulit batang tumbuhan A. rigida di Politeknik Negri
Lampung. Analisis spektroskopi yang digunakan adalah spektroskopi inframerah
(IR), dan spektroskopi Ultraungu-tampak (UV-Vis), dilakukan di Laboratorium
Biomassa.

B. Alat dan Bahan
1. Alat-alat yang digunakan
Alat-alat yang digunakan dalam penelitian ini meliputi alat-alat gelas, penguap
putar vakum, satu set alat kromatografi cair vakum (KCV), satu set alat
kromatografi kolom (KK), pengukur titik leleh, lampu UV, pipet kapiler,
spektrofotometer FT-IR merk Scimitar 2000, spektrofotometer ultraungu-tampak
(UV-VIS) merk Cary 50.

31

2. Bahan-bahan yang digunakan
Bahan yang digunakan adalah kulit kayu A. rigida yang telah dikeringkan dan
dihaluskan, diperoleh dari Desa Keputran Kecamatan Sukoharjo Kabupaten
Pringsewu Provinsi Lampung. Pelarut yang digunakan untuk ekstraksi dan
kromatografi berkualitas teknis yang telah didestilasi sedangkan untuk analisis
spektrofotometer berkualitas pro-analisis (p.a). Bahan kimia yang dipakai
meliputi etil asetat (EtOAc), metanol (MeOH), n-heksana (n-C6H14), aseton
(C3H6O2), akuades (H2O), serium sulfat (CeSO4) 1,5% dalam asam sulfat
(H2SO4) 2N, silika gel Merck G 60 untuk impregnasi, silika gel Merck 60 (3570 Mesh) dan pati untuk KCV dan KK, untuk KLT digunakan plat KLT silika
gel Merck kiesegal 60 F254 0,25 mm. Pereaksi geser untuk analisis
spektrofotometer ultraungu-tampak adalah aluminium klorida, asam klorida
pekat, natrium asetat, dan natrium hidroksida.

C. Prosedur Penelitian
1. Pengumpulan dan Persiapan Sampel
Sampel berupa kulit batang tumbuhan A. rigida yang dipisahkan antara kulit
batang dan kayunya. Kulit batang lalu dibersihkan dan dipotong kecil-kecil.
Sampel kulit batang yang telah dipotong kemudian dikeringkan. Kulit batang
yang telah kering kemudian dihaluskan hingga berbentuk serbuk halus.

32

2. Ekstraksi dengan Metanol

Sebanyak 2,7 kg kulit kayu A.rigida yang telah dihaluskan, dimaserasi dengan
metanol (MeOH) selama 24 jam dengan sekali maserasi sebanyak 500 gr,
maserasi dilakukan sebanyak tiga kali. Ekstrak metanol yang diperoleh disaring
kemudian dipekatkan dengan menggunakan penguap putar vakum pada suhu 3550˚C dengan laju putaran 120-150 rpm.

3.

Kromatografi Cair Vakum (KCV)

Ekstrak kasar kemudian difraksinasi dengan KCV. Terlebih dahulu fasa diam
silika sebanyak 10 kali berat sampel dimasukkan ke dalam kolom. Kemudian
kolom dikemas kering dalam keadaan vakum menggunakan alat vakum. Eluen
yang kepolarannya rendah, dimasukkan ke permukaan silika gel terlebih dahulu
kemudian divakum kembali. Kolom dihisap sampai kering dengan alat vakum
dan siap digunakan.
Ekstrak kasar yang telah dilarutkan dalam aseton dan diimpregnasikan kepada
silika gel, kemudian dimasukkan pada bagian atas kolom yang telah berisi fasa
diam dan kemudian dihisap secara perlahan-lahan ke dalam kemasan dengan cara
memvakumkannya. Setelah itu kolom dielusi dengan etil asetat : n-heksan (0% :
100%) sampai dengan etil asetat : n-heksan (100% : 0%) Kolom dihisap sampai
kering pada setiap penambahan eluen (tiap kali elusi dilakukan). Kemudian
fraksi-fraksi yang terbentuk dikumpulkan berdasarkan pola fraksinasinya.
Fraksinasi sampel dengan teknik KCV dilakukan berulang kali dengan perlakuan
yang sama seperti tahapan KCV awal.

33

4. Kromatografi Flash

Pada kromatografi flash fasa diam silica gel G 60 F254 (Merck) dilarutkan dalam
pelarut yang akan digunakan dalam proses pengelusian. Campuran tersebut
diaduk hingga diperoleh suatu slurry, lalu dimasukkan kedalam kolom dan
diusahakan agar kolom tidak kehabisan pelarut. Kemudian atur fasa diam hingga
rapat (tidak berongga) dan rata. Selanjutnya masukkan sampel yang telah
dijerapkan pada silika gel kedalam kolom yang telah berisi fasa diam. Pada saat
sampel dimasukkan, usahakan agar kolom tidak kehabisan pelarut karna akan
mengganggu fasa diam yang telah dikemas rapat. Setelah fasa diam dan sampel
masuk kedalam kolom, berikan tekanan dari atas kolom dengan alat pompa
udara.

5.

Kromatografi Lapis Tipis (KLT)

Sebelum difraksinasi, terlebih dahulu dilakukan uji KLT untuk melihat pola
pemisahan komponen-komponen senyawa yang terdapat dalam ekstrak kasar.
Uji KLT juga dilakukan terhadap fraksi-fraksi yang akan difraksinasi dan juga
fraksi-fraksi yang didapat setelah perlakuan fraksinasi. Uji KLT dilakukan
menggunakan sistem campuran eluen menggunakan pelarut n-heksana, etilasetat,
diklorometana, dan metanol. Hasil kromatogram tersebut kemudian disemprot
menggunakan larutan serium sulfat untuk menampakkan bercak/noda dari
komponen senyawa tersebut. Ketika diperoleh fraksi yang lebih sedikit
bercak/noda dilihat dibawah lampu UV setelah dilakukan elusi terhadap plat
KLT. Setiap fraksi yang menghasilkan pola pemisahan dengan Rf (Retention

34

factor) yang sama pada kromatogram, digabung dan dipekatkan sehingga
diperoleh beberapa fraksi gabungan yang akan difraksinasi lebih lanjut.

6.

Kromatografi Kolom (KK)

Setelah dihasilkan fraksi-fraksi dengan jumlah yang lebih sedikit, tahapan
fraksinasi selanjutnya dilakukan menggunakan teknik kromatografi kolom.
Adsorben pati dan silika gel Merck (35-70 Mesh) masing-masing dilarutkan
dalam pelarut yang akan digunakan dalam proses pengelusian. Slurry dari pati
dimasukkan terlebih dahulu ke dalam kolom, kemudian Slurry dari silika gel, atur
fasa diam hingga rapat (tidak berongga) dan rata. Selanjutnya masukkan sampel
yang telah dijerapkan pada silika gel ke dalam kolom yang telah berisi fasa diam.
Pada saat sampel dimasukkan, usahakan agar kolom tidak kering/kehabisan
pelarut karena akan mengganggu fasa diam yang telah dikemas rapat, sehingga
proses elusi tidak akan terganggu.

7.

Analisis Kemurnian

Uji kemurnian dilakukan dengan metode KLT dan uji titik leleh. Uji kemurnian
secara KLT menggunakan beberapa campuran eluen. Kemurnian suatu senyawa
ditunjukkan dengan timbulnya satu noda dengan berbagai campuran eluen yang
digunakan, kemudian disemprot menggunakan larutan serium sulfat untuk
menampakkan bercak/noda dari komponen senyawa tersebut.
Untuk uji titik leleh, sebelum dilakukan pengukuran, alat pengukur titik leleh
tersebut dibersihkan terlebih dahulu dari pengotor yang ada. karena adanya
pengotor akan menaikkan atau menurunkan temperatur titik leleh kristal. Untuk

35

kristal yang berukuran besar, kristal terlebih dahulu digerus hingga berbentuk
serbuk. Kemudian kristal yang akan ditentukan titik lelehnya diletakkan pada
lempeng kaca, diambil sedikit dengan menggunakan pipet kapiler, alat
dihidupkan dan titik leleh diamati dengan bantuan kaca pembesar. Suhu pada saat
kristal pertama kali meleleh, itulah titik leleh dari senyawa tersebut.

8.

Modifikasi Gugus Fungsi dengan Pereaksi AlCl3

Sampel kristal hasil isolasi yang telah murni, diambil sebanyak 15 mg kemudian
diencerkan dengan pelarut polar berupa metanol sebanyak 1 mL, kemudian pada
perlakuan yang sama diambil sebanyak 20 mg pereaksi AlCl3 lalu diencerkan
menggunakan pelarut polar berupa metanol sebenyak 10 mL. Kemudian
campurkan kedua larutan yang telah dibuat, lalu diaduk dibiarkan selama 5 menit
sampai terjadi perubahan warna, lalu dilakukan uji KLT untuk
membandingkannya dengan kristal murni artonin-E. Dalam hal ini uji positif
terbentuknya kompleks AlCl3-flavonoid ditunjukan dengan adanya bercak
berwarna kuning pada sinar tampak (Markham, 1988). Kemudian campuran dari
kedua larutan tersebut diuapkan dan diambil ekstrak keringnya, yang selanjutnya
diekstrak dengan kloroform untuk mengambil senyawa artonin-E yang berlebih
pada campuran senyawa tersebut. Setelah itu ditambahkan akuades sebanyak 1
mL, lalu ditambahkan metanol tetes demi tetes, gunanya untuk memisahkan
senyawa komplek artonin-E-AlCl3 yang berupa endapan dengan AlCl3 yang
berlebih.

36

9.

Spektrofotometri Inframerah (IR)

Sampel kristal hasil isolasi yang telah murni dianalisis menggunakan
spektrofotometer inframerah. Kristal yang telah murni dibebaskan dari air
kemudian digerus bersama-sama dengan halida anorganik, KBr. Gerusan kristal
murni dengan KBr dibentuk menjadi lempeng tipis atau pelet dengan bantuan alat
penekan berkekuatan 8-10 ton cm2. Kemudian pelet tersebut diukur puncak
serapannya (Sudjadi, 1983).

10. Spektrofotometri Ultraungu–tampak (UV-VIS)

Sampel berupa kristal murni sebanyak 0,001 g dilarutkan dalam 10 mL metanol.
Larutan ini digunakan sebagai persediaan untuk beberapa kali pengukuran.
Pertama, sampel diukur serapan maksimumnya dalam metanol. Selanjutnya
larutan persediaan dibagi menjadi beberapa bagian. Kemudian masing-masing
larutan persediaan ditambah dengan pereaksi-pereaksi geser seperti natrium
hidroksida (NaOH) 2 M yang dibuat dengan cara melarutkan 0,8 gr NaOH dalam
10 mL akuades, aluminium klorida (AlCl3) 5% yang dibuat dengan cara
melarutkan 0,25 gram AlCl3 dalam 5 mL MeOH, asam klorida HCl (AlCl3/HCl)
yang dibuat dengan cara melarutkan 5 mL HCl pekat dalam 10 mL Akuades,
natrium asetat (NaOAc), dan H3BO3- Kemudian masing-masing larutan diukur
serapan maksimumnya.

62

V. SIMPULAN DAN SARAN

A. Simpulan

Berdasarkan data hasil penelitian yang telah dilakukan, maka diperoleh simpulan
sebagai berikut :
1. Pada penelitian ini berhasil diisolasi senyawa artonin-E dari kulit batang
tumbuhan kenangkan (A. rigida) sebanyak 42 mg, berdasarkan hasil analisis
KLT, spektroskopi UV, dan spektroskopi IR.
2. Hasil modifikasi senyawa artonin-E-AlCl3, pada spektrum IR dengan bilangan
gelombang 1369 cm-1 menunjukkan adanya Al yang membentuk kompleks
dengan gugus hidroksil pada posisi C5 dan gugus karbonil (C=O) dari artoninE, sedangkan pada bilangan gelombang 841 cm-1 menun