Patogenitas Beberapa Cendawan Entomopatogen (Lecanicillium lecanii, Metarhizium anisopliae, dan Beauveria bassiana)terhadap Aphis glycines pada Tanaman Kedelai

30

BAGAN PERCOBAAN

P0

P0

P1

U

P0

P0

P1

P1

P1

P2

P2

P2

P2

P3

P3

P3

P3

P4

P4

P4

P4

P5

P5

P5

P5

P6

P6

P6

P6

30
Universitas Sumatera Utara

31

Lampiran 1. Mortalitas Aphis glycinesBerdasarkan Hari Pengamatan(%)
PERLAKUAN

P0

P1

P2

P3

P4

P5

P6

Ulangan 1
Ulangan 2
Ulangan 3
Ulangan 4
Ulangan 1
Ulangan 2
Ulangan 3
Ulangan 4
Ulangan 1
Ulangan 2
Ulangan 3
Ulangan 4
Ulangan 1
Ulangan 2
Ulangan 3
Ulangan 4
Ulangan 1

Ulangan 2
Ulangan 3
Ulangan 4
Ulangan 1
Ulangan 2
Ulangan 3
Ulangan 4
Ulangan 1
Ulangan 2
Ulangan 3
Ulangan 4

1
0
0
0
0
0
0
0

0
0
0
0
0
0
0
0
0
0
0
0
0
0
0
0
0
0
0
0

0

2
0
0
0
0
0
0
0
0
0
0
0
0
0
0
0
0
0

0
0
0
0
0
0
0
0
0
0
0

PENGAMATAN HARI KE3
4
5
0
0
0
0
0

0
0
0
0
0
0
0
0
0
0
0
0
0
0
0
0
0
0
0
0

0
0
0
0
0
0
0
0
0
0
0
0
0
0
0
0
0
0
0
0

0
0
0
40
30
20
40
20
30
50
20
20
40
20
20
0
30
10
0
20
0
0
20
10
0
20
10
50
20
0
40
20
10
40
10
10
30
20
10

6
0
0
0
0
0
0
0
0
0
0
0
0
0
0
0
0
10
0
0
0
0
10
0
10
0
10
0
0

7
0
0
0
0
0
0
0
0
0
0
0
0
0
0
0
0
0
0
0
0
0
10
0
0
0
0
0
0

Total

Rata2

0
0
0
0
0
0
0
0
0
0
0
0
0
0
0
0
100
90
90
80
40
40
30
40
70
80
60
60

0
0
0
0
0
0
0
0
0
0
0
0
0
0
0
0
14,29
12,86
12,86
11,43
5,71
5,71
4,29
5,71
10,00
11,43
8,57
8,57

Lampiran 2. Mortalitas Aphis glycines (%) Berdasarkan Perlakuan
Perlakuan
P0
P1
P2
P3
P4
P5
P6

1
0
0
0
0
100
40
70

Ulangan
2
3
0
0
0
0
0
0
0
0
90
90
40
30
80
60

4
0
0
0
0
80
40
60

Total

Rataan

0
0
0
0
360
150
270

0,0
0,0
0,0
0,0
90,0
37,5
67,5

F.05
3,1600
3,6600

Ket.
tn
*

Lampiran 3. Analisis Keragaman Mortalitas Aphis glycines
SK
db
JK
Ulangan
3
0,0129
Perlakuan
6
3,4521
Galat
18
0,0421
Total
27
3,5071
Keterangan : tn = tidak nyata, *= nyata

KT
0,0043
0,5754
0,0023

F Hit.
1,8305
245,7458

31
Universitas Sumatera Utara

32

Lampiran 4. Uji Duncan Multiple Range Test (SPSS 21)Mortalitas Aphis
glycines
N
Subset
Uji Patogenitas Jamur
Entomopatogen Terhadap Aphis
1
2
3
glycines
P0
4
,0000
P1
4
,0000
P2
4
,0000
P3
4
,0000
P5
4
,3750
P6
4
,6750
P4
4
Sig.
1,000
1,000
1,000
Means for groups in homogeneous subsets are displayed.
Based on observed means.
The error term is Mean Square(Error) = ,002.
a. Uses Harmonic Mean Sample Size = 4,000.
b. Alpha = 0,05.

4

,9000
1,000

Lampiran 5. Waktu Kematian Aphis glycines Setelah Aplikasi (hari)
PERLAKUAN

P0

P1

P2

P3

P4

P5

P6

Ulangan 1
Ulangan 2
Ulangan 3
Ulangan 4
Ulangan 1
Ulangan 2
Ulangan 3
Ulangan 4
Ulangan 1
Ulangan 2
Ulangan 3
Ulangan 4
Ulangan 1
Ulangan 2
Ulangan 3
Ulangan 4
Ulangan 1
Ulangan 2
Ulangan 3
Ulangan 4
Ulangan 1
Ulangan 2
Ulangan 3
Ulangan 4
Ulangan 1
Ulangan 2
Ulangan 3
Ulangan 4

1
0
0
0
0
0
0
0
0
0
0
0
0
0
0
0
0

2
0
0
0
0
0
0
0
0
0
0
0
0
0
0
0
0

0,00
0,00
0,00
0,00
0,00
0,00
0,00
0,00
0,00
0,00
0,00
0,00

0,00
0,00
0,00
0,00
0,00
0,00
0,00
0,00
0,00
0,00
0,00
0,00

PENGAMATAN HARI KE3
4
5
0
0
0
0
0
0
0
0
0
0
0
0
0
0
0
0
0
0
0
0
0
0
0
0
0
0
0
0
0
0
0
0
0
0
0
0
0
0
0
0
0
0
0
0
0
0
0
0

3,00
3,00
3,00
3,00
0,00
0,00
0,00
0,00
3,00
3,00
3,00
3,00

1,71
1,33
1,14
1,33
4,00
4,00
4,00
4,00
1,14
1,33
0,80
1,60

1,11
1,67
1,11
1,25
1,25
0,00
1,67
1,67
0,00
0,71
0,83
0,83

6
0
0
0
0
0
0
0
0
0
0
0
0
0
0
0
0

7
0
0
0
0
0
0
0
0
0
0
0
0
0
0
0
0

0,60
0,00
0,00
0,00
0,00
2,00
0,00
1,50
0,00
0,75
0,00
0,00

0,00
0,00
0,00
0,00
0,00
1,75
0,00
0,00
0,00
0,00
0,00
0,00

Total

Rata2

0
0
0
0
0
0
0
0
0
0
0
0
0
0
0
0

0
0
0
0
0
0
0
0
0
0
0
0
0
0
0
0

6,43
6,00
5,25
5,58
5,25
7,75
5,67
7,17
4,14
5,80
4,63
5,43

0,92
0,86
0,75
0,80
0,75
1,11
0,81
1,02
0,59
0,83
0,66
0,78

32
Universitas Sumatera Utara

33

Lampiran 6. Waktu Kematian Aphis glycinesBerdasarkan Perlakuan
Perlakuan
P0
P1
P2
P3
P4
P5
P6

Ulangan
1
0,00
0,00
0,00
0,00
6,43
5,25
4,14

2
0,00
0,00
0,00
0,00
6,00
7,75
5,80

3
0,00
0,00
0,00
0,00
5,25
5,67
4,63

4
0,00
0,00
0,00
0,00
5,58
7,17
5,43

Total

Rataan

0,00
0,00
0,00
0,00
23,26
25,83
20,01

0,00
0,00
0,00
0,00
5,82
6,46
5,00

Lampiran 7. Analisis Keragaman Waktu Kematian Aphis glycines
SK
db
JK
KT
Ulangan
3
1,582
0,527
Perlakuan
6 231,655
38,609
Galat
18
5,143
0,286
Total
27 238,381
Keterangan : tn = tidak nyata, * = nyata

F Hit.
1,845
135,121

F.05
3,160
3,660

Ket.
tn
*

Lampiran 8. Uji Duncan Multiple Range Test (SPSS 21) Waktu
KematianAphis glycines
Uji Patogenitas Jamur Entomopatogen
Terhadap Aphis glycines

N
1
,0000
,0000
,0000
,0000

P0
4
P1
4
P2
4
P3
4
P6
4
P4
4
P5
4
Sig.
1,000
Means for groups in homogeneous subsets are displayed.
Based on observed means.
The error term is Mean Square(Error) = ,287.
a. Uses Harmonic Mean Sample Size = 4,000.
b. Alpha = 0,05.

Subset
2

3

5,0000

1,000

5,8150
6,4600
,106

33
Universitas Sumatera Utara

34

Lampiran 10. Deskripsi Varietas Kedelai
Varietas Kedelai
SK Mentan
Nomor induk
Asal
Hasil rata-rata
Warna hipokotil
Warna batang
Warna daun
Warna bulu
Warna bunga
Warna kulit biji
Warna polong tua
Warna hylum
Tipe tumbuh
Umur berbunga
Umur matang
Tinggi tanaman
Bentuk biji
Bobot 100 biji
Kandungan protein
Kandungan minyak
Kerebahan
Ketahanan thd penyakit
Benih penjenis
Pemulia

: Wilis
: TP240/519/Kpts/7/1983
: B 3034
: Hasil seleksi keturunan
persilangan Orba x No.1682
: 1,6 t/ha
: Ungu
: Hijau
: Hijau – hijua tua
: Coklat tua
: Ungu
: Kuning
: Coklat tua
: Coklat tua
: Determinit
: ± 39 hari
: 85-90 hari
: ± 50 cm
: oval, agak pipih
: ± 10 g
: 37,0%
: 18,0%
: Tahan rebah
: Agak tahan karat daun dan virus
: Dipertahankan di Balittan Bogor dan
BalittanMalang
: Sumarno, Darman M Arsyad., Rodiah, dan
OnoSutrisno

∗

Balittan Bogor, kini berganti menjadi Balai Penelitian Bioteknologi dan
Sumberdaya Genetika (Balitbiogen)
∗ Balittan malang, kini berganti menjadi Balai Penelitian Tanaman Kacangkacangan dan Umbi-umbian (Balitkabi)

34
Universitas Sumatera Utara

35

Lampiran 11. Foto Penelitian

Lahan Penelitian

Perlakuan Kontrol

Aphis glycines terinfeksi

Kutikula Aphis glycinesyang telah mengalami perubahan instar

35
Universitas Sumatera Utara

36

a

b

c

Pergantian instar(a), A. glycines instar 2(b), A. glycines instar 4(c)

Foto mikroskopis Aphisglycines yang terinfeksi Lecanicillium lecanii

Foto mikroskopis Aphisglycines yang terinfeksi Beauveria bassiana

Foto mikroskopis Aphisglycines yang terinfeksi Metarhizium anisopliae

36
Universitas Sumatera Utara

24

DAFTAR PUSTAKA
Adisarwanto, T. 2010. Strategi Peningkatan Produksi Kedelai Sebagai Upaya
Untuk Memenuhi Kebutuhan Di Dalam Negeri Dan Mengurangi Impor.
Jurnal Pengembangan Inovasi Pertanian 3(4): 319-331.
Afifah, L. 2011. Pertumbuhan Cendawan Entomopatogen Lecanicillium lecanii
Pada Berbagai Media Serta Infektivitasnya Terhadap Kutu Daun
KedelaiAphis
glycines
Matsumura
(Hemiptera:
Aphididae).
Skripsi. Fakultas Pertanian Institut Pertanian Bogor.
Alavo TBC, Sermann H, &Bochow H. 2002. Biocontrol of aphid using
Verticillium lecanii in greenhouse: Factor reducing the effectiveness of
the entomopathogenic fungus. Arch Phytopathol and Plant Protect
34(6):407- 424.
Apriliana L.S., & Trianik W. 2014. Uji Patogenitas Spora Jamur Metarhizium
anisopliae Terhadap Mortalitas Hama Hypothenemus hampei (Ferrari)
Sebagai Bahan Ajar Biologi SMA Kelas X. Jupemasi-Pbio
1(1):
26-32.
Arifin, M. 2012. Bioinsektisida S/NPV Untuk Mengendalikan Ulat Grayak
Mendukung Swasembada Kedelai. Balai Besar Pengkajian
dan
Pengembangan Teknologi Pertanian, Bogor. Jurnal Pengembangan
Inovasi
Pertanian 5(1): 19-31
Arsyiogi, B. 2014. Mortalitas Aphis craccivora Koch. Pada Beberapa Konsentrasi
Beauveria bassiana Balsamo. Pada Tanaman Kacang Panjang.
Skripsi. Fakultas Pertanian Universitas Bengkulu.
Baliadi, Y. 2007. Management of Soybean Whitefly: Biology, Economic
Importance and
Control Methods. Di dalam: Harnowo, D et al.
(eds). Peningkatan Produksi Kacang-kacangan dan Umbi-umbian
Mendukung Kemandirian Pangan. Puslitbangtan, Bogor. hlm. 474-485.
Bernardi, E., Pinto, DM., do Nascimento, JS., Ribeiro, PB., & da Silva CI. 2006.
Effect of The Entomopathogenic Fungi Metarhizium anisopliae and
Beauveria bassianaon TheDevelopment of Musca domestica L.
(Diptera: Muscidae) in The Laboratory. Arq. Inst. Biol. 73(1):127129.
Blackman RL, &Eastop VF. 2000. Aphids on the World’s Crop: an
Identificationand Information Guide. 2nd edition. Chichester (GB):
Wiley.
BPS. 2014. Laporan Bulanan Data Sosial Ekonomi Desember 2014. Bada Pusat
Statistik, jakarta.

24
Universitas Sumatera Utara

25

Cloyd, R. 2003. The entomopathogen Verticillium lecanii. Midwest Biological
Control News. University of Illinois. http://www.extension.umm.
Edu/distribution/horticulture/DG7373.html [27 April 2015].
Evi, SY. 2006. Beauveria bassiana Pengendali Hama Tanaman. Warta Penelitian
dan Pengembangan Pertanian Vol. 28 No. 1. Pacet-Cianjur.
Gallegos, RP., Cesar A., Roger W., Anibal M., &German A. 2003. Control of
the Larvae of the Beetle Phyllophaga sp. with Biological Products
(Metarhiziumanisopliae and Beauveria sp.) in the Blackberry Crop
Rubus glaucus Benth. Ohio State University.
Hardiyanti, DW. 2006. Kajian Penyebaran Miselium Jamur Beauveria bassiana
dan Kerusakan Terhadap Epitel Saluran Pencernaan Makanan Larva
Plutellaxylostella (Lepidoptera: Plutellidae).Undergraduate Theses
dari JBPTITBBI,Sekolah Ilmu dan Teknologi Hayati, Institut
Teknologi Bandung.
Haryono, H., S. Nuraiani & Riyatno. 1993. Prospek Penggunaan
Beauveria bassiana untuk Pengendalian Hama Tanaman Perkebunan.
Symposium Patologi Serangga. Yogyakarta 12-13 oktober 1993.
Herlinda, S., Hamadiyah, Triani A.,& Rosdah T. 2006. Toksisitas Isolat-isolat
Beauveria bassiana (Bals.) Vuill. Terhadap Nimfa
Erydema
pulchrum (Wetw.) (Hemiptera: Pentatomidae). Agria
2(2):34-37.
Jauharlina & Hendrival. 2003. Toksisitas (LC50 dan LT50) Jamur
Entomopatogen B. bassiana (Bals.) Vuill. Terhadap Ulat Grayak
Spodoptera litura F. Jurnal Agrista. 7(3): 295-301.
Kauvelis, VN., Zare, R., Bridge, PD., &Typas, MA. 1999. Differentation of
mitochondrial subgroups in the Verticillium lecanii species
complex. Letter in Appl Microbial 28:263-268.
Karmila, Y. 2006. Patogenisitas Beauveria bassiana (Bals.) Vuill. Pada Kumbang
Penggerek Ubi Jalar Cylas formicarius Fabr. Skripsi. Program Studi Ilmu
Hama Penyakit Tumbuhan. Fakultas Pertanian. Universitas Bengkulu.
Krutmuang, P., &Supamit, M. 2005. Pathogenicity of Entomopathogenic Fungi
Metarhizium anisopliae Against Termites. In: Conference on
International
Ludwig, SW.,& Ronald, DO. 2002. Effycacy of Beauveria bassiana Plus Insect
Attaractants for Enhanched Control of Frankliniella occidentalis
(Thysanoptera:Thripidae). J. Florida Entomol. 85(1):270-272.

25
Universitas Sumatera Utara

26

Macedo, T.B., Bastos, C.S., Higley, L.G., Ostlie, K.R. & Madhavan, S. 2003.
Photosynthetic Response To Soybean Aphid (Homoptera: Aphididae)
injury. J. Econ. Entomol. 96: 188–193.
McCornack, B.P., Costamagna, A.C. & Ragsdale, D.W. 2008. Within-plant
Distribution of Soybean Aphid (Hemiptera: Aphididae) And
Development of Node-Based Sample Units For Estimating WholePlant Densities In Soybean. J. Econ. Entomol. 101: 1488–500.
Mahr, SER., Cloyd, RA., Mahr, DL., &Sadof, CS. 2001. Biology Control of
Insects And The Other Pest of The Greenhouse Crop.North Central
Regional Publication 581. Univesity of Wisconsin Exstention,
Cooperative Extention.
Marwoto. 2007. Dukungan Pengendalian Hama Terpadu Dalam Program Bangkit
Kedelai. Iptek Tanaman Pangan 2(1) : 79-92.
Meyling, NV. 2007. Methods for Isolation of Entomopathogenic Fungi From The
Soil Environment. Laboratory manual. Department of Ecology, Faculty
of Life Sciences, University of Copenhagen, Thorvaldsensvej 40, DK1871 Frederiksberg C, Denmark.
Mulyono. 2008. Kajian Patogenisitas Cendawan Metarhiziujm anisopliae
Terhadap Hama Oryctes rhinoceros L. Tanaman Kelapa Pada Berbagai
Teknik Aplikasi. Surakarta: Universitas Sebelas
O`Neal, M., & Hodgson, E. 2000. Soybean Aphid management field guide.
Iowa State University: University Extention.
Pracaya. 2009. Hama dan Penyakit Tanaman (Edisi Revisi seri Agriwawasan).
Penebar Swadaya. Jakarta.
Prayogo, Y. 2004. Keefektifan lima jenis cendawan entomopatogen terhadap
hama pengisap
polong
kedelai
Riptortus
linearis
(L.)
(Hemiptera: Alydidae)
dan
dampaknya
terhadap
predator
Oxyopes javanus Thorell (Araneida: Oxyopidae). [Tesis]. Sekolah
Pascasarjana. Institut Pertanian Bogor. 51hlm.
__________.2006.
Upaya
Mempertahankan
Keefektifan
Cendawan
Entomopatogen untuk Mengendalikan Hama Tanaman Pangan.
J.Litbang Pertanian, 25(2):47-54.
Prayogo, Y., Wedanimbi, T.,& Marwoto. 2005. Prospek Cendawan
Entomopatogen Metarhizium anisopliae untuk Mengendalikan Ulat
Grayak Spodoptera litura Pada Kedelai. J.Litbang Pertanian,
24(1):19-26.

26
Universitas Sumatera Utara

27

Robert, D. W. 1981. Toxins of Entomopathogenic Fungi. In H.D. Burges (ed.).
Microbial Control of Pest and Plant Disease.1970-1980. First ed.
London: Academic Press.
Rohajati, A. 1976. Biologi Aphis craccivora dan Aphis glycines Matsamura
(Homoptera: Aphididae) pada Tiga Varietas Kedelai. Laporan
masalah khusus, Jurusan Hama dan Penyakit Tumbuhan Fakultas
Pertanian-IPB. 73 hlm.
Scholte EJ, Knols BGJ, Samson RA, Takken W. 2004. Entomopathogenic fungi
for mosquito control: A Review. J Sci 4(19): 1-24.
Schroer, S, D. Sulistyanto & R.U. Ehrers. 2005. Control of Plutella xylostella
using polymer formulated Steinernema carpocapsae and Bacillus
thuringiensis in cabbage
fields. Journal Entonomol. 129 :
198-204.
Soetopo & Indrayani. 2007. Status Teknologi dan Prospek Beauveria bassiana
untuk Pengujian Serangga Hama Tanaman Perkebunan yang Ramah
Lingkungan. Perspektif, 6(1): 29-46.
Sri R.U., Isnawati, &R. Ambarwati. 2014. Eksplorasi dan Karakterisasi
Cendawan Entomopatogen Beauveria bassianadari Kabupaten Malang
dan Magetan.Jurusan Biologi, Fakultas Matematika dan Ilmu
Pengetahuan Alam Universitas Negeri Surabaya. Jurnal LenteraBio
3(1): 59–66
Sudarmadji, D. 1996. Pemanfaatan Jamur Beauveria bassiana Untuk
Pengendalian Helopeltis antonii. Warta Pusat Penelitian Bioteknologi
Perkebunan, II (1). Hlm 36–42.
Sun, Z., P.Z. Tian, & J. Wang. 1990. Study on the uses of aphid-resistant
character in wild soybean. I. Aphid resistance performance of F2
generation from crosses between-cultivated and wild soybean. Soybean
Genet. Newsl. 17:43-48.
Sumartini, Y. Prayogo, S.W. Indiati, & S. Hardaningsih. 2001. Pemanfaatan
Jamur Metarhizium anisopliae Untuk Pengendalian Pengisap Polong
(Riptortus linearis) Pada Kedelai. hlm. 154−157. Dalam S.E.Baehaki,
E. Santosa, Hendarsih, S.T. Suryana, N. Widarta, dan Sukrino (Ed.).
Simposium Pengendalian Hayati Serangga, Balai Penelitian Tanaman
Padi Sukamandi.
Tanada, Y.&H.K. Kaya. 1993. Insect Pathology. Academic Press, Inc.,
California. 666 pp.
Thompson SR. 2006. Enhancing the Efficacy of Beauveria bassiana for Mole
Cricket (Orthoptera: Gryllotalpidae) Control in Turfgrass. Australia:
North Carolina State University. [Dissertation].

27
Universitas Sumatera Utara

28

Thungrabeab, M., Peter, B., &Cetin, S. 2006. Possibilities for biocontrol of the
onion thrips Thrips tabaci Lindeman (Thys.,Thripidae) using
different entomopathogenic fungi from Thailand. J. Mitt. Dtsch. Ges.
Allg. Angew. Ent. 15:299-304.
Tilmon, K.J., Hodgson, E.W., O’Neal, M.E., & Ragsdale, D.W. 2011. Biology
of the soybean aphid, Aphis glycines (Hemiptera: Aphididae) in the
United States. J. Integ. PestMngmt. 2(2): 2–7.
Trizelia. 2005. Cendawan Entomopatogen Beauveria bassiana (Bals) Vuill.
(Deuteromycotina:Hyphomycetes): Keragaman Genetik, Karakteristik
Fisiologi, dan Virulensinya Terhadap Croccidolomia pavonana (F.)
(Lepidoptera: Pyralidae) Disertasi. Bogor: Institut Pertanian Bogor,
Fakultas Pertanian, Program studi Hama dan Penyakit Tumbuhan.
Trizelia, T. Santoso, Sosromarsono, A. Rauf & L.I. Sudirman. 2005. Persistence
of Beauveria bassiana (Bals.) Vuill. Conidia (Deuteromycotina:
Hypotemycetes) on cabbage plant and in the soil . paper presented at the
1st International Conference of Crop Security for Food Safety. Malang,
20-22 September 2005.
Tsakadze, T., Abashidze, E., Samadashvili, D., &Odikadze, K. 2003. Fungi of
Genus Metarhizium as Pathogens Attacking Locust. L. Kanchaveli
Georgian Plant Protection Institute.
Tyrrell D, &MacLeod DM. 1975. In vitro Germination of Entomophthora
Aphidis Resting Spores. Can J Bot (53):1.188−1.191.
Wang, X.B., Fang, Y.H., Lin, S.Z., Zhang, L.R., & Wang, H.D. 1994. A Study
on The Damage And Economic Threshold 0f The Soybean Aphid At The
Seedling Stage. PlantProt 20:12–13.
Widiyanti, N.L.P.M., & S. Muyadihardja. 2004. Uji Toksisitas Jamur
Metarhizium anisopliae terhadap Larva nyamuk Aedes aegypti.Media
Litbang Kesehatan 14 (3): 25-30.
Wiludjeng, & Widawati. 2007. Penggunaan Nematoda Entomopatogen
Steinernema carpocapsae (All strain) dan Tanaman Sela Bawang Merah
Dalam Pengendalian Hama Pada Tanaman Kubis. J. Pertanian Mapeta
10(1):60-65.

Winarto, L., & Darmawati, N. 2004. Teknologi Pengendalian Hama Plutella
xylostella dengan Insektisida dan Agensia Hayati Pada Kubis di
Kabupaten Karo. J. Pengkajian danPengembangan Tekper.
7(1):27-33.

28
Universitas Sumatera Utara

29

Zare, R.,& Gams, W. 2001. A revision of Verticillium sect. Prostrata. IV The
Genera Lecanicillium and Simplicillium gen. Nova Hedwigian 73: 1-50.

29
Universitas Sumatera Utara

11

METODOLOGI PENELITIAN
Tempat dan Waktu Penelitian
Peneltian ini dilaksanakan di Lahan Percobaan Fakultas Pertanian
Universitas Sumatera Utara, dengan ketinggian tempat ± 25 meter di atas
permukaan laut, pada bulan Desember 2015sampai dengan Februari 2016.
Bahan dan Alat
Bahan yang digunakan pada penelitian ini antara lain, tanaman kedelai
sehat,kutu daun A. glycines,L.lecanii, M. anisopliae, dan B. bassiana, PDA
(Potato Dextrose Agar), cling wrap, kapas, alumunium foil, kertas stensil, air
steril, aquades, alkohol 96%, kloroks, polibagukuran 15x20cm, kertas label.
Alat yang digunakan pada penelitian ini antara lain, sungkup, cawan petri
diameter 9 cm, erlemeyer, gelas ukur, tabung reaksi, hot plate, jarum inokulum,
micropipet, microscope compound, kaca pembesar, autoclave, timbangan analitik,
laminar air flow, haemocytometer, lemari pendingin dan alat tulis.
Metode Penelitian
Penelitian ini menggunakan metode Rancangan Acak Kelompok (RAK)
yang terdiri dari 12 perlakuan dan tiga ulangan. Adapun perlakuannya adalah:
P0 : (Kontrol) kutu instar 4 tanpa perlakuan Entomopathogen
P1 : Kutu instar 2 + Lecanicillium lecanii 107
P2 : Kutu instar 2 + Beauveria bassiana 107
P3 : Kutu instar 2 + Metarhizium anisopliae 107
P4 : Kutu instar 4 + Lecanicillium lecanii 107
P5 : Kutu instar 4 + Beauveria bassiana 107
P6 : Kutu instar 4 + Metarhizium anisopliae 107

11
Universitas Sumatera Utara

12

Jumlah ulangan diperoleh dengan rumus:
(t-1) (r-1) ≥ 15
(6) (r-1) ≥ 15
6r – 6

≥ 15

6r

≥ 21

r

≥ 21/6

r

≥ 3,5

Ulangan yang digunakan adalah sebanyak 4 ulangan, yaitu:
Total unit percobaan : 7 x 4 = 28 unit percobaan
Pelaksanaan Penelitian
Pemeliharaan Serangga Aphis glycines
Aphis glycines dikembangbiakkan pada tanaman kedelai dilaboratorium.
Perkembangbiakkan serangga dilakukan terus menerus dan diupayakan serangga
dapat tumbuh dan berkembang secara optimal dengan tujuan dapat memperoleh
populasi A.glycines dalam jumlah yang banyak dan umur yang seragam.
Pemeliharaan Tanaman Kedelai di Lahan Percobaan
Kedelai varietas Wilis ditanam di dalam polybagberukuran 15x20cm
yang berisi top soil, tiap polybag diisi dua biji.
Perbanyakan

dan

Persiapan

Formulasi

Cendawan

Entomopatogen

(Lecanicilliumlecanii, Metharizium anisopliae, dan Beauveria bassiana)
Cendawan entomopatogen Metarhizium anisopliae dan B. bassiana
diperoleh dari isolat yang sudah tersedia di Laboratorium Penyakit Tumbuhan
Fakultas Pertanian Universitas Sumatera Utara, sedangkan isolatLecanicillium
lecanii diperoleh dari Laboratorium Penyakit Tumbuhan Fakultas Pertanian

12
Universitas Sumatera Utara

13

Universitas Brawijaya Malang. Cendawan entomopatogen dikulturkan pada media
tumbuh potato dextrose agar (PDA) di dalam cawan petri. Pada umur 21 hari
setelah inokulasi (HSI), setiap biakan cendawan yang ada di dalam cawan petri
ditambahkan air 10 ml kemudian konidia yang terbentuk diambil menggunakan
kuas halus dan dikerok pada bagian permukaan koloni bagian atas. Suspensi
konidia cendawan yang diperoleh dihitung menggunakan haemocytometer hingga
memperoleh kerapatan konidia sesuai dengan perlakuan yang sudah ditentukan.
Aplikasi Cendawan Entomopatogen dan Investasi Aphis glycines
Kedelai yang berumur 21 hari setelah tanam (HST), diinfestasi dengan A.
glycines sebanyak 10 ekor tiap tanamansesuai perlakuan dan diberi sungkup.
Setiap tanaman kemudian disemprot suspensi konidia cendawan entomopatogen
dengan kerapatan 107konidia/ml. Suspensi konidia cendawan diaplikasikan
dengan dosis5 ml/tanaman.
PeubahAmatan
Mortalitas A. glycines
Persentase mortalitas A. glycinesdihitung dengan menggunakan rumus
sebagai berikut :
�

Keterangan :

P = � � 100%

P = Mortalitas (%)
n = Jumlah nimfa yang mati
N = Jumlah seluruh nimfa

13
Universitas Sumatera Utara

14

Waktu Kematian A. glycinesSetelah PerlakuanEntomopatogen
Waktu kematian adalah waktu yang dibutuhkan oleh entomopatogenuntuk
mematikan serangga A. glycines. Waktu kematian diamati setiap hari sampai 7
hari setelah aplikasi (HSA) dihitung dengan menggunakan rumus :
W=

∑(�� ℎ�� ���� ���� ���� ℎ��� �� � ×ℎ��� �� � �� ℎ�� ���� ������ ℎ �������� )
∑ �� ℎ�� ���� ����

Keterangan :

W = waktu kematian Aphis (Karmila, 2006)
Gejala A. glycinesyang Terinfeksi Cendawan Entomopatogen
Pengamatan dilakukan setiap hari pada sore hari sampai nimfaA. glycines
mati terinfeksi cendawan entompatogen.
Analisis Data
Untuk mengetahui pengaruh antar perlakuan, maka data-data yang
diperoleh diuji dengan analisis varian, dilanjutkan dengan Uji Jarak Berganda
Duncan (DMRT) taraf 5 % bila terdapat beda nyata.

14
Universitas Sumatera Utara

15

HASIL DAN PEMBAHASAN
Persentase Mortalitas Aphis glycines
Hasil uji patogenisitas beberapa cendawan entomopatogenL. Lecanii, B.
Bassiana, dan M. anisopliae terhadap A. glycinesdengan perlakuan beberapa jenis
cendawan dan instar serangga uji menunjukkan bahwa,hanya beberapa perlakuan
yang dapat mematikanA. glycines(Tabel 1). Dan berdasarkan analisis statistik,
mortalitas A.glycinespada beberapa perlakuan berbeda nyata pada

taraf

5% (Lampiran 3).
Tabel 1. Rerata mortalitas A. glycines pada beberapa perlakuan stadia dan
Cendawan Entomopatogen
Perlakuan

Mortalitas (%)

P0 (kontrol)

0d

P1 (A. glycines instar 2 + L. lecanii)

0d

P2 (A. glycines instar 2 + B. bassiana)

0d

P3 (A. glycines instar 2 + M. Anisopliae)

0d

P4 (A. glycines instar 4 + L. lecanii)

90,0a

P5 (A. glycines instar 4 + B. bassiana)

37,5c

P6 (A. glycines instar 4 + M. Anisopliae)

67,5b

Keterangan: angka yang diikuti oleh huruf kecil yang sama berbeda tidak nyata
pada uji jarak duncan taraf 5%.
Pada tabel 1 terlihat perlakuan tertinggi dalam mematikan A. glycine
secara berurut yaitu P4(Kutu instar 4 + L. lecanii) 90,0%, P6(Kutu instar 4 + M.
anisopliae) 67,5%, dan P5(Kutu instar 4 + B. bassiana)37,5%. Sedangkan pada
perlakuan lain P3, P2, P1, P0 tidak ada A. glycines yang mati, yaitu dengan nilai
mortalitas 0% pada keempat perlakuan tersebut.

15
Universitas Sumatera Utara

16

Tabel menunjukkan perlakuan P4(Kutu instar 4 + L. lecanii), P5(Kutu
instar 4 + B.bassiana), dan P6(Kutu instar 4 + M. anisopliae) berbeda dalam
mematikan A. glycines, dan berbeda nyata dengan perlakuan P3(Kutu instar 2 +
M. anisopliae), P2(Kutu instar 2 + B. bassiana), P1(Kutu instar 2 + L. lecanii)
maupun kontrol.
Pada perlakuanP4 (Kutu instar 4 + L. lecanii) dan P6 (Kutu instar 4 + M.
anisopliae)terlihat bahwa cendawan L. Lecanii danM. anisopliae mampu dan
efektif dalam mematikan A. glycines, sedangkan cendawan B. bassiana mampu
dalam mematikanA. glycines namun masih belum efektif karena tingkat
mortalitasnya masih rendah. Sama halnya dengan penelitian Arsyiogi (2014),
bahwa secara keseluruhan perlakuan konsentrasi jumlah konidia/ml B. bassiana
yang diaplikasikan pada A. craccivora mampu mematikan serangga uji akan tetapi
tidak efektif untuk mematikan A. craccivora secara keseluruhan karena tingkat
mortalitasnya di bawah 50%.
Rendahnya tingkat kematian A. glycines salah satunya terjadi karena
cendawan entomopatogenmemiliki sifat yang spesifik dalam menginfeksi
serangga. Cendawan ini akan efektif jika diisolasi dari isolat yang sama. Pada
penelitian ini isolat yang digunakan diperoleh dari laboratorium. Menurut Trizelia
et al.(2005), patogenisitas konidia cendawan entomopatogen yang baik adalah
isolat berasal dari inang yang sama dengan serangga uji yang berasal dari
ekosistem yang sama.
Tingkat persentase mortalitas tertinggi dan terendah terlihat pada
perlakuan dengan instar berbeda, hal ini menunjukan bahwa tingkat keberhasilan
aplikasi entomopatogen dipengaruhi oleh stadia instar serangga uji. Menurut

16
Universitas Sumatera Utara

17

Wiludjeng & Widawati (2007), perbedaan tinggi rendahnya mortalitas serangga
yang terinfeksi dipengaruhi oleh patogenisitas entomopatogen, juga umur dan
kerentanan serangga uji itu sendiri.
Berdasarkan uji yang dilakukan A. glycinesdinilai tahan terhadap infeksi
cendawan entomopatogen pada instar tertenetu, terlihat pada perlakuan P1,P2, dan
P3 dengan nilai mortalitas 0%, hal ini disebabkan karena proses pergantian kulit
dari A. glycines lebih cepat dibandingkan dengan waktu yang di butuhkan jamur
untuk melakukan penetrasi. Menurut Alavo et al. (2002) meskipun stadia inang
rentan terhadap infeksi cendawan entomopatogen, akan tetapi jika serangga inang
tersebut mengalami ganti kulit maka infektifitas cendawan jadi sangat rendah, hal
ini disebabkan konidia akan terlepas bersama kutikula sebelum menginfeksi
inang.
Secara

keseluruhan

perlakuan

di

lapangan

menunjukkan

nilai

mortalitaslebih rendah dibandingkan dengan perlakuan cendawan entomopatogen
L.

Lecanii

(Afifah,

Anisopliae(Apriliana &

2011),

B.

bassiana

(Arsyiogi,

2014)

dan

M.

Trianik, 2014) yang diuji di laboratorium, hal ini

dikarenakan faktor lingkungan di laboratorium lebih stabil dan homogen dalam
mendukung perkembangan jamur entomopatogen. Schroer et al. (2005),
mengemukakan bahwa keberhasilan aplikasi cendawan entomopatogenpada
serangga di batasi oleh pengaruh lingkungan seperti suhu, kekeringan dan sinar
ultra violet.
Gambaran perkembangan mortalitas A.glycines sesuai perlakuan dapat
dilihat pada Gambar 1 berikut :

17
Universitas Sumatera Utara

18

Gambar 1. Histogram perkembangan mortalitas A. glycines
Gambar1

terlihat

bahwa

perlakuan

P4

(Kutu

instar

4

+

L.

lecanii)menunjukkan persentase kematian A. glycines90,0% tertinggi dibanding
perlakuan lain. Kemudian diikuti perlakuan P6 (Kutu instar 4 + M. anisopliae)
67,5%, P5 (Kutu instar 4 + B. bassiana) 37,5%, lalu perlakuan lainnya P3, P2, P1,
dan kontrol memiliki nilai mortalitas 0%. Mortalitas serangga ujimulai terlihat
pada hari ke 3 sampai ke 7. Menurut MacLeod (1963) dalam Tanada & Kaya
(1993), periode proses awal infeksi sampai kematian serangga terjadi dalam kurun
waktu yang singkat yaitu hanya 3 hari dan selambat-lambatnya 12 hari, namun
pada umumnya terjadi dalam waktu 5-8 hari dan periode tersebut dapat berbeda
tergantung pada ukuran inang.
Waktu Kematian A. glycines

18
Universitas Sumatera Utara

19

Hasil menunjukkan perlakuan yang diuji memberikan pengaruh yang nyata
(Lampiran 7) terhadap waktu kematian A. glycines.

7

6,46
5,82

Waktu Kematian (Hari)

6

5,00
5
4
3
2
1
0,00

0,00

0,00

0,00

P0

P1

P2

P3

0
P4

P5

P6

Perlakuan

Gambar 2. Histogram waktu kematian A. glycines
Gambar 2 menunjukkan bahwa waktu kematian Aphis yang paling lambat
mati terjadi pada perlakuan P5 yaitu 6,46 HSA, diikuti perlakuan P4 yaitu 5,82
HSA, dan P6 yaitu 5,00 HSA, selanjutnya perlakuan P3, P2, P1, dan kontrol
masing-masing 0 HSA karena tidak ada serangga uji yang mati (Lampiran 6).
Antara perlakuan tertinggi maupun terendah berbeda nyata terhadap waktu
kematian setelah dianalisis dengan analisis varian.
Pengaruh nyata dari beberapa perlakuan yang diuji terhadap mortalitas A.
glycinesdisebabkan oleh jamur entomopatogenmembutuhkan waktu untuk bisa
menginfeksi dan mematikan A. glycines. Menurut MacLeod (1963) dalam Tanada
& Kaya (1993), periode proses awal infeksi sampai kematian serangga terjadi
dalam kurun waktu yang singkat yaitu hanya 3 hari dan selambat-lambatnya 12
hari, namun pada umumnya terjadi dalam waktu 5-8 hari dan periode tersebut
dapat berbeda tergantung pada ukuran inang.

19
Universitas Sumatera Utara

20

Menurut Scholte et al. (2004), proses serangan cendawan entomopatogen
hingga menyebabkan inangnya mati adalah sebagai berikut: konidia kontak pada
integumen serangga kemudian menempel serta berkecambah dan melakukan
penetrasi dengan membentuk tabung kecambah (appresorium), setelah masuk ke
dalam hemosel, cendawan membentuk blastospora yang beredar dalam hemolimfa
dan membentuk hifa sekunder untuk menyerang jaringan lain seperti sistem
syaraf, trakea, dan saluran pencernaan. Terjadinya defisiensi nutrisi, adanya toksin
yang dihasilkan oleh cendawan, dan terjadinya kerusakan jaringan dalam tubuh
serangga akan menyebabkan terjadinya paralisis dan kematian pada serangga.
Gejala A. glycines yang terinfeksi Cendawan Entomopatogen
Berdasarkan hasil pengamatan terhadap A. glycine yang terinfeksi jamur
entomopatogen umumnya menunjukan gejala yang sama yaitu tubuh kaku,
mengeras, dan mengering seperti mumi (mumifikasi). Perbedaannya terlihat dari
miselia yang menyelimuti serangga uji, seperti yang dapat terlihat pada gambar 3.

a

b

c

Gambar 3. A. glycines yang terinfeksi Jamur Entomopatogen ; L. Lecanii (a),
B. bassiana (b), M. Anisopliae (c).
A. glycines yang terinfeksi cendawan dan mati, pada awalnya berwarna
kehitaman. Infeksi cendawan pada kutudaun mulai terjadi pada waktu dua hari
setelah perlakuan (HSA). Pada 3 HSA serangga mulai menunjukkan tanda

20
Universitas Sumatera Utara

21

terinfeksi yaitu ditumbuhi oleh miselia cendawan bewarna putih. Mula-mula
miselia cendawan hanya pada bagian tertentu saja, tetapi lama-kelamaan miselia
cendawan tersebut menyebar ke seluruh bagian kutudaun, sehingga seluruh bagian
kutu daun terkolonisasi oleh miselia cendawan.
Tubuh Aphis glycines yang mati terinfeksi cendawan entomopatogen
terlihat mengering dan mengeras, hal ini terjadi karena seluruh cairan pada tubuh
A. glycines digunakan untuk pertumbuhan cendawan entomopatoen. Sesuai
dengan pernyataan Santoso (1994) dalam Jauharlina & Hendrival (2003)
menyatakan bahwa pada umumnya semua jaringan dan cairan tubuh serangga
habis digunakan oleh cendawan entomopatogen untuk pertumbuhan dan
perkembangannya, akibatnya serangga mati dengan tubuh mengeras seperti mumi.
Jika keadaan mendukung, cendawan menembus keluar tubuh serangga terutama
pada artikulasi embelan tubuh dan alat mulut.
Cendawan L. lecanii memproduksi dua senyawa metabolit, yaitu
dipicolonic acid dan cyclodepsipeptide (Cloyd, 2003). Pada proses penetrasi
senyawa mukopolisakarida tersebut memegang peranan sangat penting.
Selanjutnya cendawan melakukan penetrasi dan menembus integumen, cendawan
membentuk tabung kecambah (appresorium) (Tyrrell & MacLeod, 1975).
Menurut Robert (1981), setelah melakukan penetrasi ke dalam tubuh
serangga, hifa cendawan B. bassiana berkembang dan memasuki pembuluh darah,
selain itu cendawan ini juga menghasilkan beberapa toksin yaitu beauvericin,
beauverolit, bassianolit dan isorolit, yang dapat menaikkan pH dan penggumpalan
darah, serta terhentinya peredaran darah. Cendawan tersebut juga menyebabkan
kerusakan jaringan haemocoel secara mekanis seperti saluran pencernaan, otot, sistem

21
Universitas Sumatera Utara

22

pernafasan. Keseluruhan proses tersebut akhirnya menyebabkan matinya serangga
tersebut.

Mulyono (2008), menyatakan bahwa kematian serangga akibat jamurM.
anisopliae terjadi karena konidia cendawan M. anisopliae mengandung
cyclopeptida, destruxin A (C29H47O7N5), destruxin B (C25H42O6N4),
destruxin C, D, E, dan desmethyl destruxin. Efek destruxin berpengaruh pada
organela sel target (mitokondria, retikulum endoplasma dan membran inti),
menyebabkan kelumpuhan sel dan berubahnya fungsi midgut, tubulus malphigi
dan jaringan otot. Toksisitas destruxin yang dihasilkan oleh jamur M. anisopliae
berbeda tergantung dari jenis serangga.

22
Universitas Sumatera Utara

23

KESIMPULAN DAN SARAN
Kesimpulan
1. Mortalitas tertinggi A. glycine secara berurut yaitu P4 (Kutu instar 4 + L.
lecanii) 90,0%, P6 (Kutu instar 4 + M. anisopliae) 67,5%, dan P5 (Kutu
instar 4 + B. bassiana) 37,5%, sedangkan perlakuan P3, P2, P1, dan
Kontrol tidak ada A. glycines yang mati.
2. Waktu kematian Aphis yang paling cepat terjadi pada perlakuan P6 yaitu
5,00 HSA, diikuti perlakuan P4 yaitu 5,82 HSA, dan P6 yaitu 6,46 HSA,
selanjutnya perlakuan P3, P2, P1, dan kontrol masing-masing 0,00 HSA
karena tidak ada serangga uji yang mati.
3. A. glycine yang terinfeksi jamur entomopatogen menunjukan gejala seperti
tubuh kaku, mengeras, dan mengering seperti mumi (mumifikasi).
4. A. glycines dinilai tahan terhadap infeksi cendawan entomopatogen, hal ini
disebabkan karena proses pergantian kulit dari A. glycines lebih cepat
dibandingkan dengan waktu yang di butuhkan jamur untuk melakukan
penetrasi.
5. Lecanicillium lecanii

dan Metarhizium anisopliae efektif

dalam

mengendalikan Aphis glycines di lapangan, tidak sama halnya dengan
Beauveria bassiana dengan tingkat mortalitas di bawah 50%.
Saran
Perlu

dilakukan

penelitian

lanjutan

tentang

potensi

cendawan

entomopatogen (L. Lecanii, B. bassiana, M. anisopliae) yang digunakan dalam
mengendalikan serangga hama lain.

23
Universitas Sumatera Utara

5

TINJAUAN PUSTAKA
Kutu Daun Kedelai (Aphis glycines)
Menurut Blackman dan Eastop (2000), adapun klasifikasi kutu daun
kedelai adalah sebagai berikut:
Kingdom

: Animalia

Filum

: Arthropoda

Kelas

: Insekta

Ordo

: Hemiptera

Famili

: Aphididae

Genus

: Aphis

Spesies

: Aphis glycinesMatsumura.
Kata aphididae berasal dari bahasa Yunani yang artinya mengisap cairan.

Hal ini menunjukkan bahwa hama ini mengisap cairan dari tanaman sebagai
nutrisi makanannya (O`Neal & Hodgson, 2000).
Kutudaun tergolong serangga yang berukuran kecil. Tubuh betina yang
tidak bersayap bewarna kuning pucat atau kuning kehijauan, panjang tubuh 1.01.6 mm, kornikel hitam dan seringkali dengan dasar kauda yang pucat. Marginal
tubercles kecil, terdapat pada ruas abdomen kesatu dan ketujuh. Antenal tubercles
tidak berkembang. Antena beruas enam dan panjangnya kurang lebih 2/3 panjang
tubuh. Pada kauda terdapat 7-10 seta. Di daerah tropik seperti Indonesia, kutudaun
berkembang biak secara partenogenetik yaitu sel telur dapat menjadi embrio tanpa
mengalami pembuahan dan secara vivipar yaitu serangga dewasa melahirkan
nimfa. Kemampuan kutudaun berkembangbiak secara partenogenetik tersebut

5
Universitas Sumatera Utara

6

menyebabkan populasi kutudaun dapat meningkat dengan cepat jika dalam
kondisi yang baik (Afifah, 2011).
Siklus hidup A. glycines satu minggu dengan rincian: stadium nimfa instar
satu selama satu hari, instar dua, tiga, dan empat masing-masing dua hari. Nimfa
dengan cepat (lebih kurang seminggu) menjadi dewasa dan siap melahirkan
generasi baru. Pada kedelai varietas Orba rata-rata lama hidup dan keperidian
berturut-turut adalah 15 hari dan 21 nimfa (Rohajati, 1976).
Aphis glycines menyerang bagian daun tanaman kedelai dengan cara
menusukkan alat mulutnya yang seperti jarum (stylet). Alat mulut kutu ini mampu
menusuk epidermis daun maupun batang tanaman kedelai dan juga mengisap
cairan serta nutrisi tanaman sehingga lambat laun tanaman kedelai akan
kehilangan cairan nutrisi. Kerusakan tanaman disebabkan oleh fase nimfa dan
imago A. glycines (Pracaya, 2009).
Aphisglycines menyerang tanaman kedelai sejak awalpertumbuhan hingga
masa panen. Selain sebagai hama, serangga ini dapat jugaberperan sebagai vektor
yang dapat menularkan virus dari tanaman satu ke tanaman lainnya melalui
aktivitas makannya. Kerugian lain yang diakibatkan A. glycinesadalah adanya
embun jelaga berwarna hitam yang dapat menutupi permukaan daunkedelai
sehingga fotosintesis terganggu (Tilmon et al., 2011)
CendawanLecanicillium lecanii
Cendawan Lecanicillium lecanii (Zimm.) (Viegas) (Zare and Gams)
digolongkan divisi Deuteromycotina kelas Hyphomycetes yang tergolong
imperfect fungi atau cendawan yang memiliki siklus tidak sempurna. L. lecanii
merupakan cendawan entomopatogen yang pertama kali ditemukan oleh

6
Universitas Sumatera Utara

7

Zimmermann pada tahun 1898 dengan nama Chephalosporium lecanii. Pada
tahun 1939, Viegas mengubah nama menjadi Verticillium lecanii berdasarkan
studi kisaran inang (Kauvelis et al.,1999).
Pengamatan lebih lanjut terhadap sifat morfologi dan analisis molekuler,
cendawan berubah nama menjadi L. lecanii sampai sekarang(Zare and Gams,
2001). Cendawan L. lecanii digunakan untuk mengendalikan hama terutama
Hemiptera dengan tingkat mortalitas yang bervariasi (Prayogo, 2004).
Cendawan ini mudah tumbuh pada berbagai media, terutama pada media
potato dextrose agar (PDA) dan beras. Di dalam cawan petri, diameter koloni
dapat mencapai 4–5,50 cm pada 3 hari setelah inokulasi. Koloni cendawan
berwarna putih pucat. Kumpulan konidia ditopang oleh tangkai konidiofor yang
membentuk fialid seperti huruf L. Setiap konidiofor menopang 5−10 konidia yang
terbungkus dalam kantong lendir. Konidia berbentuk silinder hingga elip, terdiri
atas satu sel, tidak berwarna (hialin), berukuran 2,30−10 x 1−2,60 μm (Tanada &
Kaya, 1993).
Cendawan entomopatogen memerlukan kelembaban yang tinggi untuk
tumbuh dan berkembang, hal tersebut diperlukan selama proses pembentukan
tabung kecambah (germ tube), sebelum terjadi penetrasi ke integumen serangga.
Cendawan L. lecanii tumbuh baik pada suhu 18-30ºC dan kelembaban minimal
80%. Pada kelembaban lebih dari 90% cendawan tumbuh sangat baik (Cloyd,
2003).
Cendawan L. lecanii bersifat parasit, namun akan berubah menjadi saprofit
bila kondisi tidak menguntungkan, misalnya dengan hidup pada serasah atau sisa-

7
Universitas Sumatera Utara

8

sisa hasil pertanian. Cendawan L. lecanii mampu hidup pada bahan organik yang
mati dalam rentang waktu yang sangat panjang (Tanada and Kaya, 1993).
CendawanBeauveria bassiana
Beauveria bassiana adalah cendawan entomopatogen yang terbukti
memiliki daya bunuh tinggi terhadap serangga hama terutama ordo Lepidoptera,
Hemiptera dan Coleoptera. Pertumbuhan dalam media berbentuk koloni putih
seperti kapas, konidiofor yang fertile bercabang-cabang secara zig-zag dan pada
bagian ujungnya terbentuk konidia. Konidia bersel satu berbentuk bulat sampai
oval, hialin, berukuran 2-3 mikron (Haryono et al.,1993).
Pengendalian hayati dengan menggunakan jamur entomopatogen saat ini
menjadi pilihan utama. B. bassiana ialah jamur entomopatogen dapat membunuh
serangga antara lain Lepidoptera (Winarto dan Darmawati, 2004), Thysanoptera
(Ludwig and Ronald, 2002), Hemiptera (Herlinda et al., 2006), Homoptera (Evi,
2006), Orthoptera (Thompson, 2006) dan Diptera (Bernardi et al., 2006).
Jamur B.bassiana mempunyai kapasitas reproduksi yang tinggi, mudah
diproduksi dan pada kondisi yang kurang menguntungkan dapat membentuk spora
yang mampu bertahan lama di alam (Widayat dan Dini, 1993 dalamSudarmadji,
1996).
Di Indonesia, hasil-hasil penelitian B. bassiana juga telah banyak
dipublikasikan, terutama terkait aplikasinya pada tanaman pangan untuk
mengendalikan hama, misalnya hama jagung, yaitu Spodoptera litura,
Helicoverpa armigera, dan Ostrinia furnacalis, hama kedelai (R. linearis dan S.
litura), walang sangit pada padi (L. acuta) (Prayogo, 2006),Plutella xylostella dan

8
Universitas Sumatera Utara

9

Crocidolomia pavonana pada sayur-sayuran kubis (Trizelia, 2005) dan penggerek
buah kakao Hypothenemus hampei(Prayogo, 2006).
Untuk memperoleh isolat B. bassiana yang dapat mapan untuk
diaplikasikan di lapangan diperlukan eksplorasi B. bassiana pada berbagai lokasi,
kemudian dikarakterisasi secara morfologi (warna koloni, ukuran konidia, dan
kerapatan hifa), serta ditinjau viabilitassetiap isolat. Selain itu, perlu diuji
efektivitas setiap isolat untuk mengendalikan hama serangga sebelum diformulasi
menjadi bioinsektisida (Sri et al.,2014).
Beauveria bassiana dapat diisolasi dari serangga yang mati karena
terinfeksi B. bassianadan dari tanaman maupun tanah (Soetopo & Indrayani,
2007).

Metode

yang

direkomendasikan

untuk

mengisolasi

cendawan

entomopatogen dari populasi asli atau lokal adalah metode pemancingan dengan
serangga (insect bait method) yang digunakan untuk mengisolasi cendawan dari
tanah (Meyling, 2007).
CendawanMetarhizium anisopliae
Jamur M. anisopliae termasuk dalam kelas Hyphomycetes, ordo
Moniliales dan famili Monileaceae. Jamur M. anisopliae mampu menginfeksi
hama yang mempunyai tipe mulut menusuk dan mengisap (haustelata), seperti
golongan Aphis sp. baik stadia nimfa maupun imago (Sumartini et al.,2001).
Disamping itu, M. anisopliae juga mampu menginfeksi hama yang mempunyai
tipe

mulut

menggigit

mengunyah

(mandibulata),

seperti

Spodoptera

litura(Prayogo et al., 2005).
Salah satu keuntungan penggunaan cendawan Metarhizium spp. untuk
pengendalian hayati adalah dapat digunakan untuk mengendalikan berbagai

9
Universitas Sumatera Utara

10

tingkat perkembangan serangga mulai dari telur, larva, pupa dan imago (Prayogo,
2004).
Jamur M. anisopliae memiliki beberapa kelebihan antara lain berkapasitas
reproduksi tinggi, relatif aman, siklus hidupnya pendek, selektif, mudah
diproduksi, serta dapat bertahan dalam kondisi yang tidak menguntungkan
(Prayogo et al., 2005).
Jamur M. anisopliae memiliki aktivitas larvisidal karena menghasilkan
cyclopeptida, destruxin A, B, C, D, E dan desmethyldestruxin. Destruxin telah
dipertimbangkan sebagai bahan insektisida generasi baru. Efek destruxin
berpengaruh pada organella sel target (mitokondria, retikulum endoplasma dan
membran

nukleus),

lambung

tengah,

menyebabkan
tubulus

paralisa

malphigi,

sel

hemocyt

dan
dan

kelainan
jaringan

fungsi
otot

(Widiyanti & Muyadihardja, 2004).

10
Universitas Sumatera Utara

1

PENDAHULUAN
Latar Belakang
Kedelai (Glycine max (L.) Meriill) merupakan salah satu komoditi
tanaman yang penting dalam pertanian di Indonesia karena memiliki berbagai
manfaat, baik dalam penyediaan pangan, pakan, dan bahan baku industri.
Penggunaan kedelai terus meningkat sejalan dengan pertambahan penduduk
sehingga produksi nasional harus dapat memenuhi kebutuhan masyarakat
Indonesia. Namun, pada kenyataannya produksikedelai dalam negeri belum
mampu mencukupi permintaan tersebut(Adisarwanto, 2010).
Indonesia merupakan salah satu negara utama pengimpor kedelai.
Produksi kedelai nasional sampai saat ini masih di bawah 2,5 ton/ha. Padatahun
2014 Indonesia mengimpor kedelai sebanyak 348.000 ton, dengan produksidalam
negeri berkisar di bawah 1 juta ton. Hal ini disebabkan karenatingginya kebutuhan
kedelai di Indonesia, sementara produksi kedelai nasional masih lebih rendah
dibanding kebutuhan masyarakat(BPS, 2014).
Pertanaman kedelai di Indonesia menghadapi permasalahan utama, antara
lain: meningkatnya impor kedelai untuk memenuhi kebutuhan nasional, lebarnya
senjang produktivitas di tingkat petani dengan potensi genetik kedelai karena
sebagian besar petani belum menggunakan varietas unggul baru yang toleran
terhadap cekaman abiotik, serta teknik pengelolaan lahan, air, tanaman, yang
belum tepat dan serangan organisme pengganggu tanaman yang sangat tinggi
(Arifin, 2012).
Jenis OPT yang menyerang tanaman kedelai di Indonesia telah
teridentifikasimelebihi 100 jenis hama potensial. Beberapa jenis hama penting

1
Universitas Sumatera Utara

2

tanaman kedelaimulai dari awal tanam hingga panen antara lain : lalat bibit
(Ophiomy

paseoli),

lalatbatang

(Melanogromyza

sojae),

lalat

pucuk

(Melanogromyza dolichostigma), Agrotisspp, Longitarsus suturellinus, Phaedonia
inclusa,Spodoptera

litura,

Chrysodeixis

chalcites,Lamprosema

indicata,

Helicoverpa sp,Etiella spp, Riptortus linearis,Nezara viridula, Piezodorus
hybneri, lalat kacang (Agromyza sp), ulat pemakan daun (Lamprosema litura),
wereng kedelai (Phaedonia inclusa), pengisap polong (Riptortus linearis),
penggerek polong (Etiella zinckenelo), pengisap dan penggerek polong (Nezara
viridula), Bemisia tabaci, Aphis glycines(Marwoto, 2007).
Kutu daun Aphis glycines (soybean aphid) merupakan salah satu hama
kedelai yang berkembang dalam koloni besar dan menyebabkan kehilangan hasil
mencapai 58% pada tanaman kedelai (Wang et al., 1994). A. glycines kedelai
memiliki tipe mulut menusuk mengisap yang digunakan untuk mengambil cairan
dari jaringan floem. A. glycines mengisap cairan tanaman pada daun, batang, dan
polong. Namun demikian A. glycines banyak dijumpai pada permukaan bawah
daun (Tilmon et al., 2011). A. glycines yang menyerang tanaman kedelai dapat
menyebabkan penurunan kapasitas fotosintesis(Macedo et al., 2003).
Populasi A. glycines yang tinggi dapat mengurangi produksi kedelai secara
langsung melalui beberapa kerusakan. Gejala serangannya seperti kerdil, distorsi
daun, dan mengurangi kualitas polong yang dihasilkan (Sun et al., 1990). Jumlah
polong yang terbentuk berkurang, berukuran kecil, dan berbelang (Baliadi, 2007).
Di dalam agroekosistem, serangga dapat berasosiasi dengan jamur
entomopatogen. Asosiasi tersebut dalam bentuk menginfeksi serangga sehat,
termasuk menginfeksi golongan Aphis. Jamur entomopatogen yang sering

2
Universitas Sumatera Utara

3

menginfeksi

Aphisadalah

Beauveria

bassiana,

Metarhizium

anisopliae,

Paecilomyces fumosoroceus dan Verticillium lecanii(Mahr et al.,2001).
Pada penelitian sebelumnya (Prayogo, 2004) berhasil mengidentifikasi
cendawan entomopatogen Lecanicillium lecanii dari walang sangit (Leptocoriza
oratoria) yang efektif untuk mengendalikan hama pengisap polong (Riptortus
linearis) pada kedelai. Cendawan L. lecanii juga dapat digunakan untuk
mengendalikan serangga hama terutama ordo Homoptera (Cloyd, 2003) dan
Hemiptera (Prayogo, 2004).
SelainLecanicillium lecanii, jamur entomopatogen seperti M. anisopliae
dan B. bassianajuga berperan sebagai agen hayati pengendali hama. Metarhizium
efektif membunuh serangga, antara lain ordo Coleoptera (Gallegos et al.,2003),
Lepidoptera (Prayogo et al., 2005), Isoptera (Krutmuang & Supamit, 2005),
Thysanoptera (Thungrabeab et al.,2006), dan Orthoptera (Tsakadze et al.,2003).
Berdasarkan penelitian diketahui bahwaB. bassiana (Deuteromycetes:
Moniliceae) efektif dalam menekan perkembangan Hemiptera (Herlinda et al.,
2006), Homoptera (Evi, 2006), Orthoptera (Thompson, 2006) dan Diptera
(Bernardi et al., 2006).
Berbagai

kelebihan

pemanfaatan

jamur

entomopatogen

dalam

pengendalian hama ialah mempunyai kapasitas reproduksi yang tinggi, siklus
hidupnya pendek, dapat membentuk spora yang tahan lama di alam walaupun
dalam kondisi yang tidak menguntungkan, relatif aman, bersifat selektif, relatif
mudah diproduksi, dan sangat kecil kemungkinan terjadi resistensi (Prayogo et
al., 2005). Oleh karena itu, diperlukan penelitian lebih lanjut untuk mengetahui

3
Universitas Sumatera Utara

4

cendawan entomopatogen yang efektif dalam pengendalian hama kutu daun (A.
glycines)pada tanaman kedelai.
Tujuan Penelitian
Untuk mengetahui efektifitas cendawan entomopatogen (L.lecanii, M.
anisopliae, dan B. bassiana) terhadap hama kutu daun (A.glycines) pada tanaman
kedelai dilapangan.
Hipotesis Penelitian
Cendawan entomopatogen (L. lecanii, M. anisopliae, dan B. bassiana)
efektif dalam mengendalikan kutu daun (A. glycines) pada tanaman kedelai di
lapangan.
Kegunaan Penelitian
Sebagai salah satu syarat untuk memperoleh gelar sarjana di Program
Studi Agroekoteknologi Fakultas Pertanian Universitas Sumatera Utara, Medan
dan sumber informasi bagi pihak yang membutuhkan khususnya dalam upaya
pengendalian hama kutu daun kedelai.

4
Universitas Sumatera Utara

i

ABSTRACT
Riri Widariyanto, " Pathogenicity of Some Entomophatogen’s Fungus
(Lecanicillium Lecanii, Metarhizium Anisopliae, and Beauveria bassiana) to
Aphis glycines at Soybean", supervised by Ir. Mukhtar Iskandar Pinem, M.Agr.
and Ir. Fatimah Zahara. The objectives of the research were to study the
effectiveness of entomopatogen’s fungus ( L. Lecanii, M. Anisopliae, and
B. bassiana) to Aphis glycines in soybean on field. Research done at Farm of
Faculty of Agriculture of University of Sumatera Utara, Medan from December
2015 until Februari 2016. The method used Randomized Block Design by seven
treatment that is : P0/control (Instar 4 of Aphis glycines without treatment
Entomopathogen), P1 (Instar 2 of Aphis glycines + Lecanicillium lecanii 107),
P2 (Instar 2 of Aphis glycines + Beauveria bassiana 107), P3 (Instar 2 of
Aphis glycines + Metarhizium anisopliae 107), P4(Instar 4 of Aphis glycines +
Lecanicillium lecanii 107), P5 (Instar 4 of Aphis glycines + Beauveria bassiana
107), P6 (Instar 4 of Aphis glycines + Metarhizium anisopliae 107).
The results showed that the treatment significantly effected the percentage
of mortality and death time. The highest percentage of mortality (90,00%) at P4,
then (67,50%) at P6, and lowest (37,50%) at P5. P3, P2, P1, and control
mortality is 0%. The best of death time at P6 (5,00day), then P4 ( 5,82day), and
P6 (6,46day). Level of instar have an effect on effectiveness in infection of
entomophatogen’s fungus.
Keyword : Aphis glycines,
Metarhizium anisopliae

Lecanicillium

lecani,

Beauveria

bassiana,

i
Universitas Sumatera Utara

ii

ABSTRAK
Riri Widariyanto, “Patogenitas Beberapa Cendawan Entomopatogen
(Lecanicillium lecanii, Metarhizium anisopliae, dan Beauveria bassiana)
Terhadap Aphis glycines Pada Tanaman Kedelai”, di bawah bimbingan Ir.
Mukhtar Iskandar Pinem, M.Agr. dan Ir. Fatimah Zahara. Penelitian ini bertujuan
untuk mengetahui efektivitas cendawan entomopatogen (Lecanicillium lecanii,
Metarhizium anisopliae, dan Beauveria bassiana) terhadap hama kutu daun
(Aphis glycines)