Uji Efektifitas Chitosan Untuk Mengendalikan Penyakit Jamur Jamur Akar Putih (Rigidoporus microporus (Swart: Fr) van Ov.) Pada Tanaman Karet ( Hevea brasiliensis Muell.Arg.) di Laboratorium

UJI EFEKTIFITAS CHITOSAN UNTUK MENGENDALIKAN PENYAKIT JAMUR AKAR PUTIH (Rigidoporus microporus (Swart: Fr) van Ov.)

PADA TANAMAN KARET (Hevea brasiliensis Muell. Arg.) DI LABORATORIUM

S K R I P S I

Oleh:

RONALD HARIANTO H. 040302037

HPT

DEPARTEMEN ILMU HAMA DAN PENYAKIT TUMBUHAN

FAKULTAS PERTANIAN

UNIVERSITAS SUMATERA UTARA

MEDAN

UJI EFEKTIFITAS CHITOSAN UNTUK MENGENDALIKAN PENYAKIT JAMUR AKAR PUTIH (Rigidoporus microporus (Swart: Fr) van Ov.)

PADA TANAMAN KARET (Hevea brasiliensis Muell. Arg.) DI LABORATORIUM

S K R I P S I

Oleh:

RONALD HARIANTO H. 040302037

HPT

Skripsi Sebagai Salah Satu Syarat Untuk Dapat Memperoleh Gelar Sarjana di Departemen Ilmu Hama dan Penyakit Tumbuhan Fakultas Pertanian

Universitas sumatera Utara Medan

Disetujui Oleh Komisi Pembimbing

(Dr.Ir. Hasanuddin, MS) (Ir. Syamsinar Yusuf, MS NIP: 131 413 651 NIP: 130 517 461

) Ketua Anggota

Pembimbing Lapannan Ir. Aidi Daslin Sagala, MS

DEPARTEMEN ILMU HAMA DAN PENYAKIT TUMBUHAN

FAKULTAS PERTANIAN

UNIVERSITAS SUMATERA UTARA

MEDAN

ABSTRAK

Ronald Harianto H. “ Uji Efektifitas Chitosan Untuk Mengendalikan Penyakit Jamur Jamur Akar Putih (Rigidoporus microporus (Swart: Fr) van Ov.) Pada Tanaman Karet ( Hevea brasiliensis Muell.Arg.) di Loboratorium“ dengan komisi pembibing Bapak Dr. Ir. Hasanuddin, MS selaku ketua dan Ibu Ir. Syamsinar Yusuf, MS selaku anggota, Bapak Ir. Aidi Daslin Sagala, MS, selaku pembimbing lapangan. Penelitian ini dilaksanakan di Laboratorium Prokteksi Tanaman Balai Penelitian Perkebunan Karet Sungei Putih dari bulan Mei 2009 sampai dengan Januari 2010. Tujuan Penelitian ini adalah Untuk mengetahui efektifitas chitosan terhadap jamur Rigidoporus microporus (Swartz:Fr.) van ov. dan untuk mendapatkan fungisida alami dalam mengendalikan penyakit jamur akar putih (JAP) pada tanaman karet (Hevea

brasiliensis Muell. Arg.). Penelitian menggunakan Racangan Acak Lengkap

(RAL) Non Faktorial dengan 6 perlakuan dan 9 ulangan. Perlakuan yang diuji adalah C0 (kontrol), C1 (5 mg/ml), C2 (10mg/ml), C3 (15 mg/ml), C4 (20 mg/ml), C5 (anvill). Parameter yang diamati adalah luas pertumbuhan koloni jamur, morfologi dan warna koloni jamur. Hasil penelitian menunjukkan bahwa pengamatan terakhir pada perlakuan konsentrasi chitosan luas pertumbuhan koloni jamur yang tertinggi yaitu 58,18 cm2 dan terendah 53,11 cm2. Morfologi dan warna koloni jamur memiliki kesamaan dan berbeda dengan perlakuan fungisida.

ABSTRACT

Ronald Harianto H “Uji Efektifitas Chitosan Untuk Mengendalikan Penyakit Jamur Jamur Akar Putih (Rigidoporus microporus (Swart: Fr) van Ov.) Pada Tanaman Karet ( Hevea brasiliensis Muell.Arg.) di Loboratorium“

under the supervision of conceling team Dr. Ir. Hasanuddin, as a chairman, Ir. Syamsinar Yusuf, MS as member, Ir Aidi Daslin Sagala, MS as field

supervisor. This research was conducted at Laboratory of Crops Protection of Rubber Plantation Research Center of Sungai Putih since May 2009 up to January 2010. The objective of this research is to study the chitosan effectiveness for

Rigidoporus microporus fungus diseases and to obtain the natural fungicide in

control the Rigidoporus microporus fungus. This research applies the Non factorial complete random design (RAL) with 6 treatment and 9 repetitions. The treatment are C0 (control),)C1 (5 mg/ml), C2 (10 mg/ml), C3 (15 mg/ml), C4 (20 mg/ml), C5 (Anvill). The observed parameter are the area of jamur colony growth and colonis color of fungi. The results of this research showing in the last time supervision concentrate treatments of chitosan that the highest wide of colonis growth from pathogenic fungy was found on 58,18 cm2 and the lowest was found on 53,11 cm2. Morfology and fungies colonies color were the same and have different with the fungiside treatment.

KATA PENGANTAR

Puji dan syukur penulis panjatkan kehadirat Tuhan Yang Maha Esa karena atas berkat dan rahmat-Nya penulis dapat menyelesaikan skripsi ini tepat pada waktunya.

Adapun judul dari skripsi ini adalah “UJI EFEKTIFITAS CHITOSAN UNTUK MENGENDALIKAN PENYAKIT JAMUR AKAR PUTIH (Rigidoporus microporus (Swart: Fr) van Ov.) PADA TANAMAN KARET (Hevea brasiliensis Muell. Arg.) DI LABORATORIUM” yang merupakan salah satu syarat untuk dapat memperoleh gelar sarjana di Departemen Ilmu Hama dan Penyakit Tumbuhan Fakultas Pertanian Universitas Sumatera Utara, Medan.

Penulis mengucapkan terima kasih kepada Bapak Dr. Ir. Hasanuddin, MS

dan Ibu Ir. Syamsinar Yusuf, MS selaku Komisi Pembimbing serta kepada Bapak Ir. Aidi Daslin Sagala, MS dan Ibu Zaida Fairuzah, SP selaku

Pembimbing di Lapangan yang telah banyak membantu penulis dalam menyelesaikan skripsi ini

Penulis menyadari bahwa skripsi ini masih jauh dari kesempurnaan, oleh karena itu penulis mengharapkan kritik dan saran yang sifatnya membangun demi kesempurnaan skripsi ini di masa mendatang.

Akhir kata penulis mengucapkan terima kasih dan semoga skripsi ini dapat bermanfaat bagi kita semua.

Medan, Maret 2010 Penulis

DAFTAR ISI

Hal.

ABSTRACT --- i

ABSTRAK--- ii

KATA PENGANTAR --- iii

DAFTAR ISI --- iv

DAFTAR TABEL --- vi

DAFTAR GAMBAR ---vii

DAFTAR LAMPIRAN --- viii

PENDAHULUAN Latar Belakang ... 1

Tujuan Penelitian... 4

Hipotesis Penelitian ... 4

Kegunaan Penelitian ... 4

TINJAUAN PUSTAKA Biologi Penyebab Penyakit ... 5

Gejala Serangan ... 7

Faktor-Faktor yang Mempengaruhi JAP ... 9

Pengendalian Penyakit JAP ... 11

Chitosan ... 13

BAHAN DAN METODE Tempat dan Waktu Penelitian ... 16

Bahan dan Alat ... 16

Metode Penelitian ... 16

Pelaksanaan Penelitian Persiapan Chitosan ... 17

Persiapan Bahan Inokulasi ... 19

Pembuatan Potato Dextrose Agar ... 19

Media PDA yang Terdapat Senyawa Chitosan ... 19

Media PDA yang Terdapat Larutan Fungisida ... 19

Parameter Pengamatan

Luas Pertumbuhan Koloni R. microporus ... 20 Pengamatan Miselium dan Warna Koloni Jamur ... 21 HASIL DAN PEMBAHASAN

Luas Pertumbuhan Koloni Jamur Rigidoporus microporus ... 22 Pengamatan Miselium dan Warna Koloni Jamur

Rigidoporus microporus ... 25 KESIMPULAN DAN SARAN

Kesimpulan ... 27 Saran... 27 DAFTAR PUSTAKA

DAFTAR TABEL

No. Judul Halaman

1. Rataan Luas Pertumbuhan Koloni Jamur R. microporus

Pada Pengamatan ke 2,3,4 dan 5 HSI ... 22 2. Pengamatan miselium pada tiap perlakuan ... 25 3. Pengamatan Warna Koloni Jamur Rigidoporus microporus ... 26

DAFTAR GAMBAR

No. Judul Halaman

1. Badan Buah R. microporus ... 6

2. Basidium dan Basidiospora R. microporus ... 7

3. Rizomorf R. microporus ... ... 8

4. Foto Chitosan ... .. ... 15

5. Alat Planimeter ... ... 21

DAFTAR LAMPIRAN

No Judul Halaman

1. Bagan penelitian di laboratorium ... 31 2. Foto Luas Pertumbuhan Koloni Jamur R. microporus

Pada 1 HSI, 2,3,4,5 dan 6 HSI ... 33 3. Data Pengamatan Luas Pertumbuhan Koloni Jamur R. microporus

Pada Uji Efektifitas Chitosan 2 HSI (cm2) ... 35 4. Data Pengamatan Luas Pertumbuhan Koloni Jamur R. microporus

Pada Uji Efektifitas Chitosan 3 HSI (cm2) ... 37 5. Data Pengamatan Luas Pertumbuhan Koloni Jamur R. microporus

Pada Uji Efektifitas Chitosan 4 HSI (cm2) ... 39 6. Data Pengamatan Luas Pertumbuhan Koloni Jamur R. microporus

ABSTRAK

Ronald Harianto H. “ Uji Efektifitas Chitosan Untuk Mengendalikan Penyakit Jamur Jamur Akar Putih (Rigidoporus microporus (Swart: Fr) van Ov.) Pada Tanaman Karet ( Hevea brasiliensis Muell.Arg.) di Loboratorium“ dengan komisi pembibing Bapak Dr. Ir. Hasanuddin, MS selaku ketua dan Ibu Ir. Syamsinar Yusuf, MS selaku anggota, Bapak Ir. Aidi Daslin Sagala, MS, selaku pembimbing lapangan. Penelitian ini dilaksanakan di Laboratorium Prokteksi Tanaman Balai Penelitian Perkebunan Karet Sungei Putih dari bulan Mei 2009 sampai dengan Januari 2010. Tujuan Penelitian ini adalah Untuk mengetahui efektifitas chitosan terhadap jamur Rigidoporus microporus (Swartz:Fr.) van ov. dan untuk mendapatkan fungisida alami dalam mengendalikan penyakit jamur akar putih (JAP) pada tanaman karet (Hevea

brasiliensis Muell. Arg.). Penelitian menggunakan Racangan Acak Lengkap

(RAL) Non Faktorial dengan 6 perlakuan dan 9 ulangan. Perlakuan yang diuji adalah C0 (kontrol), C1 (5 mg/ml), C2 (10mg/ml), C3 (15 mg/ml), C4 (20 mg/ml), C5 (anvill). Parameter yang diamati adalah luas pertumbuhan koloni jamur, morfologi dan warna koloni jamur. Hasil penelitian menunjukkan bahwa pengamatan terakhir pada perlakuan konsentrasi chitosan luas pertumbuhan koloni jamur yang tertinggi yaitu 58,18 cm2 dan terendah 53,11 cm2. Morfologi dan warna koloni jamur memiliki kesamaan dan berbeda dengan perlakuan fungisida.

ABSTRACT

Ronald Harianto H “Uji Efektifitas Chitosan Untuk Mengendalikan Penyakit Jamur Jamur Akar Putih (Rigidoporus microporus (Swart: Fr) van Ov.) Pada Tanaman Karet ( Hevea brasiliensis Muell.Arg.) di Loboratorium“

under the supervision of conceling team Dr. Ir. Hasanuddin, as a chairman, Ir. Syamsinar Yusuf, MS as member, Ir Aidi Daslin Sagala, MS as field

supervisor. This research was conducted at Laboratory of Crops Protection of Rubber Plantation Research Center of Sungai Putih since May 2009 up to January 2010. The objective of this research is to study the chitosan effectiveness for

Rigidoporus microporus fungus diseases and to obtain the natural fungicide in

control the Rigidoporus microporus fungus. This research applies the Non factorial complete random design (RAL) with 6 treatment and 9 repetitions. The treatment are C0 (control),)C1 (5 mg/ml), C2 (10 mg/ml), C3 (15 mg/ml), C4 (20 mg/ml), C5 (Anvill). The observed parameter are the area of jamur colony growth and colonis color of fungi. The results of this research showing in the last time supervision concentrate treatments of chitosan that the highest wide of colonis growth from pathogenic fungy was found on 58,18 cm2 and the lowest was found on 53,11 cm2. Morfology and fungies colonies color were the same and have different with the fungiside treatment.

PENDAHULUAN

Latar Belakang

Karet (Hevea brasiliensis Muell. Arg.) berasal dari Brazilia, Amerika Selatan. Akan tetapi meskipun telah diketahui penggunaannya oleh Colombus dalam pelayarannya ke Amerika Selatan pada akhir abad ke -15 dan bahkan oleh penjelajah-penjelajah berikutnya pada awal abad ke-16, sampai saat ini masih belum menarik perhatian orang – orang Eropa (Dijkman, 1986). Tanaman karet mulai diperkebunkan di Indoneisia sejak tahun 1900-an. Di Sumatera Utara pada tahun 1903 dan di Jawa tahun 1906 (Semangun, 2000).

Sistem perkebunan karet muncul pada awal abad ke- 19 akan tetapi sistem perkebunan di Asia Tenggara tidak terjadi sebelum akhir abad ke- 19, ketika pertumbuhan permintaan menuntut perluasan sumber penawaran. Sistem ini

diperkenalkan oleh beberapa ahli tumbuh-tumbuhan dari Inggris (Spillance, 1989).

Indonesia merupakan negara dengan perkebunan karet terluas di dunia meskipun tanaman tersebut baru diintroduksi pada tahun 1864 hannya dalam kurun waktu sekitar 150 tahun sejak diperkembangkan pertamakali luas perkebunan tanaman karet di Indonesia telah mencapai luas 3.262.291 ha (Andoko dan Setiawan, 2006). Pada tahun 2002, luas perkebunan karet Indonesia 3,4 juta ha yang tersebar pada berbagai wilayah, terutama Sumatera, Kalimantan dan Jawa. Sekitar 85% luas perkebunan karet tersebut dikelolah oleh rakyat, selebihnya diusahakan oleh perusahaan perkebunan negara (PTPN), dan perusahaan swasta. Ekspor karet Indonesia pada tahun 2001 menghasilkan devisa

sekitar 786 juta U$ dolar, yang menduduki peringkat kedua terbesar setelah sawit (Sinaga, 2004). Propinsi yang memiliki perkebunan karet terluas pada tahun 2004 adalah Sumatera Selatan. Yakni mencapai 671.920 ha. Dari total areal perkebunan karet di Indonesia tersebut 84,5% diantaranya merupakan kebun milik rakyat, 8,4% milik swasta dan hanya 7,1% milik negara (Andoko dan Setiawan, 2006).

Di dalam budidaya tanaman karet Hevea penyakit akar putih adalah penyakit yang merugikan diantara penyakit- penyakit akar yang di kenal. Bahkan bagi daerah karet tertentu, seperti Jawa Timur dan Sumatera Utara, penyakit akar

putih merupakan penyakit yang terpenting diantara penyakit yang ada (Semangun, 2000).

Jamur akar putih (JAP) disebabkan oleh jamur Rigidoporus lignosus (Klotszch) Imazeki (Syn, R. microporus) adalah jamur saprofit penghuni tanah, tetapi bila bertemu dengan akar tanaman akan berubah menjadi parasit (parasit fakultatif). JAP bertahan dalam tanah dengan membentuk rizomorf. Sekali tanah terkontaminasi oleh JAP seterusnya tanah tersebut dihuni oleh JAP dan menjadi ancaman setiap tanaman baru. Peremajaan yang berulang-ulang akan menyebabkan akumulasi sumber penyebab JAP dalam tanah (Soepena, 1995).

Setiap tanaman karet yang terserang oleh R. microporus jika tidak segara ditanggulangi akan mati. Tanaman terinfeksi yang mati akan menjadi sumber infeksi bagi tanaman disekitarnya yang menyebabkan populasi pohon persatuan luas menjadi berkurang dan sebagai akibatnya produktifitas kebun jadi sangat rendah. R. microporus dapat menyerang tanaman pada semua stadia pertumbuhan dan serangan terberat terjadi pada umur 2-5 tahun. Pada daerah endemik serangan JAP menyebabkan kerapatan pohon menjadi 40-50 % (Fairuzah, dkk., 2008).

Pengendalian penyakit jamur akar putih dapat dilakukan dengan aplikasi fungisida, belerang dan Trichoderma sp. yang diaplikasikan secara total maupun secara selectif. Titik berat pengendalian jamur akar putih diprioritaskan untuk mempertahankan populasi. Dengan pengendalian JAP diharapkan tingkat kematian pohon karet dapat dikendalikan, populasi bisa dipertahankan sehingga produktifitas bisa meningkat seiring dengan umur tanaman (Suhandi, 2004).

Chitosan adalah polisakarida linier dengan komposisi glukosamin. Chitosan banyak digunakan dalam biomedis komersional. Chitosan sebenarnya serat yang didapat dari polisakarida dari kerang, udang, kepiting dan lain-lain. Chitosan bersifat larut dalam larutan asam organik, tetapi tidak larut dalam pelarut organik dan dalam larutan yang memiliki pH 6,5. Pelarut chitosan yang baik adalah asam asetat (CH3COOH) (Prasetiyo dan Yusuf, 2005).

Salah satu bahan alami yang telah direkomendasikan sebagai elicitor resistensi pada produk pasca panen adalah chitosan, yang dihasilkan dari proses deasetilasi chitin cangkang kepiting atau eksokleton udang (Wilson and El Ghaouth, 1993 dalam Pamekas, 2007). Chitosan melindungi buah dan sayuran melalui dua mekanisme: fisik dan kimiawi. Secara fisik, chitosan membentuk lapisan film yang membungkus permukaan produk dan mengatur pertukaran gas dan kelembaban. Secara kimiawi, chitosan bersifat fungisidal dan merangsang respon resistensi pasca panen pada jaringan tanaman. Aktifitas antifugal dan rangsangan ketahanan dari chitosan menjanjikan kemungkinan yang baik untuk perlindungan tanaman dan pengawetan pasca panen (Pamekas, 2007).

Tujuan Penelitian

Untuk mengetahui efektifitas chitosan terhadap jamur Rigidoporus

microporus (Swartz:Fr.) van ov. dan untuk mendapatkan fungisida alami dalam

mengendalikan penyakit jamur akar putih (JAP) pada tanaman karet (Hevea brasiliensis Muell. Arg.).

Hipotesis Penelitian

• Chitosan pada media agar dapat menekan pertumbuhan jamur

Rigidoporus microporus di laboratorium.

• Konsentrasi chitosan mempengaruhi pertumbuhan jamur Rigidoporus

microporus di laboratorium.

Kegunaan Penelitian.

• Sebagai salah satu syarat untuk dapat memperoleh gelar sarjana di Departemen Hama dan Penyakit Tumbuhan Fakultas Pertanian Universitas Sumatera Utara, Medan.

TINJAUAN PUSTAKA

Biologi Penyebab Penyakit

Penyakit akar putih disebabkan oleh jamur yang lazimnya disebut jamur akar putih (JAP). Nama ilmiah jamur ini adalah Rigidoporus lignosus (Klotzsch) Imazeki atau Rigidoporus microporus (Swartz: Fr.)Van ove., Poliporus lignosus Klotzsch, meskipun sampai sekarang jamur ini sering dikenal dengan nama

Fomes lignosus (Klotzsch) Bres (Semangun, 2000).

Menurut Alexopoulus and Mins (1979) penyakit Jamur Akar Putih (JAP) dapat diklasifikasikan sebagai berikut:

Divisio : Mycetaceae Sub Divisio : Amestigomycots Kelas : Basidiomycetes Ordo : Homobasidiomycetes Famili : Polyperales

Genus : Rigidoporus

Spesies : Rigidoporus microporus (Swartz: Fr.) Van overeem

JAP membentuk tubuh buah berbentuk kipas tebal, agak berkayu, mempunyai zona-zona pertumbuhan, sering mempunyai struktur serat yang radier, mempunyai tepi yang tipis. Warna permukaan tubuh buah dapat berubah tergantung dari umur dan kandungan airnya. Pada permukaan tubuh buah benang-benang jamur berwarna kuning jingga, tebalnya 2,8-4,5 μm, mempunyai banyak sekat (septum) yang tebal. (Gambar 1). Pada waktu masih muda berwarna jingga jernih sampai merah kecokelatan dengan zona gelap yang agak menonjol.

Permukaan bawah berwarna jingga, tepihnya berwarna kuning jernih atau putih kekuningan. Jika menjadi tua atau kering tubuh buah menjadi suram, permukaan atasnya cokelat kekuningan pucat dan permukaan bawahnya cokelat kemerahan (Semangun, 2000).

Gambar 1. Badan buah jamur Rigidoporus microporus

Menurut Steinmann (1925) dalam Semangun (2000) lapisan atas tubuh buah yang berwarna muda terdiri atas benang-benang jamur yang terjalin rapat. Dibawahnya terdapat lapisan pori kemerahan atau kecokelatan dengan garis tengah 45-80 μm , panjang berbeda-beda umumnya 0,7-1,0 μm.

Diameter sporofor pada umumnya 10 cm tetapi pada keadaan yang sesuai untuk pertumbuhan dapat mencapai 30 cm dengan tebal 1,5 cm, bagian tepi sporofor lebih tipis, selanjutnya sporofor ini menghasilkan basidiospora. Basidiospora bulat, tidak berwarna, dengan garis tengah 2,8-5,0 μm, banyak

dibentuk pada tubuh buah yang masih muda. Basidium pendek (buntak), ± 16 x 4,5-5,0 μm, tidak berwarna, mempunyai 4 sterigma tangkai (basidiospora) (Sinulingga, 1989).

Gambar 2. Rigidoporus lignosus. A. Pori; B. basidium (a) dengan basidiospora (bs) dan

sistidium (s). (menurut A. Steinmann, 1925 dalam Semangun, 2000)

Rigidoporus microporus jamur yang bersifat parasit fakultatif, artinya

dapat hidup sebagai saprofit yang kemudian menjadi parasit. Jamur R. microporus tidak dapat bertahan hidup apabila tidak ada sumber makanan. Bila belum ada inang jamur ini bertahan di sisa-sisa tunggul (Liyanage, 1976).

Gejala Serangan

Gejalah serangan JAP pada tanaman karet ditandai dengan adanya perubahan pada warna daun. Daun berwarna hijau kusam, permukaan daun lebih tebal dari yang normal. Setelah itu daun- daun menguning dan rontok. Pada pohon dewasa gugurnya daun, yang disertai dengan matinya ranting menyebabkan pohon mempunyai mahkota yang jarang. Ada kalanya tanaman membentuk bunga/ buah lebih awal (Semangun, 2000 dan Rahayu, dkk., 2006).

Pada permukaan akar yang sakit terdapat benang-benang miselium jamur (Rizomorf) berwarna putih menjalar di sepanjang akar. Di sini benang-benang meluas atau bercabang seperti jala. Pada ujungnya benang meluas seperti bulu, benang-benang melekat erat pada permukaan akar (Gambar 3). Kadang-kadang berwarna kekuningan, dalam tanah merah tanahnya dapat kemerahan atau kecokelatan, kulit yang sakit akan busuk dan warnanya cokelat. Kayu dari akar

yang baru saja mati tetap keras, berwarna cokelat, kadang-kadang agak kekelabuan. Pada pembusukan yang lebih jauh, kayu berwarna putih atau krem, tetapi padat dan kering, meskipun di tanah basah kayu yang terserang dapat busuk dan hancur (Basuki dan Wisma, 1995 dan Semangun, 2000).

Gambar 3. Rizomorf pada permukaan akar karet yang terserang Rigidoporus microporus

Pada tanaman muda gejalanya mirip dengan tanaman yang mengalami kekeringan. Daun-daun berwarna hijau kusam dan lebih tebal dari yang normal. Daun tersebut akhirnya menjadi cokelat dan mengering. Pohon akhirnya tumbang dengan daun yang masih menggantung. Ada kalanya pohon tiba-tiba tumbang tanpa menimbulkan gejala kematian tajuk, karena akar tanaman telah busuk dan mati. Apabilah leher akar tanaman yang terserang dibuka, akan tampak rizomorf jamur berwarna putih, baik diakar tunggang ataupun di akar lateral. Akar- akar tersebut akan busuk dan tanaman akan mati (Sinulingga, 1989).

Serangan lebih lanjut JAP akan membentuk badan buah, berbentuk setengah lingkaran yang tumbuh pada pangkal batang. Badan buah berwarna pink dengan tepi kuning mudah atau keputihan. Badan buah berisi spora-spora jamur yang akan berkembang dan keluar dari tubuh buah. Spora tersebut akan berpencar dan menyerang tanaman karet yang masih sehat (Fairuzah, dkk., 2008).

Faktor-Faktor yang Mempengaruhi Penyakit JAP

Jamur akar putih (JAP) dapat menyerang tanaman karet pada bermacam-macam umur. Penyakit akar putih terutama timbul pada kebun-kebun muda. Pada umumnya gejala mulai tampak pada tahun-tahun ke-2. Sesudah tahun ke-5 atau ke-6 infeksi-infeksi baru mulai berkurang, meskipun dalam kebun-kebun tua penyakit dapat berkembang terus (Semangun, 2000). JAP dapat mematikan tanaman karet yang berumur 3 tahun dalam waktu 6 bulan dan tanaman karet umur 6 tahun dalam waktu 12 bulan (Basuki, 1981 dalam Yusuf, dkk 1992).

Penyebaran JAP yang paling efektif yaitu melalui kontak akar. Apabila akar-akar tanaman sehat saling bersinggungan dengan akar tanaman karet yang sakit, maka rizomorf JAP akan menjalar pada tanaman yang sehat kemudian menuju leher akar dan selanjutnya menginfeksi akar lateral lainnya. Tanaman yang terinfeksi ini akan menjadi sumber infeksi pada tanaman jirannya, sehingga perkembangan penyakit semakin lama semakin meluas (Sujatno, dkk., 2007).

Setelah patogen menginfeksi tanaman, perkembangan selanjutnya bergantung pada pH, kandungan bahan-bahan organik, kelembapan dan aerase tanah. R. micropous dapat tumbuh baik pada kelembapan diatas 90%, kandungan bahan organik tinggi serta aerase yang baik. Apabila kondisi ini sesuai, patogen dapat menjalar sejauh 30 cm dalam waktu 2 minggu (Sinulingga dan Eddy, 1989).

Pada umumnya intensitas JAP memuncak pada umur tanaman 3-4 tahun pada saat ini terjadi pertautan akar antar gawangan, faktor yang mempengaruhi perkembangan penyakit, tanah yang gembur/ berpori, dan yang beraksi netral (pH 6-7), dengan suhu lebih dari 200 C sangat baik bagi perkembangan penyakit. Penyakit berkembang cepat pada awal musim hujan. Tunggul yang terbuka

merupakan medium penularan JAP dan akar-akar yang terinfeksi merupakan sumber penularan lebih lanjut (Soepena, 1984).

Infeksi patogen lebih mudah terjadi melalui luka dan lentisel, walaupun penetrasi secara langsung mungkin terjadi. Pada tanaman karet yang sering di temukan bagian leher akar pecah dan ini merupakan tempat yang baik bagi infeksi jamur. Patogen kemudian ke bagian yang lebih dalam dari akar. Tanaman akan mengadakan pertahanan seperti pembentukan kambium dan gabus, akan tetapi hal ini sering tidak dapat menahan perkembangan lanjut patogen. Serangan lebih tingggi akan ditemukan pada tanaman okulasi dibandingkan dengan tanaman biji. Hal ini disebabkan pada bagian okulasi ada bagian-bagian yang luka, sehingga memudahkan patogen untuk mengadakan infeksi (Sinulinggga, 1989).

Menurut Basuki (1986) dalam Semangun (2000) pembongkaran karet-karet tua secara mekanis dengan alat-alat berat memberikan hasil yang lebih baik, karena hannya meninggalkan sedikit sumber infeksi di dalam tanah. Sebaliknya diketahui pada peremajaan yang hanya dilakukan dengan peracunan pohon-pohon karet tua akan menyebabkan terjadinya banyak infeksi pada tanaman muda kelak.

Di Sumatera Utara kebun-kebun yang terletak di tanah podsolik merah kuning kurang menderita kerugian dari jamur akar putih, daripada yang terdapat di tanah aluvial. Ini disebabkan karena tanah tersebut lebih masam, sehingga

Rigidoporus tidak dapat berkembang dengan baik. Selain itu di tanah yang lebih

masam terdapat jamur Trichoderma koningii Oud., yang menjadi antagonis bagi

Pengendalian Penyakit JAP

Pengendalian JAP ditujukan untuk memusnakan sumber infeksi dan mencegah terbentuknya penyakit pada tanaman karet muda serta meluasya dari satu tanaman ke tanaman yang lain (Yusuf, dkk., 1992).

Menurut Semangun (2000) pengendalian dapat dibagi menjadi dua kelompok kegiatan, yaitu: membersikan sumber infeksi, sebelum dan sesudah penanaman karet dan dan mencegah meluasnya penyakit dalam kebun.

1. Membersikan sumber infeksi

Sumber infeksi berasal dari pohon-pohon hutan yang sakit, atau tunggul-tunggul pohon hutan yang terinfeksi, sedang pada peremajaan berasasl dari pohon karet tua yang sakit atau tunggul-tunggul tua pohon yang sakit. Tunggul-tunggul yang terdapat di kebun harus dibongkar. Jika pembongkaran tunggul tidak dapat dilakukan, untuk mempercepat pembusukan akar dilakukan peracunan tunggul (stump poisoning) dan peracunan pohon. Agar tunggul yang baru tidak dapat diinfeksi oleh spora R. microporus, sehabis penebangan bidang potongan harus segera ditutup dengan obat penutup luka (Semangun, 2000).

Penanaman bibit dilapangan diusahan bukan bibit yang sudah terserang JAP. Bibit bebas JAP ini didapatkan pada saat penyeleksian bibit yang akan ditanam dari pembibitan, karena bibit yang sakit dapat menjadi sumber infeksi di kebun. Infeksi pada bibit dapat dikurangi dengan cara pemberian belerang cirrus sebanyak 250 kg per ha pembibitan atau ditaburkan diantara barisan tanaman pada waktu bibit berumur 2 bulan. Pada saat penanaman karet, tiap lubang diberi belerang sebanyak 100 g yang dicampurkan dengan tanah pengisi lubang, atau ditaburkan di tanah di sekitar pangkal batang (Semangun, 2000).

Untuk penyulaman, tanaman yang tidak bisa diselamatkan lagi, harus segera dibongkar dan sisa-sisa akar harus disingkirkan dan bekas lubang harus diberi 250 g serbuk belerang atau ZA. Tanah bekas lubang tanam harus disingkirkan dan dibuat lubang tanam yang baru (40 x 40 x 30) cm. Bibit yang ditanam harus bibit stump tinggi, disekitar bibit stump ditaburkan serbuk belerang atau ZA untuk melindungi bibit dari serangan JAP (Pinem dan Yusuf, 2004).

Pengendalian secara biologis merupakan tindakan dengan penggunaan agensia hayati, pengendalian ini paling mudah, murah dan ramah lingkungan (Hamdan, 2007).

Banyak jenis Bio-fungisida yang diteliti para ahli untuk menekan pertumbuhan JAP, misalnya Trichoderma sp. Pada pembibitan dengan dosis 50 g/pohon, dilapangan pada pohon yang sudah terserang diberikan 100 g/pohon (TBM). Sedang pada pohon yang sudah menghasilkan dibuat parit keliling dengan radius 0,5 m dari pangkal pohon yang akan diisi Trico-sp dan ditutup kembali dengan tanah (Ilahang, dkk., 2007).

Pengendalian jamur akar putih dapat juga dilakukan dengan bakteri

Pseudomonas aeruginosa dimana bakteri ini dapat menekan pertumbuhan

miselium R. microporus (Hasanuddin, 1999).

2. Mencegah meluasnya penyakit dalam kebun

Pembuatan selokan isolasi (parit isolasi) disekitar tanaman yang terserang yang bertujuan untuk mematahkan hubungan antara bagian jala-jala akar yang sakit dengan yang sehat. Jeluk (dalamnya) parit isolasi berpariasi antara 60 cm dan 90 cm dengan lebar lebih kurang 30 cm. Pencegahan dapat juga dilakukan dengan monitoring JAP di lapangan. Monitoring ini dapat dilakukan seperti

pembukaan leher akar. Pembukaan leher akar ini bertujuan agar pangkal dari akar tunggang dan akar-akar samping tidak tertutup tanah, karena jamur R. microporus tidak dapat berkembang dengan baik pada akar-akar yang berada di luar tanah (Semangun, 2000).

Pegendalian jamur akar putih sebaiknya dilakukan dengan kombinasi antara cara kimia dan cara biologis, walaupun cara kimia menunjukkan hasil yang lebih efektif daripada biologis. Pada aplikasi per pohon, pengobatan secara kimia misalnya dengan pengaplikasian fungisida Bayleton dengan dosis 5 cc/L air. Dengan membuat parit isolasi agar campuran Bayleton tersebut dapat terserap ke dalam perakaran tanaman. Aplikasi berdasarkan umur tanaman dengan dosis 250 ml/pohon (umur <1 tahun), 500 ml/pohon (umur 2-3 tahun) dan 1000 ml/pohon (>3 tahun) (Ilahang, dkk., 2007).

Chitosan

Chitosan pertama kali ditemukan oleh ilmuwan Perancis, Ojier pada tahun 1823. Ojier meneliti chitosan hasil ekstrak kerak binatang berkulit keras, seperti udang, kepiting, dan serangga (Luthfi, 2006).

Karakteristik fisiko-kimia chitosan berwarna putih dan berbentuk kristal (gambar 4), dapat larut dalam larutan asam organik, tetapi tidak larut dalam pelarut organik lainnya. Pelarut chitosan yang baik adalah asam asetat. Chitosan sedikit mudah larut dalam air dan mempunyai muatan positif yang kuat, yang dapat mengikat muatan negatif dari senyawa lain, serta mudah mengalami degradasi secara biologis dan tidak beracun (Prasetiyo dan Yusuf, 2005 dan Bima, 2006).

Gambar 4. Chitosan

Proses pembuatan chitosan pertama-tama kulit udang dicuci dengan air mengalir selanjutnya dicuci dengan air panas kemudian di jemur sampai kering. Selanjutnya kulit udang diblender lalu dicuci dengan larutan asam klorida untuk menghilangkan kerak kapur (demineralisasi) selanjutnya di cuci dengan larutan NaOH untuk menghilangkan protein (deproteinisasi) Prasetiyo dan Yusuf (2005). Chitosan digunakan untuk kesehatan untuk penyakit diabetes dan hipertensi. Ternyata di dalam zat kerak udang terdapat unsur butylosar yang bermanfaat bagi tubuh manusia. Butylosar yang telah didapatkan itu hanya larut dalam asam encer dan cairan tubuh manusia. Dengan demikian, butylosar dapat diserap oleh tubuh, zat ini juga mempunyai muatan positif yang kuat, dan dapat mengikat muatan negatif dari senyawa lain. Selain itu, zat ini tidak mudah mengalami degradasi secara biologis dan tidak beracun (Linawati, 2008).

Untuk mengurangi bahan kimia yang berbahaya yang ada pada fungisida kimia seperti sulfat tembaga, yang berbahaya pada kesehatan maka digunakan pengendalian secara alami dengan menggunakan fungisida alami. Salah satunya yang ingin dicoba adalah chitosan, salah satu bahan alami yang telah direkomendasikan sebagai elicitor resistensi pada produk pasca panen (Wilson et al., 1994). Yang dihasilkan dari proses deasetilasi chitin cangkang

kepiting atau eksokleton udang (Wilson and Ell Ghaouth, 1993). Chitosan melindungi buah dan sayuran melalui dua mekanisme, fisik dan kimiawi. Secara fisik, chitosan membentuk lapisan film yang membungkus permukaan produk dan mengatur pertukaran gas dan kelembaban. Secara kimiawi, chitosan bersifat fungisidal dan merangsang respon resistensi pasca panen pada jaringan tanaman. Aktifitas antifugal dan merangsang ketahanan dari chitosan menjanjikan kemungkinan yang baik untuk pengendalian penyakit tanaman ( Pamekas, 2007).

Chitosan (sebuah polymer dari beta- 1,4- glucosamin residues) adalah sebuah deacetyl jadian dari kitin yang memberikan sifat antifugal yang berperan untuk memancing/mendapatkan ketahanan tanaman yang potensial untuk melawan jamur patogen (Roblin, 2008). Allan dan Hadwiger melaporkan bahwa cithosan (1000 µg/ml) efektif dan mengurangi pertumbuhan dari beberapa jamur yang telah diuji. Efek penghambatan dari chitosn juga telah didemostrasikan dengan jamur tular tanah (soil borne) (El Ghaouth, at al., 1992).

Efek pemberian chitosan terhadap tingkat kerusakan buah strawberry yang diinokulasi dengan suspensi spora Botrytis cinerea atau Rhizopus stolonifer kemudian diberi dengan larutan chitosan (10 atau 15 mg/ml), setelah 14 hari disimpan kerusakan yang disebabkan oleh B. cinerea atau R. stolonifer sangat nyata pengurangannya dengan pemberian chitosan. Chitosan sangat efektif menghambat pertumbuhan spora dan perpanjangan germtube dari B. cinerea atau

R. stolonifer pada media. Mekanisme dari chitosan mengurangi pembusukan/

kerusakan pada buah strawberry, serta memberikan perlindungan dari serangan jamur patogen, kemampuannya juga dapat meningkatkan enzim seperti chitinase, chitosanase, dan beta- 1,3-glucanase (El ghaouth, at al., 1992).

BAHAN DAN METODE

Waktu dan Tempat Penelitian

Penelitian dilakukan di Laboratorium Proteksi Tanaman Balai Penelitian Tanaman Karet Sungei Putih, dengan ketinggian ± 80 meter dari permukaan laut. Penelitian dilaksanakan pada bulan Mei 2009 sampai dengan Desember 2010.

Bahan dan Alat

Adapun bahan yang digunakan adalah Isolat jamur Rigidoporus microporus, PDA (Potato Dektrose Agar), kulit udang , aquadest steril dan bahan-bahan kimia seperti alkohol 96%, HCl 37%, NaOH 40 g/mol, Fungisida Anvill 50 SC (Heksakonazol).

Adapun alat yang digunakan adalah autoclave untuk sterilisasi alat, becker glass, gelas ukur, gunting, erlenmeyer, deck glass, blender, hand spayer, planimeter, hot plate, cork borer, incubator, panci, timbangan, cawan petri, kompor, bbelender, oven, lampu bunsen, mikroskop, jarum inokulasi, batang pengaduk, pinset, toples, saringan, dan kain muslin.

Metode Penelitian

Penelitian ini dilakukan dengan menggunakan Rancangan Acak Lengkap (RAL) Non faktorial yang terdiri dari 6 perlakuan dan 3 ulangan.

Perlakuan yang diuji adalah : C0 = Kontrol (tanpa perlakuan) C1 = Chitosan sebanyak 5 mg/ml

C2 = Chitosan sebanyak 10 mg/ml C3 = Chitosan sebanyak 15 mg/ml C4 = Chitosan sebanyak 20 mg/ml

C5 = Fungisida Anvill 50 SC ( heksakonazol) dengan konsentrasi 0,02% Jumlah ulangan adalah :

(t-1)(r - 1) ≥ 15 (6-1)(r - 1) ≥ 15 6 (r-1) ≥ 15 6 r ≥ 21 r ≥ 3.2 r = 3

Jumlah perlakuan = 6 Jumlah ulangan :

Replikasi = 3 (Duplikasi sebanyak 3 kali) Jumlah keseluruhannya = 54

Pelaksanaan Penelitian Persiapan Chitosan

Chitosan dibuat berdasarkan metode yang digunakan oleh Prasetiyo dan Yusuf (2005) yaitu :

a. Demineralisasi

Kulit udang dicuci dengan air mengalir sampai air cuciannya menjadi bening, kemudian dikeringkan di bawah sinar matahari. Selanjutnya kulit udang tadi dicuci menggunakan air panas sebanyak 2 kali sambil diaduk, kemudian

direbus selama 10 menit. Setelah direbus, kulit udang ditiriskan dan dikeringkan. Kulit udang yang sudah kering digiling sampai menjadi serbuk. Setelah itu, serbuk kulit udang dicampur dengan asam klorida (HCL) 1 N dengan perbandingan 10 : 1 (1000 ml : 100 gr). Larutan tersebut diaduk secara merata selama 1 jam, lalu dipanaskan pada suhu 900 C selama 1 jam. Residu padatan dicuci dengan air sampai pH netral. Selanjutnya, residu padatan ini dikeringkan dalam oven pada suhu 800 C selama 24 jam.

b. Deproteinasi

Kulit udang yang telah dimineralisasi dicampur dengan larutan NaOH 3,5% dengan perbandingan pelarut dan kulit udang sebesar 6 : 1 (600 ml : 100 gr). Larutan tadi diaduk secara merata selam 1 jam, lalu dipanaskan pada suhu 900 C selama 1 jam. Setelah itu, larutan disaring dan didinginkan hingga diperoleh residu padatan, residu padatan ini dicuci dengan air sampai pH netral dan dikeringkan pada suhu 800 C selama 24 jam.

c. Deasetilisasi Khitin Menjadi Chitosan

Chitosan dibuat dengan menambahkan NaOH 50% dengan perbandingan 20 : 1 (pelarut berbanding khitin). Larutan tersebut diaduk selama 1 jam, lalu dipanaskan selama 90 menit pada suhu 120-1400 C. larutan tadi disaring hingga diperoleh residu berupa padatan. Residu padatan tadi dicuci dengan air sampai pH netral, lalu dikeringkan dalam oven pada suhu 700 C selama 24 jam.

Persiapan Bahan Inokulasi

Inokulum R. microporus diperoleh dari isolasi langsung tanaman karet yang terserang patogen jamur akar putih. Dalam hal ini yang dibiakkan adalah bagian akar yang terserang, kemudian ditumbuhkan dalam media PDA. Hasil biakan tersebut, dibiakkan kembali hingga menjadi biakan murni.

Pembuatan Potato Dextrose Agar (PDA)

Kentang dikupas dan dicuci bersi lalu ditimbang sebanyak 250 gram seterusnya dipotong kecil-kecil, kemudian potongan kentang direbus dengan aquadest sebanyak 500 ml selama 1-1½ jam. Kemudian disaring ekstraknya dengan kain muslin dan dibuat volume menjadi 500 ml lalu ditambahkan 20 gram dextrose dan 20 gram agar lalu dipanaskan hingga homogen, lalu ditambahkan aquadest streril hingga volume menjadi 1 liter. Selanjutnya dituang kedalam tabung reaksi dengan volume 15 ml/ tabung reaksi, kemudian ditutup dengan kapas yang dilapisi dengan alumeniumfoil, lalu dimasukkan kedalam autoclave untuk disterilisasi selama 15 menit degan suhu 1210 C dan tekanan 1,5 atm. Setelah disterilisasi kemudian PDA didinginkan hingga diperoleh suhu 400 C (hangat kuku).

Medium PDA yang terdapat Senyawa Chitosan

Tabung reaksi yang telah berisi PDA sebanyak 15 ml kemudian ditambahkan senyawa chitosan sebanyak 400 µ l/ tabung reaksi, untuk setiap taraf perlakuan, kemudian tabung reaksi digoyang-goyang agar chitosan tercampur rata dengan PDA. Setelah tercampur rata kemudian langsung dituang ke dalam cawan

petri. Setelah semua perlakuan selesai, kemudian disimpan ke dalam inkubator selama satu malam.

Medium PDA yang terdapat Larutan Fungisida

Tabung reaksi yang telah berisi PDA sebanyak 15 ml kemudian ditambahkan larutan fungisida sebanyak 400 µ l/ tabung reaksi, kemudian tabung reaksi digoyang-goyang agar larutan fungisida tercampur rata dengan PDA . Setelah tercampur rata kemudian langsung dituang ke dalam cawan petri. Setelah perlakuan selesai, kemudian disimpan ke dalam inkubator selama satu malam. Hal yang sama juga dilakukan untuk perlakuan kontrol dimana yang membedakannya adalah dalam perlakuan kontrol penambahan larutan fungisida 400 µ l tidak dilakukan

Pelaksanaan Inokulasi

Campuran PDA dan chitosan serta campuran PDA dan Fungisida tersebut ditumbuhkan jamur R. microporus yang berasal dari biakan murni R. microporus berumur 7 hari dengan menggunakan cork borer (diameter 4 mm), diambil dari tepi koloni yang diletakkan tepat di tengah cawan petri. Hal yang sama juga dilakukan pada perlakuan kontrol. Lalu cawan petri diinkubasikan dalam kotak incubator pada suhu ruangan.

Parameter Pengamatan

Luas Pertumbuhan Koloni R. microporus

Pengukuran luas pertumbuhan koloni jamur R. microporus dilakukan dengan cara:

1. Diamati pertumbuhan luas koloni jamur R. Microporus secara periodik pada perlakuan kontrol, perlakuan chitosan dan fungisida. Diukur mulai hari kedua sampai dengan hari ke lima, dengan interval waktu pengamatan 1 hari.

2. Digambar di cawan petri dibagian belakang dengan menggunakan spidol permanent.

3. Hasilnya digambar di kertas minyak trasparan.

4. Dihitung luas pertumbuhan koloni jamur menggunakan alat plani meter (gambar 5).

Gambar 5. Alat Planimeter

Pengamatan Miselium dan Warna Koloni Jamur

Pengamatan miselium menggunakan mikroskop dan warna koloni dilakukan pada hari ke 6 setelah inokulasi.

HASIL DAN PEMBAHASAN

1. Luas Pertumbuhan Koloni Jamur Rigidoporus microporus

Data Pengamatan luas pertumbuhan koloni jamur R. microporus dapat dilihat pada lampiran 3-6. Hasil analisis statistik menggunakan daftar sidik ragam dan Uji Jarak Duncan (UJD) pada taraf 1 % menunjukkan bahwa pertumbuhan luas koloni jamur R. microporus pada pengamatan 2-5 HSI (Hari Setelah Inokulasi) menunjukkan hasil yang berbeda sangat nyata. Hasilnya dapat dilihat pada tabel 1 berikut ini:.

Tabel 1. Uji Beda Rataan Luas Pertumbuhan Koloni Jamur (cm2) R. microporus pada Pengamatan ke 2,3,4 dan 5 HSI

Perlakuan Pengamatan

2 HSI 3 HSI 4 HSI 5 HSI C0 (Kontrol) 9.89 A 26.12 A 49.43 A 63.39 A C1 (Chitosan 5 mg/ml) 8.24 B 23.18 B 38.80 B 58.18 B C2 (Chitosan 10 mg/ml) 7.49 C 21.86 C 37.11 B 56.70 C C3 (Chitosan 15 mg/ml) 6.73 D _{20.62 D} 36.03 C 55.64 C C4 (Chitosan 20 mg/ml) 6.14 E _{19.43 E} 33.69 D 53.11 D C5 (Heksakonajol 0,02%) 0.41 F 1.112 F 1.51 E 3.06 E Keterangan: Angka-angka yang diikuti oleh huruf yang sama pada kolom yang sama tidak berbeda nyata

pada taraf 0,01 % menurut uji jarak Duncan

Pada tabel 1 dapat dilihat bahwa luas pertumbuhan koloni tampak berbeda-beda dari masing-masing perlakuan. Luas pertumbuhan koloni jamur mulai dari pengamatan 2 HSI, 3 HSI, 4 HSI dan 5 HSI mengalami pertambahan luas pada setiap perlakuan chitosan. Dimana luas pertumbuhan koloni jamur yang tertinggi pada 5 HSI terdapat pada perlakuan C1 (chitosan 5 mg/ml aquadest steril) yaitu sebesar 58,18 cm2, sedangkan luas pertumbuhan koloni jamur yang terendah terdapat pada perlakuan C4 (chitosan 20 mg/ml aquadest steril) yaitu

53,11 cm2. dengan demikian semakin tinggi konsentrasi chitosan semakin baik untuk menghambat pertumbuhan koloni jamur.

Pada pengamatan 2 HSI luas pertumbuhan koloni jamur pada perlakuan C1 (chitosan 5 mg/ml aquadest steril) adalah 8,24 cm2 berbeda sangat nyata terhadap perlakuan C2 (chitosan 10 mg/ml aquadest steril) 7,49 cm2, C3 (chitosan 15 mg/ml aquadest steril) 6,73 cm2 dan C4 (chitosan 20 mg/ml aquadest steril) 6,14 cm2. Pada pengamatan 3 HSI luas pertumbuhan koloni jamur pada perlakuan C1 (chitosan 5 mg/ml aquadest steril) adalah 23,18 cm2 berbeda sangat nyata

terhadap perlakuan C2 (chitosan 10 mg/ml aquadest steril) 21,86 cm2,, C3 (chitosan 15 mg/ml aquadest steril) 20,62 cm2 dan C4 (chitosan 20 mg/ml

aquadest steril) 19,43 cm2. Pada pengamatan 4 HSI luas pertumbuhan koloni jamur pada perlakuan C1 (chitosan 5 mg/ml aquadest steril) adalah 38,80 cm2 tidak berbeda nyata dengan perlakuan C2 (chitosan 10 mg/ml aquadest steril) 37,11 cm2 dan berbeda sengat nyata terhadap perlakuan C3 (chitosan 15 mg/ml aquadest steril) 36,03 cm2 dan C4 (chitosan 20 mg/ml aquadest steril) 33,69 cm2.

Pada pengamatan 5 HSI luas pertumbuhan koloni jamur pada perlakuan C1 (chitosan 5 mg/ml aquadest steril) adalah 58,18 cm2, berbeda sangat nyata

terhadap perlakuan C2 (chitosan 10 mg/ml aquadest steril) 56,70 cm2, C3 (chitosan 15 mg/ml aquadest steril) 55,64 cm2 dan C4 (chitosan 20 mg/ml aquadest steril) 53,11 cm2. Sedangkan luas pertumbuhan koloni jamur pada perlakuan C2 (chitosan 10 mg/ml aquadest steril) 56,70 cm2 tidak berbeda nyata terhadap perlakuan C3 (chitosan 15 mg/ml aquadest steril) 55,64 cm2. Pada penelitian ini luas pertumbuhan koloni jamur pada perlakuan control tetap yang tertinggi apabila dibandingkan dengan perlakuan chitosan. Dan luas pertumbuhan

koloni jamur yang terendah adalah pada perlakuan C5 (Fungisida Anvill 50 SC 2 ml/l aquadest steril).

Untuk lebih jelasnya dapat dilihat pada gambar Histogram berikut ini:

Gambar 6. Histogram pertumbuhan luas koloni jamur R. Microporus

Dari hasil penelitian yang dilakukan, bahwa penghambatan luas pertumbuhan koloni jamur diakibatkan karena senyawa chitosan mempunyai kemampuan untuk menghambat pertumbuhan koloni. Hal ini sesuai dengan literatur El Ghaouth et al. (1992), yang menyatakan bahwa chitosan mengandung

enzim β 1 ,3- glukanase yang dapat menurunkan jumlah kitin pada dinding hifa

cendawan, sehingga dapat mengurangi pertumbuhan koloni jamur, karena chitosan sifatnya menghambat, sehingga koloni jamur akan tetap tumbuh hingga memenuhi cawan petri.

0,00 10,00 20,00 30,00 40,00 50,00 60,00 70,00

C0 C1 C2 C3 C4 C5

Lu a s P e rt u m b u h a n k o lo n i j a m u r (c m 2 ) Perlakuan

Pengamatan 2 HSI Pengamatan 3 HSI Pengamatan 4 HSI Pengamatan 5 HSI

2. Pengamatan Miselium dan Warna Koloni Jamur Rigidoporus microporus Hasil pengamatan dari jamur R.microporus dari masing-masing perlakuan diperoleh bentuk miselium dan warna koloni yang berbeda. Tertera pada tabel berikut:

Tabel 2. Pengamatan miselium pada tiap Perlakuan

No Perlakuan Keterangan 1 Kontrol

Perbesaran 10 x 40

Pengamatan miselium pada mikroskop, miselium berwarna putih (bening), bersekat, memiliki percabangan yang banyak dan terjalin rapat.

2 Chitosan

Perbesaran 10 x 40

Pengamatan miselium pada mikroskop, miselium berwarna putih (bening), bersekat dan memiliki percabangan. Jalinan miselim lebih jarang apabila dibandingkan denan perlakuan kontrol.

3 Fungisida

Perbesaran 10 x 40

Pengamatan miselium pada mikroskop, miselium berwarna putih (bening), bersekat, memiliki percabangan dan ukuran miselium lebih kecil di bandingkan dengan perlakuan kontrol dan perlakuan chitosan

Tabel 3. Pengamatan Warna Koloni Jamur Rigidoporus microporus No Perlakuan Keterangan

1 Kontrol Pada media tampak belakang berwarna putih. Sedangkan tampak depan, terdapat kumpulan miselium berwarna putih jernih. Pertumbuhan miselium terjalin dengan rapat. Koloni jamur memenuhi cawan petri pada hari ke 4-5.

2 Chitosan Pada media tampak belakang berwarna putih, lama-kelamaan menjadi kuning kecokelatan. Sedangkan tampak depan, terdapat kumpulan miselium berwarna putih. Koloni jamur memenuhi cawan petri pada hari ke 5-6.

3 Fungisida Pada media tampak belakang berwarna kuning kecokelatan. Lama-kelamaan menjadi warna cokelat muda. Pada tampak depan, terdapat kumpulan miselium berwarna putih jernih. Pertumbuhan miselium sangat lambat dan berntuknya seperti kancing baju.

KESIMPULAN DAN SARAN

Kesimpulan

1. Pada pengamatan luas koloni jamur R. microporus untuk perlakuan chitosan berbeda sangat nyata terhadap perlakuan kontrol dan fungisida anvill 50 SC

2. Luas koloni jamur R. microporus pada 5 HSI tertinggi terdapat pada perlakuan kontrol yaitu sebesar 63,39 cm2 dan yang terendah terdapat pada perlakuan fungisida anvill yaitu sebesar 3.06 cm2.

3. Pada perlakuan chitosan, luas pertumbuhan koloni jamur R. microporus yang tertinggi terdapat pada perlakuan C1 (chitosan 5 mg/ml aquadest steril) yaitu sebesar 58,18 cm2 dan yang terendah terdapat pada perlakuan C4 (chitosan 20 mg/ml aquadest steril) yaitu 53,11 cm2.

4. Bentuk miselium dan warna koloni jamur R. microporus berbeda pada setiap perlakuan.

Saran

Perlu dilakukan penelitian lanjutan mengenai perbandingan chitosan kulit

udang dengan chitosan dari sumber lain, untuk mengendalikan jamur

DAFTAR PUSTAKA

Alexopoulus, C. J., and C. J., Mims. 1979. Introductory Mycology. 3rd edition. John Willey and Sons, New York. pp: 355, 365.

Andoko, A., dan Setiawan, D.H., 2006. Petunjuk Lengkap Budidaya Karet, Kanisius, Yogyakarta, hal: 11-12.

Baroni, T.J., 2007 Rigidoporus microporus.

Basuki, dan Wisma, S., 1995. Pengenalan dan Pengendalian Penyakit Akar Putih Pada tanaman Karet, hal: 1-5. dalam Kumpulan Lokakarya Pengendalian Penyakit Penting Tanaman Karet. Pusat Penelitian Karet, Sungei Putih. Dijkman, M.J., 1986. Havea: Thirty Years of Research in the Far East. University

of Miami- Press, Coral Gables, Florida, pp: 3-5.

El Ghaouth, A., Arul, J., Granier, J., and Asselin, A., 1992. Antifugal Activity of Chitosan on Two Postharvest Pathogens of Strawberry Fruits. Februari 2009.

Fairuzah, Z., Rahayu, S.T.S., Suryaman, S., dan Zaini, A., 2008. Laporan Pengujian Efectivitas Biotani Terhadap Perkembangan Jamur Akar Putih (JAP). Pusat Penelitian Karet, Sungei Putih, hal: 3-5.

Hamdan, 2007. Pengendalian Organisme Pengganggu Tumbuhan (OPT) Jamur Akar Putih (JAP) Pada Tanaman Karet. remove this watermark,diakses 19 Januari 2009.

Hasanuddin, 1999. Efektivitas Medium Pertumbuhan Pseudomonas aeruginosa Sebagai Penghasil Senyawa Antagonis Terhadap Pertumbuhan Miselium

R. microporus Penyebab Penyakit Akar Putih. hal: 653-657. dalam

Prosiding Kongres Nasional XV dan Seminar Ilmiah PFI, Purwokerto. Ilahang, Budi, Wibawa, G., dan Joshi, L., 2007. Status dan Pengendalian Penyakit

Jamur Akar Putih pada Sistem Wanatani Berbasis Karet Unggul di Kalimantan Barat.

Linawati, 2008. Chitosan: Limbah Kulit Udang untuk Diabetes dan Hipertensi.

Liyanage, A.S., 1976. Control of White Rott Disease Caused by Rigidoporus

(Fomes) lignosus. Bull. Rubb. Res. Inst. Srilangka V: No. 1. pp: 24-29.

Luthfi, 2006.Chitosan dan Cara Pembuatannya.

http//luthfi web.id/2006/12/01/chitosan. diakses 10 Januari 2009.

Pamekas, T., 2007. Potensi Ekstrak Cangkang Kepiting Untuk Mengendalikan Penyakit Pasca Panen Antraknosa pada Buah Cabai merah. Universitas Bengkulu, Bengkulu. Vol (10) No. 1, hal: 72-75.

Pamekas, T., Rogis, A., dan mucharromah 2007. Karakteristik dan Uji Efikasi Bahan Senyawa Alami Chitosan pathogen Pasca Panen Antraknosa

Colletotricum musae. Universitas Bengkulu, Bengkulu. Vol (9) No. 1,

2007 hal: 58-63.

Pinem, M.I., dan Yusuf, S., 2004. Buku Ajar Penyakit Tanaman Perkebunan. USU-Press, Medan, hal: 1-4.

Prasetiyo, K.W., dan Yusuf, S., 2005. Mencegah dan Membasmi Rayab Secara Ramah Lingkungan dan Kimiawi, Agromedia Pustaka, Tangerang, hal: 52-58.

Rahayu, S., Sujatno, dan Pawirosoemardjo, S., 2006. Management Pengendalian Penyakit Jamur Akar Putih pada Tanaman Karet, hal: 258-260, 265. dalam Prosiding Lokakarya Nasional Budidaya Tanaman Karet. Pusat Penelitian Karet, Sungei Putih.

Roblin, G., 2008. Early Events Induced by Chitosan on Plant Cells. 12 Februari, 2009.

Semangun, H., 2000. Penyakit – Penyakit Tanaman Perkebunan di Indonesia. Gadjah Mada University -Press, Yogyakarta, hal 11-30.

Sinaga, M. S., 2004. Strategi Pengelolaan Penyakit Penting Tanaman Karet di Indonesia pada Masa Mendatang. hal: 12 dalam Prosiding Pertemuan Teknis Strategi Pengelolaan Penyakit Tanaman Karet untuk Mempertahankan Potensi Produksi Mendukung Industri Perkaretan Indonesia tahun 2020. Palembang, 6 – 7 Oktober 2004, Pusat Penelitian Karet, Sembawa.

Sinulingga, W., 1989. Pengendalian Biologi Penyakit Cendawan Akar Putih Pada Tanaman Karet. Pusat Penelitian Karet, Sungei Putih, hal: 8-15.

Sinulingga, W., dan Eddy, S., 1989, Pengendalian Penyakit Jamur Akar Putih Pada Tanaman Karet. Pusat Penelitian Karet, sungei Putih, hal: 8-13

Soepena, 1984., Penyakit Akar Tanaman Karet, Pusat Penelitian Karet, Sungei Putih, hal: 1-6.

, 1995.,Pengendalian Penyakit Jamur Akar putih Secara Biologis dengan Bio-Fungicide Saco-P pada Tanaman Karet, hal: 4-12. dalam Kumpulan Makalah Lokakarya Pengendallian Penyakit Penting Tanaman Karet. Pusat Penelitian Karet, Sungei Putih.

Spillance, J.J., 1989. Komoditi Karet: Peranannya dalam Perekonimian Indonesia. Kanisius, Yogyakarta, hal: 14

Suhandi, N., 2004. Pengendalilan Penyakit Jamur Akar Putih Untuk Mempertahankan populasi tanaman dan peningkatan produksi di PT. Brahma Binabakti, Jambi, hal: 153-155 dalam Prosiding Pertemuan Teknis Strategi Pengelolaan Penyakit Tanaman Karet untuk Mempertahankan Potensi Produksi Mendukung Industri Perkaretan Indonesia tahun 2020. Palembang, 6 – 7 Oktober 2004, Pusat Penelitian Karet, Sembawa.

Sujatno, Rahayu, S.T.S., Nugroho, P.A., dan Bukit, E., 2007. Evaluasi Pengaruh Penanaman ubi Kayu Terhadap pertumbuhan tanaman karet tahun tanam 2006 di Kebun Sungei Putih, PTPN-3, Balai Penelitian Karet, Sungei Putih, hal: 3-4.

Wilson, C.L., and A. El Ghaouth. 1993. Multifaceted Biological Control of Postharvest Disease of fruit and Vegetables. dalam Karakteristik dan Uji Efikasi Bahan Senyawa Alami Chitosan pathogen Pasca Panen Antraknosa

Colletotricum musae. Pamekas, dkk., 2007.

Wilson, et al., 1994. Potential of Induced Resistace to Control Postharvest disease of fruit and Vagetables. dalam Karakteristik dan Uji Efikasi Bahan Senyawa Alami Chitosan pathogen Pasca Panen Antraknosa Colletotricum

musae. Pamekas, dkk., 2007.

Yusuf, S., Lubis, L., Arifin, K., dan Zahara, F., 1992. Cara Pengendalian Penyakit Jamur Akar Putih (Rigidoporus Lignosus (Klotzsh) Imazeki) Dengan Pemakaiyan Fungisida Dinikorosol Pada Tanaman Karet Muda klon GT-1 Fakultas Pertanian, USU-Press, Medan, hal: 1-11.

BAGAN PENELITIAN

U

S

Lampiran 1 C4

C4 C2 C2

C0 C2 C4 C0 C0 C1 C1 C3 C3 C5 C3 C1 C5 C5 C3 C3 C1 C1 C3 C2 C1 C2 C2

C3 C4 C4

C5 C3 C5 C5 C4 C3

C0 C5 C5

C4 C0 C4 C4 C5 C0

C2 C2 C1

C2 CO CO C1 C1 CO

Keterangan:

Jumlah Petridish : 54 Jumlah Ulangan:

Replikasi : 3 Duplikasi : 3

C : Chitosan U : Ulangan

Lampiran 2. Foto Luas Pertumbuhan Koloni Jamur Rigidoporus microporus

Gambar Pertumbuhan Koloni Jamur Gambar Pertumbuha KoloniJamur

R. microporus 1 HSI R. microporus 2

HSIGambar Pertumbuhan Koloni Jamur Gambar Pertumbuhan Koloni Jamur

Gambar Pertumbuhan Koloni Jamur Gambar Pertumbuhan Koloni Jamur

Lampiran 3. Data Pengamatan Luas Pertumbuhan Koloni Jamur R.microporus Pada Uji Efektifitas Chitosan 2 HSI (cm2)

Perlakuan

Ulangan

I II III

Replikasi

Total Rataan Replikasi Total Rataan Replikasi Total Rataan

1 2 3 1 2 3 1 2 3

C0 26.70 25.80 26.00 78.50 26.17 27.00 26.20 25.50 78.70 26.23 26.90 25.00 26.00 77.90 25.97 C1 23.20 22.70 23.00 68.90 22.97 23.50 23.20 23.40 70.10 23.37 23.00 22.90 23.70 69.60 23.20 C2 21.90 22.00 22.10 66.00 22.00 21.70 21.50 21.80 65.00 21.67 21.90 21.80 22.00 65.70 21.90 C3 21.00 21.50 22.00 64.50 21.50 21.00 20.00 19.50 60.50 20.17 20.30 19.30 21.00 60.60 20.20 C4 20.50 21.00 19.50 61.00 20.33 18.10 18.50 20.00 56.60 18.87 18.30 19.30 19.70 57.30 19.10

C5 1.00 1.10 1.00 3.10 1.03 1.20 1.21 1.25 3.66 1.22 1.00 1.15 1.10 3.25 1.08

Perlakuan Ulangan Total Rataan I II III

C0 9.83 9.93 9.90 29.67 9.89 C1 8.43 8.20 8.10 24.73 8.24 C2 7.67 7.33 7.47 22.47 7.49 C3 6.60 6.80 6.80 20.20 6.73 C4 6.27 6.03 6.13 18.43 6.14 C5 0.41 0.42 0.40 1.23 0.41 Total 39.21 38.72 38.80 116.73

Rataan 6.54 6.45 6.47 6.49 Daftar Sidik Ragam

SK db JK KT Fhit F0.01 F0.05 Perlakuan 5 347.54 69.51 4787.72 ** 5.06 3.11 Galat 12 0.17 0.01

Total 17 347.71 ** sangat nyata

FK 567.78 * nyata

Uji Jarak Duncan SY 0.06

P 2 3 4 5 6 7

SSR 0,01 4.32 4.55 4.68 4.76 4.81 4.92 LSR0,01 0.25 0.26 0.27 0.27 0.27 0.28 Perlakuan C5 C4 C3 C2 C1 C0 Rataan 0.41 6.14 6.73 7.49 8.24 9.89

.A .B

.C .D

.E .F

Lampiran 4. Data Pengamatan Luas Pertumbuhan Koloni Jamur R. microporus Pada Uji Efektifitas Chitosan 3 HSI (cm2)

Perlakuan

Ulangan

I II III

Replikasi

Total Rataan

Replikasi

Total Rataan

Replikasi

Total Rataan

1 2 3 1 2 3 1 2 3

C0 26.70 25.80 26.00 78.50 26.17 27.00 26.20 25.50 78.70 26.23 26.90 25.00 26.00 77.90 25.97 C1 23.20 22.70 23.00 68.90 22.97 23.50 23.20 23.40 70.10 23.37 23.00 22.90 23.70 69.60 23.20 C2 21.90 22.00 22.10 66.00 22.00 21.70 21.50 21.80 65.00 21.67 21.90 21.80 22.00 65.70 21.90 C3 21.00 21.50 22.00 64.50 21.50 21.00 20.00 19.50 60.50 20.17 20.30 19.30 21.00 60.60 20.20 C4 20.50 21.00 19.50 61.00 20.33 18.10 18.50 20.00 56.60 18.87 18.30 19.30 19.70 57.30 19.10

C5 1.00 1.10 1.00 3.10 1.03 1.20 1.21 1.25 3.66 1.22 1.00 1.15 1.10 3.25 1.08

Perlakuan Ulangan Total Rataan I II III

C0 26.17 26.23 25.97 78.37 26.12 C1 22.97 23.37 23.20 69.53 23.18 C2 22.00 21.67 21.90 65.57 21.86 C3 21.50 20.17 20.20 61.87 20.62 C4 20.33 18.87 19.10 58.30 19.43 C5 1.03 1.22 1.08 3.34 1.11 Total 114.00 111.52 111.45 336.97

Rataan 19.00 18.59 18.58 18.72 Daftar Sidik Ragam

SK db JK KT Fhit F0.01 F0.05 Perlakuan 5 2773.04 554.61 2564.69 ** 5.06 3.11 Galat 12 2.59 0.22

Total 17 2775.63 ** sangat nyata

FK 4731.20 * nyata

Uji Jarak Duncan

SY 0.22 0.17

P 2 3 4 5 6 7

SSR 0,01 4.32 4.55 4.68 4.76 4.81 4.92 LSR 0,01 0.95 1.00 1.03 1.04 1.05 1.08 Perlakuan C5 C4 C3 C2 C1 C0 Rataan 1.11 19.43 20.62 21.86 23.18 26.12

.A .B

.C .D

.E .F

Lampiran 5. Data Pengamatan Luas Pertumbuhan Koloni Jamur R. microporus Pada Uji Efektifitas Chitosan 4 HSI (cm2)

Perlakuan

Ulangan

I II III

Replikasi

Total Rataan

Replikasi

Total Rataan

Replikasi

Total Rataan

1 2 3 1 2 3 1 2 3

C0 49.50 49.30 49.40 148.20 49.40 49.50 49.50 49.30 148.30 49.43 49.30 49.50 49.60 148.40 49.47 C1 37.50 38.00 37.90 113.40 37.80 38.50 39.00 38.70 116.20 38.73 40.00 39.50 40.10 119.60 39.87 C2 38.00 36.70 37.00 111.70 37.23 37.60 36.00 34.00 107.60 35.87 39.00 38.70 37.00 114.70 38.23 C3 36.00 36.50 34.00 106.50 35.50 36.10 36.30 36.00 108.40 36.13 36.00 36.50 36.90 109.40 36.47 C4 34.00 33.70 33.70 101.40 33.80 32.00 33.50 32.50 98.00 32.67 34.00 35.50 34.30 103.80 34.60

C5 1.50 1.50 1.48 4.48 1.49 1.53 1.50 1.50 4.53 1.51 1.50 1.60 1.50 4.60 1.53

Perlakuan Ulangan Total Rataan I II III

C0 49.40 49.43 49.47 148.30 49.43 C1 37.80 38.73 39.87 116.40 38.80 C2 37.23 35.87 38.23 111.33 37.11 C3 35.50 36.13 36.47 108.10 36.03 C4 33.80 32.67 34.60 101.07 33.69 C5 1.49 1.51 1.53 4.54 1.51 Total 195.23 194.34 200.17 589.74

Rataan 32.54 32.39 33.36 32.76 Daftar Sidik Ragam

SK db JK KT Fhit F0.01 F0.05 Perlakua

n 5

8794.6 5

1758.9 3

2876.4

8 ** 5.06 3.11 Galat 12 7.34 0.61

Total 17 8801.9

9

** sangat nyata FK 14491.2

2 * nyata

Uji Jarak Duncan SY 0.37

P 2 3 4 5 6 7

SSR 0,01 4.32 4.55 4.68 4.76 4.81 4.92 LSR0,01 1.59 1.68 1.73 1.75 1.77 1.81 Perlakuan C5 C4 C3 C2 C1 C0 Rataan 1.51 33.69 36.03 37.11 38.80 49.43

.A B

.C .D

Lampiran 6. Data Pengamatan Luas Pertumbuhan Koloni Jamur R. microporus Pada Uji Efektifitas Chitosan 5 HSI (cm2)

Ulangan

I II III

Replikasi

Total Rataan

Replikasi

Total Rataan

Replikasi

Total Rataan

1 2 3 1 2 3 1 2 3

C0 63.51 63.00 63.50 190.01 63.34 63.00 63.50 63.50 190.00 63.33 63.50 63.50 63.50 190.50 63.50 C1 59.00 58.50 58.50 176.00 58.67 57.50 57.80 58.30 173.60 57.87 57.30 58.20 58.50 174.00 58.00 C2 57.00 58.30 58.00 173.30 57.77 57.00 56.50 56.00 169.50 56.50 56.00 55.00 56.50 167.50 55.83 C3 56.00 56.50 55.90 168.40 56.13 55.90 55.80 56.20 167.90 55.97 55.30 54.00 55.20 164.50 54.83 C4 54.00 54.20 53.30 161.50 53.83 52.00 54.00 52.50 158.50 52.83 52.50 53.50 52.00 158.00 52.67

C5 3.00 3.30 3.00 9.30 3.10 3.00 3.20 3.00 9.20 3.07 3.10 3.00 2.90 9.00 3.00

Perlakuan Ulangan Total Rataan I II III

C0 63.34 63.33 63.50 190.17 63.39 C1 58.67 57.87 58.00 174.53 58.18 C2 57.77 56.50 55.83 170.10 56.70 C3 56.13 55.97 54.83 166.93 55.64 C4 53.83 52.83 52.67 159.33 53.11 C5 3.10 3.07 3.00 9.17 3.06 Total 292.84 289.57 287.83 870.24

Rataan 48.81 48.26 47.97 48.35 Daftar Sidik Ragam

SK db JK KT Fhit F0.01 F0.05 Perlakua

n 5

18078.1 4

3615.6 3

10539.4

6 ** 5.06 3.11 Galat 12 4.12 0.34

Total 17 18082.2

6

** sangat nyata FK 31554.6

6 * nyata

Uji Jarak Duncan

SY 0.28 1.86 51.85 54.35 55.39 56.85 62.03

P 2 3 4 5 6 7

SSR 0,01 4.32 4.55 4.68 4.76 4.81 4.92 LSR0,0

1 1.19 1.26 1.29 1.31 1.33 1.36 Perlakuan C5 C4 C3 C2 C1 C0 Rataan 3.06 53.11 55.64 56.70 58.18 63.39

.A .B

C .D

Lampiran 4. Data Pengamatan Luas Pertumbuhan Koloni Jamur

R. microporus Pada Uji Efektifitas Chitosan 3 HSI (cm2)

Perlakuan

Ulangan

I II III

Replikasi

Total Rataan

Replikasi

Total Rataan

Replikasi

Total Rataan

1 2 3 1 2 3 1 2 3

C0 26.70 25.80 26.00 78.50 26.17 27.00 26.20 25.50 78.70 26.23 26.90 25.00 26.00 77.90 25.97 C1 23.20 22.70 23.00 68.90 22.97 23.50 23.20 23.40 70.10 23.37 23.00 22.90 23.70 69.60 23.20 C2 21.90 22.00 22.10 66.00 22.00 21.70 21.50 21.80 65.00 21.67 21.90 21.80 22.00 65.70 21.90 C3 21.00 21.50 22.00 64.50 21.50 21.00 20.00 19.50 60.50 20.17 20.30 19.30 21.00 60.60 20.20 C4 20.50 21.00 19.50 61.00 20.33 18.10 18.50 20.00 56.60 18.87 18.30 19.30 19.70 57.30 19.10 C5 1.00 1.10 1.00 3.10 1.03 1.20 1.21 1.25 3.66 1.22 1.00 1.15 1.10 3.25 1.08

Perlakuan Ulangan Total Rataan

I II III

C0 26.17 26.23 25.97 78.37 26.12

C1 22.97 23.37 23.20 69.53 23.18

C2 22.00 21.67 21.90 65.57 21.86

C3 21.50 20.17 20.20 61.87 20.62

C4 20.33 18.87 19.10 58.30 19.43

C5 1.03 1.22 1.08 3.34 1.11

Total 114.00 111.52 111.45 336.97

Rataan 19.00 18.59 18.58 18.72

Daftar Sidik Ragam

SK db JK KT Fhit F0.01 F0.05

Perlakuan 5 2773.04 554.61 2564.69 ** 5.06 3.11

Galat 12 2.59 0.22

Total 17 2775.63

** sangat nyata

FK 4731.20 * nyata

KK 2.48 tn tidak nyata

SSR 0,01 4.32 4.55 4.68 4.76 4.81 4.92

LSR 0,01 0.95 1.00 1.03 1.04 1.05 1.08

Perlakuan C5 C4 C3 C2 C1 C0

Rataan 1.11 19.43 20.62 21.86 23.18 26.12

.A .B

.C .D

.E .F

Lampiran 5. Data Pengamatan Luas Pertumbuhan Koloni Jamur

R. microporus Pada Uji Efektifitas Chitosan 4 HSI (cm2)

Perlakuan

Ulangan

I II III

Replikasi

Total Rataan

Replikasi

Total Rataan

Replikasi

Total Rataan

1 2 3 1 2 3 1 2 3

C0 49.50 49.30 49.40 148.20 49.40 49.50 49.50 49.30 148.30 49.43 49.30 49.50 49.60 148.40 49.47 C1 37.50 38.00 37.90 113.40 37.80 38.50 39.00 38.70 116.20 38.73 40.00 39.50 40.10 119.60 39.87 C2 38.00 36.70 37.00 111.70 37.23 37.60 36.00 34.00 107.60 35.87 39.00 38.70 37.00 114.70 38.23 C3 36.00 36.50 34.00 106.50 35.50 36.10 36.30 36.00 108.40 36.13 36.00 36.50 36.90 109.40 36.47 C4 34.00 33.70 33.70 101.40 33.80 32.00 33.50 32.50 98.00 32.67 34.00 35.50 34.30 103.80 34.60 C5 1.50 1.50 1.48 4.48 1.49 1.53 1.50 1.50 4.53 1.51 1.50 1.60 1.50 4.60 1.53

Perlakuan Ulangan Total Rataan

I II III

C0 49.40 49.43 49.47 148.30 49.43

C1 37.80 38.73 39.87 116.40 38.80

C2 37.23 35.87 38.23 111.33 37.11

C3 35.50 36.13 36.47 108.10 36.03

C4 33.80 32.67 34.60 101.07 33.69

C5 1.49 1.51 1.53 4.54 1.51

Total 195.23 194.34 200.17 589.74

Rataan 32.54 32.39 33.36 32.76

Daftar Sidik Ragam

SK db JK KT Fhit F0.01 F0.05

Perlakua

n 5

8794.6 5

1758.9 3

2876.4

8 ** 5.06 3.11

Galat 12 7.34 0.61

Total 17 8801.9

9

** sangat nyata

FK 14491.2

2 * nyata

KK 2.39 tn tidak nyata

P 2 3 4 5 6 7

SSR 0,01 4.32 4.55 4.68 4.76 4.81 4.92

LSR0,01 1.59 1.68 1.73 1.75 1.77 1.81

Perlakuan C5 C4 C3 C2 C1 C0

Rataan 1.51 33.69 36.03 37.11 38.80 49.43

.A

B .C

.D .E

Lampiran 6. Data Pengamatan Luas Pertumbuhan Koloni Jamur

R. microporus Pada Uji Efektifitas Chitosan 5 HSI (cm2)

Ulangan

I II III

Replikasi

Total Rataan

Replikasi

Total Rataan

Replikasi

Total Rataan

1 2 3 1 2 3 1 2 3

C0 63.51 63.00 63.50 190.01 63.34 63.00 63.50 63.50 190.00 63.33 63.50 63.50 63.50 190.50 63.50 C1 59.00 58.50 58.50 176.00 58.67 57.50 57.80 58.30 173.60 57.87 57.30 58.20 58.50 174.00 58.00 C2 57.00 58.30 58.00 173.30 57.77 57.00 56.50 56.00 169.50 56.50 56.00 55.00 56.50 167.50 55.83 C3 56.00 56.50 55.90 168.40 56.13 55.90 55.80 56.20 167.90 55.97 55.30 54.00 55.20 164.50 54.83 C4 54.00 54.20 53.30 161.50 53.83 52.00 54.00 52.50 158.50 52.83 52.50 53.50 52.00 158.00 52.67 C5 3.00 3.30 3.00 9.30 3.10 3.00 3.20 3.00 9.20 3.07 3.10 3.00 2.90 9.00 3.00

Perlakuan Ulangan Total Rataan

I II III

C0 63.34 63.33 63.50 190.17 63.39

C1 58.67 57.87 58.00 174.53 58.18

C2 57.77 56.50 55.83 170.10 56.70

C3 56.13 55.97 54.83 166.93 55.64

C4 53.83 52.83 52.67 159.33 53.11

C5 3.10 3.07 3.00 9.17 3.06

Total 292.84 289.57 287.83 870.24

Rataan 48.81 48.26 47.97 48.35

Daftar Sidik Ragam

SK db JK KT Fhit F0.01 F0.05

Perlakua

n 5

18078.1 4

3615.6 3

10539.4

6 ** 5.06 3.11

Galat 12 4.12 0.34

Total 17 18082.2

6

** sangat nyata

FK 31554.6

6 * nyata

KK 1.21 tn tidak nyata

P 2 3 4 5 6 7

SSR 0,01 4.32 4.55 4.68 4.76 4.81 4.92

LSR0,0

1 1.19 1.26 1.29 1.31 1.33 1.36

Perlakuan C5 C4 C3 C2 C1 C0

Rataan 3.06 53.11 55.64 56.70 58.18 63.39

.A .B

C .D