Uji Efektifitas Chitosan Untuk Mengendalikan Penyakit Jamur Upas (Upasia salmonicolor (B. et Br.) Tjokr.,) Pada Tanaman Karet (Hevea brasiliensis Muell. Arg.)

UJI EFEKTIFITAS CHITOSAN UNTUK MENGENDALIKAN

PENYAKIT JAMUR UPAS (Upasia salmonicolor (B. et Br.) Tjokr.,)

PADA TANAMAN KARET (Hevea brasiliensis Muell. Arg.)

SKRIPSI

Oleh :

VIVI ENDRIYATI

040302011

HPT

DEPARTEMEN ILMU HAMA DAN PENYAKIT TUMBUHAN

FAKULTAS PERTANIAN

UNIVERSITAS SUMATERA UTARA

MEDAN

UJI EFEKTIFITAS CHITOSAN UNTUK MENGENDALIKAN

PENYAKIT JAMUR UPAS (Upasia salmonicolor (B. et Br.) Tjokr.,)

PADA TANAMAN KARET (Hevea brasiliensis Muell. Arg.)

SKRIPSI

Oleh : VIVI ENDRIYATI

040302011 HPT

Skripsi Sebagai Salah Satu Syarat Untuk Dapat Memperoleh Gelar Sarjana di Departemen Hama dan Penyakit Tumbuhan Fakultas Pertanian

Universitas Sumatera Utara Medan

DEPARTEMEN ILMU HAMA DAN PENYAKIT TUMBUHAN

FAKULTAS PERTANIAN

UNIVERSITAS SUMATERA UTARA

MEDAN

SkripsiJudul: UJI EFEKTIFITAS CHITOSAN UNTUK

MENGENDALIKAN PENYAKIT JAMUR UPAS

(Upasia salmonicolor (B. et Br.)Tjokr.,) PADA

TANAMAN KARET (Hevea brasiliensis Muell. Arg.)

Nama

: Vivi Endriyati

Nim

: 040302011

Departemen : Hama dan Penyakit Tumbuhan

Disetujui Oleh :

Komisi Pembimbing

(Ir. Mukhtar Iskandar Pinem.M.Agr.) Ketua

(Ir. Kasmal Arifin, MSi.) (Ir. Aidi Daslin Sagala, MS.) Anggota Pembimbing lapangan

(Ir. Marheni, MP.) Ketua Departemen

ABSTRACT

Vivi Endriyati “ Chitosan Effectiveness Test to Conteol the Upas fungus (Upasia salmonicolor (B. et Br.) Tjokr,.) on Rubber Tree ( Hevea brasiliensis Muell. Arg) “under the supervision of conceling team Ir. Mukhtar Iskandar Pinem, M.Agr, as a chairman, Ir. Kasmal Arifin, MSi, as

member, Ir Aidi Daslin Sagala, MS as field supervisor. This research was conducted at Laboratory of Crops Protection of Rubber Plantation Research Center of Sungai Putih since August up to November 2008. The objective of this research is to study the chitosan effectiveness to the upas fungus disease (Upasia salmonicolor (B. et B.) Tjokr.,), and to obtain the natural fungicide in control the upas fungus. This research applies the Non factorial complete random design (RAL) with 6 treatments and repetitions. The treatment are C0 (control), C1 (10 mg/ml), C2 (20 mg/ml), C3 (30 mg/ml), C4 (40 mg/ml), C5 (Tridemorf). The observed parameter are the area of jamur colony growth and the number of fungus conidia. The results of research indicates that the area of fungus colony growth between C0 is wider than C1, C2, C3, C4 and C5 and the higher concentration, the wider of fungus colony growth area. While for the number of fungus conidia, the number of conidia between C0 is more than C1, C2, C3, C4, C5 in which the higher on C0 (Control) and the Lower C5 (Calixin) and for Chitosan, the higher concentration, the lower of conidia.

ABSTRAK

Vivi Endriyati “ Uji Efektifitas Chitosan Untuk Mengendalikan Penyakit JamurUpas

( Upasia salmonicolor (B. et Br.) Tjokr,.) Pada Tanaman Karet ( Hevea brasiliensis Muell. Arg.) “ dengan komisi pembimbing Bapak Ir. Mukhtar Iskandar Pinem M. Agr, selaku ketua, Bapak Ir. Kasmal Arifin MSi,

selaku anggota, Bapak Ir. Aidi Daslin Sagala, MS, selaku pembimbing lapangan. Penelitian ini dilaksanakan di Laboratorium Prokteksi Tanaman Balai Penelitian Perkebunan Karet Sungai Putih dari bulan Agustus sampai dengan Nopember 2008. Tujuan Penelitian ini adalah untuk mengetahui efektifitas chitosan terhadap penyakit jamur upas (Upasia salmonicolor (B et Br) Tjokr.,) dan untuk mendapatkan fungisida alami dalam mengendalikan jamur upas. Penelitian menggunakan Racangan Acak Lengkap (RAL) Non Faktorial dengan 6 perlakuan dan 4 ulangan. Perlakuan yang diuji adalah C0 (kontrol), C1 (10mg/ml), C2 (20mg/ml), C3 (30mg/ml), C4 (40mg/ml), C5 (Tridemorf). Parameter yang diamati adalah luas pertumbuhan koloni jamur dan jumlah konidia jamur. Hasil penelitian menunjukkan bahwa luas pertumbuhan koloni jamur antara C0 lebih luas dibandingkan C1,C2,C3,C4 dan C5 dan semakin tinggi konsentrasi perlakuan semakin kecil luas pertumbuhan koloni jamur. Untuk jumlah konidia jamur. Jumlah konidia antara C0 lebih banyak dibandingkan C1,C2,C3,C4,C5, yang paling banyak pada C0 (control) dan terendah C5 (calixin), dan chitosan semakin tinggi konsentrasi semakin sedikit jumlah konidia.

RIWAYAT HIDUP

“ Vivi Endriyati ” dilahirkan di Banyumas pada tanggal 1 januari 1986 dari Ayahanda Zuhardi dan Bunda Sri Murdiati, Penulis merupakan putri pertama dari 3 (tiga) bersaudara.

Pendidikan yang pernah di tempuh penulis adalah tahun 1998 lulus dari SD 1 Takengon Aceh Tengah, tahun 2001 lulus dari SMP 1 Takengon Aceh Tengah, tahun 2004 lulus dari SMU 1 Bebesen Aceh Tengah, dan tahun 2004 diterima sebagai mahasiswa di Departemen Hama dan Penyakit Tumbuhan, Fakultas Pertanian, Universitas Sumatera Utara Medan melalui jalur SPMB.

Kegiatan akademis yang pernah diikuti penulis selama mengikuti perkuliahan adalah tahun 2004-2008 menjadi anggota Komunikasi Muslim HPT (Komus HPT), tahun 2007 menjadi seksi minat dan bakat di Ikatan Mahasiswa Perlindungan Tanaman ( IMAPTAN), tahun 2007-2008 menjadi Dewan di Sanggar Bakti Pramuka USU, tahun 2006 mengikuti seminar “ Peranan Wanita Di Bidang Pemerintahan” di Fakultas Pertanian, tahun 2007 mengikuti pelatihan “ Pertolongan Pertama Pada Kecelakaan” di SAHIVA, tahun 2007 mengikuti pelatihan “ Traditional Scouting” di Sibolangit, tahun 2007 mengikuti lomba Gerak Jalan LKBB Pramuka, tahun 2008 mengikuti lomba gerak jalan santai untuk kampanye Narkoba di sibolangit, tahun 2008 menjadi anggota pembawa bendera pada kegiatan IMTGT, tahun 2008 menjadi anggota TPI untuk UN SMP, tahun 2008 melaksanakan Praktek Kerja Lapangan (PKL) pada tanggal 9 Juni sampai 9 Juli 2008 di PTPN IV Bahbutong, Siantar, dan tahun 2008 melaksanakan penelitian di Balai Penelitian Perkebunan Karet Sungai Putih, kecamatan Galang pada bulan Agustus-Nopember.

KATA PENGANTAR

Puji dan syukur penulis panjatkan kehadirat Allah SWT, karena atas berkat dan rahmat-Nya lah penulis dapat menyelesaikan skripsi ini dengan sebaik-baiknya.

Adapun judul dari skripsi ini adalah “ UJI EFEKTIFITAS CHITOSAN UNTUK MENGENDALIKAN PENYAKIT JAMUR UPAS ( Upasia salmonicolor (B. et Br.) Tjokr,.) PADA TANAMAN KARET ( Hevea brasiliensis Muell. Arg.) “ yang disusun sebagai salah satu syarat untuk dapat

memperoleh gelar sarjana di Fakultas Pertanian Universitas Sumatera Utara, Medan.

Pada kesempatan ini penulis tidak lupa mengucapkan terimakasih kepada Bapak Ir. Mukhtar Iskandar Pinem M. Agr, selaku ketua komisi pembimbing, Bapak Ir. Kasmal Arifin, MSi, selaku anggota komisi pembimbing dan Bapak Ir. Aidi Daslin Sagala, MS, selaku pembimbing lapangan yang telah banyak memberikan saran dan arahan sehingga penulis dapat menyusun skripsi ini dengan baik.

Penulis menyadari bahwa skripsi ini belum sempurna, untuk itu penulis mengharapkan saran dan kritik yang membangun demi kesempurnaan skipsi ini dan semoga skripsi ini bermanfaat bagi pihak-pihak yang membutuhkan.

Akhir kata penulis mengucapkan terima kasih .

Medan, Februari 2008

Penulis.

DAFTAR ISI

Halaman

ABSTRACT ... i

ABSTRAK... ii

RIWAYAT HIDUP ... iii

KATA PENGANTAR ... iv

DAFTAR ISI ... v

DAFTAR TABEL... vii

DAFTAR GAMBAR ... viii

DAFTAR LAMPIRAN ... ix

I.PENDAHULUAN 1.Latar Belakang ... 1

2.Tujuan Penelitian... 3

3.Hipotesis Penelitian... 3

4.Kegunaan Penelitian... 4

II.TINJAUAN PUSTAKA 1.Biologi Penyebab Penyakit ... 5

1.1 Biologi ... 5

1.2 Gejala Serangan... 7

1.3 Perkembangan Penyakit ... 9

1.4 Resistensi klon Karet... 10

1.5 Pengendalian Penyakit ... 11

2.Chitosan... 12

III.BAHAN DAN METODA 1.Tempat dan Waktu Penelitian ... 15

2.Bahan dan Alat ... 15

3.Metode Penelitian... 15

4.Pelaksanaan Penelitian ... 16

4.1 Persiapan Chitosan ... 16

4.2 Isolat Jamur Upas ... 18

4.3 Medium PDA yang Terdapat Senyawa Alami Chitosan... …... 19

4.4 Pelaksanaan inokulasi ... 19

5.Parameter Pengamatan ... 19

5.1 Luas Pertumbuhan Koloni U. salmonicolor... 19

5.2 Perhitungan kerapatan konidia jamur... 21

IV.HASIL DAN PEMBAHASAN 1.Luas Pertumbuhan Koloni U. salmonicolor... 22

2.Perhitungan kerapatan konidia jamur... 26

V.KESIMPULAN DAN SARAN 1.Kesimpulan... 29

2.Saran... 30 DAFTAR PUSTAKA ... 31

DAFTAR TABEL

No. Judul Halaman

1. Uji beda rataan luas pertumbuhan koloni jamur U. salmonicolor... . 22

2. Uji beda rataan jumlah konidia jamur U. salmonicolor ... 26

3. Data luas pertumbuhan koloni jamur U. Salmonicolor... 36

4. Data luas pertumbuhan jamur U. salmonicolor 2 HSI ... 37

5. Data luas pertumbuhan jamur U. salmonicolor 4 HSI ... 39

6. Data luas pertumbuhan jamur U. salmonicolor 6 HSI ... 41

7. Data Perhitungan kerapatan konidia jamur U. Salmonicolor... 43

DAFTAR GAMBAR

No Judul Halaman

1. Konidia Jamur Upasia salmonicolor... 6

2. Himenium dan pada stadium teleomorf ... 7

3. Sporodokium pada stadium anamorf... 7

4. Batang karet yang telah mati ... 8

5. Gejala serangan jamur upas... 9

6. Bubuk chitosan ... 14

7. Foto pertumbuhan luas koloni jamur pada pengamatan hari 2,4, dan 6.. 20

8. Alat planimeter ... 21

9. Histogram pengaruh luas pertumbuhan koloni jamur ... 25

DAFTAR LAMPIRAN

No Judul Halaman

1. Bagan penelitian di laboratorium ... 33

2. Perhitungan kerapatan konidia jamur dengan alat haemocytometer... 34

3.. Data luas pertumbuhan koloni jamur U. salmonicolor... 36

4. Data pengamatan luas pertumbuhan jamur 2 HSI... 37

5. Data pengamatan pertumbuhan jamur 4 HSI ... 39

6. Data pengamatan pertumbuhan jamur 6 HSI ... 41

7. Data perhitungan kerapatan konidia jamur ... 43

8. Data perhitungan kerapan konidia jamur dengan daftar sidik ragam... 44

ABSTRACT

Vivi Endriyati “ Chitosan Effectiveness Test to Conteol the Upas fungus (Upasia salmonicolor (B. et Br.) Tjokr,.) on Rubber Tree ( Hevea brasiliensis Muell. Arg) “under the supervision of conceling team Ir. Mukhtar Iskandar Pinem, M.Agr, as a chairman, Ir. Kasmal Arifin, MSi, as

member, Ir Aidi Daslin Sagala, MS as field supervisor. This research was conducted at Laboratory of Crops Protection of Rubber Plantation Research Center of Sungai Putih since August up to November 2008. The objective of this research is to study the chitosan effectiveness to the upas fungus disease (Upasia salmonicolor (B. et B.) Tjokr.,), and to obtain the natural fungicide in control the upas fungus. This research applies the Non factorial complete random design (RAL) with 6 treatments and repetitions. The treatment are C0 (control), C1 (10 mg/ml), C2 (20 mg/ml), C3 (30 mg/ml), C4 (40 mg/ml), C5 (Tridemorf). The observed parameter are the area of jamur colony growth and the number of fungus conidia. The results of research indicates that the area of fungus colony growth between C0 is wider than C1, C2, C3, C4 and C5 and the higher concentration, the wider of fungus colony growth area. While for the number of fungus conidia, the number of conidia between C0 is more than C1, C2, C3, C4, C5 in which the higher on C0 (Control) and the Lower C5 (Calixin) and for Chitosan, the higher concentration, the lower of conidia.

ABSTRAK

Vivi Endriyati “ Uji Efektifitas Chitosan Untuk Mengendalikan Penyakit JamurUpas

( Upasia salmonicolor (B. et Br.) Tjokr,.) Pada Tanaman Karet ( Hevea brasiliensis Muell. Arg.) “ dengan komisi pembimbing Bapak Ir. Mukhtar Iskandar Pinem M. Agr, selaku ketua, Bapak Ir. Kasmal Arifin MSi,

selaku anggota, Bapak Ir. Aidi Daslin Sagala, MS, selaku pembimbing lapangan. Penelitian ini dilaksanakan di Laboratorium Prokteksi Tanaman Balai Penelitian Perkebunan Karet Sungai Putih dari bulan Agustus sampai dengan Nopember 2008. Tujuan Penelitian ini adalah untuk mengetahui efektifitas chitosan terhadap penyakit jamur upas (Upasia salmonicolor (B et Br) Tjokr.,) dan untuk mendapatkan fungisida alami dalam mengendalikan jamur upas. Penelitian menggunakan Racangan Acak Lengkap (RAL) Non Faktorial dengan 6 perlakuan dan 4 ulangan. Perlakuan yang diuji adalah C0 (kontrol), C1 (10mg/ml), C2 (20mg/ml), C3 (30mg/ml), C4 (40mg/ml), C5 (Tridemorf). Parameter yang diamati adalah luas pertumbuhan koloni jamur dan jumlah konidia jamur. Hasil penelitian menunjukkan bahwa luas pertumbuhan koloni jamur antara C0 lebih luas dibandingkan C1,C2,C3,C4 dan C5 dan semakin tinggi konsentrasi perlakuan semakin kecil luas pertumbuhan koloni jamur. Untuk jumlah konidia jamur. Jumlah konidia antara C0 lebih banyak dibandingkan C1,C2,C3,C4,C5, yang paling banyak pada C0 (control) dan terendah C5 (calixin), dan chitosan semakin tinggi konsentrasi semakin sedikit jumlah konidia.

PENDAHULUAN

1.Latar Belakang

Karet merupakan salah satu komoditi perkebunan penting, baik sebagai sumber pendapatan, kesempatan kerja dan devisa, pendorong pertumbuhan ekonomi sentra-sentra baru di wilayah sekitar perkebunan karet maupun pelestarian lingkungan dan sumberdaya hayati (Suryana, 2005).

Namun sebagai negara dengan luas areal terbesar dan produksi kedua terbesar dunia, Indonesia masih menghadapi beberapa kendala, yaitu rendahnya produktivitas, terutama karet rakyat yang merupakan mayoritas (91%) areal karet nasional dan ragam produk olahan yang masih terbatas, yang didominasi oleh karet remah (crumb rubber) (Anonimous, 2006). Rendahnya produktivitas kebun karet rakyat disebabkan oleh banyaknya areal tua, rusak dan tidak produktif, penggunaan bibit bukan klon unggul, kondisi kebun yang menyerupai hutan serta penyakit dan hama yang menyerang. Oleh karena itu perlu upaya percepatan peremajaan karet rakyat, penanaman klon unggul disertai kultur tekhnis yang memadai dan penanggulangan hama dan penyakit (Sianturi, 1996).

Di dalam budidaya karet, penyakit jamur upas (Pink disease) terutama merugikan karet muda, yang berumur 3-8 tahun. Jamur juga dapat menyerang tanaman yang lebih tua, tetapi kerugian yang ditimbulkannya tidak berarti. Pada karet muda jamur dapat mematikan batang atau cabang yang menyebabkan tajuk kurang berkembang, sehingga tanaman lambat dapat disadap dan hasilnya pun kurang (Semangun, 2000).

Jamur upas terdapat di seluruh daerah tropika, sehingga menjadi masalah di semua negara penanam karet di Asia, Afrika, dan Amerika Selatan. Kerugian yang cukup besar terjadi di Indonesia, Malaysia, Thailand, India, dan Filipina (Wastie,1975). Di Sri Lanka

penyakit kurang merugikan. Sedangkan di Cina dan negara-negara penghasil karet di Afrika dan Amerika Selatan jamur upas bukan penyakit yang penting (Allen,1994 dan Semangun,2000).

Pengendalian jamur upas hanya perlu dilakukan pada musim hujan. Diusahakan agar infeksi dapat diketahui sedini mungkin, sehingga jamur dapat dimatikan dengan fungisida yang efektif sebelum batang atau cabang yang terserang mati, dan untuk mencegah agar jamur tidak berspora, perawatannya dengan melumasi atau menyemprotkan fungisida (Semangun, 2000).

Pelumasan dilakukan memakai kuas dengan memanjat pohon, lebih-lebih jika di kebun terdapat serangan yang meluas, fungisida yang baik untuk mengendalikan jamur upas adalah bubur Bordeaux 1 % (1 kg sulfat tembaga, 1.25 kg kapur tohor, 100 liter air), Tridemorf (Calixin 5%) dalam lateks pekat (60% kadar karet kering) (Semangun, 2000).

Untuk mengurangi bahan kimia yang berbahaya yang ada pada fungisida kimia seperti sulfat tembaga, yang berbahaya pada kesehatan maka digunakan pengendalian secara alami dengan menggunakan fungisida alami

(Wilson et al. 1994; Wilson and El Ghaouth, 1993).

Salah satu bahan alami yang telah direkomendasikan sebagai elicitor resistensi pada produk pasca panen adalah chitosan (Wilson et al.,1994). Yang dihasilkan dari proses deasetilasi chitin cangkang kepiting atau eksokleleton udang (Wilson and Ell Ghaouth,1993). Chitosan melindungi buah dan sayuran melalui dua mekanisme: fisik dan kimiawi. Secara fisik, chitosan membentuk lapisan film yang membungkus permukaan produk dan mengatur pertukaran gas dan kelembaban. Secara kimiawi, chitosan bersifat fungisidal dan merangsang respon resistensi pasca panen pada jaringan tanaman (Wilson et

al.,1994). Aktifitas antifugal dan merangsang ketahanan dari chitosan menjanjikan kemungkinan yang baik untuk pengendalian penyakit tanaman ( Pamekas, 2007).

Sejauh ini belum ada laporan tentang penggunaan chitosan untuk mengendalikan penyakit jamur upas pada tanaman karet. Hanya ada laporan pada tanaman pasca panen pada tanaman cabai (Pamekas, 2007). Untuk itu, sebuah penelitian untuk mengetahui efektifitas penggunaan chitosan dalam pengendalian penyakit jamur upas pada tanaman karet perlu dilakukan. Diharapkan chitosan mampu mengahambat pertumbuhan dan perkembangan penyakit jamur upas pada batang tanaman karet.

2.Tujuan Penelitian

Untuk mengetahui efektifitas chitosan terhadap penyakit jamur upas (Upasia

salmonicolor (B et Br) Tjokr.,) dan untuk mendapatkan fungisida alami dalam

mengendalikan jamur upas.

3.Hipotesis Penelitian

 Penggunaan chitosan yang dicampurkan pada media agar dapat menekan pertumbuhan jamur upas di laboratorium.

 Penggunaan berbagai tingkat konsentrasi chitosan mempengaruhi dalam menghambat pertumbuhan jamur U. salmonicolor pada tanaman karet.

4.Kegunaan Penelitian

 Sebagai bahan informasi bagi peneliti dan pihak yang berkepentingan dalam mengendalikan jamur upas pada tanaman karet.

 Sebagai bahan penelitian skripsi untuk melengkapi persyaratan dalam menempuh ujian sarjana pada fakultas pertanian, Universitas Sumatera Utara.

II. TINJAUAN PUSTAKA

1.Biologi Penyebab Penyakit 1.1 Biologi

Penyakit jamur upas ( Pink disease ) disebabkan oleh jamur

Upasia salmonicolor (B et Br.) Tjokr., meskipun sampai sekarang masih banyak dikenal

dengan nama Corticium salmonicolor (B. et Br). Oleh Burdsall (1985) jamur juga disebut

Erythricium salmonicolor (B et Br.) Burdsall. (Tjokrosoedarmo,1983 ).

Jamur ini di klasifikasikan sebagai berikut: Kingdom : Fungi

Phylum : Basidiomycota Kelas : Basidiomycetes Ordo : Stereales Famili : Corticiaceae Genus : Upasia

Spesies : Upasia salmonicolor (B et Br.) Tjokr,.

Morfologi pertumbuhan patogen pada tanaman mengalami 4 stadia, yakni stadium membenang, stadium membintil, stadium kortisium, dan stadium nekator. Stadium membenang merupakan perkembangan awal patogen yakni pada permukaan ranting atau cabang tanaman terlihat benang-benang halus. Perkembangan selanjutnya pada permukaan ranting atau cabang tanaman terlihat adanya bintil-bintil putih. Lapisan miselium yang tipis berwarna merah jambu merupakan ciri stadium kortisium. Perkembangan selanjutnya adalah stadium nekator atau teleomorf(III), yaitu terbentuk bintil merah pada kayu yang umumnya

telah mati karena serangan cendawan ini. Bintil-bintil tersebut merupakan tubuh buah cendawan (Riyaldi, 2004).

Pada Stadium teleomorf (III) yang berwarna merah jambu, jamur upas membentuk lapisan himenium yang mengandung banyak basidium berbentuk gada. Basidiospora tidak berwarna, berbentuk buah per (pyriform) dengan ujung runcing, 9-12 x 6-7 μm, sterigma panjang 4-5 μm. Pada bagian cabang yang tidak terlindung, kebanyakan pada sisi atas,

stadium rumah laba-laba (I) akan berkembang menjadi stadium bongkol (IV), yang akhirnya

membentuk sporodokium merah, disebut stadium anamorf (V). Sporodokium tadi membentuk spora yang lain, yaitu konidium (Semangun, 2000). Sporodokium pada stadium

anamorf (V) berwarna merah bata sampai merah tua, 0.5-1.5 mm, menghasilkan konidium

berbentuk jorong tidak teratur, dan ukuranya tidak tertentu (Semangun, 2000).

Stadium anamorf jamur upas ini dahulu dikira jamur lain yang diberi nama tersendiri, yaitu Necator decretus Mass (Semangun, 2000).

Gambar 1. Jamur Upasia Salmonicolor (B.et Br) Tjokr. (Sumber : Foto langsung)

Konidia berkecanbah

Gambar 2.a. (A) Himenium pada stadium teleomorf. (B) Sporodokium pada stadium anamorf. (C) konidia yang berkecambah.

Sumber : a. Tjokrosoedarmo (1983) dalam Semangun (2000)

1.2 Gejala Serangan

Jamur upas timbul pada batang atau cabang yang kulitnya sudah berwarna cokelat, tetapi belum membentuk lapisan gabus yang tebal. Umumnya jamur mulai berkembang dari pangkal cabang atau sisi bawah cabang, karena disini keadaannya lebih lembab ketimbang di bagian lain (Semangun, 2000).

Pada bagian yang terserang mula-mula jamur membentuk miselium tipis seperti perak atau sutera. Stadium ini disebut stadium rumah laba-laba (I): pada waktu ini jamur belum masuk ke dalam kulit. Pada bagian yang terlindung, sebelum masuk ke dalam jaringan, jamur membentuk gumpalan-gumpalan hifa di depan lentisel: stadium ini disebut

stadium bongkol semu (II), setelah itu jamur membentuk kerak merah jambu (pink) atau

berwarna seperti ikan salem (salmon), stadium ini disebut stadium teleomorf (III), kulit dibawah kerak merah jambu sudah membusuk. Pembusukan kulit dan kayu yang meluas sering mengakibatkan kematian. Pada stadium ini jamur membentuk banyak basidium yang menghasilkan basidiospora (Riyaldi, 2004).

A B

Gambar 3. (A) Batang karet yang mati terserang jamur. (B) Batang karet yang terlihat gejala

Sumber : Tjokrosoedarmo (1983) dalam Semangun (2000)

Kulit yang terinfeksi jamur mengeluarkan lateks yang meleleh, yang setelah mengering tampak seperti garis-garis hitam. Ini merupakan salah satu tanda yang mudah terlihat (Semangun, 2000).

Pada tingkat yang lanjut daun-daun pada batang atau cabang yang sakit layu dan mengering. Mata-mata tidur di bawah bagian yang terserang berkembang menjadi tunas (Semangun, 2000).

Gambar 4. (A) Gejala serangan jamur upas,batang yang telah mati, (B) Cabang dan daun yang layu yang terkena jamur upas Sumber : Hohn dan Litsch (1907).

1.3 Perkembangan Penyakit Iklim

Jamur upas dibantu kelembapan tinggi. Kebun yang mempunyai curah hujan tinggi mendapat banyak gangguan penyakit ini. Demikian pula kebun yang lembab karena jarak tanam yang terlalu rapat, terletak di lembah, di dekat rawa atau persawahan, atau yang tanaman penutup tanahnya tidak terpelihara (Semangun, 2000).

Kondisi iklim yang sesuai pada saat terjadinya infeksi sangat menentukan terjadinya epidemik. Kondisi lingkungan dengan kelembaban 96%-100% atau adanya titik air, suhu 28-30º C dan cahaya terang biasa ataupun gelap adalah kondisi yang sangat sesuai dengan perkecambahan konidia U. salmonicolor. Dan serangan akan terjadi bila kondisi iklim atau cuaca sangat mendukung yaitu cuaca yang lembab atau mendung dengan curah hujan yang relatif tidak terlalu tinggi dan merata sepanjang hari (Situmorang, 2004).

Ketinggian Tempat

Kebun yang terletak pada tempat yang lebih tinggi dari 300 m dpl mendapat serangan jamur yang lebih berat, dibandingkan dengan kebun–kebun yang terletak di tempat yang lebih rendah. Hal ini karena Jamur upas kurang terdapat di kebun karet di tanah alluvial dekat pantai yang mempunyai kelembapan rendah. Mungkin ini disebabkan karena adanya pertukaran udara yang baik (Semangun, 2000).

Faktor kesuburan tanah dan tempat

Kebun-kebun yang terdapat pada lahan yang kurang subur atau tanpa diberi pupuk sehingga kondisi tanaman menjadi lemah (Situmorang,2004).

Di daerah dekat persawahan atau rawa dan sungai merupakan daerah yang selalu lembab. Penyakit jamur upas biasanya berjangkit pada musim hujan atau pada keadaan yang sangat lembab atau berkabut (Semangun, 2000).

1.4 Resistensi Klon Karet

Klon-klon karet mempunyai ketahanan yang berbeda terhadap jamur upas. Mungkin ini disebabkan karena perbedaan morfologi klon, yang menyebabkan terjadinya perbedaan kelembapan dalam kebun, dan karena adanya perbedaan dalam ketebalan jaringan kulitnya. Di Sumatera Utara klon PR107, AVROS 1734, dan RRIM 600 adalah rentan. GT 1 dan AVROS 2037 mempunyai ketahanan sedang (Basuki,1982 dan Semangun, 2000).

Penyakit jamur upas banyak dijumpai pada klon-klon yang bertajuk rindang, dan pada tanaman muda berumur 4-12 tahun yang ditanam pada areal yang selalu lembap (Semangun, 2000).

1.5 Pengendalian Penyakit

Pengendalian jamur upas dapat dilakukan dengan klon yang peka seperti GT1, PR 255, PR 300, dan PR 107 sebaiknya tidak ditanam di daerah rawan upas (curah hujan dan

kelembapan tinggi). Di daerah ini hendaknya ditanami klon yang tahan, misalnya AVROS 2037. Untuk mencegah terjadinya kelembaban yang tinggi sebaiknya jarak tanam dibuat tidak terlalu rapat (Pinem dan Yusuf, 2004).

Pengobatan harus dilaksanakan seawal mungkin, yaitu pada saat terlihat gejala awal atau tingkat sarang laba-laba. Pengobatan untuk tanaman sakit dilakukan dengan melumaskan fungisida tridemorf (Calixin 5 %) dalam lateks pekat (60 % kadar karet kering). Calixin RM (ready mixed), Dowco 262 atau bubur bordo pada bagian yang terkena serangan hingga 30 cm ke atas dan kebawahnya. Namun, pelumas ini juga tergantung pada berat ringannya serangan. Bubur bordo tidak dibenarkan diberikan pada tanaman yang sudah disadap karena bisa merusak mutu lateks (Pinem dan Yusuf, 2004). Fungisida lain yang dapat dipakai untuk jamur upas adalah klorotalonil dan thiram. Klorotalonil 3 % b.a. dapat disemprotkan setiap dua minggu. Klorotalonil dan thiram dapat juga dicampur dengan bitumen (ter) atau bahan lain yang dipakai sebagai pelumas (Allen, 1994).

Karena pengobatan dengan cara pelumasan sangat lambat, maka ditempuh cara pengobatan dengan penyemprotan. Alat semprot yang digunakan harus bertangkai panjang (Pinem dan Yusuf, 2004).

Bila percabangan sudah terkena serangan lanjut (tingkat kortisium atau nekator), maka pengendalianya dilakukan dengan cara mengupas kulit yang busuk. Kemudian, kulit batang yang tersisa dilumaskan dengan Calixin RM secukupnya (Pinem

dan Yusuf, 2004).

Percabangan yang mati sebaiknya dipotong pada musim kering saat penyakit ini tidak aktif. Bekas potongan diolesi izal 5 % kemudian ditutup ter. Sedangkan potongan-potongan cabang disingkirkan dan dimusnahkan (Pinem dan Yusuf, 2004).

Untuk mengurangi bahan kimia yang berbahaya yang ada pada fungisida kimia seperti sulfat tembaga, yang berbahaya pada kesehatan maka digunakan pengendalian secara alami dengan menggunakan fungisida alami salah satunya yang ingin dicoba adalah chitosan, salah satu bahan alami yang telah direkomendasikan sebagai elicitor resistensi pada produk pasca panen (Wilson et al., 1994). Yang dihasilkan dari proses deasetilasi chitin cangkang kepiting atau eksokleleton udang (Wilson and Ell Ghaouth, 1993). Chitosan melindungi buah dan sayuran melalui dua mekanisme: fisik dan kimiawi. Secara fisik, chitosan membentuk lapisan film yang membungkus permukaan produk dan mengatur pertukaran gas dan kelembaban. Secara kimiawi, chitosan bersifat fungisidal dan merangsang respon resistensi pasca panen pada jaringan tanaman aktifitas antifugal dan merangsang ketahanan dari chitosan menjanjikan kemungkinan yang baik untuk pengendalian penyakit tanaman (Pamekas, 2007).

2.Chitosan

chitosan pertama kali ditemukan oleh ilmuwan Perancis, Ojier, pada tahun 1823. Ojier meneliti chitosan hasil ekstrak kerak binatang berkulit keras, seperti udang, kepiting,

dan serangga (Luthfi, 2006). chitosan merupakan

produk turunan dari polymer chitin, yakni produk limbah dari pengolahan industri perikanan, khususnya udang dan rajungan. Limbah kepala udang mencapai 35-50 persen dari total berat udang. chitosan, mempunyai bentuk mirip dengan selulosa, dan bedanya terletak pada gugus rantai C-2 (Bima, 2006).

Karakteristik fisiko-kimia chitosan berwarna putih dan berbentuk kristal, dapat larut dalam larutan asam organik, tetapi tidak larut dalam pelarut organik lainnya. Pelarut chitosan yang baik adalah asam asetat. chitosan mempunyai muatan positif yang kuat, yang

dapat mengikat muatan negatif dari senyawa lain, gugus amino menjadikan chitosan bermuatan positif kuat dapat mengikat lemak dan protein, serta tidak mudah mengalami degradasi secara biologis dan tidak beracun (Bima, 2006).

Chitosan mengandung enzim β-1.3 glukanase yang dapat menyebabkan penurunan jumlah kitin pada dinding hifa cendawan sehingga dapat mengurangi pertumbuhan koloni jamur (El Ghaouth et al.,1992).

Proses pembuatan chitosan pertama-tama kulit udang atau kepiting dicuci dengan larutan alkali encer untuk menghilangkan protein (deproteinisasi). Selanjutnya bahan dicuci dengan larutan asam hidroklorik encer untuk menghilangkan kerak kapur (demineralisasi). Proses deproteinisasi dan demineralisasi usai, yang tersisa adalah zat kerak (crust) (Bima, 2006).

Chitosan ternyata digunakan untuk kesehatan untuk penyakit diabetes dan hipertensi. Ternyata di dalam zat kerak udang terdapat unsur butylosar yang bermanfaat bagi tubuh manusia. Butylosar yang telah didapatkan itu hanya larut dalam asam encer dan cairan tubuh manusia. Dengan demikian, butylosar dapat diserap oleh tubuh, zat ini juga mempunyai muatan positif yang kuat, dan dapat mengikat muatan negatif dari senyawa lain. Selain itu, zat ini tidak mudah mengalami degradasi secara biologis dan tidak beracun (Linawati, 2008).

Pada penyakit di tanaman chitosan bersifat fungisidal dan merangsang resistensi dari jaringan tanaman. Aktifitas antifugal dan rangsangan ketahanan dari chitosan menjanjikan kemungkinan yang baik untuk perlindungan tanaman (Pamekas, 2007).

Fungsi fungisidal pada chitosan yang ada pada ekstrak cangkang udang sebagaimana yang pernah dilaporkan oleh El Ghaouth et al. (1992), pada pathogen R. stolonifer dan B.

dinding sel inang serta menyebabkan kerusakan sel cendawan. Pemeberian chitosan akan menghambat pertumbuhan hifa cendawan patogen dengan adanya aktifitas dari enzim-enzim

chitinase, glukanase, serta senyawa antifugal yang lain yang didukung oleh chitosan

(Hadwiger et al.,1989) Chitosan juga

dijadikan pengawet makanan. Mekanisme yang dilakukan yaitu chitosan ini melapisi bahan yang diawetkan (menyelubungi), sehingga bahan itu terhindar dari kontaminasi luar (Anonimous, 2006)

Gambar 5. Bubuk Chitosan

(Sumber : Foto langsung)

Bubuk Chitosan

III.BAHAN DAN METODE

1.Tempat dan Waktu Penelitian

Penelitian dilakukan di laboraturium Proteksi Tanaman Balai Penelitian Tanaman Karet Sungai Putih, dengan ketinggian ± 80 meter dari permukaan laut. Penelitian dilaksanakan pada tgl 12 Agustus sampai dengan 11 Nopember 2008.

2.Bahan dan Alat

Adapun bahan yang digunakan adalah Isolat U. salmonicolor , bahan-bahan kimia

seperti alkohol 96 %, chlorox 0.2 %, aquadest steril, PDA (Potato Dektrose Agar), kulit udang , air, HCl 1 N, NaOH 3,5 % dan 50 %, Tridemorf, streptomycin.

Adapun alat yang digunakan adalah autoclave untuk sterilisasi alat, becker glass, gelas ukur, gunting, erlenmeyer, deck glass, blender, hand spayer, hot plate, haemocytometer, incubator, panci, timbangan, kompor, oven, lampu bunsen, mikroskop, cork borer (pelubang gabus), jarum inokulasi, batang pengaduk, saringan 40-60 mesh, cawan petri 9 cm, parapilon, alumunium foil, karet, mikropipet 100 µl, kotak penyinaran sinar ultra violet, stirrer, sheker, kain muslim, planimeter, penggaris.

3.Metode Penelitian

Penelitian ini dilakukan dengan menggunakan Rancangan Acak Lengkap (RAL) Non faktorial yang terdiri dari 6 perlakuan dan 4 ulangan.

Perlakuan yang diuji adalah :

C0 = Kontrol (tanpa perlakuan)

C1 = Chitosan dengan konsentrasi 10 mg/ml aquadest

C3 = Chitosan dengan konsentrasi 30 mg/ml aquadest

C4 = Chitosan dengan konsentarsi 40 mg/ml aquadest

C5 = Tridemorf (Calixin) 750 EC 5 %, dengan 0.25 ml/ Cawan Petri.

Jumlah ulangan adalah :

t (r - 1) ≥ 15

6 (r - 1) ≥ 15

6 r -6 ≥ 15

6 r ≥ 21

r ≥ 4

r = 24

Jumlah perlakukan = 6

Jumlah ulangan = 4

Jumlah keseluruhannya = 24

4.Pelaksanaan Penelitian 4.1 Persiapan Chitosan

Chitosan dibuat berdasarkan metode yang digunakan oleh Prasetiyo dan Yusuf (2005) yaitu :

a. Demineralisasi

Kulit udang dicuci dengan air mengalir sampai air cuciannya menjadi bening, kemudian dikeringkan di bawah sinar matahari. Selanjutnya kulit udang tadi dicuci menggunakan air panas sebanyak 2 kali sambil diaduk, kemudian direbus selama 10 menit. Setelah direbus, kulit udang ditiriskan dan dikeringkan. Kulit udang yang sudah kering digiling sampai menjadi serbuk berukuran 40-60 mesh, diketahui beratnya 350 gr.

Setelah itu, serbuk kulit udang dicampur dengan asam klorida (HCL) 1 N dengan perbandingan 10 : 1, Dengan konsentrasi HCL yang diketahui 37 %, BJ HCL 1.19, Mr HCL 36.5, maka dihitung 1N HCL:

Diketahui Konsentrasi HCl = 37 % BJ HCl = 1.19 Mr HCl = 36.5 Ditanya N HCl...?

Jawab

N = % x BJ x 10 Mr

N = 37 % x 1.19 x 10 36.5

N = 12.06

Perbandingan 10 : 1 = 3500 : 350

Diketahui 1 N = 12.06 jadi 3500/12.06 = 290 ml HCl yang digunakan

Suspensi tersebut diaduk secara merata selama 1 jam, lalu dipanaskan pada suhu 90

0

C selama 1 jam. Residu berupa padatan dicuci dengan air sampai pH netral. Selanjutnya,

residu padatan ini dikeringkan dalam oven pada suhu 80 0C selama 24 jam atau dijemur

sampai kering. Ditimbang 250 gr hasilnya.

b. Deproteinasi

Kulit udang yang telah dimineralisasi (residu padatan yang sudah kering) dicampur dengan larutan NaOH 3.5 % dengan perbandingan pelarut dan kulit udang sebesar (6 : 1) . Diketahui NaOH 3.5 %

BJ NaOH = 40 gr/mol

Ditanya : gram dalam larutan ?

Jawab : 40 gr/mol x 3.5 = 1.4 gr dlm 1 liter. 100

6 : 1 1500 ml : 250 gr 1.5 L

1.4 gr x 1.5 L = 2.1 gr

Suspensi tadi diaduk secara merata selam 1 jam, lalu dipanaskan pada suhu 90 0C

selama 1 jam. Setelah itu, larutan disaring dan didinginkan hingga diperoleh residu padatan,

residu padatan ini dicuci dengan air sampai pH netral dan dikeringkan pada suhu 80 0C

selama 24 jam atau dijemur sampai kering.

c. Deasetilisasi Khitin Menjadi Chitosan

chitosan dibuat dengan menambahkan NaOH (50 %) dengan perbandingan 20 : 1 (pelarut berbanding khitin). Suspensi tersebut diaduk selama 1 jam, lalu dipanaskan selama

90 menit pada suhu 120-140 0C. larutan tadi disaring hingga diperoleh residu berupa

padatan. Residu padatan tadi dicuci dengan air sampai pH netral, lalu dikeringkan dalam

oven pada suhu 70 0C selama 24 jam atau dijemur sampai kering.

4.2 Isolat Jamur upas

Isolat U. salmonicolor diperoleh dari isolasi langsung tanaman karet yang terserang

pathogen jamur upas, ditumbuhkan dalam medium PDA, hingga jadi isolat murni. Kemudian isolat murni diperbanyak dengan cara mengabil biakan murni menggunakan cork borer dan jarum inokulasi diletakkan ditengah PDA hingga berumur 7 hari.

4.3 Medium PDA yang terdapat senyawa alami chitosan dan tridemorf.

Untuk perlakuan dilakukan dengan cara mengabil senyawa alami chitosan sesuai dengan konsentrasi 10 mg/ml, 20 mg/ml, 30 mg/ml, dan 40 mg/ml menggunakan micropipet

100 цL, setiap perlakuan masing-masing sebanyak 400 цL/cawan petri, dan tridemorf 0.25

dituangkan streptomycin sebanyak 0.01 g. Kemudian PDA cair (suhu 40º C) sebanyak 15

ml/cawan petri, dan cawan petri digoyang-goyang agar chitosan tercampur rata dengan PDA. Campuran PDA, streptomycin dan chitosan dibiarkan beku hingga 2 hari.

4.4 Pelaksanaan Inokulasi

Setelah itu pada medium PDA tersebut ditumbuhkan cendawan U.

salmonicolor yang berasal dari biakan murni U. salmonicolor berumur 7 hari dengan

menggunakan cork borer dan jarum inokulasi. Setelah semua perlakuan selasai, cawan petri penutup antara bagian atas dan bawah diberi parapilon agar tidak terjadi kontaminasi, kemudian diinkubasikan dalam incubator suhu 26º C selama 7 hari kemudian.

5.Parameter Pengamatan

5.1 Luas Pertumbuhan Koloni U. salmonicolor

Pengukuran pertumbuhan jamur U.salmonicolor dilakukan dengan:

a. Diamati pertumbuhan luas koloni jamur U. salmonicolor secara periodik pada

perlakuan kontrol, perlakuan chitosan, dan fungisida dosis anjuran. Diukur pada hari ke 2, 4, dan ke 6.

Foto hari ke 2

Foto hari ke 4

Foto hari ke 6

Gambar 6. Foto pertumbuhan luas koloni Jamur pada pengamatan hari 2,4, dan 6 (Sumber : Foto langsung).

b. Kemudian digambar di cawan Petri menggunakan spidol permanent pertumbuhan

jamur U.salmonicolor pada hari ke 2, 4, dan ke 6

c. Hasilnya di gambar ke kertas minyak transparan .

d. Setelah itu dihitung luas pertumbuhan koloni jamur menggunakan alat planimeter.

Gambar 7. Alat Planimeter

(Sumber : Foto langsung)

5.2 Perhitungan Kerapatan konidia Jamur

Perhitungan kerapatan konidia jamur menggunakan alat Haemocytometer. Penggunaan alat ini dijelaskan pada lampiran ke 2.

IV.HASIL DAN PEMBAHASAN

1.Luas pertumbuhan koloni jamur U.salmonicolor.

Data pengamatan luas pertumbuhan koloni jamur U.salmonicolor dapat ilihat pada

lampiran 4 sampai dengan lampiran 7. Dari hasil analisa sidik ragam dapat dilihat bahwa perlakuan dengan pemberian chitosan kurang efektif pada setiap perlakuan kecuali berbanding dengan perlakuan kontrol, dan perlakaun fungisida pada media PDA

berpengaruh sangat nyata dalam menghambat pertumbuhan diameter koloni jamur U.

salmonicolor. Untuk mengetahui mana perlakuan yang berbeda sangat nyata dilakukan Uji

Jarak Duncan (UJD). Hasilnya dapat dilihat pada tabel 1.

Tabel 1. Uji Beda Rataan Luas Pertumbuhan Koloni Jamur U. salmonicolor pada Pengamatan hari ke 2, ke 4, dan ke 6 HSI.

Keterangan : Angka yang diikuti oleh huruf yang sama pada kolom yang sama tidak berbeda nyata pada taraf 0.01 menurut Uji jarak Duncan.

HSI : Hari setelah inokulasi.

Dari tabel 1 dapat dilihat bahwa pada pengamatan 2 HSI perlakuan

kontrol yang luasnya 8.88 cm2, tidak berbeda nyata dengan perlakuan chitosan 10 mg/ml

aquadest yang luasnya 8.75 cm2, dan chitosan 20 mg/ml aquadest yang luasnya 8.60 cm2.

Perlakuan Luas Pertumbuhan Jamur (cm2)

2HSI 4HSI 6HSI

Kontrol 8.88 A 42.83 A 59.33 A

10 mg/ml aquadest 8.75 A 38.38 B 52.78 B

20 mg/ml aquadest 8.60 AB 35,15 B 52.05 B

30 mg/ml aquadest 7.88 B 34,55 B 51.03 BC

40 mg/ml aquadest 6.43 C 30.03 C 50.18 C

Tetapi berbeda sangat nyata dengan chitosan 30 mg/ml aquadest yang luasnya 7.88 cm2.

chitosan 40 mg/ml aquadest luasnya 6.43 cm2, dan Tridemorf 0.25 ml luasnya 3.30 cm2.

Perlakuan chitosan 20 mg/ml aquadest tidak berbeda nyata dengan chitosan 30 mg/ml aquadest tetapi berbeda nyata dengan chitosan 40 mg/ml aquadest dan Tridemorf 0.25 ml. Perlakuan chitosan 30 mg/ml aquadest berbeda nyata dengan chitosan 40 mg/ml aquadest dan Tridemorf 0.25 ml, dan perlakuan chitosan 40 mg/ml aquadest berbeda sangat nyata dengan Tridemorf 0.25 ml. Pada pengamatan 4 HSI perlakuan kontrol yang luas

konidianya 42.83 cm2, berbeda sangat nyata dengan chotosan 10 mg/ml aquadest yang

lusnya 38.38 cm2, chitosan 20 mg/ml aquadest luasnya 35.15 cm2, chitosan 30 mg/ml

aquadest luasnya 34.55 cm2, chitosan 40 mg/ml aquadest luasnya 30.03 cm2, dan Tridemorf

0.25 ml luasnya 7.73 cm2. Kemudian chitosan 10 mg/ml aquadest tidak berbeda nyata

dengan chitosan 20 mg/ml aquadest, dan chitosan 30 mg/ml aquadest, tetapi berbeda sangat nyata dengan chitosan 40 mg/ml aquadest dan Tridemorf 0.25 mg/ml, dan chitosan 40 mg/ml aquadest berbeda sangat nyata dengan Tridemorf 0.25 ml. Pada pengamatan 6 HSI,

perlakuan kontrol yang luasnya 59.33 cm2 ,berbeda sangat nyata dengan chitosan 10 mg/ml

aquadest luasnya 52.78 cm2, chitosan 20 mg/ml aquadest luasnya 52.05 cm2, chitosan 30

mg/ml aquadest luasnya 51.03 cm2, chitosan 40 mg/ml aquadest 50.18 cm2, dan Tridemorf

0.25 ml luasnya 13.28 cm2. Kemudian chitosan 10 mg/ml aquadest tidak berbeda nyata

dengan chitosan 20 mg/ml aquadest dan chitosan 30 mg/ml aquadest, tetapi berbeda sangat nyata dengan chitosan 40 mg/ml aquadest dan Tridemorf 0.25 ml, dan chitosan 30 mg/ml aquadest tidak berbeda nyata dengan chitosan 40 mg/ml aquadest tetapi berbeda nyata dengan Tridemorf 0.25 ml, dan chitosan 40 mg/ml aquadest berbeda sangat nyata dengan Tridemorf 0.25 ml.

Dari tabel 1 diketahui bahwa pemberian chitosan pada PDA tidak berpengaruh nyata pada pengamatan 2, 4, dan 6 hari pada setiap perlakuan kecuali berbanding dengan perlakuan kontrol. Pada setiap perlakuan tidak berbeda nyata yaitu pada perlakuan 10 mg/ml aquadest, 20 mg/ml aquadest, 30 mg/ml aquadest hasilnya tidak berbeda nyata, pada perlakuan 40 mg/ml aquadest terdapat pengahambatan.

Hasil penelitian ini menegaskan bahwa memang adanya fungsi fungisidal pada chitosan yang ada pada ekstrak cangkang udang sebagaimana yang pernah dilaporkan oleh El Ghaouth et al. (1992), pada patogen R. stolonifer dan B. cinerea, dengan

menghambat proliferasi B. cinerea, mengurangi degradasi komponen dinding sel inang serta

menyebabkan kerusakan sel cendawan. Tetapi pada penelitian yang saya lakukan perbedanya kurang efektif pada setiap perlakuan, bila dibandingkan perlakuan kontrol

memang terdapat penghambatan, ini disebabkan chitosan mengandung enzim β-1.3

glukanase yang dapat menurunkan jumlah kitin pada dinding hifa cendawan sehingga dapat mengurangi pertumbuhan koloni jamur karena chitosan sifatnya menghambat sehingga pertumbuhan koloni jamur tetap tumbuh hingga memenuhi cawan petri dan hanya mengurangi pertumbuhanya.

Adapun pengaruh luas pertumbuhan koloni jamur terhadap pemberian chitosan dapat dilihat pada gambar 8 histogram berikut ini.

36

Gambar 9. Pengaruh Luas Pertumbuhan Koloni Jamur U. salmonicolor Terhadap Pemberian Chitosan Pada Pengamatan 2 HSI, 4 HSI, dan 6 HSI

Dari gambar histogram diatas dapat dilihat bahwa dari pengamatan yang paling tinggi luas pertumbuhan koloni jamur adalah pada pengamatan 6 HSI dan untuk luas pertumbuhan koloni yang terendah terdapat pada pengamatan 2 HSI.

Berdasarkan pengamatan histogram diatas juga dilihat pertumbuhan jamur setiap harinya terus tumbuh, namun terdapat perbedaan pertumbuhan jamur yang diberi perlakuan dengan chitosan dan fungisida, tidak sama dengan pertumbuhan kontrol.

Dari gambar histogram juga dilihat Perlakuan dengan chitosan sesuai konsentrasi terdapat perbedaan pertumbuhan koloni jamur, tetapi tidak begitu besar. Bila dibandingkan dengan perlakuan kontrol dan fungisida terdapat perbedaan yang besar.

2.Perhitungan Kerapatan Konidia Jamur U. salmonicolor.

Dari hasil perhitungan kerapatan konidia jamur U. salmonicolor dan analisis sidik

ragamnya dapat dilihat pada lampiran 8. Hasil analisa sidik ragam menunjukkan pengaruh pemberian chitosan dan fungisida terhadap jumlah konidia jamur berpengaruh sangat nyata, tetapi setiap perlakuan dengan konsentrasi tidak menunjukkan pengaruh yang nyata. Hasilnya dapat dilihat pada tabel 2.

8.88 42.83 8.75 38.38 52.78 8.6 35.15 52.05 7.88 34.55 51.03 6.43 30.03 50.18 3.3 7.73 13.28 0 10 20 30 40 50

C0 C1 C2 C3 C4 C5

2 HS I 4 HS I 6 HS I

Tabel 2. Uji Beda Rataan Perhitungan Jumlah Kerapatan Konidia Jamur U. salmonicolor dengan Menggunakan Alat Haemocytometer.

Perlakuan

Perhitungan kerapatan konidia jamur

Kontrol 15.3 x 106 A

Chitosan 10 mg/ml aquadest 10.25 x 106 B

Chitosan 20 mg/ml aquadest 10.00 x 106 B

Chitosan 30 mg/ml aquadest 9.88 x 106 B

Chitosan 40 mg/ml aquadest 9.63 x 106 B

Tridemorf 0.25 ml 6.13 x 106 C

Keterangan:Angka yang diikuti huruf yang sama pada kolom yang sama pada kolom yang sama tidak berbeda nyata pada taraf 0.01

Dari tabel 2 diatas dapat dilihat bahwa jumlah konidia yang paling tinggi yaitu pada

perlakuan kontrol ( 15.3 x 106) hal ini karena tanpa perlakuan. Dan yang paling terendah

dengan perlakuan fungisida (6.13 x 106) . Perlakuan kontrol ( 15.3 x 106) berbeda sangat

nyata dengan perlakuan chitosan 10 mg/ml aquadest ( 10.25 x106), chitosan 20 mg/ml

aquadest ( 10 x 106), chitosan 30 mg/ml aquadest (9.88 x 106), chitosan 40 mg/ml aquadest

(9.63 x 106), dan tridemorf 0.25 ml (6.13 x 106). Tetapi chitosan 10 mg/ml aquadest ( 10.25

x106), chitosan 20 mg/ml aquadest ( 10 x 106) , chitosan 30 mg/ml aquadest (9.88 x 106),

chitosan 40 mg/ml aquadest (9.63 x 106) , tidak berbeda nyata. Tetapi berbeda sangat nyata

dengan tridemorf (6.13 x 106).

Pada setiap perlakuan chitosan untuk jumlah konidia jamur tidak berbeda nyata, kecuali perlakuan kontrol yang berbeda nyata, chitosan dengan dengan setiap perlakuan kurang efektif.

Adapun pengaruh perlakuan chitosan dan fungisida terhadap jumlah konidia jamur

Gambar 10.Pengaruh Perlakuan Chitosan dan Fungisida Terhadap Jumlah Konidia Jamur U. salmonicolor .

Dari gambar histogram dilihat bahwa jumlah konidia yang paling tertinggi adalah

perlakuan kontrol yaitu sebasar 15.3 x 106 dan yang paling terendah pada perlakuan

fungisida yaitu sebesar 6.13 x 106 . Dilihat juga semakin tinggi konsentrasi chitosan yang

diberikan semakin sedikit jumlah konidianya walaupun tidak berbeda nyata. Dan chitosan dapat mengurangi jumlah konidianya.

KESIMPULAN DAN SARAN

1.Kesimpulan 15.3

10.25 ₁₀

9.88 _9.63

6.13

0 2 4 6 8 10 12 14 16

Perlakuan

Perlakuan 15.3 10.25 10 9.88 9.63 6.13

1. Pada pengamatan luas koloni jamur U. salmonicolor perlakuan chitosan tidak berpengaruh nyata dengan tiap perlakuan tetapi berpengaruh terhadap kontrol, dan perlakuan fungisida berpengaruh nyata.

2. Dari hasil pada semua pengamatan luas pertumbuhan koloni jamur U.

salmonicolor pada 2 HSI yang tertinggi pada perlakuan kontrol (8.88 cm2 ), yang

terendah pada perlakuan fungisida tridemorf (3.30 cm2), pada 4 HSI yang

tertinggi pada perlakuan kontrol (42.82 cm2), yang terendah pada perlakuan

fungisida tridemorf (7.73 cm2), dan pada 6 HSI yang tertinggi pada perlakuan kontrol

(59.33 cm2), yang terendah pada perlakuan fungisida tridemorf (13.28 cm2).

3. Dari perhitungan jumlah konidia berpengaruh sangat nyata terhadap perlakuan

chitosan dan fungisida tridemorf. Yang paling tinggi jumlah konidia pada

perlakuan kontrol yaitu sebesar (15.3 x 106), dan yang paling terendah pada

perlakuan fungisida tridemorf yaitu sebesar (6.13 x 106).

4. Dari pengamatan ini chitosan kurang efektif menghambat pertumbuhan konidia

jamur dan jumlah konidia pada setiap konsentrasi tetapi dapat mengurangi luas permukaan koloni pertumbuhan dan megurangi jumlah konidia.

2.Saran

Perlu dilakukan penelitian lanjutan mengenai mekanisme kerja dari chitosan dalam ekstrak cangkang udang, meliputi reaksi fisiologis, kimiawi, anatomis, dan organoleptik.

DAFTAR PUSTAKA

______________. Haemocytometer For Quantification.Departement of Plant Pathology

University of Hawaii at Hilo, Hawaii Available. ttp://www.ilpi.org/infoserywebpub/fulldocs.

_______________. Karet Merupakan Salah Satu Komoditi Perkebunan Penting,Badan

Penelitian dan Pengembangan Pertanian, Jakarta.

http:/

______________. Chitosan Sebagai Pengawet Makanan, Ciptapangan, Jakarta.

http:/

Allen, P. W. 1994. Indentification and Treatment of Disease of Havea Brasiliensis,

Internet. Rubb.Res.Dev.Board (IRRDB). Hertford.UK

Basuki, 1967. Pengujian Efektifitas Fungisida Terhadap Mouldy Rot. BPU-PPN

Karet,Jakarta.

Bima, 2006, Karakteristik Chitosan, Institut Pertanian Bogor, Jakarta.

El Ghaouth.A.,J Arul, J.Granier, and Asselin. 1992a. Antifungal Activity of Chitosan On

Two Postharvest pathogens of strawberry fruits. Phytopathology.

El Ghaouth. A,J Arul, A. Asselin,and N. Benhamou.1992b. Antifungal activity of chitosan

on two postharvest pathogens : Introduction of morphological and cytological alteration in rhizophus stolonifer. Mycol.Res.

Hohn dan Litsch, 1907, Corticium Subcoronatum, Departemen de Entomologi,

Fitopatologia e Zoologia. Agricultur University, De Sao Paolo, Brazil.

Linawati, 2008, Chitosan, Limbah Kulit Udang Untuk Diabetes dan Hipertensi. Artikel ,

Kompas, Diakses tanggal 10 Januari 2008.

Luthfi, 2006, Chitosan dan Cara Pembuatanya,http// luthfi. web.id/2006/12/01/ chitosan.

part.2.

Nazir,. M. Ph. D, 2003. Metode Penelitian, Ghalia Indonesia, Pejaten Barat Jakarta.

Pamekas. T,. 2007.Potensi Ekstrak Cangkang Kepiting Untuk Mengendalikan Penyakit

Pasca Panen Antraknosa Pada Buah Cabai Merah, Fakultas Pertanian Universitas Bengkulu, Bengkulu.

Pinem,. M. S. I. dan S. Yusuf, 2004. Buku Ajar Penyakit Tanaman Perkebunan. Fakultas Pertanian, Universitas Sumatera Utara, Medan.5-6.

Prasetyo dan Yusuf, 2005. Khitosan Alternatif Pengendali Rayap Ramah Lingkungan,

Rineka Cipta, Jakarta.

Riyaldi, 2004. Alih Teknologi dan Kebijakan Pengendalian Penyakit di Perkebunan

Karet di Indonesia, Prosiding Pertemuan Teknis Strategi Pengelolaan Penyakit Tanaman Karet Untuk Mempertahankan Potensi Produksi Mendukung Industri Perkebunan Indonesia Tahun 2020. Palembang, 6-7 Oktober 2004, Pusat Penelitian Karet, Sumbawa.

Semangun. H,.2000. Penyakit-Penyakit Tanaman Perkebunan di Indonesia, Fakultas

Pertanian, Gadjah Mada University Press, Yogyakarta.

Sianturi.H.S.D, 1996, Budidaya Tanaman Karet, Fakultas Pertanian Universitas Sumatera

Utara, Medan.

Situmorang, A., M.S Sinaga, R. Suseno, S. H. Hidayat, Siswanto, dan A. Darussamin.2004.

Status dan Menejemen Pengendalian Penyakit Jamur Upasia Salmonicolor di Perkebunan Karet. Prosiding Pertemuan Teknis Strategi Pengelolaan Penyakit Tanaman Karet untuk Mempertahankan Potensi Produksi Mendukung Industri Perkaretan Indonesia tahun 2020. Palembang 6-7 Oktober 2004, Pusat Penelitian Karet, Sembawa.

Tjokrosoedarmo,. A.H.1983, Biologi Jamur Upas, Disertasi Universitas Gadjah Mada,

Yogyakarta.

Wastie,.R.L. 1975, Diseases of Robber and Their Control PANS .

Wilson, C. L., A. El Ghaouth, E. Chalutz., S.Droby.,C.Stevens,J. Y. Lu, V. Khan, and J.

Arul, 1994. Potensial of induced resistace to control postharvest disesase of fruit

and vegetables. Plant Dis.

Wilson, C.L. and A. El Ghaouth, 1993. Multificated biological contol of fruits and

vegetables. Pages 181-185. in : Pest Management: Biological Based Technology.R.D Lumsden and J.L. Vaughn, eds. American Chemical Society Press. Washington, D.C.

Lampiran 1.

Bagan Penelitian di Laboratorium

Keterangan :

C0 = Kontrol

C1 = Chitosan 10 mg/ml aquadest

C2 = Chitosan 20 mg/ml aquadest

C3 = Chitosan 30 mg/ml aquadest

C4 = Chitosan 40 mg/ml aquadest

C0 C1 C2 C3 C4 C5

C1 C2 C3 C4 C5 C0

C2 C3 C4 C5 C0 C1

C5 = Tridemorf (Calixin) 750 EC dengan 0,25ml/cawan petri

Lampiran 2.

Perhitungan kerapatan konidia jamur U. salmonicolor untuk setiap perlakuan dengan menggunakan alat haemocytometer.

Gambar 11. Alat untuk menghitung konidia (Haemocytometer) Sumber : http//www.wikimedia.co.id

Kotak c, d, e, f, dan o ditengahnya yang dilingkari adalah kotak yang dihitung jumlah konidianya.

Adapun cara kerjanya sebagai berikut :

 Bersihkan permukaan kamar hitung dengan air mengalir dan kemudian keringkan

dengan tissue atau kain yang lembut.

 Tempatkan gelas penutup di atas slide, kemudian dijepit dengan penjepit yang ada di

sebelah kiri dan kanan.

 Siapkan suspensi konidia yang di hitung, usahakan konidia yang tersuspensi dalam

cairan menyebar merata.

 Ambil sedikit suspensi konidia dengan pipet tetes dan teteskan sebanyak 2 tetes di tepi gelas penutup. Suspensi akan masuk ke kamar hitung dan mengisi seluruh ruangan yang ada pada bilik tersebut.

 Biarkan selama 1-2 menit,agar sel yang ada di dalam bilik stabil.

 Tempatkan haemocytometer pada meja mikroskop dan hitung jumlah sel yang ada

dengan rumus sebagai berikut : t x d

C = x 10 6 0.25n

Dimana : C = Kerapatan konidia

t = Jumlah konidia pada seluruh kotak bujur sangkar yang dihitung d = Faktor pengenceran

n = Jumlah petak bujur sangkar yang diamati 0.25 = Konstanta.

( Sumber :

Contoh perhitungan perlakuan control ulangan 1

Kotak contoh Jumlah kotak kecil Jumlah konidia

C 16 kotak 8 konidia

D 16 kotak 8 konidia

E 16 kotak 9 konidia

F 16 kotak 7 konidia

O 16 kotak 6 konidia

Total 80 kotak 38 konidia

Maka dapat dihitung : 38 x 10 C = x 10 6

20 = 19 x 10 6

Lampiran. 3. Tabel 3.

Data Luas Pertumbuhan Koloni Jamur U. salmonicolor.

Luas pertumbuhan (cm2) Perlk. Di petri dish

Ulg

Rata-rata 2 4 6

Chitosan 10 mg/ml 1 7.9 cm2 34.9 cm2 54.9 cm2

2 8.9 cm2 40.0 cm2 51.4 cm2

3 8.9 cm2 40.6 cm2 53.8 cm2

4  9.3 cm2 38.0 cm2 51.0 cm2

rerata  8.75 _cm2 38.38 _cm2 52.78 _cm2

Chitosan 20 mg/ml 1 8.9 cm2 41.5 cm2 52.8 cm2

2 8.4 cm2 34.6 cm2 53.8 cm2

3 10.0 cm2 33.9 cm2 48.3 cm2

4  7.1 cm2 30.6 cm2  53.3 cm2

rerata  8.6 c_m2 35.15 c_m2 52.05 c_m2

Chitosan 30 mg/ml 1 8.4 cm2 33.2 cm2 54.7 cm2

2 8.3 cm2 36.1Cm2 51.5 cm2

3 7.2 cm2 37.5 cm2 50.0 cm2

4  7.6 cm2 31.4 cm2 47,9 cm2

rerata  7.88 c_m2 34.55 _cm2 51.03 _cm2

Chitosan 40 mg/ml 1 7.4 cm2 30.9 cm2 54.0 cm2

2 6.2 cm2 25.3 cm2 47.8 cm2

3 4.1 cm2 27.5 cm2 51.0 cm2

4  8.0 cm2 36.4 cm2 47.9 cm2

rerata  6.43 c_m2 30.03 c_m2 50.18 c_m2

(Tridemorf) 1 3.4 cm2 6.5 cm2 13.0 cm2

2 4.0 cm2 7.2 cm2 13.2 cm2

3 3.7 cm2 9.7 cm2 15.3 cm2

4  2.1 cm2 7.5 cm2 11.6 cm2

rerata  3.30 _cm2 7.73 _cm2 13.28 _cm2

Kontrol 1 8.7 cm2 42.0 cm2 58.4 cm2

2 9.1 cm2 46.6 cm2 61.1 cm2

4  8.9 cm2 40.0 cm2 58.1 cm2 rerata  8.88 c_m2 42.83 c_m2 59.3 c_m2

Lampiran 4 . Tabel 4.

Data luas Pertumbuhan Jamur U. salmonicolor Pada Uji Efektifitas Chitosan 2HSI

Perlakuan Ulangan Total Rataan

I II III IV

C1 = 10 mg/ml 7.90 8.90 8.90 9.30 35.00 8.75

C2 = 20 mg/ml 8.90 8.40 10.00 7.10 34.40 8.60

C3 = 30 mg/ml 8.40 8.30 7.20 7.60 31.50 7.88

C4 = 40 mg/ml 7.40 6.20 4.10 8.00 25.70 6.43

C5 = Tridemorf 3.40 4.00 3.70 2.10 13.20 3.30

C0 = Control 8.70 9.10 8.80 8.90 35.50 8.88

Total 44.70 44.90 42.70 43.00 175.30 43.83

Rataan 7.45 7.48 7.12 7.17 29.22 7.30

Daftar Sidik Ragam

SK db JK KT Fh F0,5 F0,1

Ulangan 3 0.64 0.21 0.23 tn 3.16 5.09

Perlakuan 5 93.48 18.70 20.00 ** 2.77 4.25

Galat 18 16.83 0.93

Total 26 110.95

FK 1280.42 ket: tn : tidak nyata

KK 13.24% * : nyata

** :

sangat nyata

Uji Jarak Duncan

Sy 0,19

P 2 3 4 5 6 7 8

SSR 0.01 4.1 4.27 4.38 4.46 4.53 4.59 4.64

LSR 0.01 0.77 0.81 0.83 0.85 0.86 0.87 0.88

Perlakuan C5 C4 C3 C2 C1 C0

3.30 6.43 7.88 8.60 8.75 8.88

A B

C

D

Lampiran 5. Tabel 5.

Data Pengamatan Pertumbuhan Luas Jamur U. salmoniclor Pada Uji efektifitas Chitosan 4 HSA

Perlakuan Ulangan Total Rataan

I II III IV

C1 = 10 mg/ml 34.90 40.00 40.60 38.00 153.50 38.38

C2 = 20 mg/ml 41.50 34.60 33.90 30.60 140.60 35.15

C3 = 30 mg/ml 33.20 36.10 37.50 31.40 138.20 34.55

C4 = 40 mg/ml 30.90 25.30 27.50 36.40 120.10 30.03

C5 = Tridemorf 6.50 7.20 9.70 7.50 30.90 7.73

C0 = Control 42.00 46.60 42.70 40.00 171.30 42.83

Total 189.00 189.80 191.90 183.90 754.60 188.65

Rataan 31.50 31.63 31.98 30.65 125.77 31.44

Daftar Sidik Ragam

SK db JK KT Fh F0,5 F0,1

Ulangan 3 5.76 1.92 0.17 tn 3.16 5.09

Perlakuan 5 3062.21 612.44 55.52 ** 2.77 4.25

Galat 18 198.55 11.03

Total 26 3266.52

FK 23725.88 ket: tn : tidak nyata

KK 10.56% * : nyata

Uji Jarak Duncan

Sy 0.67

P 2 3 4 5 6 7 8

SSR 0.01 4.1 4.27 4.38 4.46 4.53 4.59 4.64

LSR 0,01 2.73 2.86 2.93 2.99 3.04 3.08 3.11

Perlakuan C5 C4 C3 C2 C1 C0

7.73 30.03 34.55 35.15 38.38 42.83

A

B

C

Lampiran 6. Tabel 6.

Data Pengamatan Pertumbuhan Luas Jamur U. salmonicolor Pada Uji efektifitas Chitosan 6 HSI

Perlakuan Ulangan Total Rataan

I II III IV

C1 = 10 mg/ml 54.90 51.40 53.80 51.00 211.10 52.78

C2 = 20 mg/ml 52.80 53.80 48.30 53.30 208.20 52.05

C3 = 30 mg/ml 54.70 51.50 50.00 47.90 204.10 51.03

C4 = 40 mg/ml 54.00 47.80 51.00 47.90 200.70 50.18

C5 = Tridemorf 13.00 13.20 15.30 11.60 53.10 13.28

C0 = Control 58.40 61.10 59.70 58.10 237.30 59.33

Total 287.80 278.80 278.10

269.8

0 1114.5 278.63

Rataan 47.97 46.47 46.35 44.97 185.75 46.44

Daftar Sidik

Ragam

SK db JK KT Fh F0,5 F0,1

Ulangan 3 27.06 9.02 2.46 tn 3.16 5.09

Perlakuan 5 5490.07 1098.01

298.9

8 ** 2.77 4.25

Galat 18 66.11 3.67

Total 26 5583.24

FK

51754.

59 ket: tn : tidak nyata

KK 4.13 * : Nyata

Uji Jarak Duncan

Sy 0,39

P 2 3 4 5 6 7 8

SSR 0.01 4.1 4.27 4.38 4.46 4.53 4.59 4.64

LSR 0,01 1.59 1.67 1.71 1.74 1.77 1.79 1.81

Perlakuan C5 C4 C3 C2 C1 C0

13.28 50.18 51.03 52.05 52.78 59.33

A

B

D C

Perlakuan

Luas Pertumbuhan

jamur (cm²)

2HSI 4HSI 6HSI

C0 8.88 A 42.83 A 59.33 A

C1 8.75 A 38.38 B 52.78 B

C2 8.60 AB 35.15 B 52.05 B

C3 7.88 B 34.55 B 51.03B C

C4 6.43 C 30.03 C 50.18 C

Lampiran 7. Tabel 7. Data Perhit ungan Kerap atan Konid ia Jamu r U. salmo nicolo r denga n meng gunak an alat haem ocyto meter .

Konsentrasi Ulangan Kandungan Spora

Kontrol 1 19 x 10 6

2 16 x 10 6

3 14 x 10 6

4 11.5 x 10 6

Rata-rata 15.13 x 10 6

Chitosan 10 mg/m 1 10.5 x 10 6

2 10 x 10 6

3 10.5 x 10 6

4 10 x 10 6

Rata-rata 10.25 x 10 6

Chitosan 20 mg/ml 1 11 x 10 6

2 10 x 10 6

3 10 x 10 6

4 9 x 10 6

Rata-rata 10.00 x 10 6

Chitosan 30 mg/ml 1 9.5 x 10 6

2 10.5 x 10 6

3 9.5 x 10 6

4 10 x 10 6

Rata-rata 9.88 x 10 6

Chitosan 40 mg/ml 1 9.5 x 10 6

2 10 x 10 6

3 10 x 10 6

4 9 x 10 6

Rata-rata 9.63 x 10 6

Calixin 0.25 ml 1 7 x 10 6

2 5 x 10 6

3 6 x 10 6

4 6.5 x 10 6

Lampiran 8. Tabel 8.

Data Perhitungan Kerapatan Konidia Jamur U. salmonicolor dengan menggunakan alat haemocytometer.

Perlakuan Ulangan Total Rataan

I II III IV

C1 = 10 mg/ml 10.5 10 10.5 10 41.00 10.25

C2 = 20 mg/ml 11 10 10 9 40.00 10.00

C3 = 30 mg/ml 9.5 10.5 9.5 10 39.50 9.88

C4 = 40 mg/ml 9.5 10 10 9 38.50 9.63

C5 = Tridemorf 7 5 6 6.5 24.50 6.13

C0 = Control 19 16 14 11.5 60.50 15.13

Total 66.5 61.5 60 56 244.00 61.00

Rataan 11.08 10.25 10.00 9.33 40.67 10.17

Daftar Sidik Ragam

SK db JK KT Fh F0,5 F0,1

Ulangan 3 9.42 3.14 2.13 tn 3.16 5.09

Perlakuan 5 165.33 33.07 22.39 ** 2.77 4.25

Galat 18 26.58 1.48

Total 26 201.33

FK 2480.67 ket: tn : tidak nyata

KK 11.95 * : nyata

** :

sangat nyata

Uji Jarak Duncan

Sy 0.24

P 2 3 4 5 6 7 8

SSR 0,01 4.1 4.27 4.38 4.46 4.53 4.59 4.64

LSR 0,01 0.98 1.02 1.05 1.07 1.09 1.10 1.11

Perlakuan C5 C4 C3 C2 C1 C0

6.13 9.63 9.88 10.00 10.25 15.13

A

B

C

Perlakuan Perhitungan kerapatan konidia jamur

C0 15.3 x 106 A

C1 10.25 x 106 B

C2 10.00 x 106 B

C3 9.88 x 106 B

C4 9.63 x 106 B

Lampiran 9

Foto-foto pertumbuhan luas koloni jamur U. salmonicolor.

Gambar 12. Pertumbuhan Jamur U. salmonicolor pada pertumbuhan 1 hari setelah inokulasi.

Gambar 13. Pertumbuhan Jamur U. salmonicolor pada waktu 2 hari setelah inokulasi.

(Sumber : Foto langsung)

Gambar 14. Pertumbuhan Jamur U. salmonicolor pada waktu 3 hari setelah inokulasi

Gambar 15. Pertumbuhan Jamur U. salmonicolor pada waktu 4 hari setelah inokulasi

(Sumber : Foto Langsung)

Gambar 16. Pertumbuhan Jamur U. salmonicolor pada waktu 5 hari setelah

Inokulasi

Gambar 17. Pertumbuhan Jamur U. salmonicolor pada waktu 6 hari setelah inokulasi. ( Sumber : Foto Langsung)

Gambar 18. Pertumbuhan Jamur U. salmonicolor pada pertumbuhan 7 hari setelah inokulasi

Lampiran 8. Tabel 8.

Data Perhitungan Kerapatan Konidia Jamur U. salmonicolor dengan menggunakan alat haemocytometer.

Perlakuan Ulangan Total Rataan

I II III IV

C1 = 10 mg/ml 10.5 10 10.5 10 41.00 10.25

C2 = 20 mg/ml 11 10 10 9 40.00 10.00

C3 = 30 mg/ml 9.5 10.5 9.5 10 39.50 9.88

C4 = 40 mg/ml 9.5 10 10 9 38.50 9.63

C5 = Tridemorf 7 5 6 6.5 24.50 6.13

C0 = Control 19 16 14 11.5 60.50 15.13

Total 66.5 61.5 60 56 244.00 61.00

Rataan 11.08 10.25 10.00 9.33 40.67 10.17

Daftar Sidik Ragam

SK db JK KT Fh F0,5 F0,1

Ulangan 3 9.42 3.14 2.13 tn 3.16 5.09

Perlakuan 5 165.33 33.07 22.39 ** 2.77 4.25

Galat 18 26.58 1.48

Total 26 201.33

FK 2480.67 ket: tn : tidak nyata

KK 11.95 * : nyata

** :

sangat nyata

Uji Jarak Duncan

Sy 0.24

P 2 3 4 5 6 7 8

SSR 0,01 4.1 4.27 4.38 4.46 4.53 4.59 4.64

LSR 0,01 0.98 1.02 1.05 1.07 1.09 1.10 1.11

Perlakuan C5 C4 C3 C2 C1 C0

6.13 9.63 9.88 10.00 10.25 15.13

A

B

C

Perlakuan Perhitungan kerapatan konidia jamur

C0 15.3 x 106 A

C1 10.25 x 106 B

C2 10.00 x 106 B

C3 9.88 x 106 B

C4 9.63 x 106 B

C5 6.13 x 106 C

Lampiran 9

Foto-foto pertumbuhan luas koloni jamur U. salmonicolor.

Gambar 12. Pertumbuhan Jamur U. salmonicolor pada pertumbuhan 1 hari setelah inokulasi.

(Sumber : Foto langsung)

Gambar 13. Pertumbuhan Jamur U. salmonicolor pada waktu 2 hari setelah inokulasi.

(Sumber : Foto langsung)

Gambar 14. Pertumbuhan Jamur U. salmonicolor pada waktu 3 hari setelah inokulasi

(Sumber : Foto langsung)

Gambar 15. Pertumbuhan Jamur U. salmonicolor pada waktu 4 hari setelah inokulasi

(Sumber : Foto Langsung)

Gambar 16. Pertumbuhan Jamur U. salmonicolor pada waktu 5 hari setelah Inokulasi

( Sumber : Foto Langsung)

Gambar 17. Pertumbuhan Jamur U. salmonicolor pada waktu 6 hari setelah inokulasi. ( Sumber : Foto Langsung)

Gambar 18. Pertumbuhan Jamur U. salmonicolor pada pertumbuhan 7 hari setelah inokulasi

(Sumber : Foto langsung)