DAFTAR PUSTAKA

DAFTAR PUSTAKA

Bahagiawati. 2002. Penggunaan Bacillus thuringiensis sebagai bioinsektisida. AgroBio 5(1): 21-28. [jurnal on-line]. http://www.indobiogen.or.id/ terbitan/agrobio/abstrak/agrobio_vol5_nol_2002_21-28.php [27 Mei 2008].

[Balitbiogen] Balai Besar Penelitian dan Pengembangan Bioteknologi dan Sumberdaya Genetik Pertanian. 2008. Bacillus thuringiensis, bioinsektisida alternatif. http://www.indobiogen.or.id/produk/bacillus.php [27 Mei 2008].

Basana IR, Prijono D. 1994. Insecticidal activity of aqueous seed extracts of four species of Annona (Annonaceae) against the cabbage head caterpillar, Crocidolomia binotalis Zeller (Lepidoptera: Pyralidae). Bul HPT 7: 50-60.

Bernard CB, Arnason JT, Philogene BJR, Lam J, Waddell T. 1989. Effect of lignans and other secondary metabolites of the Asteraceae on the mono- oxygenase activity of European corn borer. Phytochemistry 28: 1373–1377.

Bernard CB, Krishnamurty HG, Chauret D, Durst T, Philogene BJR, Sanchez- Vindas P, Hasbun C, Poveda L, San Roman L, Arnason JT. 1995. Insecticidal defenses of Piperaceae from the Neotropics. J Chem Ecol 21: 801-814.

Boeke SJ, Barnaud C, Loon JJAV, Kossou DK, Huis AV, Dicke M. 2004. Efficacy of plant extracts against the cowpea beetle, Callosobruchus maculatus . Int J Pest Manage 50(4): 251-258.

Bos R, Woerdenbag HJ, Kayser O, Quax WJ, Ruslan K, Elfami. 2007. Essential oil constituents of Piper cubeba L. fils. from Indonesia. J Essential Oil Res

19: 14-17. Cabizza M, Angioni A, Melis M, Cabras M, Tuberoso CV, Cabras P. 2004.

Rotenone and rotenoids in cube resins formulations, and residues on olives. J Agric Food Chem

52: 288-293.

Chou TC, Talalay P. 1984. Quantitative analysis of dose-effect relationship: the combined effect of multiple drugs or enzyme inhibitors. Adv Enzyme Regl

22: 27-55. [CIIFAD] Cornell International Institute for Food, Agriculture, and Development.

2007. Croci or cabbagehead caterpillar (CHC). http://www.nysaes.cornell. edu/ent/hortcrops/english/croci.html [27 Mei 2008].

Cremlyn RJ. 1991. Agrochemicals: Preparation and Mode of Action. Chichester: John Wiley & Sons.

Delfel NE, Tallent WH, Carlson DG, Wolff IA. 1970. Distribution of rotenone and deguelin in Tephrosia vogelii and separation of rotenoid-rich fraction. J Agric Food Chem 188(3): 385-390.

Delobel A, Malonga P. 1987. Insecticidal properties of six plant materials

31 [Deptan] Departemen Pertanian. 2007. Ulat krop (large cabbage heart

caterpillar ): Crocidolomia binotalis Zell. http://www.deptan.go.id/ ditlinhorti/opt/kubis/ulat_krop.htm - 8k [17 April 2007].

[Ditjen Tanaman Pangan] Direktorat Jenderal Pertanian Tanaman Pangan. 1994. Pengelolaan Organisme Pengganggu Tumbuhan Secara Terpadu pada Tanaman Kubis . Jakarta : Direktorat Bina Perlindungan Tanaman.

[Ditsarpro] Direktorat Sarana Produksi. 2006. Pestisida Terdaftar (Pertanian dan Kehutanan ). Jakarta: Ditsarpro, Direktorat Jenderal Tanaman Pangan, Departemen Pertanian.

Edwards CA. 1976. Persistent Pesticides in the Environment. Ed ke-2. Ohio: CRC Press.

Elfahmi, Ruslan K, Batterman S, Bos R, Kayser O, Woerdenbag HJ, Quax WJ. 2007. Lignan profile of Piper cubeba, an Indonesian medicinal plant. Biochem System Ecol

35: 397-402.

Ferdi. 2008. Aktivitas insektisida ekstrak buah cabai jawa (Piper retrofractum Vahl.) terhadap larva Crocidolomia pavonana (F.) (Lepidoptera: Pyralidae) [skripsi]. Bogor: Fakultas Pertanian, Institut Pertanian Bogor.

Gisi U. 1996. Synergistic interaction of fungicides in mixtures. Phytopathology

86: 1273-1279. Glare RT, O’Callaghan M. 2000. Bacillus thuringiensis: Biology, Ecology, and

Safety . Chichester: John Wiley & Sons. Hagemann JW, Pearl MB, Higgins JJ, Delfel NE, Earle FR. 1972. Rotenone and

deguelin in Tephrosia vogelii at several stages of maturity. J Agric Food Chem

20: 906-908. Harmatha J, Nawrot J. 2002. Insect feeding deterrent activity of lignans and

related phenylpropanoids with a methylenedioxyphenyl (piperonyl) structure moiety. Entomol Exp Appl 104: 51-60.

Heyne K. 1987. Tumbuhan Berguna Indonesia. Jilid 2. Badan Litbang Kehutanan, penerjemah. Jakarta: Yayasan Sarana Wana Jaya. Terjemahan dari: De Nuttige Planten van Indonesie.

Hollingworth RM. 2001. Inhibitors and uncouplers of mitochondrial oxidative phosphorylation. Di dalam: Krieger R, Doull J, Ecobichon D, Gammon D, Hogson E, Reiter L, Ross J, editor. Handbook of Pesticide Toxicology. Vol

2. San Diego: Academic Press. hlm : 1169-1227. Isman MB. 2006. Botanical insecticides, deterrents, and repellents in modern

agriculture and an increasingly regulated world. Annu Rev Entomol 51: 45–

66. Jacobson M. 1990. Glossary of Plant-derived Insect Deterrents. Boca Raton:

CRC Press. Kalshoven LGE. 1981. The Pest of Crops in Indonesia. van der Laan PA,

penerjemah. Jakarta: PT Ichtiar Baru-van Hoeve. Terjemahan dari: De

32 Koona P, Dorn S. 2005. Extracts from Tephrosia vogelii for the protection of

stored legume seeds against damage by three bruchid species. Ann Appl Biol 147: 43–48.

Kosman E, Cohen Y. 1996. Procedures for calculating and differentiating synergism and antagonism in action of fungicide mixtures. Phytopathology

86: 1255-1264. Lambert N, Trouslot MF, Campa CN, Chrestin H. 1993. Production of rotenoids

by heterotrophic and photomixotrophic cell cultures of Tephrosia vogelii. Phytochemistry

34: 1515-1520.

LeOra Software. 1987. POLO-PC User’s Guide. Petaluma (CA): LeOra Software.

Marston A, Msonthi JD, Hostettmann K. 1984. On the reported moluscicidal

activity from Tephrosia vogelii leaves. Phytochemistry 23: 1824-1825. Matsumura F. 1985. Toxicology of Insecticides. Ed ke-2. New York: Plenum

Press. Miyakado M, Nakayama I, Ohno N. 1989. Insecticidal unsaturated

isobutylamides. Di dalam: Arnason JT, Philogene BJR, Morand P, editor. Insecticides of Plant Origin . Washington DC: ACS. hlm 73-187.

Parmar VS, Jain SC, Bisht KS, Jain R, Taneja P, Jha A, Tyagi OD, Prasad AK, Wengel J, Olsen CE, Boll PM. 1997. Phytochemistry of the genus Piper. Phytochemistry

46: 597-673.

Perry AS, Yamamoto I, Ishaaya I, Perry RY. 1998. Insecticides in Agriculture and Environment: Retrospects and Prospects. Berlin: Springer.

Prabaningrum L, Sastrosiswojo S. 1995. Penggunaan sawi jabung dan rape sebagai tanaman perangkap bagi Plutella xylostella L. dan Crocidolomia binotalis Zell. pada tanaman kubis. Di dalam: Duriat AS, Basuki RS, Sinaga RM, Hilman Y, Abidin Z, editor. Prosiding Seminar Ilmiah Komoditas Sayuran ; Lembang, 24 Oktober 1995. Bandung: Balitsa Lembang. hlm 378-383.

Prakash A, Rao J. 1997. Botanical Pesticides in Agriculture. New York: Lewis Publ.

Prijono D. 2002. Pengujian Keefektifan Campuran Insektisida: Pedoman bagi Pelaksana Pengujian Efikasi untuk Pendaftaran Pestisida . Bogor: Jurusan Hama dan Penyakit Tumbuhan, Fakultas Pertanian, Institut Pertanian Bogor.

Prijono D. 2006. Peranan pestisida botani dalam pengendalian hama terpadu. Makalah disampaikan pada Pertemuan Koordinasi Pengembangan Pertanian Ramah Lingkungan & Organik ; Bogor, 17-18 Maret 2006. Bogor: Departemen Proteksi Tanaman, Fakultas Pertanian, Institut Pertanian Bogor.

Prijono D, Hassan E. 1992. Life cycle and demography of Crocidolomia pavonana Zeller (Lepidoptera: Pyralidae) on broccoli in the laboratory.

33 Reuben SOWM, Masunga M, Makundi R, Misangu RN, Kilonzo B, Mwatawala

M, Lyimo HF, Ishengoma CG, Msuya DG, Mulungu LS. 2006. Control of cowpea weevil (Callosobruchus maculatus L.) in stored cowpea (Vigna unguiculatus L.) grains using botanicals. Asian J Plant Sci 5: 91-97.

SAS Institute. 1990. SAS/STAT User’s Guide, Version 6, Vol 2. Ed ke-4. Cary (North Carolina): SAS Institute.

Sastrosiswojo S, Setiawati W. 1993. Hama-hama kubis dan pengendaliannya. Di dalam: Permadi AH, Sastrosiswojo S, editor. Kubis. Bandung: Balithor Lembang. hlm 39-50.

Scott IM, Jensen HR, Philogene BJR, Arnason JT. 2008. A review of Piper spp. (Piperaceae) phytochemistry, insecticidal activity and mode of action. Phytochem Rev 7: 65–75.

Su HCF. 1990. Biological activities of hexane extract of Piper cubeba against rice weevils and cowpea weevils (Coleoptera: Curculionidae). J Entomol Sci 25:16–20.

Syahputra E, Prijono D, Dono D. 2007. Sediaan insektisida Calophyllum soulatri : aktivitas insektisida dan residu terhadap larva Crocidolomia pavonana dan keamanan pada tanaman. JHPT Trop 7: 21–29.

Usia T, Watabe T, Kadota S, Tezuka Y. 2005. Potent CYP3A4 inhibitory constituents of Piper cubeba. J Nat Prod 68: 64-68.

Worthing RC. 1991. The Pesticide Manual: A World Compendium. Ed ke-9. Farnham: The British Crop Protection Council.

Wulan RDR. 2008. Aktivitas insektisida ekstrak daun Tephrosia vogelii Hook. f. (Leguminosae) terhadap larva Crocidolomia pavonana (F.) (Lepidoptera: Pyralidae) [skripsi]. Bogor: Fakultas Pertanian, Institut Pertanian Bogor.

LAMPIRAN

Lampiran 1 Hasil uji pendahuluan pengaruh ekstrak Piper cubeba terhadap mortalitas dan perkembangan larva instar II Crocidolomia pavonana . Konsentrasi a Jumlah Mortalitas (%) pada JAP

Persentase instar III Jenis ekstrak

(%, w/v) b serangga uji 24 48 72 pada 72 JAP (N) Fraksi heksana

3 15 0 0 0 100 (15) Fraksi heksana

0 (0) padatan

Lampiran 1 lanjutan Konsentrasi a Jumlah Mortalitas (%) pada JAP

Persentase instar III Jenis ekstrak

(%, w/v) b serangga uji 24 48 72 pada 72 JAP (N) Fraksi etil

3 13 0 0 0 100 (13) Fraksi metanol

a JAP = jam sejak awal perlakuan.

b N = jumlah larva yang masih hidup. 36

Lampiran 2 Hasil uji lanjutan pengaruh ekstrak P. cubeba (fraksi heksana padatan) terhadap mortalitas dan perkembangan larva instar II C. pavonana. Konsentrasi a Jumlah serangga Mortalitas (%) pada JAP

Persentase instar III

(%, w/v) b uji 24 48 72 pada 72 JAP (N) 0,5

Ulangan

Lampiran 2 lanjutan Konsentrasi a Jumlah serangga Mortalitas (%) pada JAP

Persentase instar III

(%, w/v) b uji 24 48 72 pada 72 JAP (N) 0,1

a JAP = jam sejak awal perlakuan.

b N = jumlah larva yang masih hidup.

Lampiran 3 Hasil uji pendahuluan pengaruh ekstrak campuran fraksi heksana (f.h.) minyak P. cubeba dan f.h. T. vogelii terhadap mortalitas dan perkembangan larva instar II C. pavonana. Konsentrasi a Jumlah Mortalitas (%) pada JAP

Persentase instar III Jenis ekstrak

Ulangan

(%, w/v) b serangga uji 24 48 72 pada 72 JAP (N)

F.h. T. vogelii

0 (0) P. cubeba +

F.h. minyak

f.h. T. vogelii

a JAP = jam sejak awal perlakuan.

b N = jumlah larva yang masih hidup.

Lampiran 4 Hasil uji pendahuluan pengaruh campuran fraksi heksana (f.h.) padatan P. cubeba dan f.h. T. vogelii terhadap mortalitas dan perkembangan larva instar II C. pavonana. Konsentrasi a Jumlah Mortalitas (%) pada JAP

Persentase instar III Jenis ekstrak

Ulangan

(%) b serangga uji 24 48 72 pada 72 JAP (N)

F.h. T.

0 (0) P. cubeba +

F.h. padatan

f.h. T. vogelii

a JAP = jam sejak awal perlakuan.

b N = jumlah larva yang masih hidup.

Lampiran 5 Hasil uji lanjutan pengaruh campuran fraksi heksana padatan P. cubeba dan fraksi heksana T. vogelii terhadap mortalitas dan perkembangan larva instar II C. pavonana. Konsentrasi a Mortalitas (%) pada JAP

Persentase instar III

(%, w/v) b 24 48 72 pada 72 JAP (N) 0,27

Ulangan

Jumlah serangga uji

Lampiran 5 lanjutan Konsentrasi a Mortalitas (%) pada JAP

Persentase instar III

(%, w/v) b 24 48 72 pada 72 JAP (N) 0,10

Ulangan

Jumlah serangga uji

a JAP = jam sejak awal perlakuan.

b N = jumlah larva yang masih hidup.

Lampiran 6 Hasil uji pendahuluan pengaruh formulasi Bacillus thuringiensis (Turex WP) terhadap mortalitas dan perkembangan larva instar II C. pavonana.

Konsentrasi b Mortalitas (%) pada JAP Persentase instar III

(g/l) c 24 48 72 pada 72 JAP (N) 0,5

Ulangan

Jumlah serangga uji

a Konsentrasi dalam g formulasi per liter suspensi.

b JAP = jam sejak awal perlakuan.

c N = jumlah larva yang masih hidup.

Lampiran 7 Hasil uji pendahuluan pengaruh formulasi profenofos (Curacron 500 EC) terhadap mortalitas dan perkembangan larva instar II C. pavonana.

Konsentrasi b Mortalitas (%) pada JAP Persentase instar III

(ml/l) c 24 48 72 pada 72 JAP (N) 0,2

Ulangan

Jumlah serangga uji

a Konsentrasi dalam ml formulasi per liter suspensi.

b JAP = jam sejak awal perlakuan.

c N = jumlah larva yang masih hidup.

Lampiran 8 Hasil uji lanjutan pengaruh formulasi B. thuringiensis terhadap mortalitas dan perkembangan larva instar II C. pavonana . Konsentrasi a Mortalitas (%) pada JAP

Persentase instar III

(g/l) b 24 48 72 pada 72 JAP (N) 0,15

Ulangan

Jumlah serangga uji

Lampiran 8 lanjutan Konsentrasi a Mortalitas (%) pada JAP

Persentase instar III

(g/l) b 24 48 72 pada 72 JAP (N) 0,06

Ulangan

Jumlah serangga uji

a JAP = jam sejak awal perlakuan.

b N = jumlah larva yang masih hidup.

Lampiran 9 Hasil uji lanjutan pengaruh formulasi profenofos terhadap mortalitas dan perkembangan larva instar II C. pavonana. Konsentrasi a Mortalitas (%) pada JAP

Persentase instar III

(ml/l) b 24 48 72 pada 72 JAP (N) 0,3

Ulangan

Jumlah serangga uji

Lampiran 9 lanjutan Konsentrasi a Mortalitas (%) pada JAP

Persentase instar III

(ml/l) b 24 48 72 pada 72 JAP (N) 0,05

Ulangan

Jumlah serangga uji

a JAP = jam sejak awal perlakuan.

b N = jumlah larva yang masih hidup.

Lampiran 10 Hasil uji aktivitas residu ekstrak P. cubeba dan T. vogelii serta insektisida pembanding terhadap mortalitas larva C. pavonana . Mortalitas (%) larva pada perlakuan residu n HSP (N) a

Bahan uji

Ulangan

F.h. padatan P. cubeba 1,08%

F.h. T. vogelii 0,68%

F.h. P. cubeba + f.h. T. vogelii

Lampiran 10 lanjutan Mortalitas (%) larva pada perlakuan residu n HSP (N) a Bahan uji

Ulangan

B. thuringiensis b 0,37 g/l

100 (15) Profenofos 0,66 ml/l b

a Jumlah larva yang mati dihitung pada 72 jam sejak pemberian daun perlakuan. N= jumlah serangga uji.

b Konsentrasi formulasi masing-masing.

50