LAPORAN PRAKTIKUM ALGOLOGI boiler praktikum lapo

LAPORAN PRAKTIKUM ALGOLOGI

Oleh

:

Nama

:

Adi Saputra

NIM

:

H1K012048

JURUSAN PERIKANAN DAN KELAUTAN
FAKULTAS SAINS DAN TEKNIK
UNIVERSITAS JENDERAL SOEDIRMAN

PURWOKERTO
2014

DAFTAR ISI
halaman
DAFTAR ISI...............................................................................................................................ii
DAFTAR GAMBAR...................................................................................................................iv
DAFTAR TABEL.........................................................................................................................v
BAB I..........................................................................................................................................1
PENDAHULUAN.......................................................................................................................1
1.1

Latar belakang..............................................................................................................1

1.2

Tujuan...........................................................................................................................2

1.3

Manfaat.........................................................................................................................2

BAB II.........................................................................................................................................3
TINJAUAN PUSTAKA................................................................................................................3
2.1

Mikroalgae...................................................................................................................3

2.2

Makroalgae...................................................................................................................3

BAB III........................................................................................................................................5
MATERI DAN METODE............................................................................................................5
3.1

Materi...........................................................................................................................5

3.1.1

Alat........................................................................................................................5

3.1.2

Bahan....................................................................................................................5

3.2

Metode..........................................................................................................................5

3.2.1

Mikroalga..............................................................................................................5

3.2.2

Makroalga.............................................................................................................5

3.2.3

Identifikasi Mikroalga...........................................................................................5

3.3.

Waktu dan Tempat.......................................................................................................5

BAB IV........................................................................................................................................7
HASIL DAN PEMBAHASAN......................................................................................................7
4.1.1.

Makroalga.............................................................................................................7

4.1.2.

Mikroalga..............................................................................................................7

4.2.

Pembahasan..................................................................................................................9

4.2.1. Makroalga................................................................................................................9
4.2.1.1. Sargassum vulgare..............................................................................................9
4.2.1.2. Padina australis................................................................................................10
4.2.1.3. Dictyota bartayresiana.....................................................................................10
ii

4.2.1.4. Halimeda macroloba........................................................................................11
4.2.1.5. Sargasum sp......................................................................................................11
4.2.2. Mikroalga.............................................................................................................13
4.2.2.1 Chaetoceros sp...................................................................................................13
4.2.2.2 Rhizosolenia sp..................................................................................................14
4.2.2.4 Plectonema sp....................................................................................................15
4.2.2.5 Thalassiothrix sp................................................................................................15
4.2.2.6 Ulothrix sp.........................................................................................................16
4.2.2.7 Ceratium sp........................................................................................................16
4.2.2.8 Navicula sp.........................................................................................................17
4.2.2.9 Nitzschia sp........................................................................................................17
4.2.2.10 Richtoriella sp..................................................................................................18
4.2.3. Kualitas Air..............................................................................................................18
4.2.3.1 Oksigen terlarut ( dissolve oxygen).......................................................................18

IV..........................................................................................................................KESIMPULAN
..................................................................................................................................................20
DAFTAR PUSTAKA.................................................................................................................21

iii

DAFTAR GAMBAR
Gambar 1. Halimeda opuntia.......................................................................................... 9
Gambar 2. Padina australis.......................................................................................... 10
Gambar 3. Dictyota bartayresiana..................................................................................10
Gambar 4. Halimeda macroloba.................................................................................... 11
Gambar 5. Sargassum sp............................................................................................. 11

iv

DAFTAR TABEL
Table 1. Data Pengamatan Makroalga Tiap Stasiun...................................................................7
Table 2. Data Pengamatan Mikroalga Tiap Jam.........................................................................7
Table 3. Tingkat Pencemaran Perairan Berdasarkan DO dan BOD.........................................19

v

I.
I.1

PENDAHULUAN

Latar belakang
Lebih 70 persen wilayah Indonesia terdiri dari lautan yang kaya akan berbagai jenis

sumber hayati. Salah satu diantaranya adalah rumput laut yang mempunyai nilai penting bagi
masyarakat Indonesia. Rumput laut sudah lazim dikenal dalam dunia perdagangan, namun
istilah ini merupakan terjemahan dari Bahasa Inggris ”seaweed”. Secara botani, rumput laut
tidak termasuk dalam keluarga Graminae, melainkan tergolong pada kelompok makroalga
yang hidup di laut. Rumput laut adalah tumbuhan tingkat rendah yang tidak dapat dibedakan
antara bagian akar, batang, dan daun. Semua bagian tumbuhannya disebut thallus. Secara
keseluruhan, tumbuhan ini mempunyai morfologi yang mirip, walaupun sebenarnya berbeda
(Handayani, 2006).
Pada praktikum kali ini lokasi yang dipilih adalah Pantai Teluk Awur, Pantai Teluk
Awur terletak di Desa Teluk Awur, Kecamatan Tahunan, Kabupaten Jepara. Arah selatan

kota Jepara dengan jarak tempuh 7 kilometer. Pantai ini merupakan pantai yang landai dengan
pasir putih, dengan karakteristik Ombak yang begitu tenang. Kondisi perairan pantai Teluk
Awur sangat mendukung untuk pertumbuhan Alga, karena perairan pantai tersebut
mempunyai kelandaian pantai yang mendukung. Subtrat dasar perairan Teluk Awur sebagian
besar berupa substrat pasir, pasir berlumpur, dan pecahan karang.(Kharismawati 2008).
I.2

Tujuan
1.

Mahasiswa dapat mengenai algae baik makroalgae maupun mikroalga melalui ciri
morfologinya.

2.

Mahasiswa dapat mengidentifikasi makroalga maupun mikroalga dengan
pengamatan ciri morfologi pada saat pengamatan dihabitat aslinya.

3.

Mahasiswa dapat melakukan teknik pengawetan basah dan kering sampel alga.
1

1.3

4.

Mahasiswa dapat memahami dan melakukan pengambilan sampel mikroalga.

5.

Mahasiswa dapat memahami dan melakukanteknik isolasi dan kultur mikroalga

Manfaat
Adapun manfaat yang diharapkan dari praktikum ini adalah untuk memberikan

informasi dan pengetahuan tentang jenis-jenis makroalga dan mikroalga serta mengetahui
parameter yang mempengaruhinya.

2

II.
2.1

TINJAUAN PUSTAKA

Mikroalgae
Mikroalga merupakan kelompok tumbuhan berukuran renik, baik sel tunggal maupun

koloni yang hidup di seluruh wilayah perairan air tawar dan laut. Mikroalga lazim disebut
fitoplankton. Mikroalga saat ini menjadi salah satu alternative sumber energi baru yang sangat
potensial. Makanan utama mikroalga ialah karbondioksida. Mikroalga mampu tumbuh cepat
dan dipanen dalam waktu singkat yakni 7-10 hari. Menurut Odum (1981), berdasarkan sejarah
hidupnya mikroalga adalah holoplankton yag hidup bebas terapung, dan selama hidupnya
merupakan plankton. Mikroalga merupakan fitoplankton, atau plankton tipe nabati (Smith
1970).
Sel mikroalgae dapat dibagi menjadi 10 divisi dan 8 divisi algae merupakan bentuk
unicellulair. Dari 8 divisi algae, 6 divisi telah digunakan untuk keperluan budidaya perikanan
sebagai pakan alami. Setiap divisi mempunyai karakteristik yang ikut memberikan andil pada
kelompoknya, tetapi spesies-spesiesnya cukup memberikan perbedaan-perbedaan dari

lainnya. Ada 4 karakteristik yang digunakan untuk membedakan divisi mikroalgae yaitu; tipe
jaringan sel, ada tidaknya flagella, tipe komponen fotosintesa dan jenis pigmen sel. Selain itu
morfologi sel dan bagaimana sifat sel yang menempel berbentuk koloni/ filamen adalah
merupakan informasi penting didalam membedakan masing-masing group.
Sifat yang paling berguna untuk mengidentifikasi algae adalah warna atau pigmen.
Pigmen-pigmen tersebut menyerap energi cahaya dan mengubahnya menjadi biomassa
melalui proses fotosintesis. Ada 3 kelas utama pigmen dan berbagai kombinasi yang
memberikan warna khas pada algae. Kelompok utama dari pigmen hijau adalah chlorophil,
dengan clorophil a sebagai pigmen utama yang menyerap gelombang panjang biru dan merah

3

sebagai cahaya yang penting untuk fotosintesis. Philip Sze (1993) melakukan pembagian
divisi alga yang didasarkan atas :
A. Pigmen dalam plastida
1.

Pigmen-pigmen berperan penting dalam proses fotosintesis

2.

Pigmen pada alga terdapat pada plastida. Plastida ada 2 macam yaitu :
a. Chloroplast:
Pembawa zat warna klorofil
b. Cromoplast:
Pembawa zat warna lain

3.

Tipe-tipe khloroplas dibedakan 3 kelompok :
a. Rhodophycean chloroplast:
Tilakoid terpisah dan fikobilisom di permukaan tilakoid
b. Chlorophycean chloroplast:
Tumpukan tilakoid dan pyrenoid di permukaan
c. Chrysophycean chloroplast:
Tilakoid dalam 3 kelompok, yaitu reticulum endoplasma,ribosom dan di luar
permukaan terdapat nucleus.

B. Cadangan Makanan
Cadangan makanan pada alga adalah kandungan karbohidrat, polimer-polimer glukosa
dengan mata rantai terdiri dari: pati (α-1,4 Glucose) dan laminarin, chrysolaminarin/ leucosin,
paramilon (β-1,3 Glucose).
C. Komponen Dinding Sel

4

1. Dinding sel alga prokaryotik terdiri atas mucopeptida dan pektin. Terdapat pada
Cyanobakteria dan Prochlorophyta. Dinding sel menyerupai eubakteria baik struktur
ribosom dan kromosom.
2. Dinding sel alga eukaryotik terdiri atas selulosa dan pektin. Pada Chrysophyta sering
mengandung silikat. Phaeophyta mengandung asam algin. Ada 6 divisi alga yang
dinding selnya eukaryotik antara lain: Divisio Chlorophyta, Pyrophyta
(dinoflagellata), Cryptophyta (Chryptomonad), Euglenophyta, Phaeophyta, serta
Rhodophyta.
D. Morfologi
Macam-macam bentuk sel pada alga:
1. Uniselular
a. berflagel
contoh: Trachelomonas
b. non flagel
contoh: Chlorella, Cyclotella
2. Koloni
a. berflagel
b. non flagel
3. Agregasi palmeloid
Spesies berflagel, tetapi pada tingkat palmeloid sel mengeluarkan lendir
1. Amaoeba atau sel-sel rhizopodial
sel tunggal atau berkoloni, amoeboid
2. Filamen
5

a. tidak bercabang
2.2

b. Bercabang

Makroalgae
Makroalga merupakan tumbuhan takberpembuluh yang tumbuh melekat pada substrat

dasar laut, tumbuhan tersebut tidak memiliki akar, batang, daun, bunga, dan biji sejati
(Sumich, 1979; McConnaughey & Zottoli, 1983; Lerman, 1986). Berdasarkan kandungan
pigmennya rumput laut merupakan makroalga bentik yang terdiri dari jenis-jenis yang
termasuk divisio Rhodophyta (alga merah), Phaeophyta (alga coklat) dan Chlorophyta (alga
hijau). Rumput laut umumnya tumbuh melekat pada suatu substrat (Kadi &Atmadja, 1988).
Rumput laut atau seaweed termasuk tumbuhan berthallus yang banyak dijumpai
hampir di seluruh perairan pantai Indonesia, terutama di pantai yang mempunyai rataan
terumbu karang. Di dalam perairan rumput laut menempati posisi sebagai produsen primer
yang menyokong kehidupan biota lain pada tropik level yang lebih tinggi. Rumput laut
umumnya hidup di dasar laut dan substratnya dapat berupa pasir, pecahan karang (gravel),
karang mati, serta benda-benda keras yang terendamdi dasar laut (Kadi, 1989).
Makroalga (Rumput laut), hidup di laut yang tidak memiliki akar, batang dan daun
sejati dan pada umumnya hidup di dasar perairan dan menempel pada substrat (benda lain).
Fungsi akar (holdfas) pada rumput laut bukan sebagai penyerap makan melainkan sebagai alat
pelekat pada substrat. Rumput laut tidak memiliki akar, batang dan daun seperti umumnya
pada tanaman, maka rumput laut digolongkan ke

dalam tumbuhan tingkat rendah

(Thallophyta). Morfologi dari rumput laut merupakan salah satu dasar untuk membedakan
antara satu jenis alga dengan alga yang lain, bentuk thallus, kandungan pigmen, fungsi-fungsi
bagian rumput laut serta beberapa hal mendasar yang membedakan rumput laut.
Rumput laut (seaweed) dan lamun (seagrass) adalah tumbuhan yang memiliki
perbedaan. Rumput laut atau yang biasa disebut dengan seaweed merupakan tanaman
makroalga yang hidup di laut yang tidak memiliki akar, batang dan daun sejati dan pada
6

umumnya hidup di dasar perairan. Rumput laut disebut tanaman karena memiliki klorofil (zat
hijau daun) sehingga bisa berfotosintesis. Rumput laut juga sering disebut sebagai alga atau
ganggang pada daerah-daerah tertentu di Indonesia. Akan tetapi rumput laut (seaweed)
berbeda dengan lamun (seagrass). Lamun adalah tanaman yang hidup dilaut dan tidak
memiliki klorofil. Lamun merupakan kompetitor bagi rumput laut, dan biasanya tumbuh di
daerah dekat pantai yang cenderung kotor. Rumput laut bersama-sama dengan lamun adalah
kontributor penting pada rantai makanan di perairan pantai (Luning, 1990). Tumbuhan bentik
ini pada lingkungan laut terbukti sebagai penyedia habitat dan makanan untuk herbivora
(Dawes, 1981).
Makroalga tersebar di daerah litoral dan sublitoral. Daerah tersebut masih memperoleh
cahaya cukup, sehingga proses fotosintesis dapat berlangsung (Dawes, 1981). Makroalga
menyerap nutrisi berupa fosfor dan nitrogen dari lingkungan sekitar perairan, sehingga
makroalga dapat dijadikan bioindikator sekaligus sebagai filter kondisi perairan (Leviton,
2001).

7

III.
3.1

MATERI DAN METODE

Materi

3.1.1 Alat
Alat yang digunakan dalam acara praktikum ini adalah sebagai berikut : Plankton net,
Botol film, Line transek 100 m, Transek kuadran 1x1 m, Ember 20L, Kamera, HVS
laminating, Alat tulis, Botol Neril, Toples selai, Plastik bening 1kg, Kantong kresek, dan
Potongan kardus.
3.1.2 Bahan
Bahan yang digunakan dalam acara praktikum ini adalah sebagi berikut : Sampel
Makroalga, Sampel Mikroalga, Formalin 4%, Larutan KOH-KI, Larutan H2SO4 pekat,
Larutan MnSO4, Larutan Na2S2O3, dan Amilum.
3.2

Metode

3.2.1 Mikroalga
Penyaringan mikroalga pada 3 stasiun pengambilan sampel dengan pola tegak lurus
dengan garis pantai. Dilakukan dengan mengambil air sebanyak 100 liter dengan
menggunakan ember plastic bervolume 10 liter yang dituangkan kedalam plankton-net
bernomor 25. Sampel air yang tertampung didalam botol sampel pukul 12.00, 18.00, dan
06.00 untuk kemudian diberi larutan formalin 4% (pengawetan) untuk kemudian sampel
dibawa ke Laboratorium Jurusan Perikanan dan Kelautan, Fakultas Sains dan Teknik,
Universitas Jenderal Soedirman untuk diidentifikasi secara Eksitu. Sampel yang diperoleh
diidentifikasi dengan diamati menggunakan mikroskop sebanyak 10 kali lapang pandang,
terlebih dahulu dihomogenkan hingga merata dan air sampel diambil dengan menggunakan
pipet tetes.
3.2.2 Makroalga
Pengambilan sampel makroalgae (rumput laut) dilakukan dengan menggunakan transek
berukuran 1 m, dengan menempuh jarak tegak lurus dengan garis pantai sejauh 100 m.
8

adapun stasiun pengambilan sampel sebanyak 3 stasiun. Sampel yang didapatkan langsung
dikemas pada botol film, diformalin 4%, serta diberi label. Selanjutnya sampel diidentifikasi
dilaboratorium dengan menggunakan buku identifikasi.
3.2.2 Identifikasi Mikroalga
1. Sampel mikroalga dari air diambil dengan plankton-net dan dimasukkan ke botol
untuk pengamatan mikroalga dalam botol sampel dihomogenkan terlebih dahulu.
2. Dengan menggunakan pipet tetes, sampel mikroalga diambil satu tetes dan diteteskan
di atas object glass serta ditutup dengan cover glass selanjutnya diamati dibawah
mikroskop.
3. Identifikasi dan klasifikasi jenis mikroalga yang diperoleh menggunakan buku
identifikasi.
3.2.3

Isolasi Mikroalga
Metode isolasi dilakukan dengan meletakkan 3 tetes aquades yang telah diberi

medium pada objek glass. Kemudian dimasukkan 1 tetes sampel pada tetesan pertama
aquades. Isolasi mikroalga dilakukan dibawah mikroskop, dengan memindahkan mkroalga
target (pada tetesan pertama yang mengandung sampel) dengan cara meletakkan pipet kapiler
pada target (target tersedot dengan sendirinya masuk pipet kapiler). Kemudian mikroalga
target pada pipet kapiler diteteskan pada medium kedua dengan cara ditiup, pemindahan
target mikroalga terus dilakukan dari tetesan media ke tetesan media berikutnya sehingga
memperoleh mikroalga tunggal atau monospesies. Mikroalga tersebut dipindahkan ke dalam
tabung reaksi yang mengandung medium pertumbuhan mikroalga. Kultur diberi pencahayaan
selama 24 jam dan dikultur non aerasi.

9

3.2.4

Kultur Mikroalga

Secara umum proses kultur melalui tiga tahap :
1. Kultur murni (bibit)
2. Kultur semi massal
3. Kultur massal
Secara prinsip ketiga tahap tersebut sama hanya berbeda dalam hal skala media tumbuh.
 Kultur murni
Kultur ini bertujuan mengembangkan bibit mikroalga hasil sampling di alam, hasil
sampling di alam kemudian di isolasi sehingga didapatlah bibit murni. Bibit murni yang
dimaksud ialah bibit dimana dalam satu kumpulan mikroalga hanya terdiri dari 1 jenis
mikroalga.
proses kultur murni
1. Sampling di alam (laut)
2. Isolasi









Menggunakan metode isolasi goresan di cawan petri dengan media bactoagar.
0,5 gr bactoagar + 100 ml air laut dipanaskan menggunakan magnetik spiral
Diberi pupuk sesuai jenis mikroalga paling dominan pada sample
Disterilkan dengan autoklaf
Didinginkan lalu ditambah vit B12 untuk memacu pertumbuhan mikroalga
Bahan dituang ke cawan petri
Dilakukan isolasi dengan metode goresan
Pupuk yang digunakan adalah pupuk pro analis

1. Dipindahkan ke tabung reaksi dengan media agar (diberi pupuk)
2. Dipindahkan ke tabung reaksi dengan media cair (diberi pupuk)
3. Dipindahkan ke tabung erlenmayer secara bertahap, pertama dipindahkan pada tabung
erlenmayer volume 250 ml, setelah beberapa hari dipindahkan ke tabung erlenmayer
300 ml, terus sampai ke tabung erlenmayer volume 500 ml.
Lama waktu dan jenis pupuk yang digunakan berbeda tergantung jenis mikroalga.
Setelah tahap kultur murni selesai dilanjutkan ke tahap kultur semi massal
 Kultur semi massal
Proses kultur semi masal
Akuarium ukuran 750 liter dibersihkan
1. Diisi air laut, salinitas diturunkan dengan menambahkan air tawar. Nilai salinitas
optimal tergantung jenis mikroalga yang dikultur.
10

2. Disiapkan pupuk
3. Masukan bibit hasil kultur murni beserta pupuk ke dalam akuarium
4. Setelah beberapa hari kultur dipindahkan ke bak berukuran 1 ton.
Bak besar ini disterilkan terlebih dahulu menggunakan chlorin sebanyak 30 – 60 ppm. Stelah
24 jam chlorin dinetralkan menggunakan tiol sebanyak setengah jumlah chlorin yang diberi.
Setelah netral stock mikroalga dari akuarium dimasukan lalu diberi pupuk.
Setelah beberapa hari dilanjutkan ke tahap kultur massal
 Kultur massal
Proses kultur massal
1. Pencucian bak
2. Pengisian air
3. Sterilisasi menggunakan chlor lalu chlor dinetralkan menggunakan tiol atau natrium
bisulfat
4. Dimasukan pupuk
5. Dimasukan stok bibit hasil kultur semi massal
Setelah mancapai puncak pertumbuhan, mikroalga dipanen untuk dimanfaatkan sebagai pakan
ikan, pakan rotifera, penstabil kolam budidaya dan lain-lain.
Puncak pertumbuhan sekitar 7-8 hari.
Pupuk untuk kultur massal :
a. Kultur Chlorella Vulgaris, Spirulina patensis, nannocholopsis
Pupuk yg di gunakan :
• urea 70 ppm
• 2A 40 ppm
• TSP 40 ppm
• EDTA 5 ppm
• FeCl 1 ppm
b. Kultur Skeletonema costatum
• KNO3 50 ppm
• NaH2 PO4 15 ppm
• NaSiO3 10 ppm
• FeCl3 1 ppm
• EDTA 5 ppm
• Vitamin B12 0,001 ppm

11

c. Kultur Tetraselmis chuii
• Urea 80-100 ppm
• TSP 40-50 ppm
• 2A 10-20 ppm
• FeCl3 1-3 ppm
• EDTA 3-5 ppm
• Vitamin B12 0,001 ppm

3.2.5

Kualitas air
Pengambilan sampel kualitas air dilakukan dengan cara yaitu: insitu (lansung diukur

di lapangan) :


Oksigen terlarut (DO)
Oksigen terlarut diukur dengan menggunakan metode winkler (APHA, 1985). Sampel

air diambil menggunakan botol winkler 250 ml secara hati-hati agar tidak terjadi gelembung
udara. Kedalamnya ditambahkan berturut-turut MnSO4 dan larutan KOH-KI sebanyak 1 ml,
lalu dibolak-balik sampai homogeny dan didiamkan hingga terbentuk endapan. Lalu diberi
larutan H2SO4 pekat 1 ml, dan dibolak-balik hingga menjadi larut. Selanjutnya diambil 100 ml
dengan menggunakan gelas ukur dan dimasukkan ke dalam labu Erlenmeyer serta dititrasi
dengan menggunakn larutan Na2S2O3 0,025 Nsampai larutan berwarna kuning muda.
Kedalamnya ditambahkan indikator amilum 10 tetes hingga larutan berwarna biru tua,
kemudian titrasi hingga warna biru tua menjadi tepat hilang atau jernih.
Titrasi dilakukan secara duplokadar oksigen dihitung dengan rumus :
1000
O2 terlarut = 100 x p x q x 8 ml
Keterangan :
p : jumlah Na2 S2O3 yang terpakai (ml)
q : normalitas Na2 S2O3 (0,025)
12

8 : berat setara oksigen


Temperatur
Temperatur air diukur dengan menggunakan termometer air raksa. Termometer

dicelupkan kedalam badan perairan hingga air raksa konstan, angka yang tercatat dicatat.


Salinitas
Salinitas perairan diukur dengan menggunakan hand refraktometer. Dengan cara ambil

sampel air dengan menggunakan pipet, lalu teteskan air sampel pada wadah hand
refraktometer, kemudian tutup dan lihat pada teropong nilai salinitasnya.
3.3. Waktu dan Tempat
Praktikum Lapangan Algologi dilakukan di Perairan Teluk Awur, dan di BBPBAP
(Balai Besar Penelitian Benih Air Payau) Jepara, Jawa Tengah, tanggal 06 Mei 2014 sampai
dengan 07 Mei 2014. Untuk sampling Mikroalga dilakukan pukul 12.00, 18.00 dan 06.00
WIB sedangkan untuk Makroalga pukul 15.00.Praktikum Laboratorium Algologi dilakukan di
Laboratorium Pemanfaatan Sumber Daya Hayati Jurusan Perikanan dan Kelautan Universitas
Jenderal Soedirman, tanggal 08 Mei 2014 pukul 08.00 WIB.

13

IV.
4.1.

HASIL DAN PEMBAHASAN

Hasil

4.1.1. Makroalga
Table 1.Data Pengamatan Makroalga Tiap Stasiun.
S

Nama Spesies

Jum

tas

Substrat

lah (∑ ¿¿ ¿

iu
n
1
.

Padina
australis

6
5

Batu
karang

Dyctyota
batrayreslana

Batu
karang

2

Halimeda

2

macroloba

.

4

Sargassum

Karang
mati

6

vulgare

5

Batu
karang

Padina

Batu

australis

karang

Dyctyota
3
.

Batu

batrayreslana
Padina

6

karang
Pasir

australis

3

Batu

Sargassum sp.

3

karang

Halimeda

Batu

macroloba

karang

4.1.2. Mikroalga
Table 2.Data Pengamatan Mikroalga Tiap Jam.
J

Spesies

14

am
1
2.0

Chaetoceros sp.

-Thalassiothrix sp.

–Tribonema

sp.

0

Rhizosolenia sp.

-Ulothrix sp.

–Thalassiosira

Fragilaria sp.

–Planktothrix sp.

–Navicula sp.

Plectonema sp.

–Ceratium sp.

Rhaphidium sp.
Chaetoceros sp.

–Phormidium sp.
–Thalassiothrix sp.

sp.

1
8.0

Macroceros sp.

–Richtoriella sp.

0

Navicula sp.
Leptocylindrus sp.

–Ceratum sp.
–Richtoriella sp.

6.0

Skelonema sp.

–Macroceres sp.

0

Chaetoceros sp

-Stephanopyxis sp.

Microcystus sp.

–Ceratum sp.

Nitzschia sp.

–Phaeocystis sp.

Stauroneis sp.

– Phormidium sp.

0

Pengamatan parameter kualitas perairan.
4.1.3. pH
Nilai pH air laut di Teluk Awur adalah 7
4.1.4. DO ( Disolve oxygen)
Rumus DO=
a.

V x n x Bobot O 2 x 1000
Volume sample

Ket: n = 0.025,

Jam 12.00
DO=

58 x 0.025 x 8 x 1000
1000

=58x0.025x8
15

O2 = 8

=11.6 ppm
b.

Jam 18.00
DO=

38 x 0.025 x 8 x 1000
1000

=38x0.025x8
=7.6ppm
c.

Jam 06.00
DO=

30 x 0.025 x 8 x 1000
1000

=30x0.025x8
=6ppm
4.2.

Pembahasan

4.2.1. Makroalga
4.2.1.1. Sargassum vulgare
Sargassum vulgare hidupnya dilaut, ganggang berwarna pirang. Talus berbentuk pita,
bercabang-cabang dan melekat dengan alat pelekat yang berbentuk cakram.
Kingdom : Plantae
Divisi : Chlorophyta
Kelas : Phaeopyhta
Ordo :Fucales
Famili : Sargassaceae
Genus : Sargassum

Gambar 1. Sargassum

Vulgare
Spesies : Sargassum vulgare

16

4.2.1.2. Padina australis
Thallus dari Padina australis mirip seperti kebanyakan rumput laut dari genus padina,
yakni berbentuk seperti kipas, serta membentuk segmen-segmen lembaran tipis (lobus)
dengan garis-garis yang cenderung melingkar (radial).Sering ditemukan struktur thallusnya
berbentuk terpotong-potong. Rumput laut padina merupakan salah satu rumput laut coklat
yang mengandung kalsium karbonat pada bagian tubuhnya, terlihat dari warna keputihputihan yang berada pada thallusnya.Padina australis biasa ditemukan di pinggir pantai dan
bebatuan.
Kingdom : Plantae
Divisi : Phaeophyta
Klas : Phaeophyceae
Ordo : Dictyotales
Famili : Dictyotaceae

Gambar 2. Padina australis

Genus : Padina
Spesies : Padina australis
4.2.1.3. Dictyota bartayresiana
Thallus pipih seperti pita, mencapai panjang 5 cm dan lebar 2-3 mm bagian tepi
rata.Tumbuh menempel pada batu karang mati di daerah rataan terumbu.
Kingdom : Plantae
Divisi :Phaeophyta
Klas : Phaeophyceae
Ordo : Dictyotales

Gambar 3.Dictyota bartayresiana

Famili : Dictyotaceae
17

Genus :Dictyota
Spesies : Dictyota bartayresiana

4.2.1.4. Halimeda macroloba
Talus rimbun, blade kaku dan berkapur, holdfast seperti umbi yang
memanjang.Memiliki warna hijau dan pada saat kering memiliki warna hijau kekuningan,
habitatnya berada pada substrat berpasir.
Kingdom

: Plantae

Divisi : Chlorophyta
Kelas : Clholophyceae
Ordo : Bryopsidales
Famili : Halimideaceae
Genus : Halimeda Gambar 4. Halimeda macroloba
Spesies : Halimeda macroloba
4.2.1.5. Sargasum sp.
Thallus bulat dan agak pipih. Warna hijau,permukaan halus atau licin. Tumbuh
menempel pada batu di daerah terumbu terutama di pinggir anrata terumbu.
Kingdom : Plantae
Divisio : Phaeophyta
Class : Phaeophyceae
Ordo : Fucales
18

Family : Sargassaceae
Genus : Sargassum

Gambar 5. Sargassum sp

Species :Sargassum sp
4.2.2. Mikroalga
4.2.2.1 Chaetoceros sp.
Sel membentuk rantai yang melingkar, melengkung atau lurus.Setae yang panjang
muncul dari sudut-sudut sel. Sebuah spesies soliter sedikit yang ditemukan di Monterey
Bay.Salah satu genera terbesar diatom, sekitar 400 spesies, yang sebagian besar adalah
laut.Beberapa spesies membentuk spora dan / atau auxospores beristirahat.Chaetoceros spp.
sering komponen dominan dari komunitas fitoplankton di Monterey Bay, dan mereka tersebar
luas di seluruh lautan di dunia.
Kingdom : Chromista
Divisio : Ochrophyta
Class : Coscinodiscophyceae
Order : Chaetocerotales
Family : Chaetocerotaceae
Genus : Chaetoceros
Spesies : Chaetoceros sp.

4.2.2.2 Rhizosolenia sp.
Habitatnya di laut, genus plankton, diatom centric yang membentuk rantai, beristirahat
spora jarang terbentuk.Rhizosolenia korset terbentuk dari banyak segmen dalam kolom
longitudinal.
Kingdom : Chromista
Divisio : Ochrophyta
19

Kelas : Coscinodiscophyceae
Ordo : Rhizosoleniales
Famili : Rhizosoleniaceae
Genus : Rhizosolenia
Spesies :Rhizosolenia sp
4.2.2.3 Fragilaria sp.
Dari pandangan atas, frustules berbentuk batang sampai bentuk fusiform, simetri
bilateral, seringkali dengan ujung- ujung yang memipih, dan dengan 1 atau 2 penggembungan
pada sisi- sisinya. Dari pandangan samping berbentuk rectangular, dan biasanya dengan satu
atau lebih pita- pita interkalari.Koloni mangapung bebas atau sesil. Bentuk koloni mungkin
seperti pita dengan sel saling bertempelan pada bagian valvenya; atau bentuk benang zigzag
yang bertempelan pada bantalan gelatinous di ujung- ujung selnya; atau( agak jarang terjadi
bentuk bintang dimana sel- sel bertempelan pada sudut- sudutnya. Valve dihisi dengan aluralur transversal, atau lubang- lubang yang berderet transversal.Pseudoraphe yang terdapat
pada bidang longitudinal axis mungkin halus dan tak jelas, atau lebar dan jelas.Tergantung
spesifik, kromatofor bentuk cakram kecil, atau 1- 4 kromatofor benruk lembaran dengan
beberapa pirenoid.Pembiakan dengan auxospora trikoma satu pada setiap sel.
Kingdom : Chromista
Divisio : Ochrophyta
Class : Fragilariophyceae
Order : Fragilariales
Family : Fragilariaceae
Genus : Fragilaria
Spesies :Fragilaria sp.

20

4.2.2.4 Plectonema sp.
Kingdom : Eubacteria
Divisio : Cyanobacteria
Class : Cyanophyceae
Order : Oscillatoriales
Family : Oscillatoriaceae
Genus : Plectonema
Spesies :Plectonema sp.
4.2.2.5 Thalassiothrix sp.
Sel-sel yang sangat panjang yang dapat koloni soliter atau bentuk memancar.Sel bisa
lurus, sedikit melengkung, atau sigmoid, dan biasanya sangat bengkok.Katup meningkat di
pusat dan apeks, dan duri marjinal yang hadir.Bisa keliru untuk Thalassionema.
Kingdom: Chromista
Filum : Ochrophyta
Kelas : Fragilariophyceae
Ordo : Thalassionematales
Famili : Thalassionemataceae
Genus : Thalassiothrix
Spesies : Thalassiothrix sp.
4.2.2.6 Ulothrix sp.
Yaitu ganggang hijau yang berbentuk benang.Ganggang ini mempunyai ciri khas dalam
bentuknya, yaitu merupakan setengah lingkaran yang menyerupai telapak kuda. Cara
hidupnya menempel pada batu atau benda lain dengan sel khusus yang tidak berwarna.
Kingdom : Plantae
Divisio : Chlorophyta
Kelas : Ulvophyceae
Ordo : Ulotrichales
Famili : Ulotrichaceae
21

Genus : Ulothrix
Spesies :Ulothrix sp.

4.2.2.7 Ceratium sp.
Ceratium sp. merupakan salah satu jenis alga hijau memiliki pigmen warna hijau
dalam tubuhnya, yang termasuk dalam plankton. Memiliki ukuran tubuh yang mikroskopis,
bentuk tubuhnya memanjag dan tidak beraturan.Jenis alga ini hidup bebas di perairan
tawar.Tanduk Antapical dan apikal hadir, 1-4 tanduk berjumlah.Sel berat thecate dan kuning
pucat sampai warna emas.
Kingdom : Chromista
Divisio : Dinophyta
Class : Dinophyceae
Order : Gonyaulacales
Family : Ceratiaceae
Genus : Ceratium
Spesies :Ceratium sp.
4.2.2.8 Navicula sp.
Navicula sp.adalah jenis Alga dari kelas Bacillariophyceae.Ciri utama dari Alga ini
sebagaimana anggota kelas Bacillariophyceae lainnya adalah adanya penyisipan substansi
kersik pada dinding sel sehingga bentuk sel relative tetap dan umumnya berbentuk batang
atau silindris.Navicula sp. memiliki bentuk sel serupa gelondong dengan sedikit penebalan
pada ujung-ujung sel. Kloroplas pada Naviculasp.Terkonsentrasi pada bagian sentral sel. Alga
ini memiliki tipe reproduksi secara aseksual dengan membelah diri.

22

Kingdom : Chromista
Divisio : Ochrophyta
Class : Bacillariophyceae
Order : Naviculales
Family : Naviculaceae
Genus : Navicula
Species :Navicula sp.

4.2.2.9 Nitzschia sp.
Nitzschia adalah yang terbesar tunggal diatom genus dan salah satu yang paling
umum, dengan spesies yang terjadi di lingkungan yang ekstrim seperti air organik tercemar.
Nitzschia strain sigma dalam koleksi kultur diisolasi dari hiper Laut Aral saline. Data
molekuler saat ini diperoleh untuk jenis Nitzschia palea dalam upaya untuk menentukan
batas-batas spesies dalam kelompok ini. The Nitzschia fonticola strain menunjukkan sebuah
penurunan seksualitas yang luar biasa dengan produksi pedogamous dari auxospores di
gametangia tidak berpasangan. Di Nitzschia longissima sistem kawin heterotolik.Pengurangan
eksperimental dari ukuran sel ini dimungkinkan dengan pembedahan memotong ujung sel
dengan silet.
Kingdom : Chromista
Phylum : Ochrophyta
Class : Bacillariophyceae
Order : Bacillariales
Family : Bacillariaceae
Genus : Nitzschia
Species :Nitzschia sp.
4.2.2.10 Richtoriella sp.
Kingdom : Chromista
Divisio : Ochrophyta
23

Class : Coscinodiscophyceae
Order : Rhizosoleniales
Family : Rhizosoleniaceae
Genus :Rhizosolenia
Spesies :Richtoriella sp.
4.2.3. Kualitas Air
4.2.3.1 Oksigen terlarut ( dissolve oxygen)
Oksigen memegang peranan penting sebagai indikator kualitas perairan, karena
oksigen terlarut berperan dalam proses oksidasi dan reduksi bahan organik dan anorganik.
Selain itu, oksigen juga menentukan biologis yang dilakukan organisme aerobik maupun
aerobik. Dalam kondisi aerobik, peranan oksigen adalah untuk mengoksidasi bahan organik
dan anorganik dengan hasil akhirnya adalah nutrien yang pada akhirnya dapat memberikan
kesuburan perairan. Dalam kondisi anaerobik, oksigen yang dihasilkan akan mereduksi
senyawa-senyawa kimia menjadi lebih sederhana dalam nutrien dan gas. Karena proses
oksidasi dan reduksi inilah maka peranan oksigen terlarut sangata penting untuk membantu
mengurangi beban pencemaran pada perairan secara perlakuan aerobik yang ditunjukkan
untuk memurnikan air buangan industri dan rumah tangga (Salmin, 2005).
Table 3.Tingkat Pencemaran Perairan Berdasarkan DO dan BOD
Tingkat
pencemaran

Parameter
DO ( ppm)

BOD

Rendah
Sedang

>5
0-5

0 - 10
10 – 20

Tinggi

0

25

Berdasarkan hasil DO yang didapatkan pada praktikum lapang di Teluk Awur, kisaran
DO pada jam 12.00 adalah sebesar 5,8 ppm, pada jam 18.00 kisaran oksigen terlarut adalah
3,8 ppm dan pada jam 06.00 kisaran oksigen terlarut sebesar 3 ppm. Apabila nilai oksigen
terlarut di Teluk Awur di rata-ratakan mendapat nilai sebesar 4,2 ppm. Menurut Wirosarjono
24

(1974) apabila kisaran DO 0-5 ppm berarti tingkat pencemaran di daerah tersebut sedang.
Tingkat pencemaran yang tergolong sedang ini dapat diakibatkan oleh masukan air dari
sungai-sungai yang bermuara di Teluk Awur, sungai tersebut membawa material-material
padat seperti sedimen dan zat kimiawi yang dapat memperlambat penyerapan oksigen dalam
air maupun mengganggu proses fotosintesis tumbuhan laut untuk memproduksi oksigen.
Perairan Teluk Awur mempunyai kondisi perairan yang berbeda, yaitu perairan tertutup dan
terbuka.Perbedaan kondisi perairan tersebut menyebabkan perbedaan faktor fisika dan
kimia.Akan tetapi faktor yang lebih menonjol pada perairan ini adalah arus dan gelombang.
Akibat dari arus dan gelombang tersebut menimbulkan turbulensi yng dapat mempengaruhi
kadar oksigen terlarut itu pula (Brafield, 1978 dalam Ruswahyuni, 2010).
4.2.3.2 PH (derajat keasaman)
Rendahnya nilai Ph dekat pantai di karenakan banyaknya kandungan bahan organik
darat yang terbawa melalui aliran sungai. Berdasarkan baku mutu air laut untuk biota laut
yang telah ditetapkan keputusan menteri lingkungan hidup, masih sesuai untuk kehidupan
rumput laut (Affan, 2010).

25

26

IV.

KESIMPULAN

Berdasarkan hasil dari praktikum lapang, maka dapat diperoleh kesimpulan sebagai
berikut:
a. Makroalga adalah jenis alga yang makroskopis (dapat dilihat dengan mata
telanjang) yang hidupnya pada substrat seperti pasir, batu maupun karang.
Sedangkan mikroalga adalah jenis alga yang mikroskopis (dilihat dengan
mikroskop) yang hidupnya bisa sebagai plankton maupun menempel dan
berasosiasi dengan organisme lain.
b. Pengambilan sampel makroalga dilakukan dengan handsorting, bisa memakai alat
bantu berupa snorkel ataupun SCUBA.
c. Pengambilan sampel mikroalga dibantu dengan alat plankton net.
d. Makroalga yang didapatkan diantaranya Padina australis, Dictyota batrayresiana,
Halimeda makrolaba, Sarassum vulgare dan Sargassum sp. Dan spesies mikroalga
yang didapatkan adalah Plectonema sp., Raphidium convolutum, Thalassiothrix
dolicatulla, Ulothrix sp., Rhizosolenia sp., Planktothrix isothrix, Tribonema
ambiguum, Chaetocheros sp., Fragilaria sp., Thalassiosira grarida, Ceratium sp.,
Phormidium sp., Thalassionema sp., Skeletonema sp., Leptocylindrus sp.,
Microcystis sp., Nitzschia sp., Stauroneis sp., Richtoriella sp., Stephanopyxir,
Ceratium sp., Phaecystyc sp., Phorvidium sp., dan Navicula sp.

27

28

DAFTAR PUSTAKA
Affan, M.J. 2010. Analisis Potensi Sumber daya Laut Dan Kualitas Perairan Berdasarkan
Parameter Fisika Dan Kimia Di Pantai Timur Kabupaten BangkaTengah.. Jurnal
ilmiah Budidaya perairan Universitas syiah kuala: Vol.2 (10) : 99 - 113
Dawes CJ. 1981. Marine Botany. New York: John Wiley dan Sons, University of South
Florida.
Effendy, H. 2003. Telaah Kualitas Air. Kanisisus : Yogyakarta.
Fardiaz, S., 1992. Polusi Air dan Udara. Kanisisus. Yogyakarta.
Jacquet et al,. 2013. First description of a cyanophage infecting the2 cyanobacterium
Arthrospira platensis (Spirulina). Journal of Applied Phycology. Vol.25: 195-203.
Kadi, Achmad, 1989. Sebaran Algae Halimeda di Indonesia, Penelitian Oseanologi Perairan
Indonesia Buku I, Biologi, Geologi, Lingkungan dan OseanografiLevinton, J.S.
2001. Marine Biology: Function, Biodiversity, Ecology. 2nd ed. Oxford University
Press, New York.
Kadi, Achmad dan Atmadja, Wanda S., 1988. Rumput Laut (Algae) (Jenis, reproduksi,
produksi, budidaya dan pasca-panen), Seri Sumber Daya Alam, 141 P3O-LIPI
Kharismawati, I.N. 2008. Studi Hubungan Kerapatan Vegetasi Lamun Dengan Laju
Sedimentasi di Perairan Teluk Awur Dan Bandengan Jepara. [Skripsi]. Fakultas
Ilmu Kelautan Dan Perikanan, Universitas Diponegoro, Semarang. 65 hlm.
Leviton, J.S. 2001. Marine Biology: Function, Biodiversity, Ecology, 2nd ed. Oxford
University Press, New York.
Luning, K.1990. Seaweed There Environment, Biogeography and Ecophysiology. John Wiley
and Sonns Inc., New York.
Odum, E. P. 1971. Fundamental of ecology, 3rd ed. Saunders. Philadelphia.
Philip, Sze. 1993. A biology of the algae, 2nd ed. Wm. C. Brown Publishers. Dubuque, Iowa
Ruswahyuni. 2010. Populasi Dan Keanekaragaman Hewan MakrobenthosPada Perairan
Tertutup Dan Terbuka Di Teluk Awur, Jepara. Jurnal Ilmiah Perikanan dan Ilmu
Kelautan. Vol. 2 (1): 11-21.
Salmin. 2005. Oksigen terlarut (DO) dan kebutuhan oksigen biologi (BOD) sebagai salah
satu indikator untuk menentukan kualitas perairan. Oseana. Vol. XXX (3): 21-26.
Sumich, J.L. 1979. An introduction to the biology of marine life. C. Brown Co. Publishing,
lowa City.
Sutika, N., 1989. Ilmu Air. Universitas Padjadjarang. BUNPAD Bandung : Bandung.

29