uji aktivitas antibakteri ekstrak etanol, fraksi n-heksan, fraksi kloroform dan fraksi etilasetat daun jambu mete (aNACARDIUM oCCIDENTALE l.)

Lampiran 2. Gambar tumbuhan jambu mete

Lampiran 3. Gambar daun segar dan simplisia dari daun jambu mete (Anacardium occidentale L)

Daun jambu mete segar(Anacardium occidentale L)

Lampiran 4.Bagan pembuatan ekstrak dan fraksinasi

Dimasukkan kedalam wadah

Ditambahkan etanol80% sampai serbuk terendam sempurna

Direndam selama 5 hari terlindung dari cahaya, sambil sesekali diaduk

Disaring

Dimaserasi kembali dengan pelarut etanol 80%

Dipekatkan dengan rotary evaporator Dikeringkan dengan freeze dryer

Ditambah sedikit etanol

Dimasukkan ke dalam corong pisah Ditambah akuades

Ditambah dengan n-heksan

Dimasukkan ke dalam

corong pisah

Ditambah dengan kloroform

Ditambah dengan etilasetat

Di rotary evaporator Di freeze dryer Serbuk simplisia daun jambu mete

Maserat Ampas

Maserat Ampas

Ekstrak etanol

Fraksi n-heksan Sisa

Fraksi n-heksan

Fraksi kloroform Sisa

Fraksi kloroform

Fraksi etilasetat _Sisa

Lampiran 5. Bagan pengujian aktivitas antibakteri

Diambil 1 ose

Disuspensikan ke dalam 10 ml NB

Diukur kekeruhan pada panjang gelombang 580 nm sampai diperoleh transmitan 25 %

Dimasukkan 0,1 ml inokulum ke dalam cawan petri

Ditambahkan 20 ml media nutrient agar ke dalam cawan petri

Dihomogenkan dan dibiarkan memadat

Ditanamkan silinder logam Dimasukkan 0,1 ml ekstrak dengan berbagai konsentrasi Diinkubasi pada suhu 36-37ºC selama 18-24 jam

Diukur diameter daerah hamabatan di sekitar silinder logam

Stok kultur

Inokulum bakteri

Media padat

Lampiran 6. Hasil pengukuran diameter daerah hambat ekstrak etanol daun jambu mete terhadap pertumbuhan bakteriStaphylococcus epidermidis

Konsentrasi Ekstrak

etanol (mg/ml)

Diameter daerah hambatan (mm) D1 (mm) D2 (mm) D3 (mm) D* (mm)

500 24,40 23,70 23,10 23,73

400 22,60 23,45 23,05 23,03

350 21,05 20,50 21,50 21,01

300 20,05 19,80 19,70 19,85

250 19,40 19,30 19,45 19,38

200 18,10 18,50 19,10 18,56

150 17,90 17,00 17,25 17,38

100 16,60 16,10 16,00 16,23

75 15,00 15,20 15,10 15,10

50 14,20 13,60 14,20 14,20

25 13,40 11,10 13,00 13,00

10 12,60 10,30 12,10 12,10

5 - - - -

Blanko - - - -

Keterangan: (D*) diameter hambatan rata-rata, (-) tidak terdapat daerah hambatan, Blanko = DMS

Lampiran 7. Hasil pengukuran diameter daerah hambat ekstrak etanol daun jambu mete terhadap pertumbuhan bakteri Streptococcus mutans

Konsentrasi Ekstrak

etanol (mg/ml)

Diameter daerah hambatan (mm) D1 (mm) D2 (mm) D3 (mm) D* (mm)

500 22,30 21,50 22,60 22,13

400 20,20 17,60 21,40 19,73

350 19,55 16,10 21,15 18,93

300 18,70 16,05 20,05 18,26

250 17,00 16,00 19,00 17,33

200 16,50 15,70 17,05 16,41

150 16,30 15,50 15,45 15,75

100 16,05 13,50 15,05 15,01

75 15,25 13,05 13,05 13,78

50 13,05 12,00 13,00 12,68

25 13,00 11,85 12,50 12,45

10 12,50 10,50 10,30 11,10

5 - - - -

Blanko - - - -

Keterangan: (D*) diameter hambatan rata-rata, (-) tidak terdapat daerah hambatan, Blanko = DMSO

Lampiran 8. Hasil pengukuran diameter daerah hambat ekstrak etanol daunjambu mete terhadap pertumbuhan bakteri Staphylococcus aureus

Konsentrasi Ekstrak

etanol (mg/ml)

Diameter daerah hambatan (mm) D1 (mm) D2 (mm) D3 (mm) D* (mm)

500 22,00 21,50 22,50 22,00

400 21,70 19,00 22,40 21,03

350 18,05 18,40 19,20 18,55

300 17,60 17,10 18,00 17,56

250 16,75 16,60 17,50 16,95

200 15,25 15,10 16,10 15,48

150 15,05 15,00 15,40 15,15

100 15,00 14,40 15,20 14,73

75 14,05 13,50 14,10 13,88

50 13,05 12,50 13,50 13,01

25 13,00 11,90 12,00 12,30

10 12,00 10,10 11,30 11,13

5 - - - -

Blanko - - - -

Keterangan: (D*) diameter hambatan rata-rata, (-) tidak terdapat daerah hambatan, Blanko = DMSO

Lampiran 9. Hasil pengukuran diameter daerah hambat ekstrak etanol daun jambu mete terhadap pertumbuhan bakteri Escherichia coli

Konsentrasi Ekstrak

etanol (mg/ml)

Diameter daerah hambatan (mm) D1 (mm) D2 (mm) D3 (mm) D* (mm)

500 22,60 21,60 21,50 21,90

400 21,10 21,50 21,00 21,20

350 20,20 20,00 20,60 20,26

300 19,10 19,00 19,60 19,23

250 19,00 18,10 19,00 18,70

200 18,30 17,50 18,00 17,90

150 17,05 16,40 16,50 16,65

100 16,00 15,40 16,00 15,80

75 15,00 15,10 15,20 15,10

50 14,20 12,10 15,05 13,78

25 12,20 11,00 13,30 12,16

10 12,05 10,30 10,60 10,98

5 - - - -

Blanko - - - -

Keterangan: (D*) diameter hambatan rata-rata, (-) tidak terdapat daerah hambatan, Blanko = D

Lampiran 10. Hasil pengukuran diameter daerah hambat fraksi etilasetat daunjambu mete terhadap pertumbuhan bakteri Staphylococcus epidermidis

Konsentrasi Fraksi etilasetat

(mg/ml)

Diameter daerah hambatan (mm) D1 (mm) D2 (mm) D3 (mm) D* (mm)

500 26,70 26,35 25,50 26,18

400 24,80 25,70 24,60 25,03

350 23,90 25,70 23,50 24,36

300 23,90 24,50 23,10 23,83

250 23,45 24,30 22,45 23,40

200 22,10 24,25 22,15 22,83

150 21,05 22,70 21,70 21,81

100 19,40 21,60 20,50 20,50

75 18,05 21,10 18,60 19,25

50 17,00 20,80 17,40 18,40

25 15,00 18,80 15,50 16,43

10 14,50 17,50 16,45 16,15

5 13,20 13,05 13,15 13,13

Blanko - - - -

Keterangan: (D*) diameter hambatan rata-rata, (-) tidak terdapat daerah hambatan, Blanko = DMSO

Lampiran 11. Hasil pengukuran diameter daerah hambat fraksi etilasetat daunjambu mete terhadap pertumbuhan bakteri Streptococcus mutans

Konsentrasi Fraksi etilasetat

(mg/ml)

Diameter daerah hambatan (mm) D1 (mm) D2 (mm) D3 (mm) D* (mm)

500 23,90 22,60 23,20 23,23

400 22,80 21,40 22,20 22,13

350 21,40 21,15 20,55 21,03

300 20,60 21,05 20,20 20,61

250 20,30 20,45 19,55 20,10

200 19,90 20,05 18,45 19,46

150 19,60 18,05 18,20 18,61

100 19,55 18,00 17,05 18,20

75 17,70 17,50 16,45 17,21

50 15,40 16,30 15,05 15,58

25 14,30 14,70 15,00 14,66

10 14,00 14,25 14,35 14,20

5 13,25 13,15 13,00 13,33

Blanko - - - -

Keterangan : (D*) diameter hambatan rata-rata, (-) tidak terdapat daerah hambatan, Blanko = DMSO

Lampiran 12. Hasil pengukuran diameter daerah hambat fraksi etilasetat daun jambu mete terhadap pertumbuhan bakteri Staphylococcus aureus

Konsentrasi Fraksi etilasetat

(mg/ml)

Diameter daerah hambatan (mm) D1 (mm) D2 (mm) D3 (mm) D* (mm)

500 24,30 22,40 22,05 22,91

400 22,45 20,70 21,50 21,55

350 21,10 21,60 20,15 20,95

300 20,60 20,45 19,80 20,28

250 19,70 19,45 19,20 19,45

200 19,60 19,20 18,00 18,93

150 19,05 19,00 17,60 18,55

100 18,30 18,60 17,15 18,01

75 17,20 17,05 16,45 16,90

50 17,00 16,50 15,60 16,36

25 15,50 15,25 14,20 14,98

10 14,70 14,70 14,05 14,48

5 14,15 14,15 14,20 14,11

Blanko - - - -

Keterangan:(D*) diameter hambatan rata-rata, (-) tidak terdapat daerah hambatan, Blanko = DMSO

Lampiran 13. Hasil pengukuran diameter daerah hambat fraksi etilasetat daun jambu mete terhadap pertumbuhan bakteri Escherichia coli

Konsentrasi Fraksi etilasetat

(mg/ml)

Diameter daerah hambatan (mm) D1 (mm) D2 (mm) D3 (mm) D* (mm)

500 26,50 25,40 26,20 26,03

400 25,05 24,15 25,10 24,76

350 24,70 23,70 24,40 24,26

300 23,30 22,15 23,10 22,85

250 23,05 21,70 22,00 22,25

200 22,05 20,15 20,15 20,78

150 21,30 21,05 20,00 20,78

100 21,05 20,50 19,50 20,35

75 20,70 19,45 18,00 19,38

50 18,15 19,05 17,45 18,21

25 16,10 18,10 16,25 16,81

10 14,45 16,25 15,00 15,23

5 14,15 14,05 14,10 14,10

Blanko - - - -

Keterangan: (D*) diameter hambatan rata-rata, (-) tidak terdapat daerah hambatan, Blanko = DMSO

Lampiran 14. Hasil uji aktivitas antibakteri ekstrak etanol daun jambu mete terhadap bakteri Staphylococcus epidermidis

Lampiran15. Hasil uji aktivitas antibakteri ekstrak etanol daun jambu mete terhadap bakteri Streptococcus mutans

Lampiran16. Hasil uji aktivitas antibakteri ekstrak etanol daun jambu mete terhadap bakteri Staphylococcus aureus

Lampiran 17. Hasil uji aktivitas antibakteri ekstrak etanol daun jambu mete terhadap bakteri Escherichia coli

Lampiran 18. Hasil uji aktivitas antibakteri fraksi n-heksan daun jambu mete terhadap bakteri Staphylococcus epidermidis

Lampiran 19. Hasil uji aktivitas antibakteri fraksi n-heksan daun jambu mete terhadap bakteri Streptococcus mutans

Lampiran 20. Hasil uji aktivitas antibakteri fraksi n-heksan daun jambu mete terhadap bakteri Staphylococcus aureus

Lampiran 21. Hasil uji aktivitas antibakteri fraksi n-heksan daun jambu mete terhadap bakteri Escherichia coli

Lampiran 22. Hasil uji aktivitas antibakteri fraksi kloroform daun jambu mete terhadap bakteri Staphylococcus epidermidis

Lampiran 23. Hasil uji aktivitas antibakteri fraksi kloroform daun jambu mete terhadap bakteri Streptococcus mutans

Lampiran 24. Hasil uji aktivitas antibakteri fraksi kloroform daun jambu mete terhadap bakteri Staphylococcus aureus

Lampiran 25. Hasil uji aktivitas antibakteri fraksi kloroform daun jambu mete terhadap bakteri Escherichia coli

Lampiran 26. Hasil uji aktivitas antibakteri fraksi etil asetat daun jambu mete terhadap bakteri Staphylococcusepidermidis

Lampiran 27. Hasil uji aktivitas antibakteri fraksi etil asetat daun jambu mete terhadap bakteri Streptococcusmutans

Lampiran 28. Hasil uji aktivitas antibakteri fraksi etil asetat daun jambu mete terhadap bakteri Staphylococcus aureus

Lampiran 29. Hasil uji aktivitas antibakteri fraksi etil asetat daun jambu mete terhadap bakteri Escherichia coli

DAFTAR PUSTAKA

Abulude, F.O., Ogunkoya, M.O., and Adebote, V.T. (2009). Phytochemical and antibacterial investigations of crude extracts Of Leaves and stem barks Of Anacardium occidentale. Continental J. Biological Sciences 2: 12-19. Anonimous. (1982). The Oxoid Manual of Culture Media, Ingredient and other

Laboratory Service, edisi ke-5. Basingstoke-England. Halaman 32, 64. Ayepola, O.O and Ishola, R.O. (2009). Evaluation Of Antimicrobial activity Of

Anacardium occidentale Linn. Advances in Medical and Dental Sciences. 3(1): 1-3.

Brooks, G.F., Jawetz, Melnick., and Adleberg’s. (2001). Mikrobiologi KedokteranEdisi I. Jakarta: Salemba Medika. Halaman 286

Cseke, L.J., Ara, K., Kaufman, P.B., Setzer, W.N.,and Brielmann, H.L. (2006). The Chemical Components ol Plants. New York: Taylor&Francis CRC. Halaman 22, 25

Dahake, A.P., Vishal D.Joshi., and Arun B.Joshi. (2009). Antimicrobial Screening of Different Extract of Anacardium occidentale Linn. Leaves. International Journal of ChemTech Research. 1(4): 856-858.

Dalimartha. (2000). Atlas Tumbuhan Obat Indonesia. Jakarta: Trubus Agriwidya. Halaman 80.

Depkes RI. (1995), Materia Medika Indonesia Jilid IV.Jakarta: Departemen Kesehatan Republik Indonesia. Halaman 43-51.

Depkes RI. (2008). Farmakope Herbal Indonesia Edisi I. Jakarta: Departemen Kesehatan Republik Indonesia. Halaman 36.

Ditjen POM. (1979). Farmakope Indonesia. Edisi III. Jakarta: Depkes RI.Halaman 9.

DitjenPOM.(1995). Farmakope Indonesia. Edisi IV. Jakarta: Departemen Kesehatan RI. Halaman 891-898, 1154.

Ditjen POM. (2000). Parameter Standar Umum Ekstrak Tumbuhan Obat. Jakarta: Depkes RI. Halaman 1, 10-11

Duke, James A., Mary Jo B.G., and Andrea, R.O. (2009). Medicinal Plants of Latin America. New York: CRC Press. Halaman 37.

Dwidjoseputro, D. (1987). Dasar-Dasar Mikrobiologi. Cetakan Kesembilan. Jakarta: Djambatan. Halaman 22, 166-168

Farnsworth, N.R. (1966). Biologycal and Phytochemical Screening of Plants.Journal of Pharmaceutical Science. 55(3): 262-264.

Harborne, J.B. (1987). Metode Fitokimia. Penerjemah: Kosasih Padmawinata dan Iwang Soediro. Bandung: Penerbit ITB. Halaman 147

Hardv, S.P. (2002). Human Microbiology. New York: Taylor&Francis Inc. Halaman 3-5

Hawley, L.B. (2001). Intisari Mikrobiologi dan Penyakit Infeksi. Jakarta: Penerbit Hipokrates. Halaman 46-47, 72-73

Heinrich. (2009). Farmakognosi dan Fitoterapi. Jakarta: Penerbit Buku Kedokteran EGC. Halaman 82, 85, 103

Igbinosa, O.O., Igbinosa, E.O., and Aiyegoro, O.A. (2009). Antimicrobial Activity and Phytochemical Screening of Stem Bark Extracts From Jatropha curcas (Linn). 3(2): 58-62.

Irianto, K. (2007). Mikrobiologi. Bandung: CV Yrama Widya. Halaman 10-12 Jayalakshmi, B., Raveesha, K.A., and Amruthesh, K.N. (2011). Phytochemical

Investigations and Antibacterial Plants Against Pathogenic Bacteria. Journal Of Applied Pharmaceutical Science. 01(05): 124-128

Jawetz, E. (2001). Mikrobiologi Kedokteran. Penerjemah: Mudi Hardi, E., dkk. Surabaya: Penerbit Salemba Medika. Halaman 318, 372

Kumala dan Oktora, R. (2006). Pemanfaatan Obat Tradisional Dengan Pertimbangan Manfaat dan Keamanannya.Majalah Ilmu Kefarmasian. 3(1): 1-7.

Lay, B.W. (1994). Analisis Mikroba di Laboratorium. Jakarta: PT. Raja Grafindo Persada. Halaman 109.

Majumbar, S.H., Chakraborthy, G.S., and Kulkarni, K.S. (2008). Medicinal Potentials of Semecarpus Anacardium Nut. Journal of Herbal Medicine and Toxicology. 2(2): 9-13.

Markham, K.R. (1982). Technique of Flavonoid Identification. Terjemahan K. Padmawinata. (1988). Cara Mengidentifikasi Flavonoid. Bandung: ITB press. Halaman 1.

Masaki, H.,and Isao Kubo. (1991). Antibacterial Agents from The Cashew Anacardium occidentale (Anacardiaceae) Nut Shell Oil. Journal Of Agricultural Food Chemistry. 39: 418-421.

Pratiwi, S.T. (2008). Mikrobiologi Farmasi. Jakarta: Erlangga. Halaman 23, 111-117

Pelczar, M.J., dan Chan, E.C.S. (2006). Dasar-Dasar Mikrobiologi. Jakarta: Penerbit Universitas Indonesia. Halaman 140-199

Robinson, T. (1995). Kandungan Organik Tumbuhan Tinggi. Edisi keenam. Bandung: Penerbit ITB. Halaman 52, 191, 193

Saleem, M., Mamona, N., and Young, S.L. (2009) Antimicrobial Natural Products: An Update On Future Antibiotic drug Candidates. 27: 238-254. Sherley. (2008). Taksonomi Koleksi Tanaman Obat Kebun Tanaman Obat

Citeureup. Jakarta: BPOM RI. Halaman 8

Vijayakumar and Kalaichelvan, P.T. (2011). Antioxidant And Antimicrobial Activity Using Different Extracts of Anacardium Occidentale L.International Journal of Applied Biology And Pharmaceutical Technology. 2(3): 436-443.

Watimena. (1991). Farmakodinamik dan Terapi Antibiotik. Yogyakarta: Universitas Gadjah Mada Press. Halaman 60-61

WHO. (2000). General Guidlines for Methodologies on Research and Evaluation of Traditional Medicine. Geneva: World Health Organization. Halaman 1.

Wonghirundecha, S.,and Punnanee, S. (2012). Antibacterial Activity of Selected Plant By Product Against Food-borne Pathogenic Bacteria. 39: 116-120.

BAB III

METODE PENELITIAN

Metode penelitian yang dilakukan adalah metode eksperimental, meliputi penyiapan bahan, skrining fitokimia, dan pembuatan ekstrak. Pengujian aktivitas antibakteri dengan metode difusi agar menggunakan silinder logam. Parameter yang dilihat adalah besarnya diameter hambat pertumbuhan mikroba.

3.1 Alat

Alat yang digunakan dalam penelitian ini adalah alat–alat gelas, autoklaf (Fisons), blender (Philips), bola karet, desikator, freeze dryer (Modulio), inkubator (Fiber Scientific), jangka sorong, jarum ose, kamera digital (Canon), kompor (Sharp), Laminar Air Flow Cabinet (Astec HLF 1200L), lemari pendingin (Toshiba), neraca listrik (Mettler AE 200), pinset, pipet mikro (Eppendorf),rotary evaporator (Haake D), silinder logam, dan spektrofotometri visibel (Dynamic).

3.2 Bahan

Bahan yang digunakan dalam penelitian ini adalah serbuk simplisia dari daun jambu mete (Anacardium occidentale). Bahan kimia yang digunakan berkualitas pro analisa, kecuali dinyatakan lain: alfa naftol, asam klorida pekat, asam asetat anhidrida, asam asetat glasial, asam nitrat pekat, asam sulfat pekat, benzen, besi (III) klorida, bismut (III) nitrat, etanol, eter minyak tanah, etilasetat, n-heksan, iodium. Isopropanol, kalium iodida, kloralhidrat, kloroform, metanol, natrium hidroksida, natrium klorida, natrium sulfat anhidrat, raksa (II) klorida,

serbuk magnesium, serbuk zinkum, timbal (II) asetat, dan toluena. Nutrient agar, Staphylococcusepidermidis (ATCC 6918), Streptococcus mutans(ATCC 25175), Staphylococcus aureus(ATCC 6538)dan Escherichia coli(ATCC 25922).

3.3 Pengumpulan Bahan Tumbuhan

Pengumpulan bahan tumbuhan dilakukan secara purposif yaitu tanpa membandingkan dengan tumbuhan yang sama dari daerah lain. Sampel yang digunakan adalah daun jambu mete (Anacardium occidentale) yang masih segar, yang diambil dari Desa Muliorejo, Kecamatan Sunggal, Kabupaten Deli Serdang, Propinsi Sumatera Utara.

3.3.1 Identifikasi tumbuhan

Identifikasi sampel dilakukan diHerbarium Medanense, Universitas Sumatera Utara. Hasil identifikasi tumbuhan dapat dilihat pada Lampiran 1, halaman 43 dan gambar tumbuhan dapat dilihat pada Lampiran 2, halaman 44. 3.3.2 Pengeringan simplisia

Daun jambu mete yang telah dikumpulkan sebanyak 2,5 kg dicuci bersih dengan air mengalir, kemudian ditiriskan lalu ditimbang, selanjutnya bahan dikeringkan dengan cara diangin-anginkan di udara terbuka terlindung dari sinar matahari langsung, setelah kering diserbuk dan disimpan dalam kantung plastik ditempat yang terlindung dari sinar matahari.

3.4 Pembuatan Pereaksi

Pembuatanlarutan pereaksi menurut Depkes (1995) untuk asam klorida 2N, asam sulfat 2N, besi (III) klorida 1%, bouchardat, mayer, molish, natrium

hidroksida 2N dan timbal (II) asetat 0,4 M. Liebermann-Bouchard menurut Harborne (1987). Pereaksi Dragendorff menurut Zweig dan Sherma (1987).

3.4.1 Pereaksi asam klorida 2 N

Sebanyak 16,67 ml asam klorida pekat dilarutkan dalam air suling hingga volume 100 ml.

3.4.2 Pereaksi asam sulfat 2 N

Sebanyak 5,4 ml asam sulfat pekat dilarutkan dalam air suling hingga volume 100 ml.

3.4.3 Pereaksi besi (III) klorida 1%

Sebanyak 1 g besi (III)klorida dilarutkan dalam air suling hingga 100 ml. 3.4.4 Pereaksi Bouchardat

Sebanyak 4 g kalium iodida, dilarutkan dalam sedikit air suling kemudian ditambahkan 2 g iodium, setelah semuanya larut ditambahkan air suling hingga 100 ml.

3.4.5 Pereaksi Dragendorff

Sebanyak 0,85 g bismut (III) nitrat ditimbang, kemudian dilarutkan dalam 100 ml asam asetat glasial ditambahkan 40 ml air suling. Pada wadah lain ditimbang 8 g kalium iodida lalu dilarutkan dalam 20 ml air suling, lalu campurkan kedua larutan sama banyak. Kemudian ditambahkan 20 ml asam asetat glasial dan diencerkan dengan air suling hingga 100 ml.

3.4.6 Pereaksi Liebermann-Burchard

Sebanyak 5 ml asam asetat anhidrida dicampurkan dengan 5 ml asam sulfat pekat kemudian ditambahkan etanol hingga 50 ml.

3.4.7 Pereaksi Mayer

Sebanyak 1,35 g raksa (II) klorida dilarutkan dalam 60 ml air suling. Pada wadah lain sebanyak 5 g kalium iodida dilarutkan dalam 10 ml air lalu campurkan keduanya dan ditambahkan air suling hingga 100 ml.

3.4.8Pereaksi molish

Sebanyak 3 g alfa-naftol ditimbang, kemudian dilarutkan dalam asam nitrat 0,5 N hingga volume 100 ml.

3.4.9 Pereaksi natrium hidroksida 2 N

Sebanyak 8,002 g kristal natrium hidroksida dilarutkan dalam air suling hingga 100 ml.

3.4.10 Pereaksi timbal (III) asetat 0,4 M

Sebanyak 15,17 g timbal (II) asetat dilarutkan dalam air bebas karbondioksida hingga 100 ml.

3.5 Skrining Fitokimia 3.5.1 Pemeriksaan alkaloida

Sebanyak 0,5 g serbuk simplisia ditambahkan 1 ml asam klorida 2 N dan 9 ml air suling, dipanaskan di atas penangas air selama 2 menit, didinginkan dan disaring. Filtrat dipakai untuk uji alkaloida sebagai berikut:

a. Filtrat sebanyak 3 tetes ditambah dengan 2 tetes larutan pereaksi Mayer akan terbentuk endapan berwarna putih atau kuning.

b. Filtrat sebanyak 3 tetes ditambah dengan 2 tetes larutan pereaksi Bouchardat, akan terbentuk endapan berwarna coklat sampai kehitaman.

c. Filtrat sebanyak 3 tetes ditambah dengan 2 tetes larutan pereaksi Dragendorff, akan terbentuk endapan merah atau jingga.

Alkaloida positif jika terjadi endapan atau kekeruhan paling sedikit dua dari tiga percobaan diatas membrikan hasil positif. Pada penambahan pereaksi Mayer terbentuk endapan berwarna putih atau kuning. Pada penambahan peeaksi Bouchardat terbentuk endapan berwarna coklat (Depkes, 1989). 3.5.2 Pemeriksaan antrakinon

Sebanyak 0,2 g serbuk simplisia ditambah 5 ml asam sulfat 2 N, dipanaskan sebentar, setelah dingin ditambahkan 10 ml benzen, dikocok dengan 2 ml natrium hidroksida 2 N, didiamkan. Lapisan air berwarna merah dan lapisan benzen tidak berwarna menunjukkan adanya antrakinon (Depkes,1989).

3.5.3 Pemeriksaan tanin

Sebanyak 0,5 g serbuk simplisia disari dengan 10 ml air suling lalu disaring, filtratnya diencerkan dengan air sampai tidak berwarna. Larutan diambil 2 ml dan ditambahkan 1-2 tetes pereaksi besi (III) klorida 1%. Jika terjadi warna biru atau kehitaman menunjukkan adanya tanin (Depkes, 1989).

3.5.4 Pemeriksaan flavonoida

Sebanyak 10 g serbuk simplisia ditambahkan 10 ml air panas, dididihkan selama 5 menit dan disaring dalam keadaan panas, kedalam 5 ml filtrat ditambahkan 0,1 g serbuk magnesium dan 1 ml asam klorida pekat dan 2 ml amil alkohol, dikocok dan dibiarkan memisah. Flavonoida positif jika terjadi warna merah atau kuning atau jingga pada lapisan amil alkohol (Farnsworth, 1966)..

3.5.5 Pemeriksaan glikosida

Sebanyak 3 g serbuk simplisia disari dengan 30 ml campuran etanol 96 dengan air (7:3) direfluks selama 10 menit, didinginkan dan disaring. Filtrat diambil 20 ml kemudian ditambahkan 25 ml air suling dan 25 ml timbal (II) asetat 0,4 M, dikocok, didiamkan selama 5 menit lalu disaring. Filtrat disari dengan 20 ml campuran kloroform dan isopropanol (3:2), dilakukan berulang sebanyak 3 kali. Kumpulan sari air diuapkan pada suhu tidak lebih dari 50ºC. Sisanya dilarutkan dalam 2 ml metanol. Larutan sisa digunakan untuk percobaan:

Sebanyak 0,1 ml larutan percobaan dimasukkan dalam tabung reaksi dan diuapkan diatas penangas air. Pada sisa ditambahkan 2 ml air dan 5 tetes pereaksi Molish. Secara perlahan-lahan ditambahkan 2 ml asam sulfat pekat melalui dinding tabung, terbentuk cincin warna ungu pada batas antara kedua cairan menunjukkan adanya ikatan gula (Depkes, 1995).

3.5.6 Pemeriksaan steroida/triterpenoida

Sebanyak 1 g serbuk simplisia dimaserasi dengan 20 ml eter selama 2 jam, disaring, filtrat diuapkan dalam cawan penguap, pada sisanya ditambahkan 20 tetes asam asetat anhidrida dan 1 tetes asam sulfat pekat (pereaksi Liebermann-Burchard). Apabila terbentuk warna ungu atau merah yang berubah menjadi biru hijau menunjukkan adanya steroida/triterpenoida (Harborne, 1987).

3.5.7 Pemeriksaan saponin

Sebanyak 0,5 g serbuk simplisia dimasukkan kedalam tabung reaksi, ditambahkan 10 ml air panas. Didinginkan dan kemudian dikocok kuat-kuat selama 10 detik. Terbentuk buih yang mantap selama tidak kurang dari 10 menit,

setinggi 1-10cm dan tidak hilang dengan penambahan 1 tetes asam klorida 2 N menunjukkan adanya saponin (Depkes, 1995).

3.6 Pembuatan Ekstrak Etanol Daun Jambu Mete

Pembuatan ekstrak dilakukan dengan cara maserasi menggunakan pelarut etanol 80% (Depkes,2008). Sebanyak 500 g serbuk simplisia daun jambu mete dimaserasi dengan pelarut etanol 80% sampai seluruh serbuk terendam, ditutup dan dibiarkan selama 5 hari terlindung dari cahaya, sambil sesekali diaduk. Campuran tersebut diserkai setelah 5 hari, kemudian ampasnya dicuci dengan etanol, filtrat dimasukkan dalam bejana dan disimpan di tempat yang terlindung dari cahaya selama 2 hari, kemudian dienap tuangkan (Depkes, 1979). Seluruh maserat digabung dan dipekatkan dengan bantuan alat rotary evaporator pada temperatur tidak lebih dari 40ºC sampai diperoleh ekstrak kental, kemudian dikeringkan dengan freeze dryer. Bagan pembuatan ekstrak dan fraksinasi dapat dilihat pada Lampiran 4, halaman 46.

3.7 Pembuatan Fraksi n-Heksan, Kloroform Dan Etilasetat Daun Jambu Mete

Sebanyak 20 g ekstrak etanol ditambahkan 20 ml pelarut etanol 80% sambil diaduk sampai homogen, dipindahkan ke dalam corong pisah dan ditambahkan akuades sebanyak 20 ml dan n-heksan 50 ml, dikocok dan dibiarkan sampai memisah, selanjutnya difraksinasi dengan pelarut n-heksan beberapa kali hingga diperoleh fraksi n-heksan yang jernih (tidak memberikan reaksi positif dengan pereaksi Liebermann-Burchard), kemudian kepada fraksi etanol sisa, ditambahkan 50 ml pelarut kloroform beberapa kali hingga diperoleh fraksi kloroform yang jernih, kemudian kepada fraksi etanol sisa ditambahkan pelarut

etilasetat 50 ml, kemudian dilakukan pemisahan sesuai dengan prosedur fraksinasi diatas sampai diperoleh fraksi etilasetat yang jernih.Hasil fraksinasi n-heksan, kloroform dan etilasetat masing-masing di rotary evaporator selanjutnya di freeze dryer hingga diperoleh ekstrak kental fraksi n-heksan, fraksi kloroform dan fraksi etilasetat.

3.8 Sterilisasi Alat

Alat-alat yang digunakan dalam uji aktivitas antimikroba ini, disterilkan terlebih dahulu sebelum dipakai. Alat-alat gelas disterilkan didalam oven pada suhu 170ºC selama 1 jam. Media disterilkan di autoklaf pada suhu 121ºC selama 15 menit. Jarum ose dan pinset dipijar dengan lampu bunsen (Lay, 1994).

3.9Pembuatan Media

3.9.1 Media nutrient agar (NA)

Komposisi: Lab-lemco powder 1 g

Yeast extract 2 g

peptone 5 g

sodium chloride 5 g

Agar 15 g

Cara pembuatan:

Sebanyak 28 g serbuk Nutrient Agar (NA) yang sudah jadi ditimbang, dilarutkan dalam air suling steril sedikit demi sedikit kemudian volumenya dicukupkan hingga 1 L dengan bantuan pemanasan sampai semua bahan larut sempurna, kemudian disterilkan di autoklaf pada suhu 121oC selama 15 menit (Oxoid, 1982).

3.9.2 Media nutrien broth (NB)

Komposisi : Lab-lemco powder 1 g

Yeast extract 2 g

peptone 5 g

sodium chloride 5 g

Cara pembuatan:

Sebanyak 13 g serbuk Nutrient Broth (NB) yang sudah jadi ditimbang, dilarutkan dalam air suling steril sedikit demi sedikit kemudian volumenya dicukupkan hingga 1 L dengan bantuan pemanasan sampai semua bahan larut sempurna, kemudian disterilkan di autoklaf pada suhu 121oC selama 15 menit (Oxoid, 1982).

3.10 Pembuatan Agar Miring

Ke dalam tabung reaksi steril dimasukkan 3 ml media nutrient agar steril, didiamkan pada temperatur kamar sampai sediaan membeku pada posisi miring kira-kira 45º. Kemudian disimpan dalam lemari pendingin (Lay, 1994).

3.11 Pembuatan Stok Kultur Bakteri

Masing-masing biakan bakteri dari strain utama diambil menggunakan jarum ose steril, lalu ditanam pada media nutrient agar miring dengan cara menggores, kemudian diinkubasi pada suhu 37ºC selama 24 jam (Ditjen POM, 1995).

3.12Penyiapan Inokulum Bakteri

Koloni bakteri Staphylococcusepidermidis, Streptococcus mutans, Staphylococcus aureus dan Escherichia coli, diambil dari stok kultur dengan jarum ose steril lalu disuspensikan dalam tabung reaksi yang berisi 10 ml larutan Nutrient Brooth, diaduk homogen, lalu diinkubasikan dalam inkubator 37ºC selama 3 jam dan diukur pada panjang gelombang 580 nm dengan menggunakan alat spektrofotometri visibel sampai diperoleh transmitan 25 % (Depkes, 1995).

3.13 Pembuatan Larutan Uji (Ekstrak Etanol, Fraksi n-Heksan, Fraksi Kloroform Dan Fraksi Etilasetat) Dengan Berbagai Konsentrasi

Ekstrak etanol ditimbang 5 g dilarutkan dengan menggunakan pelarut DMSO (Dimetil sulfoksida) hingga 10 ml maka konsentrasi ekstrak adalah 500 mg/ml kemudian dibuat pengenceran selanjutnya sampai diperoleh ekstrak dengan konsentrasi 400 mg/ml; 350 mg/ml; 300 mg/ml; 250 mg/ml; 200 mg/ml; 150 mg/ml; 100 mg/ml; 50 mg/ml; 25 mg/ml; 10 mg/ml; 5 mg/ml. Dilakukan prosedur yang sama terhadap fraksi n-heksan, fraksi kloroform dan fraksi etilasetat.

3.14 Uji Aktivitas Antibakteri Ekstrak Etanol, Fraksi n-heksan, Fraksi Kloroform dan Fraksi Etilasetat daun Jambu Mete Dengan Metode Difusi Agar

Sebanyak 0,1 ml inokulum dimasukkan ke dalam cawan petri steril, setelah itu dituang media nutrient agar sebanyak 20 ml dengan suhu 45oC. Cawan digoyang di atas permukaan meja, agar media dan suspensi bakteri tercampur rata. Pada media yang telah padat diletakkan beberapa silinder logam, dipipet ekstrak etanol 0,1 ml dengan berbagai konsentrasi pada masing-masing silinder logam, kemudian diinkubasi dalam inkubator pada suhu 36-37oC selama18–24 jam. Hal

yang sama dilakukan terhadap fraksi n-heksan, kloroform dan fraksi etilasetat. Diukur diameter daerah hambat (zona jernih) di sekitar silinder logam dengan menggunakan jangka sorong (Ditjen POM, 1995). Bagan pengujian aktivitas antibakteri dapat dilihat pada Lampiran 5, halaman 47.

BAB IV

HASIL DAN PEMBAHASAN

4.1 Identifikasi Tumbuhan

Identifikasi tumbuhan yang digunakan dilakukan di Herbarium Medanense, Universitas Sumatera Utara, hasilnya adalah daun jambu mete (Anacardium occidentale L.), familia Anacardiaceae.

4.2 Hasil Skrining Fitokimia

Hasil skrining fitokimia serbuk simplisia, ekstrak etanol, fraksi n-heksan, fraksi kloroform, dan fraksi etilasetat dari daun jambu mete menunjukkan adanya alkaloid, glikosida, saponin, flavonoid, tanin dan triterpenoid/steroid. Hasil skrining dapat dilihat pada Tabel 4.1 berikut.

Tabel 4.1. Hasil skrining fitokimia ekstrak etanol, fraksi n-heksan, fraksi kloroform dan fraksi etil asetat

No Senyawa Hasil skrining daun jambu mete

Serbuk simplisia Ekstrak etanol Fraksi n-heksan Fraksi kloroform Fraksi etilasetat 1. 2. 3. 4. 5. 6. 7. Alkaloida Glikosida Antrakuinon Saponin Flavonoid Tanin Triterpenoid/Steroid - + - + + + + - + - + + + + - - - - - - + - - - - - - - - + - + + + -

Keterangan: (+) mengandung senyawa yang diperiksa, (-) tidak mengandung senyawa yang diperiksa

Pada serbuk simplisia daun jambu mete yang ditambah dengan serbuk Mg dan serbuk Zn dengan asam klorida pekat memberikan warna merah, menunjukkan adanya senyawa flavonoid. Skrining glikosida ditunjukkan dengan penambahan pereaksi Molish dan asam sulfat pekat dimana terbentuk cincin ungu. Penambahan FeCl31% memberikan warna biru kehitaman yang menunjukkan

adanya senyawa tanin. Penambahan Liebermann-Burchard memberikan warna biru hijau menunjukkan adanya steroid. Adanya kandungan senyawa flavonoid, tanin, steroid menunjukkan bahwa daun jambu mete mempunyai aktivitas sebagai antibakteri (Jayalakshmi, 2011).

Hasil maserasi 500 g serbuk simplisia daun jambu mete diperoleh 58,8 g ekstrak etanol. Terhadap 20 g ekstrak etanol daun jambu mete dilakukan fraksinasi menggunakan pelarut n-heksan, setelah diuapkan diperoleh sebanyak 3,5 g. Hasil difraksinasi dengan pelarut kloroform setelah diuapkan diperoleh sebanyak 4,3 g. Hasil difraksinasi dengan pelarut etilasetat setelah diuapkan diperoleh sebanyak 4,5 g.

4.3 Hasil Uji Aktivitas Antibakteri Ekstrak dan Fraksi Daun Jambu Mete Hasil uji aktivitas antibakteri ekstrak etanol, fraksi n-heksan, fraksi kloroform dan fraksi etilasetat terhadap bakteri Staphylococcusepidermidis, Streptococcus mutans, Staphylococcus aureus dan Escherichia coli,menunjukkan bahwa ekstrak etanol dan fraksi etilasetat dapat menghambat pertumbuhan bakteri. Hasil pengukuran daya hambat ekstrak etanol daun jambu mete dapat dilihat pada Tabel 4.2 berikut.

Tabel 4.2 Hasil pengukuran diameter daerah hambatan ekstrak etanol daun jambu mete terhadap pertumbuhan bakteri Staphylococcus epidermidis, Streptococcus mutans, Staphylococcus aureus dan Escherichia coli. Konsentrasi

Ekstrak etanol (mg/ml)

Diameter daerah hambatan (mm)* SE (mm) SM (mm) SA (mm) EC (mm)

500 23,73 22,13 22,00 21,90

400 23,03 19,73 21,03 21,20

350 21,01 18.93 18,55 20,26

300 19,85 18,26 17,56 19,23

250 19,38 17,33 16,95 18,70

200 18,56 16,41 15,48 17,90

150 17,38 15,75 15,15 16,65

100 16,23 15,01 14,73 15,80

75 15,10 13,78 13,88 15,10

50 14,00 12,68 13,01 13,78

25 12,50 12,45 12,30 12,16

10 11,66 11,10 11,13 10,98

5 - - - -

Blanko - - - -

Keterangan: (*) hasil rata-rata tiga kali pengukuran, (-) tidak ada hambatan SE = Staphylococcus epidermidis, SM = Streptococcus mutans, SA =Staphylococcus aureus, EC = Escherichia coli

Pada Tabel 4.2 terlihat bahwa semakin besar konsentrasi ekstrak yang diberikan akan menghasilkan daerah hambat yang semakin besar, hal ini disebabkan semakin banyak zat aktif yang terkandung dalam ekstrak etanol. Hasil skrining fitokimia dijumpai adanya senyawa yang bersifat sebagai antibakteri yaitu senyawa flavonoid (Igbinosa, 2009), tanin (Wonghirundecha dan Punnanee, 2012), saponin (Ayepola dan Ishola, 2009) dan triterpenoida/steroida (Saleem, et al., 2009).

Efektifitas flavonoid melawan patogen dengan cara merusak permeabilitas dinding sel dan porin pada membran sel terluar pada mikroorganisme, hal ini dapat menghalangi masuknya asam amino pada porin. Aktifitas flavonoid juga dapat melalui kemampuannya membentuk komplek dengan ekstraseluler dan protein yang larut dan dilanjutkan dengan dinding sel. Mekanisme kerja tanin adalah dengan menciutkan dan mengendapkan protein sel yang dapat mengganggu permeabilitas sel, sehingga pertumbuhannya akan terhambat atau bahkan mati (Saleem, 2009).

Tanin memiliki kemampuan sebagai antibakteri dengan cara mengganggu fungsi membran sitoplasma yang menyebabkan bocornya metabolit penting yang menginaktifkan system enzim bakteri. Sifat tanin yang sebagai pengelat memiliki efek spasmolitik yang menciutkan dinding sel sehingga mengganggu permeabilitas sel sehingga menghambat pertumbuhan (Wonghirundecha dan Punnanee, 2012).

Diameter daerah hambatan terbesar pada konsentrasi 500 mg/ml ekstrak etanol terhadap SE (23,73 mm), SM (22,13 mm), SA (22,00 mm) dan EC (21,90 mm). Pada data di atas telah memenuhi syarat Farmakope Indonesia yaitu ekstrak etanol konsentrasi 50 mg/ml diameter hambat efektif 14 mm terhadap SE dan konsentrasi 100 mg/ml diameter hambat efektif terhadap SM (15,01 mm), SA (14,73 mm) dan EC (15,80 mm).

Diameter daerah hambatan terbesar pada konsentrasi 500 mg/ml fraksi etilasetat terhadap SE (26,18 mm), SM (23,23 mm), SA (22,91 mm) dan EC (26,03 mm) dari data di atas dapat dilihat konsentrasi yang telah memberikan diameter hambat efektif yaitu konsentrasi 10 mg/ml terhadap bakteri SE (16,15

mm), SM (14,20 mm), SA (14,48 mm)dan konsentrasi 5 mg/ml terhadap bakteri EC ( 14,10 mm).

Tabel 4.3 Hasil pengukuran diameter daerah hambatan fraksi etilasetat daun jambu mete terhadap pertumbuhan bakteri Staphylococcus epidermidis, Streptococcus mutans, Staphylococcus aureus dan Escherichia coli.

Konsentrasi fraksi etilasetat

(mg/ml)

Diameter daerah hambatan (mm)* SE (mm) SM (mm) SA (mm) EC (mm)

500 26,18 23,23 22,91 26,03

400 25,03 22,13 21,55 24,76

350 24,36 21,03 20,95 24,26

300 23,83 20,61 20,28 22,85

250 23,40 20,10 19,45 22,25

200 22,83 19,46 18,93 20,78

150 21,81 18,61 18,55 20,78

100 20,50 18,20 18,01 20,35

75 19,25 17,21 16,90 19,38

50 18,40 15,58 16,36 18,21

25 16,43 14,66 14,98 16,81

10 16,15 14,20 14,48 15,23

5 13,33 13,33 14,11 14,10

Blanko - - - -

Keterangan: (*) hasil rata-rata tiga kali pengukuran, (-) tidak ada hambatan SE = Staphylococcus epidermidis, SM = Streptococcus mutans,

SA =Staphylococcus aureus, EC = Escherichia coli

Aktivitas antibakteri pada fraksi etilasetat dijumpai diameter hambatan yang cukup besar setelah diuji terhadap ke empat bakteri. Hasil skrining fitokimia menunjukkan adanya senyawa flavonoid (Igbinosa, et al., 2009) dan tanin (Wonghirundecha dan Punnanee, 2012) yang memiliki sifat antibakteri yang kuat

dan dapat menghambat pertumbuhan beberapa jenis bakteri sepertiStaphylococcus aureus,Escherichia coli (Jayalakshmi, et al., 2011) dan Streptococcus mutans ( Masaki dan Isao, 1991).

Fraksi n-heksan tidak memiliki kemampuan menghambat pertumbuhan bakteri Staphylococcus epidermidis, Streptococcus mutans, Staphylococcus aureus dan Escherichia coli, hal ini dapat diketahui dari hasil skrining fitokimia terhadap fraksi n-heksan daun jambu mete hanya terdapat senyawa terpenoida/steroida (Saleem, et al., 2009).Fraksi kloroform tidak memiliki kemampuan menghambat pertumbuhan bakteri Staphylococcus epidermidis, Streptococcus mutans, Staphylococcus aureus dan Escherichia coli, pada fraksi kloroform tidak dijumpai senyawa metabolit sekunder(Jayalakshmi, 2011).

BAB V

KESIMPULAN DAN SARAN

5.1 Kesimpulan

a. hasil skrining daun jambu mete menunjukkan adanya golongan senyawa kimia yang terdapat dalam simplisia dan ekstrak etanol yaitu tanin, flavonoida, triterpenoida/steroida, glikosida, dan saponin. Golongan senyawa kimia yang terdapat dalam fraksi n-heksan yaitu triterpenoida/steroida. Pada fraksi kloroform tidak mengandung metabolit sekunder. Golongan senyawa kimia yang terdapat pada fraksi etilasetat yaitu tanin, flavonoida, glikosida dan saponin.

b. hasil uji aktivitas antibakteri ekstrak etanol pada konsentrasi 50 mg/ml diameter hambat efektif 14 mm terhadap SE dan konsentrasi 100 mg/ml diameter hambat efektif terhadap SM (15,01 mm), SA (14,73 mm) dan EC (15,80 mm).dan untuk fraksi etilasetat pada konsentrasi 10 mg/ml terhadap bakteri SE (16,15 mm), SM (14,20 mm), SA (14,48 mm)dan konsentrasi 5 mg/ml terhadap bakteri EC ( 14,10 mm). Fraksi n-heksan dan fraksi kloroform tidak memberikan daya hambat.

5.2 Saran

Diharapkan peneliti selanjutnya dapat meneliti toksisitas ekstrak daun jambu mete.

BAB II

TINJAUAN PUSTAKA

2.1Uraian Tumbuhan

Uraian tumbuhan meliputi, morfologi tumbuhan,habitat dan daerah tumbuh, sistematika tumbuhan, nama asing, penggunaan tumbuhan serta kandungan senyawa kimia.

2.1.1 Morfologi tumbuhan

Pohon tinggi 8-12 m, memiliki cabang dan ranting yang banyak. Batang melengkung, berkayu, bergetah, percabangan mulai dari bagian pangkalnya (Dalimartha, 2008) batang berwarna putih kotor (Sherley, 2008). Daun tunggal, bertangkai, panjang 4-22,5 cm, lebar 2,5-15 cm. Helaian daun berbentuk bulat telur sungsang, tepi rata, pangkal runcing, ujung membulat dengan lekukan kecil di bagian tengah, pertulangan menyirip, berwarna hijau (Dalimartha, 2000).

Bunga majemuk, bentuk malai, terletak di ketiak daun dan di ujung cabang, mempunyai daun pelindung berbentuk bulat telur dengan panjang 4-55 mm dan berwarna hijau muda. Mahkota bunga berbentuk runcing, saat masih muda berwarna putih setelah tua berwarna merah (Sherley, 2008). Bunga berumah satu memiliki bunga betina dan bunga jantan (Dalimartha, 2000).

Buahnya buah batu, keras, melengkung. Tangkai buahnya lama kelamaan akan menggelembung menjadi buah semu yang lunak, seperti buah peer, berwarna kuning, kadang-kadang bernoda merah, rasanya manis agak sepat, banyak mengandung air, dan berserat. Biji bulat panjang, melengkung, pipih, warnanya

cokelat tua (Dalimartha, 2000). Akarnya berupa akar tunggang dan berwarna cokelat (Sherley, 2008).

2.1.2Habitat dan daerah tumbuh

Jambu mete atau jambu monyet berasal dari Brazil, tersebar di daerah tropik dan ditemukan pada ketinggian antara 1-1.200 m diatas permukaan laut. Jambu mete akan berbuah lebih baik di daerah beriklim kering dengan curah hujan kurang dari 500 mm per tahun. Tanaman ini dapat tumbuh di segala macam tanah, asalkan jangan di tanah lempung yang pekat dan tergenang air. Tanaman tumbuhan jambu mete banyak tumbuh di Jawa Tengah, Jawa Timur dan Yogyakarta (Dalimartha, 2000).

2.1.3 Sistematika Tumbuhan

Sistematika tumbuhan jambu mete: Divisi : Spermatophyta Sub Divisi : Angiospermae Kelas : Dicotyledoneae Bangsa : Sapindales Suku : Anacardiaceae Marga : Anacarrdium

Jenis : Anacardium occidentale L.

Di luar negeri orang menyebutnya Cashew (Inggris), cajou, anacardier (Perancis), kasoy (Tagalog), mamuang, himmaphan, yaruang (Thailand), dao lon hot, cay dieu (Vietnam), hijli-badam, kaju (India&Pakistan)(Dalimartha, 2000).

Penyebaran jambu mete di Indonesia sangat luas sehingga tumbuhan ini mempunyai banyak nama daerah misalnya: jambu erang, jambu monyet

(Sumatera), jambu mede, jambu mete, jambu siki (Jawa), buwah monyet, jambu jipang, jambu dwipa, nyambu monyet, jambu parang, jambu sempal (Kalimantan),jambu dare, jambu sereng (Sulawesi), kanoke, ( Maluku) (Dalimartha, 2000).

2.1.4 Penggunaan tumbuhan

Tanaman asal Brazil ini, memiliki buah yang tergolong unik. Buah Jambu Monyet merupakan tangkai buah yang mengalami penggelembungan dan menjadi buah semu yang lunak.Biji bulat panjang, melengkung pipih dan berwarna coklat tua. Biji inilah yang sering disebut kacang mete (Dalimartha, 2000).

Kulit kayu berbau lemah, rasanya kelatdan lama-kelamaan menimbulkan rasa tebal di lidah. Khasiatnya sebagai pencahar, astringen dan memacu aktivitas enzim percernaan. Penggunaan dalam masyarakat untuk mengobati sembelit , 10 g kulit kayu jambu mete dicuci sampai bersih, lalu rebus dalam 2 gelas air (selama 20 menit). Disaring setelah dingin dan air saringannya diminum sehari 2 kali (sama banyak) (Dalimartha, 2008).

Daun berbau aromatik, rasanya kelat, berkhasiat antiradang dan penurun kadar glukosa darah (hipoglikemik) (Dalimartha, 2008), selain itu juga berfungsi sebagai antimikroba (Adebote, et al., 2009), antidiabetes, anastesi (Duke, et al., 2009), disentri, nyeri usus besar, anti-inflamasi, bronkitis, batuk dan sipilis (Vijayakumar, et al., 2011).Untuk pengobatan sariawan daun muda sebanyak segenggam dan sepotong kulit kayu jambu mete sampai bersih, lalu rebus dalam 1 liter air sampai mendidih (selama 15 menit), setelah dingin, saring dan air saringannya siap untuk diminum.Pengobatan dilakukan sehari 2-3 kali masing-masing 1 gelas. Air rebusan tersebut dapat digunakan untuk berkumur-kumur.

Akar daun jambu mete digunakan sebagai pencuci perut. Daun jambu mete yang masih muda dimanfaatkan sebagai lalap di daerah Jawa bagian timur sebagai salah satu pengganti sayuran dalam konsumsi mereka sehari-hari(Dalimartha, 2000).

2.1.5 Kandungan kimia tumbuhan

Kulit kayu mengandung tanin yang cukup banyak zat samak, asam galat, dan gingkol katekin. Daun mengandung tanin-galat, flavonol, asam anakardiol, asam elegat, senyawa fenol, kardol, dan metil kardol. Buah mengandung protein, lemak, vitamin (A,B dan C), kalsium, fosfor, besi dan belerang. Asam anakardat berkhasiat bakterisidal, fungisidal, mematikan cacing dan protozoa (Dalimartha, 2008).Daun jambu mete mengandung senyawa flavonoid, terpenoid/steroid, tanin dan glikosida (Jayalakshmi, 2011).

2.2 Kandungan Kimia 2.2.1Flavonoida

Flavonoid merupakan salah satu golongan terbesar senyawa metabolit sekunder dan terdistribusi pada spesies tanaman yang beragam (Saleem, et al., 2009). Flavonoid terdapat dalam semua tumbuhan hijau, mengandung 15 atom karbon dalam inti dasarnya, yang tersusun dalam konfigurasi C6-C3-C6 yaitu dua

cincin aromatik yang dihubungkan oleh satuan tiga karbon yang dapat atau tidak dapat membentuk cincin ketiga (Markham, 1982). Flavonoid memiliki dua ring benzen yang terpisah dengan unit propana yang merupakan turunan dari flavon. Pada umumnya flavonoid larut dalam air. Komponen flavonoid yang terkonjugasi biasanya memiliki warna yang terang (Cseke, et al., 2006).

Semua jenis flavonoid saling berkaitan karena alur biosintesis yang sama yang memasukkan prazat dari alur sikimat dan alur asetat-malonat. Flavonoid pertama dihasilkan segera setelah kedua alur itu bertemu. Sekarang flavonoidyang dianggap pertama kali terbentuk pada biosintesis adalah kalkon dan semua bentuk lain diturunkan darinya melalui berbagai alur (Markham, 1982).Flavonoid mencakup banyak pigmen yang paling umum dan terdapat dalam seluruh dunia tumbuhan mulai dari fungus sampai angiospermae. Pada tumbuhan tinggi, flavonoid terdapat baik dalam bagian vegetatif maupun dalam bunga. Flavonoid berperan sebagai pengatur fotosintesis, antimikroba dan antivirus (Robinson, 1995).

Flavonoid melindungi tumbuhan dari radiasi sinar UV dan pengaruh lingkungan, flavonoid juga memiliki kandungan antioksidan (Saleem, 2009). Flavonoid memiliki manfaat ekologi yang besar di alam berkat warnanya sebagai penarik serangga dan burung untuk membantu penyerbukan tanaman. Flavonoid tertentu juga mempengaruhi rasa misalnya rasa pahit pada tanaman (Heinrich, 2009).

Efektifitas flavonoid melawan patogen dengan cara merusak permeabilitas dinding sel dan porin pada membran sel terluar pada mikroorganisme, hal ini dapat menghalangi masuknya asam amino pada porin. Aktifitas flavonoid juga dapat melalui kemampuannya membentuk komplek dengan ekstraseluler dan protein yang larut dan dilanjutkan dengan dinding sel (Saleem, 2009).

2.2.2 Triterpenoida dan steroida

Senyawa triterpenoida adalah terpenoid turunan C30 yang terdistribusi

sangat luas, tanaman, fungi, bakteri, karang lunak dan amfibi. Kelompok triterpen meliputi beberapa molekul yang sangat penting yaitu steroid (Heinrich, 2009).

Triterpenoida kebanyakan berupa alkohol, aldehida atau asam karboksilat, berbentuk kristal, mempunyai titik leleh yang tinggi dan optik aktif. Triterpenoida dapat dibagi menjadi sekurang-kurangnya empat golongan yaitu triterpenoida sebenarnya, steroid, saponin, dan glikosida jantung. Uji yang banyak digunakan untuk mendeteksi senyawa ini adalah reaksi Lieberman-Burchard (Harborne, 1987).Steroida merupakan senyawa golongan triterpenoida yang mengandung inti siklopentanoperhidrofenantren yaitu terdiri dari tiga cincin sikloheksana dan sebuah cincin siklopentana (Harborne, 1987).Senyawa triterpenoida ini memiliki aktifitas fisiologi yaitu untuk penyakit diabetes, gangguan menstruasi, gangguan kulit, kerusakan hati dan malaria (Robinson, 1995).

2.2.3 Tanin

Tanin tersebar luas dalam tumbuhan berpembuluh, biasanya terdapat pada daun, buah, kulit kayu atau batang. Tanin tumbuhan dibagi menjadi dua golongan, yaitu tanin terkondensasi dan tanin terhidrolisis. Tanin terkondensasi terdapat pada paku-pakuan, gimnospermae dan angiospermae, sedangkan tanin terhidrolisis penyebarannya terbatas pada tumbuhan berkeping dua. Beberapa tanin terbukti mempunyai antioksidan dan menghambat pertumbuhan tumor (Harborne, 1987). Tumbuhan dengan kandungan tanin yang tinggi memiliki rasa yang sangat kelat (Cseke, et al., 2006). Kadar tanin yang tinggi mempunyai

peranan sebagai pertahanan bagi tumbuhan untuk mengusir hewan pemakan tumbuhan (Robinson, 1995).

Tanin memiliki kemampuan sebagai antibakteri dengan cara mengganggu fungsi membran sitoplasma yang menyebabkan bocornya metabolit penting yang menginaktifkan sistem enzim bakteri. Sifat tanin yang sebagai pengelat memiliki efek spasmolitik yang menciutkan dinding sel sehingga mengganggupermeabilitas sel sehingga menghambat pertumbuhan (Wonghirundecha dan Punnanee, 2012). 2.2.4 Glikosida

Glikosida adalah istilah generik untuk bahan alam yang secara kimia berikatan dengan gula. Glikosida terdiri atas dua bagian: gula dan aglikon. Aglikon dapat berupa terpen, flavonoid, kumarin atau bahan alam lainnya. Ada dua golongan dasar glikosida: C-glikosida, yaitu gula melekat pada aglikon melalui ikatan karbon-karbon dan O-glikosida yakni yang terhubung pada aglikon melalui ikatan oksigen-karbon. Glikosida biasanya lebih polar daripada aglikonnya dan pembentukan glikosida umumnya meningkatkan kelarutannya dalam air. Hal ini memungkinkan organisme penghasil untuk mentranspor dan menyimpan glikosida secara efektif (Heinrich, 2009).

2.3 Ekstraksi

Ekstraksi adalah kegiatan penarikan kandungan kimia yang dapat larut sehingga terpisah dari bahan yang tidak larut menggunakan pelarut cair. Senyawa aktif yang terdapat dalam berbagai simplisia dapat digolongkan kedalam golongan minyak atsiri, alkaloida, flavonoida dan lain-lain (Ditjen POM, 2000).

A.Cara Dingin 1. Maserasi

Maserasi adalah proses pengekstrakan simplisia dengan menggunakan pelarut dengan beberapa kali pengocokan atau pengadukan pada temperatur ruangan (kamar). Maserasi kinetik berarti dilakukan pengadukan yang kontinu (terus-menerus). Remaserasi berarti dilakukan pengulangan penambahan pelarut setelah dilakukan penyaringan maserat pertama, dan seterusnya.

2. Perkolasi

Perkolasi adalah ekstraksi dengan pelarut yang selalu baru sampai penyarian sempurna, umumnya dilakukan di temperatur ruangan. Proses ini terdiri dari tahapan pelembaban bahan, tahap pendiaman antara, dan tahap perkolasi sebenarnya (penetesan/penampungan ekstrak), yang terus menerus sampai ekstrak yang diinginkan habis tersari. Tahap pelembaban bahan dilakukan menggunakan cairan penyari sekurang-kurangnya 3 jam, hal ini penting terutama untuk serbuk yang keras dan bahan yang mudah mengembang.

B.Cara Panas 1. Refluks

Refluks adalah ekstraksi dengan pelarut pada temperatur titik didihnya, selama waktu tertentu dan jumlah pelarut yang relatif konstan dengan adanya pendingin balik.

2. Sokletasi

Sokletasi adalah ekstraksi menggunakan pelarut yang selalu baru yang umumnya dilakukan dengan alat khusus sehingga terjadi ekstraksi kontinu dengan jumlah pelarut relatif konstan dengan adanya pendingin balik. Kelebihan metode

ini adalah sampel erekstraksi dengan sempurna, proses ekstraksi lebih cepat dan pelarut yang digunakan sedikit. Kelemahan dari metode ini adalah sampel yang digunakan harus tahan panas.

3. Digesti

Digesti adalah maserasi kinetik dengan pengadukan kontinu pada temperatur yang lebih tinggi dari temperatur ruangan yaitu secara umum dilakukan pada temperatur 40-50ºC.

4. Infundasi

Infundasi adalah ekstraksi dengan pelarut air pada temperatur penangas air mendidih, temperatur terukur 90ºC selama waktu tertentu (15menit). Kekurangan metode ini sari pada tumbuhan tidak tersari sempurna, untuk kandungan yang tidak tahan panas tidak dapat tersari seluruhnya.

5. Dekoktasi

Dekoktasi adalah ekstraksi dengan pelarut air pada temperatur penangas air mendidih, temperatur terukur 90ºC selama waktu tertentu (30 menit).

2.4 Bakteri

Nama bakteri berasal dari kata “bakterion” (bahasa Yunani) yang berarti tongkat atau batang. Sekelompok mikroorganisme yang bersel satu, berbiak dengan pembelahan diri, serta demikian kecilnya sehingga hanya tampak dengan mikroskop disebut bakteri (Dwidjoseputro, 1987).

2.4.1 Klasifikasi bakteri

Berdasarkan bentuk morfologinya, maka bakteri dapat dibagi atas tiga golongan yaitu:

a. Golongan basil

Golongan basil berbentuk serupa tongkat pendek, silindris. Basil dapat berbentuk satu batang tunggal disebut basil tunggal, bergandengan dua disebut diplobasil, bergandengan memanjang membentuk rantai disebut streptobasil (Irianto, 2007).

b. Golongan kokus

Golongan kokus merupakan bakteri berbentuk bulat atau bola. Kokus ada yang berbentuk bola tunggal disebut monokokus, berbentuk bola yang bergandeng dua-dua disebut diplokokus, berbentuk bola yang berkelompok empat-empat disebut sarkina dan berbentuk bola yang berkelompok memanjang membentuk rantai disebut streptokokus (Irianto, 2007).

c. Golongan spiral

Golongan spiral merupakan bakteri memiliki satu atau lebih lekukan dan dalam bentuk lurus. Bakteri berbentuk spiral ini dibedakan menjadi beberapa jenis. Bakteri yang berbentuk batang melengkung menyerupai koma disebut vibrio. Bakteri yang berpilin kaku disebut spirilla, sedangkan bakteri yang berpilin fleksibel disebut spirochaeta (Pratiwi, 2008).

Jenis bakteri yang digunakan dalam penelitian ini adalah Staphylococcus epidermidis, Staphylococcus aureus, Streptococcus mutans dan Escherichia coli.

a. Bakteri Staphylococcus aureus

Sistematika bakteri Staphylococcus aureus menurut Bergey edisi ke-7 (Dwidjoseputro, 1987) adalah sebagai berikut :

Divisi : Schizophyta Kelas : Schizomycetes Ordo : Eubacteriales Familia : Micrococcaceae Genus : Staphylococcus

Species : Staphylococcus aureus

Staphylococcus berasal dari perkataan staphyle yang berarti kelompok buah anggur dan coccus yang berarti benih bulat (Radji, 2002). Staphylococcus aureus merupakan bakteri gram positif, aerob atau anaerob fakultatif berbentuk bola atau kokus berkelompok tidak teratur, diameter 0,8-10 µm, tidak membentuk spora dan tidak bergerak, koloni berwarna kuning. Bakteri ini tumbuh cepat pada suhu 37ºC tetapi paling baik membentuk pigmen pada suhu 20-25ºC. Koloni pada pembenihan padat berbentuk bulat halus, menonjol dan berkilau membentuk berbagai pigmen (Jawetz, 2001). Bakteri ini berdiam di mukosa hidung manusia atau di kulit, bakteri ini dapat menyebar melalui tangan, bersin dan lesi kulit. Bakteri ini dapat menyebabkan penyakit kulit, impetigo, infeksi tulang. Tes katalase positif dan tahan hidup dalam lingkungan yang mengandung garam dengan konsentrasi tinggi (halofilik), misalnya NaCl 10%. Hasil pewarnaan yang berasal dari pembenihan padat akan memperhatikan susunan bakteri yang bergerombol seperti buah anggur. Infeksi yang disebabkan oleh bakteri inipada

permukaan kulit tampak sebagai jerawatdan ruam pada kulit berupa yang membuat kulit menjadi kemerahan dan terasa gatal (Hawley, 2003). b. Bakteri Staphylococcus epidermidis

Sistematika bakteri Staphylococcus epidermidis menurut Bergeys edisi ke-7 (Dwidjoseputro, 198ke-7) adalah sebagai berikut:

Divisi : Schizophyta Kelas : Schizomycetes Ordo : Eubacteriales Familia : Micrococcaceae Genus : Staphylococcus

Species : Staphylococcus epidermidis

Staphylococcus epidermidis merupakan sebagian dari flora normal pada kulit manusia, saluran pernafasan dan saluran pencernaan makanan. Bakteri ini juga terdapat di udara dan lingkungan sekitar. Berbentuk bola atau kokus, diameter 0,5 – 0,6 µm. Bakteri ini termasuk gram positif(Dwidjoseputro, 1987). c. Bakteri Streptococcus mutans

Sistematika bakteri Streptococcus mutans (Brook, et al., 2001):

Streptococcus mutans merupakan bakteri gram positif, bersifat nonmotil (tidak bergerak), berdiameter 1 - 2 µm berbentuk bulat atau bulat telur, tersusun dalam bentuk rantaidan tidak membentuk spora.

Divisi : Firmicitus Kelas : Bacilli Ordo : Lactobacilles Familia : Streptococcaceae

Genus : Streptococcus

Species :Streptococcus mutans

Streptococcus mutans merupakan bakteri gram positif, bersifat nonmotil (tidak bergerak), berdiameter 1 - 2 µm berbentuk bulat atau bulat telur, tersusun dalam bentuk rantaidan tidak membentuk spora. Bakteri ini tumbuh secara optimal pada suhu sekitar 18 - 40˚C. Streptococcus mutans biasanya ditemukan pada rongga mulut manusia dan menjadi yang paling kondusif menyebabkan bau mulut dan karies untuk email gigi (Pratiwi, 2008).

d. Bakteri Escherichia coli

Sistematika bakteri Escherichia coli menurut Bergey edisi ke-7 (Dwidjoseputro, 1987) adalah sebagai berikut:

Divisi : Schizophyta Kelas : Schizomycetes Ordo : Eubacteriales Familia : Enterobacteriaceae Genus : Escherichia

Species : Escherichia coli

Escherichia coli merupakan bakteri opurtunis yang banyak ditemukan di dalam usus besar manusia sebagai flora normal. Berbentuk batang pendek, merupakan bakteri gram negatif, ukuran 0,4 – 0,7 µm. Bakteri ini tumbuh baik pada suhu 37ºC tetapi dapat tumbuh pada suhu 8-40ºC, membentuk koloni yang bundar, cembung, halus, dan dengan tepi rata (Jawetz, 2001).

Pertumbuhan bakteri dapat didefinisikan sebagai pertambahan ukuran dan pertambahan jumlah melalui replikasi. Ciri khas reproduksi bakteri adalah

pembelahan biner, di mana dari satu sel bakteri dapat dihasilkan dua sel anakan yang sama besar. Interval waktu yang dibutuhkan bagi sel untuk membelah diri dikenal dengan waktu generasi. Waktu yang dibutuhkan untuk meningkatkan jumlah populasi menjadi dua kali lipat dikenal dengan waktu ganda. Berdasarkan perbedaannya dalam menyerap zat warna ram bakteri dibagi dua golongan yaitu bakteri gram positif dan gram negatif. Bakteri gram positif menyerap zat warna pertama yaitu kristal violet yang menyebabkan berwarna ungu (Hardv, 2002).

Ada empat macam fase pertumbuhan mikroorganisme (Pratiwi, 2008): 1. Fase lag

Fase lag merupakan fase adaptasi, yaitu fase penyesuaian mikroorganisme pada suatu lingkungan baru. Ciri fase lag adalah tidak adanya peningkatan jumlah sel, yang ada hanyalah peningkatan ukuran sel. Lama fase lag pada bakteri sangat bervariasi, tergantung pada komposisi media, pH, suhu, aerasi, jumlah sel pada inokulum awal dan sifat fisiologis mikroorganisme pada media sebelumnya

2. Fase log

Fase log merupakan fase di mana mikroorganisme tumbuh dan membelah pada kecepatan maksimum, tergantung pada genetika mikroorganisme. Sel baru yang terbentuk dengan laju konstan dan masa yang bertambah secara eksponensial. Fase ini ditandai dengan terjadinya periode pertumbuhan yang cepat. Variasi pertumbuhan dipengaruhi oleh kadar nutrien dalam media, suhu inkubasi dan pH. 3. Fase stasioner

Pertumbuhan mikroorganisme berhenti dan terjadi keseimbangan antara jumlah sel yang membelah dengan jumlah sel yang mati. Pada fase ini terjadi akumulasi produk buangan yang toksik.

4. Fase kematian

Jumlah sel yang mati meningkat dikarenakan ketidaktersediaan nutrisi dan akumulasi produk buangan yang toksik. Faktor-faktor yang mempengaruhipertumbuhan mikroorganisme dapat meliputi temperatur, pH, tekanan osmotik, oksigen dan nutrisi dalam media pertumbuhan (Pratiwi, 2008) : 1. Temperatur

Pertumbuhan bakteri sangat dipengaruhi oleh temperatur. Setiap mikroorganisme mempunyai temperatur optimum yaitu temperatur dimana terjadi kecepatan pertumbuhan optimal dan dihasilkan jumlah sel yang maksimal. Temperatur yang terlalu tinggi dapat menyebabkan denaturasi protein sedangkan temperatur yang sangat rendah aktivitas enzim akan terhenti. Berdasarkan batas temperatur dibagi atas tiga golongan:

a. psikofril yaitu mikroorganisme yang suka hidup pada suhu dingin pada temperatur -5 sampai 30ºC dengan optimum 10 sampai 20ºC.

b. mesofil yaitu mikroorganisme yang dapat hidup maksimal pada temperatur 10 sampai 45ºC dengan optimum 20 sampai 40ºC.

c. termofil yaitu mikroorganisme yang tumbuh optimal pada suhu tinggi pada temperatur 25 sampai 80ºC dengan optimum 50 sampai 60ºC (Pratiwi, 2008). 2. Derajat Keasaman

pH optimum bagi kebanyakan bakteri terletak antara 6,5 dan 7,5. Namun ada beberapa mikroorganisme yang dapat tumbuh pada keadaan yang sangat asam atau alkali. Pada kebanyakan spesies, nilai pH minimum dan maksimum ialah antara 4 dan 9. Bila bakteri dibiakkan dalam medium yang mula-mula

disesuaikanpHnya maka pH ini berubah karena adanya senyawa asam atau basa yang dihasilkan elama pertumbuhan (Pelczar dan Chan, 2006).

3. Oksigen

Berdasarkan kebutuhan oksigen dikenal mikroorganisme dibagi menjadi 5 golongan yaitu:

a. Anaerob obligat, hidup tanpa oksigen, oksigen toksik terhadap golongan ini. b. Anaerob aerotoleran, tidak mati dengan adanya oksigen.

c. Anaerob fakultatif, mampu tumbuh baik dalam suasana dengan atau tanpa oksigen.

d. Aerob obligat, tumbuh subur bila ada oksigen dalam jumlah besar.

e. Mikroaerofilik, hanya tumbuh baik dalam tekanan oksigen yang rendah (Pratiwi, 2008).

4. Tekanan osmosis

Osmosis merupakan perpindahan air melewati membran semipermeabel karena ketidakseimbangan material terlarut dalam media. Medium yang baik untuk pertumbuhan sel adalah medium isotonis terhadap sel tersebut. Dalam larutan hipotonik air akan masuk ke dalam sel sehingga menyebabkan sel membengkak, sedangkan dalam larutan hipertonik air akan keluar dari sel sehingga membran plasma mengerut dan lepas dari dinding sel (plasmolisis). Tekanan osmosis sangat berpengaruh pada pertumbuhan mikroorganisme, jika tekanan osmosis tidak sesuai akan menyebabkan kematian (Pratiwi, 2008).

5. Nutrisi

Nutrisi merupakan substansi yang diperlukan untuk biosintesis dan pembentukan energi. Berdasarkan kebutuhannya, nutrisi dibedakan menjadi dua

yaitu makroelemen (elemen yang diperlukan dalam jumlah banyak) dan mikroelemen (elemen nutrisi yang diperlukan dalam jumlah sedikit) (Pratiwi, 2008).

Bahan nutrisi untuk pertumbuhan mikroorganisme terdapat pada media. Media juga dapat digunakan untuk membedakan mikroorganisme dengan mengetahui habitatnya (Pratiwi, 2008). Menurut kegunaannya media terdiri dari: a. Media selektif merupakan media yang digunakan untuk memacu pertumbuhan

suatu mikroba yang spesifik dengan menekan pertumbuhan mikroba lainnya. Dengan menggunakan media ini kita dapat menyeleksi mikroorganisme tertentu.Contoh :

- Saboraut Agardigunakan untuk menumbuhkan jamurkarena mempunyai

pH 5,5 dan mengandung konsentrasi gula yang tinggi.

- Brilian Green Agar digunakan untuk menyeleksi bakteri gram negatif

bentuk batang dari genus Salmonella.

b. Media diferensial digunakan untuk menyeleksi suatu mikroorganisme dari berbagai jenis dalam suatu lempengan (plate) agar.Contoh :

- Media agar darah yang digunakan untuk membedakan mikroorganisme yang mampu menghemolisis darah merah dengan yang tidak mampu, misalnya dapat dilihat pada bakteri patogen spesimen tenggorokan seperti streptococcus pyogenes.

2.4.2 Uji aktifitas antibakteri

Uji kepekaan terhadap obat antimikroba pada dasarnya dapat dilakukan melalui tiga cara yaitu:

Cara ini digunakan untuk menentukan KHM (kadar hambat minimum) dan KBM (kadar bunuh minimum) dari obat antimikroba. Prinsip dari metode dilusi adalah menggunakan satu seri tabung reaksi yang diisi media cair dan sejumlah tertentu sel mikroba yang diuji. Masing-masing tabung diuji dengan obat yang telah diencerkan secara serial. Seri tabung diinkubasi pada suhu 37ºC selama 18-24 jam dan diamati terjadinya kekeruhan pada tabung. Konsentrasi terendah obat pada tabung yang ditunjukkan dengan hasil biakan yang mulai tampak jernih (tidak ada pertumbuhan mikroba) adalah KHM dari obat. Konsentrasi terendah obat pada biakan padat yang ditunjukkan dengan tidak adanya pertumbuhan koloni mikroba adalah KBM dari obat terhadap bakteri uji. Kelemahan metode ini memerlukan waktu yang lama serta biaya yang mahal (Pratiwi, 2008).

b. Metode difusi

Prinsip dari metode difusi adalah sebagai berikut:

obat dijenuhkan ke dalam kertas saring (cakram kertas), cakram kertas yang mengandung obat tertentu ditanam pada media pembenihan agar padat yang telah dicampur dengan mikroba yang diuji, kemudian diinkubasi pada suhu 37ºC selama 18-24 jam. Selanjutnya diamati adanya pertumbuhan mikroba. Kelebihan metode ini bisa melakukan pengujian dalam jumlah banyak. Kekurangan metode ini tidak diketahui secara pasti bakterisid atau bakteriostatik (Brooks, 2001). c. Metode turbidimetri

Ke dalam tabung reaksi ditambahkan 1 ml larutan antibiotik dan 9 ml inokulum. Diinkubasikan pada suhu 30ºC selama 3-4 jamkemudian ditambahkan 0,5 ml formaldehid. Serapan diukur dengan spektrofotometer pada 530 nm. Kadar

antibiotik ditentukan berdasarkan perbandingan serapannya terhadap serapan standar (Wattimena, 1991).

Penetapan aktivitas antibiotik secara in vitro selain berguna untuk penetapan kadar dapat pula digunakan untuk menguji kepekaan suatu antibiotik terhadap mikroba. Kepekaan mikroba terhadap antibiotik dapat dilihat dari konsentrasi minimum untuk inhibisi oleh suatu antibiotik terhadap mikroba tertentu. Penetapan konsentrasi minimum inhibisi dapat dilakukan dengan menguji sederetan konsentrasi antibiotik yang dibuat dengan cara pengenceran, metode yang digunakan dapat dengan cara turbidimetri atau difusi agar, konsentrasi hambat minimum (KHM). Konsentrasi hambat minimum adalah konsentrasi terendah dari antibiotika atau antimikrobial ( Wattimena, 1991).

BAB I PENDAHULUAN

1.1Latar Belakang

Sejarah penggunaan obat tradisional biasanya berdasarkan pengalaman masyarakat terdahulu yang telah menggunakan obat tradisional secara aman dan berkhasiat (WHO, 2000). Selama ratusan tahun, tradisi diseluruh dunia telah menggunakan herbal untuk mengobati berbagai penyakit dan menjaga kesehatan. Banyak obat yang berasal dari tumbuhan memiliki nilai yang tidak hanya pada kandungan aktif yang dimilikinya tapi juga mineral, vitamin, minyak atsiri, glikosida, alkaloid, asam, alkohol, ester dan lainnya (Majumbar, et al., 2008).

Masyarakat Indonesia telah lama mengenal dan menggunakan tanaman berkhasiat obat, salah satu diantaranya sebagai upaya dalam menanggulangi masalah kesehatan. Pengetahuan tentang tanaman berkhasiat obat berdasarkan pada pengalaman dan keterampilan yang secara turun temurun telah diwariskan dari satu generasi ke generasi berikutnya (Kumala dan Oktora, 2006).

Anacardium occidentale adalah termasuk dari famili Anacardiacea (Dalimartha, 2000). Tanaman ini juga mengandung asam anakardiat yang telah digunakan secara luas untuk mengobati pembengkakan gusi yang disebabkan oleh bakteri gram positif seperti bakteri Streptococcus mutans (Ayepola dan Ishola, 2009). Daun jambu mete memiliki kandungan metabolit sekunder berupa flavonoida, glikosida, tanin, triterpenoida/steroida (Abulude, et al., 2009) dan saponin (Ayepola dan Ishola, 2009).Flavonoid memiliki berbagai fungsi yaitu antimikroba, insektisida, antioksidan, dan antivirus. Senyawa tanin

merupakansenyawa metabolit sekunder pada tumbuhan yang bersifat sebagai antibakterimemiliki kemampuan menyamak kulit dan juga dikenal sebagai astringensia (Robinson, 1995).

Kulit kayu dari tanaman ini dapat digunakan sebagai antidiare, biji dapat digunakan sebagai penawar racun gigitan ular, daun dari tumbuhan ini memiliki khasiat sebagai antimikroba, anti-inflamasi, dan astringen (Dahake, et al., 2009). Terutama daun jambu mete juga berkhasiat sebagai antidiare yang disebabkan oleh bakteri Escherichia coli (Jayalakshmi, et al., 2011) disentri dan nyeri usus besar (Vijayakumar dan Kalaichelvan, 2011), ruam kulit yang disebabkan bakteri Staphylococcus aureus (Dalimartha, 2000).Ketika daun dan kulit biji tidak digunakan secara luas untuk tujuan ekonomi maka banyak peneliti yang melakukan penelitian dengan memanfaatkan bagian daun dan kulit biji dari tanaman tersebut untuk meningkatkan nilai ekonomi dari tanaman tersebut (Vijayakumar dan Kalaichelvan, 2011).

Berdasarkan uraian diatas, maka peneliti tertarik untuk meneliti efek antibakteri dari daun jambu mete menggunakan bakteri Staphylococcusepidermidis, Streptococcus mutans, Staphylococcus aureus dan Escherichia coli. Penelitian ini mencakup skrining fitokimia, pembuatan ekstrak etanol daun jambu mete secara maserasi kemudian difraksinasi berturut-turut dengan pelarut n-heksan, kloroform dan etilasetat, selanjutnya ekstrak etanol dan hasil fraksinasi dari daun jambu mete diuiji aktivitas antibakteri dengan metode difusi agar menggunakan silinder logam.

1.2Perumusan Masalah

a. golongan senyawa kimia apa saja yang terdapat dalam simplisia, ekstrak etanol, fraksi n-heksan, kloroform dan etilasetat daun jambu mete.

b. apakah ekstrak etanol, fraksi n-heksan, kloroform dan etilasetat mempunyai aktivitas antibakteri terhadap Staphylococcusepidermidis, Streptococcus mutans, Staphylococcus aureus dan Escherichia coli.

1.3Hipotesis

a. golongan senyawa kimia yang terdapat dalam simplisia dan ekstrak etanol bersifat antibakteri yaitu tanin, flavonoida, triterpenoida/steroida dan saponin. Golongan senyawa kimia yang terdapat dalam fraksi n-heksan yaitu metabolit sekunder yang bersifat nonpolar. Golongan senyawa kimia yang terdapat dalam fraksi kloroform yaitu senyawa metabolit sekunder bersifat semipolar. Golongan senyawa kimia yang terdapat pada fraksi etilasetat yaitu metabolit sekunder yang bersifat polar.

b. ekstrak etanol, fraksi n-heksan, kloroform dan etilasetat dari daun jambu mete mempunyai aktivitas antibakteri terhadap bakteri Staphylococcusepidermidis, Streptococcus mutans, Staphylococcus aureus dan Escherichia coli

1.4Tujuan

a. mengetahui golongan senyawa kimia yang terdapat dalam simpilisia, ekstrak etanol, fraksi n-heksan, fraksi kloroform dan fraksi etilasetat daun jambu mete.

b. mengetahui aktivitas antibakteri ekstrak etanol, fraksi n-heksan, kloroform dan etilasetat terhadap bakteri Staphylococcusepidermidis, Streptococcus mutans, Staphylococcus aureus dan Escherichia coli.

1.5Manfaat Penelitian

Hasil penelitian ini diharapkan dapat meningkatkan daya dan hasil guna dari daun jambu mete. Selain itu diharapkan dapat memberikan informasi tentang efek antibakteri dari ekstrak etanol, fraksi n-heksan, kloroform dan etilsetat daun jambu mete terhadap bakteri Staphylococcusepidermidis, Streptococcus mutans, Staphylococcus aureus dan Escherichia coli.

Uji Aktivitas Antibakteri ekstrak Etanol, Fraksi n-heksan, Fraksi Kloroform dan Fraksi Etilasetat daun Jambu Mete (Anacardium occidentale L.)

Abstrak

Masyarakat Indonesia telah lama mengenal dan menggunakan tanaman berkhasiat obat, sebagai upaya dalam menanggulangi masalah kesehatan. Salah satunya daun jambu mete yang biasa dikonsumsi sebagai sayur oleh masyarakat Indonesia. Daun jambu mete mengandung flavonoid dan tanin yang berkhasiat sebagai antibakteri.

Skrining fitokimia serbuk simplisia, ekstrak etanol, fraksi n-heksan, fraksi kloroform dan fraksi etilasetat. Ekstraksi dilakukan dengan cara maserasi menggunakan pelarut alkohol 80% dan dilanjutkan dengan fraksinasi secara berturut-turut menggunakan pelarut n-heksan, kloroform dan etilasetat. Masing-masing ekstrak dan fraksi dilakukan uji aktivitas antibakteri terhadap bakteri Staphylococcus epidermidis, Streptococcus mutans, Staphylococcus aureus dan Escherichia coli dengan metode difusi agar menggunakan silinder logam.

Hasil skrining fitokimia serbuk simplisia dan ekstrak etanol daun jambu mete menunjukkan adanya glikosida, saponin, flavonoida, tanin dan triterpenoida/steroid. Fraksi n-heksan menunjukkan adanya triterpenoida/steroida, fraksi kloroform mengandung senyawa alkaloid, fraksi etilasetat menunjukkan adanya glikosida, saponin, flavonoida dan tanin. Hasil uji aktivitas antibakteri menunjukkan bahwa ekstrak etanol dan fraksi etil asetat memberikan efek terhadap bakteri Staphylococcus epidermidis, Streptococcus mutans, Staphylococcus aureus dan Escherichia coli dengan konsentrasi hambat minimum (KHM) sebesar 10 mg/ml dengan diameter berturut-turut sebesar 11,66 mm; 11,10 mm; 11,13 mm; dan 10,98 mm. Fraksi etilasetat pada konsentrasi 5 mg/ml dengan diameter sebesar 13,33 mm; 13,33 mm; 14,11 mm dan 14,10 mm. Fraksi n-heksan dan kloroform tidak memberikan aktivitas antibakteri.

Kata kunci: daun jambu mete, antibakteri, Staphylococcus epidermidis, Streptococcus mutans, Staphylococcus aureus dan Escherichia coli

Antibacterial Activity Of Ethanol Extract, n-Hexane Fraction, Chloroform Fraction and Aethylacetate Fraction Of Cashew Nut Leaves

(Anacardium occidentale L) Abstract

Indonesian society has rocignized and consumed medicinal plants as taking health care. One of them is cashew nut leaves which consumed as vegetable by Indonesian people. It contains flavonoid and tanin which use as antibacterial activity.

The phytochemical screening of simplex powder, extract ethanol, n-hexane fraction, chloroform fraction and aethylacetate fraction. The extration process by maceration method using ethanol as solvent and fractionated with n-hexane, chloroform then aethylacetate. The antibacterial activity for each extract and fractination was measured by means of agar diffusion method using punch hole.

The phytochemical screening result of cashew nut leaves shows the presence of glycoside, saponine, flavonoid, tanin and triterpenopida/steroid. n-hexane fraction presence of triterpenoid/steroid. aethylacetate fraction presence of glycoside, saponine, flavonoid and tanin. Chloroform fraction presence of alkaloid. The result of antibacterial activity examination showed ethanol extract and aethylacetate fraction gave antibacterial activity effect against Staphylococcus epidermidis, Streptococcus mutans, Staphylococcus aureus and Escherichia coli with minimum inhibitory concentration (MIC) were 10 mg/ml and inhibition diameter were consecutively as follows 11.66 mm, 11.10 mm, 11.13 mm and 10.98 mm. For aethylacetate fraction were 5 mg/ml and inhibition diameter were consecutively as follows 13.33 mm, 13.33 mm, 14.11 mm and 14.10 mm. The n-hexane fraction and chloroform fraction has no antibacterial effect.

Keywords : cashew nut leaves, antibacterial, Staphylococcus epidermidis, Streptococcus mutans, Staphylococcus aureus dan Escherichia coli

UJI AKTIVITAS ANTIBAKTERI EKSTRAK ETANOL, FRAKSI

n-HEKSAN, FRAKSI KLOROFORM DAN FRAKSI ETILASETAT

DAUN JAMBU METE

(Anacardium occidentale L.)

SKRIPSI

OLEH:

MELYA LESTARI

NIM 111524009

PROGRAM EKSTENSI SARJANA FARMASI

FAKULTAS FARMASI

UNIVERSITAS SUMATERA UTARA

MEDAN

UJI AKTIVITAS ANTIBAKTERI EKSTRAK ETANOL, FRAKSI

n-HEKSAN, FRAKSI KLOROFORM DAN FRAKSI ETILASETAT

DAUN JAMBU METE

(Anacardium occidentale L.)

SKRIPSI

Diajukan untuk melengkapi salah satu syarat untuk memperoleh gelar Sarjana Farmasi pada Fakultas Farmasi

Universitas Sumatera Utara OLEH:

MELYA LESTARI NIM 111524009

PROGRAM EKSTENSI SARJANA FARMASI

FAKULTAS FARMASI

UNIVERSITAS SUMATERA UTARA

MEDAN

PENGESAHAN SKRIPSI

UJI AKTIVITAS ANTIBAKTERI EKSTRAK ETANOL,

FRAKSI n-HEKSAN, FRAKSI KLOROFORM DAN FRAKSI

ETILASETAT DAUN JAMBU METE

(Anacardium occidentale L.)

OLEH: MELYA LESTARI

NIM 111524009

Dipertahankan di Hadapan Panitia Penguji Skripsi Fakultas Farmasi

Universitas Sumatera Utara Pada Tanggal: 4 September 2015

Pembimbing I, Panitia Penguji,

Dra. Erly Sitompul, M.Si., Apt. Dra. Aswita Hafni Lubis, M.Si., Apt.

NIP 195006121980032001 NIP 195304031983032001

Pembimbing II, Dr. Erly Sitompul., M.Si., Apt. NIP 195006121980032001

Dr. Marline Nainggolan, M.S.,Apt. Dra. Suwarti Aris, M.Si., Apt. NIP 195709091985112001 NIP 195107231982032001

Drs. Suryadi Achmad, M.Sc., Apt. NIP 195109081985031002

Medan, Januari 2016 Fakultas Farmasi

Universitas Sumatera Utara Pejabat Dekan,

Dr. Masfria, M.S., Apt. NIP 195707231986012001

KATA PENGANTAR

Puji dan syukur kehadirat Allah SWT yang telah melimpahkan rahmat dan karunia-Nya kepada penulis dalam menjalani masa perkuliahan hingga penulis dapat menyelesaikan penelitian dan penulisan skripsi ini dengan baik. Judul skripsi ini adalah “Uji Aktivitas Antibakteri Ekstrak Etanol, Fraksi n-heksan, Fraksi Kloroform dan Fraksi Etilasetat daun Jambu Mete (Anacardium occidentale L)”. Skripsi ini merupakan salah satu persyaratan yang harus dipenuhi dan dilaksanakan untuk memperoleh gelar Sarjana Farmasi di fakultas Farmasi Universitas Sumatera Utara.

Selama menjalankan penelitian dan penulisan skripsi ini, penulis telah banyak mendapatkan bantuan dari berbagai pihak, baik pihak akademis maupun keluarga. Penulis ingin mengucapkan terima kasih yang sebesar-besarnya kepada Pejabat Dekan Fakultas Farmasi Universitas Sumatera Utara, Dr. Masfria, M.S., Apt., yang telah memberikan bantuan dan fasilitas selama masa penelitian. Ibu Dra. Erly Sitompul, M.Si., Apt., dan Ibu Dr. Marline Nainggolan, M.S., Apt., yang telah membimbing dengan penuh kesabaran, tulus dan ikhlas selama penelitian dan penulisan skripsi ini berlangsung. Bapak Drs. David Sinurat, M.Si., Apt., selaku Penasehat Akademik yang telah memberikan petunjuk dan bimbingan kepada penulis selama masa pendidikan. Ibu Dra. Aswita Hafni Lubis, M.Si., Apt., selaku Kepala Laboratorium Fitokimia, Ibu Dra. Erly Sitompul, M.Si., Apt., selaku Kepala Laboratorium Mikrobiologi dan seluruh staf yang telah memberikan fasilitas dan bantuan selama masa penelitian. Ibu Dra. Aswita Hafni Lubis, M.Si., Apt., Ibu Dra. Suwarti Aris, M.Si., Apt., dan Bapak Drs. Suryadi Achmad, M.Sc., Apt., selaku dosen penguji yang telah memberikan saran dan

kritikan kepada penulis hingga selesainya penulisan skripsi ini. Bapak dan Ibu staf pengajar Fakultas Farmasi USU yang telah membina dan mendidik penulis selama menuntut ilmu di Fakultas Farmasi.

Penulis juga mengucapkan terima kasih yang tiada terhingga kepada Ayahanda dan Ibunda tercinta, Selamet dan Sri Ana, serta adik Septian Aditya atas doa, dorongan dan pengorbanan baik moril maupun materil selama menempuh pendidikan Strata 1 Farmasi.

Penulis menyadari bahwa tulisan ini masih memiliki banyak kekurangan, oleh karena itu dengan segala kerendahan hati penulis bersedia menerima kritikan dan saran yang membangun pada skripsi ini. Semoga skripsi ini bermanfaat bagi kita semua.

Medan, September 2015 Penulis

Melya Lestari 11524009

3.3 Pengumpulan Bahan Tumbuhan ... 24

3.3.1 Identifikasi tumbuhan ... 24

3.3.2 Pengolahan simplisia ... 24

3.4 Pembuatan Pereaksi ... 24

3.4.1 Pereaksi asam klorida 2N ... 24

3.4.2 Pereaksi asam sulfat 2N ... 25

3.4.3 Pereaksi besi (III) klorida 1% ... 25

3.4.4 Pereaksi Bouchardat ... 25

3.4.5 Pereaksi Dragendroff ... 25

3.4.6 Pereaksi Liebermann-burchard ... 25

3.4.7 Pereaksi Mayer ... 25

2.4.8 Pereaksi molish ... 26

3.4.9 Pereaksi natrium hidroksida 2N ... 26

3.4.10 Pereaksi timbal (III) asetat 0,4 M ... 26

3.5 Skrining Fitokimia ... 26

3.5.1 Pemeriksaan alkaloida ... 26

3.5.2 Pemeriksaan antrakinon ... 27

3.5.3 Pemeriksaan tanin ... 27

3.5.4 Pemeriksaan flavonoida ... 27

3.5.5 Pemeriksaan glikosida ... 27

3.5.6 Pemeriksaan steroida/triterpenoida ... 28

3.5.7 Pemeriksaan saponin ... 28

3.6 Pembuatan Ekstrak Etanol Daun Jambu Mete (Anacardium occidentale) ... 28

3.7 Pembuatan Fraksi n-Heksan, Kloroform Dan Etilasetat Daun Jambu Mete (Anacardium occidentale) ... 29

3.8 Sterilisasi Alat ... 29

3.9 Pembuatan Media ... 30

3.9.1 Media nutrient agar (NA) ... 30

3.9.2 Media nutrient broth (NB) ... 30

3.10 Pembuatan Agar Miring ... 31

3.11 Pembuatan Stok Kultur Bakteri ... 31

3.12 Pembuatan Inokulum Bakteri ... 31

3.13 Pembuatan Larutan Uji (Ekstrak Etanol, Fraksin-Heksan, Kloroform Dan Etilasetat Daun Jambu Mete (Anacardium occidentale) ... 31

3.14 Uji Aktivitas Antibakteri Ekstrak Etanol, Fraksin-Heksan, Kloroform DanEtilasetat Daun Jambu Mete (Anacardium

occidentale) ... 32

BAB IV HASIL DAN PEMBAHASAN ... 33

4.1 Identifikasi Tumbuhan ... 33

4.2 Hasil skrining Fitokimia ... 33

4.3 Hasil Uji Aktivitas Antibakteri Ekstrak Etanol, Fraksin-Heksan, Kloroform Dan Etilasetat Terhadap Streptococcus epidermidis, Streptococcus mutans, Staphylococcus aureus dan Escherichia coli ... 34

BAB V KESIMPULAN DAN SARAN ... 39

5.1 Kesimpulan ... 39

5.2 Saran ... 39

DAFTAR PUSTAKA ... 40

DAFTAR TABEL

Tabel Halaman

4.1 Hasil skrining fitokimia ekstrak etanol, fraksi n-heksan, fraksikloroform dan fraksi etilasetat ... 33 4.2 Hasil pengukuran diameter daerah hambatan pertumbuhan

Streptococcus epidermidis, Streptococcus mutans,

Staphylococcus aureus dan Escherichia coli dari ekstrak etanol daun jambu mete ... 35 4.3 Hasil pengukuran diameter daerah hambatan pertumbuhan

Streptococcus epidermidis, Streptococcus mutans, Staphylococcus aureus dan Escherichia coli dari fraksi etilasetat daun jambu mete ... 37

DAFTAR LAMPIRAN

Lampiran Halaman

1. Identifikasi Tumbuhan ... 43 2. Gambar tumbuhan jambu mete (Anacardium occidentale) . 44 3. Gambar daun segar dan simplisia dari daun jambu

mete(Anacardium occidentale) ... 45 4. Bagan pembuatan ekstrak dan fraksinasi ... 46 5. Bagan pengujian aktivitas antibakteri ... 47 6. Hasil pengukuran diameter daerah hambat ekstrak etanol

daun jambu mete terhadap pertumbuhan bakteri

Staphylococcus epidermidis ... 48 7. Hasil pengukuran diameter daerah hambat ekstrak etanol

daun jambu mete terhadap pertumbuhan bakteri

Streptococcus mutans ... 59 8. Hasil pengukuran diameter daerah hambat ekstrak etanol

daun jambu mete terhadap pertumbuhan bakteri

Staphylococcus aureus ... 50 9. Hasil pengukuran diameter daerah hambat ekstrak etanol

daun jambu mete terhadap pertumbuhan bakteri

Escherichia coli ... 51 10. Hasil pengukuran diameter daerah hambat fraksi etilasetat

daun jambu mete daun jambu mete terhadap pertumbuhan

bakteri Staphylococcus epidermidis ... 52 11. Hasil pengukuran diameter daerah hambat fraksi etilasetat

daun jambu mete daun jambu mete terhadap pertumbuhan

bakteri Streptococcus mutans ... 53 12. Hasil pengukuran diameter daerah hambat fraksi etilasetat

daun jambu mete daun jambu mete terhadap pertumbuhan

bakteri Staphylococcus aureus ... 54 13. Hasil pengukuran diameter daerah hambat fraksi etilasetat

daun jambu mete daun jambu mete terhadap pertumbuhan

14. Hasil uji aktivitas antibakteri ekstrak etanol daun jambu

mete terhadap bakteri Staphylococcus epidermidis ... 56 15 Hasil uji aktivitas antibakteri ekstrak etanol daun jambu

mete terhadap bakteri Streptococcus mutans ... 57 16. Hasil uji aktivitas antibakteri ekstrak etanol daun jambu

mete terhadap bakteri Staphylococcus aureus ... 58 17. Hasil uji aktivitas antibakteri ekstrak etanol daun jambu

mete terhadap bakteri Escherichia coli ... 59 18. Hasil uji aktivitas antibakteri fraksi n-heksan daun jambu

mete terhadap bakteri Staphylococcus epidermidis ... 60 19. Hasil uji aktivitas antibakteri fraksi n-heksan daun jambu

mete terhadap bakteri Streptococcus mutans ... 61 20. Hasil uji aktivitas antibakteri fraksi n-heksan daun jambu

mete terhadap bakteri Staphylococcus aureus ... 62 21. Hasil uji aktivitas antibakteri fraksi n-heksan daun jambu

mete terhadap bakteri Escherichia coli ... 63 22. Hasil uji aktivitas antibakteri fraksi kloroform daun jambu

mete terhadap bakteri Staphylococcus epidermidis ... 64 23. Hasil uji aktivitas antibakteri fraksi kloroform daun jambu

mete terhadap bakteri Streptococcus mutans ... 65 24. Hasil uji aktivitas antibakteri fraksi kloroform daun jambu

mete terhadap bakteri Staphylococcus aureus ... 66 25. Hasil uji aktivitas antibakteri fraksi kloroform daun jambu

mete terhadap bakteri Escherichia coli ... 67 26. Hasil uji aktivitas antibakteri fraksi etilasetat daun jambu

mete terhadap bakteri Staphylococcus epidermidis ... 68 27. Hasil uji aktivitas antibakteri fraksi etilasetat daun jambu

28. Hasil uji aktivitas antibakteri fraksi etilasetat daun jambu

mete terhadap bakteri Staphylococcus aureus ... 70 29. Hasil uji aktivitas antibakteri fraksi etilasetat daun jambu