Potensi Jamur Entomopatogen untuk Mengendalikan Hama Ulat Grayak (Spodoptera Litura F.) (Lepidoptera : Noctuidae) pada Tanaman Tembakau di Rumah Kasa

DAFTAR PUSTAKA
Ardiansyah. 2007. Hama Ulat Grayak (Spodoptera litura) Mengganas.
www.tempointeraktif.com/hg/nusa/sumatera/2007/04/29.
Diakses
tanggal 16 september 2015
Balitbang. 2006. Hama, Penyakit dan Masalah Hara pada Tanaman Kedelai,
Identifikasi dan Pengendaliannya. Bogor.
Bernardi, E., Pinto, DM., do Nascimento, JS., Ribeiro, PB., and da Silva CI. 2006.
Effect of The Entomopathogenic Fungi Metarhizium anisopliae and
Beauveria bassianaon The Development of Musca domestica L.
(Diptera: Muscidae) in The Laboratory. Arq. Inst. Biol. 73(1):127129.
Bischoff J. F., Rehner S. A. Humber R. A. (2009). "A Multilocus Phylogeny Of
The Metarhizium anisopliae Lineage". Mycologia 101 (4): 512–530.
BPTD.

2004. Strategi Pengendalian Hama dan
Tembakau.BPTD PTP Nusantara II. Medan.

Penyakit

Tanaman

Brady, B.L.K. 1979. Pathogenic Fungi and Bacteria. Common Wealth
Agricultural Bureaux, England.
Budi AS, AA Fandhi & Retno D Puspitarini. 2013. Patogenisitas Jamur
Entomopatogen Beauveria bassiana Balsamo (Deuteromycetes:
moniliales) Pada Larva Spodoptera litura Fabricius (Lepidoptera:
Noctuidae).J.HPT. 1(1):1-7.
Castrillo, L.A., Roberts D. W., and Vandenberg. J. D. 2005. The Fungal Past,
Presen, and Future: Germination, Ramification and Reproduction.
Journal of Invertebrate Phatology 89: 46-56.
Clarkson, J. M., and A. K. Charnley.1996. New Insights Into The Mechanisms of
Fungal Pathogenesis in Insects. Trends Microbiol. 4:hlm.197-203.
Cloyd, R. 2003. The Entomopathogen Verticillium lecanii. Midwest Biological
Control News. University of Illinois. http://www.extension.umm.
Edu/distribution/horticulture/DG7373.html [29 Agustus 2015].
Dinata, A.J. 2012. Pathogenic Fungi and Bacteria. Common wealth Agricultural
Bureaux. England. 233pp.
Erwin, M.S. 2000. Hama dan Penyakit Tembakau Deli. Balai Penelitian
Tembakau Deli, PTPN II. Medan.
Evi, S.Y. 2006.Beauveria bassiana Pengendali Hama Tanaman.Warta Penelitian

dan Pengembangan Pertanian Vol. 28 No. 1.Pacet-Cianjur.

Universitas Sumatera Utara

Freimoser, F. M., S. Screen., S. Bagga., G. Hu, and R. J. St. Leger. 2003.
Expressed Sequence Tag (EST) Analysis of Two Subspecies of
Metarhizium anisopliae Reveals a Plethora of Secreted Proteins With
Potential Activity in Insect Hosts. Microbiol. 239-247.
Gallegos, RP., Cesar A., Roger W., Anibal M., and German A. 2003. Control of
the Larvae of the Beetle Phyllophaga sp. with Biological Products
(Metarhizium anisopliae and Beauveria sp.) in the Blackberry Crop
Rubus glaucus Benth.Ohio State University.
Gandjar, Indrawati. 2006. Mikologi Dasar dan Terapan. Jakarta : Yayasan Obor
Indonesia.
Harni R., A Munif., Supramana & I Mustika. 2007. Potensi Bakteri Endofit
Mengendalikan Nematoda Peluka Akar (Pratylenchus bracyurus)
Pada Nilam. Hayati. J.Bio.Sci.14(1):1-12pp.
Haryani. 2005. Resistensi Hama Tembakau Cerutu. Prosiding Nasional
Perlindungan Tanaman. Bandung. 12-13 Februari 2005.
Hasnah, Susanna, dan H Sably.2012. Keefektifan Jamur Beauveria bassiana Vuill

Terhadap Mortalitas Kepik Hijau Nezara viridula L. Pada Stadia
Nimfa dan Imago. J. Floratek 7:13-24.
Heriyanto dan Suharno. 2008. Studi Patogenitas Metarhizium anisopliae (Metch.)
Hasil Perbanyakan Medium Cair Alami Terhadap Larva Oryctes
rhinoceros. Jurnal Ilmu-ilmu Pertanian 4(1): 47-54.
Herlinda, S., Era, MS., Yulia, P., Suwandi, Elisa, N., dan Anung, R. 2005.Variasi
Virulensi Strainstrain Beauveria bassiana (Bals.)Vuill. Terhadap
Larva Plutella xylostella (L.) (Lepidoptera: Plutellidae). Agritrop
24(2):52-57.
Hughes SJ. 2014. Phycomycetes, Basidiomycetes, and Ascomycetes as Fungi
Imperfecti. In: Taxonomy of Fungi Imperfecti (B. Kendrick, ed.),
pp. 7-36. University of Toronto Press, Toronto.
Kalshoven. 1981. The pest of crop in Indonesia. Jakarta. PT. Inchtiar Baru Van
Hooven.
Kaur, S., Harminder P.K., Kirandeep K. dan Amarjeet K. 2011. Effect of
Different Concentrations of Beauveria bassiana on Development and
Reproductive Potential of Spodoptera litura (Fabricius). J. Biopest.
4(2):161-168.
Kauvelis, VN., Zare, R., Bridge, PD., and Typas, MA. 1999. Differentation of
Mitochondrial Subgroups in the Verticillium lecanii Species

Complex. Letter in Appl Microbial 28:263-268.

Universitas Sumatera Utara

Kherb, W. A. A. 2014. Virulence Bio-Assay Efficiency of Beauveria bassiana
and Metarhizium anisopliae for the Biological Control of Spodoptera
exigua Hubner (Lepidoptera: Noctuidae) Eggs and the 1st Instar
Larvae. Aust. J. Basic & Appl. Sci. 8(3): 313-323.
Krutmuang, P., and Supamit, M. 2005. Pathogenicity of Entomopathogenic Fungi
Metarhizium anisopliae Against. Termites. In: Conferenceon
International Agricultural Research for Development. Department of
Entomology, Faculty of Agriculture, Chiang Mai University.
Thailand, Oktober 11-13, 2005.
Laoh J. 2003. Kerentanan Larva Spodoptera litura F. Terhadap Virus
Nuklear Polyhedrosis. Universitas Riau. Pekanbaru. J. Natur
Indonesia. 5(2):145-151pp.
Mahr. S., 2003. The Entomophatogen Beauveria bassiana. University of
Winconsin, Madison. Diakses dari http://www. Entomogy. Wisc.
Edu/mbcn/kyF410.html. Tanggal 12 Oktober 2015.
Marwoto dan Suharsono.2008. Strategi dan Komponen Teknologi Pengendalian

Ulat Grayak (Spodoptera litura Fabricius) pada Tabel Hidup
Spodoptera litura Fabr. dengan Pemberian Pakan Buatan 179
Tanaman Kedelai. J. Litbang. Pertanian.27: 131-136.
M. Shepard, G. R.Carner, and P.A.C Ooi. 2007. Insects and Their Natural
Enemies Associated with Vegetables and Soybean in Southeast Asia,
Bugwood.org)UF/IFAS Pest Alert.
Natasha, W. 2013 Florida Department of Agriculture and Consumer Services,
Bugwood.org.
Noch, I.R., A. Rahayu, A. Wahyu, dan O. Mochida. 1983. Biologi Ulat Grayak
Spodoptera litura Fabricius (Lepidoptera : Noctuidae) Sebagai Salah
Satu Hama Kacang-kacangan. Kongres Entomologi II. Jakarta, 24-26
Januari 1983.12 p.
Park SH, Yeon SY, JS Park, HY Choo, SD Bae, & MH Nam. 2013. Biological
Control of Tobacco Cutworm Spodoptera litura Fabricius with
Entomopathogenic Nematodes.Biotechnol. BioprocessEng. 6: 139143.
Prayogo , Y. 2012. Bio-lec: Biopestisida untuk Pengendalian Hama dan Penyakit
Utama Kedelai. Disampaikan pada Seminar Internal Balitkabi, 7 Mei
2012.

Universitas Sumatera Utara

Prayogo, Y. 2004. Keefektifan Lima Jenis Jamur Entomopatogen Terhadap Hama
Pengisap Polong Kedelai Riptortus linearis (L.) (Hemiptera:
Alydidae) dan Dampaknya Terhadap Predator Oxyopes javanus
Thorell (Araneida: Oxyopidae). [Tesis]. Sekolah Pascasarjana. Institut
Pertanian Bogor. 51hlm.
Prayogo, Y. 2005. Jamur Entomopatogen Verticillium lecanii dan Paecilomyces
fumosoroseus Sebagai Salah Satu Alternatif Untuk Mengendalikan
Telur Hama Penghisap Polong Kedelai. Berita Puslitbangtan (32):10.
Prayogo, Y., Wedanimbi, T., dan Marwoto. 2005. Prospek Jamur Entomopatogen
Metarhizium anisopliae untuk Mengendalikan Ulat Grayak
Spodoptera litura Pada Kedelai.J. Litbang Pertanian, 24(1):19-26.
Prayogo,

Y. 2006. Upaya Mempertahankan Keefektifan Cendawan
Entomopatogen untuk Mengendalikan Hama Tanaman Pangan. J.
Litbang Pertanian 24(1):19-26.

PTPN II. 2007. Budidaya Tanaman Tembakau Deli.Balai Penelitian Tembakau
Deli. Medan

Rahayu M., Sudarto K., Puspadi I., Mardian. 2009. Paket Teknologi Produksi
Benih Kedelai. Balitbang. Nusa Tenggara Barat.
Rachmat M, Sri N. 2009. Dinamika Agribisnis Tembakau Dunia dan Implikasinya
Bagi Indonesia. Jurnal Forum Penelitian Agro Ekonomi. 27 (2) : 7391.
Rustama, M. M., Melanie., B. Irawan. 2008. Patogenisitas Jamur Entomopatogen
Metarhizium anisopliae terhadap Crocidolomia pavonana fab. dalam
Kegiatan Studi Pengendalian Hama Terpadu Tanaman Kubis dengan
Menggunakan Agensia Hayati. Laporan Akhir Penelitian Peneliti
Muda UNPAD Sumber Dana DIPA UNPAD. Fakultas Matematika
dan Ilmu Pengetahuan Alam. Universitas Padjadjaran.
Saleh, R. M., Rosdah. T dan Suprapti. 2000. Pengaruh Pemberian (Beuveria
bassiana Vuill) Terhadap Kematian dan Perkembangan Larva
(Spodoptera litura Fabricus) di Rumah Kaca. Jurnal Hama dan
Penyakit Tumbuhan Tropika. Jurusan Hama dan Penyakit Tumbuhan,
Fakultas Pertanian Universitas Sriwijaya Palembang. Palembang.
Sibarani, H., S. 2015. Patogenisitas Beauveria bassiana Terhadap Spodoptera
litura Fabricius. (Lepidoptera : Noctuidae) Pada Tanaman Kelapa
Sawit. Skripsi. FP. USU.

Universitas Sumatera Utara

Sintim, H.O., Tashiro, T. and Motoyama, N. 2009. Response of the Cutworm
Spodoptera litura to Sesame Leaves or Crude Extracts in Diet. 13pp.
J.Insect Sci. 9: 52.
Soeseno, 2015. Produksi Tembakau Siap Bangkit. http://www.kemenperin.go.id/
artikel/13782/Produksi-Tembakau-Siap-Bangkit. Sumber: kontan
Harian. Diakses pada tanggal 3 Mei 2016.
Soetopo dan Indrayani, 2007.Status Teknologi dan Prospek Beauveria bassiana
untuk Pengujian Serangga Hama Tanaman Perkebunan yang Ramah
Lingkungan. Perspektif, 6(1): 29-46.
Suhairiyah., Isnawati., dan E. Ratnasari. 2013. The Effect of Lecanicillium on
armyworms (Spodoptera litura) Mortality by In Vitro Assays.
Lenterabio. (2)3 : 253-257.
Sumartini, Y. Prayogo, S.W. Indiati, dan S. Hardaningsih. 2001. Pemanfaatan
Jamur Metarhizium anisopliae untuk Pengendalian Pengisap Polong
(Riptortus linearis) Pada Kedelai. hlm. 154−157. Dalam
S.E.
Baehaki, E. Santosa, Hendarsih, S.T. Suryana, N. Widarta, dan
Sukrino (Ed.).
Simposium Pengendalian Hayati Serangga, Balai

Penelitian Tanaman Padi Sukamandi.
Surtikanti dan Yasin, M .2009.Keefektifan Entomopatogenik Beauveria bassiana
Vuill. dari Berbagai Media Tumbuh Terhadap Spodoptera litura F.
(Lepidoptera:Noctuidae) di Laboratorium. Prosiding Seminar
Nasional Serelia. Hlm. 358-362.
Suwarso. 2007. Peluang Penerapan Indikasi Geografis pada Tembakau di
Indonesia. http://www.dgip.go.id [Diakses 1 September 2015].
Tanada, Y. and H.K. Kaya. 1993. Insect pathology. Academic Press, Inc.,
California.666 pp.
Tenrirawe, A dan A.H Talanca. 2008. Bioekologi dan Pengendalian Hama dan
Penyakit Utama Kacang Tanah. Prosiding Seminar Ilmiah dan
Pertemuan Tahunan PEI PFI XIX Komisariat Daerah Sulawesi
Selatan 464-471.
Thompson SR. 2006. Enhancing the Efficacy of Beauveria bassiana for Mole
Cricket (Orthoptera: Gryllotalpidae) Control in Turfgrass. Australia:
North Carolina State University. [Dissertation].
Thungrabeab, M., Peter, B., and Cetin, S. 2006. Possibilities for Biocontrol of the
Onion Thrips Thrips tabaci Lindeman (Thys.,Thripidae) Using
Different Entomopathogenic Fungi from Thailand. J. Mitt. Dtsch. Ges.
Allg.Angew.Ent. 15:299-304.

Universitas Sumatera Utara

Trizelia, M.Y Syahrawati., dan Aina M. 2011. Patogenesitas Beberapa Isolat
Jamur Entomopatogen Metarhizium sp. Terhadap Telur Spodoptera
litura F (Lepidoptera:Noctuidae). Jurnal Entomologi Indonesia. 8(1):
45-54.
Tsakadze, T., Abashidze, E., Samadashvili, D., and Odikadze, K. 2003. Fungi of
Genus Metarhizium as Pathogens Attacking Locust. L. Kanchaveli
Georgian Plant Protection Institute.
Utomo & Pardede. 2014. Pengaruh Musim pada Hipobiose Haemonchus
contortus dan Fluktuasi Populasi Nematoda Saluran Pencernaan
Domba di Indramayu, Jawa Barat. hlm. 171
−192. Prosiding Seminar.
Nasional Hasil Penelitian Perguruan Tinggi.
Wahyudi, P .2002. Uji Patogenitas Kapang Entomopatogen Beauveria bassiana
Vuill. Terhadap Ulat Grayak (Spodoptera litura). Biosfera. 19:1-5.
Wahyudi. 2008. Jamur Patogen Serangga Sebagai Bahan Baku Insektisida.
Pemanfaatan Mikroba dan Parasitoid dalam Agroindustri Tanaman
Rempah dan Obat. Perkembangan Teknologi Tanaman Rempah dan

Obat (XII): 21−28pp.
Widiyanti, N.L.P.M., dan S. Muyadihardja. 2004. Uji Toksisitas Jamur
Metarhizium anisopliae terhadap Larva Nyamuk Aedes aegypti.
Media
Litbang Kesehatan 14 (3): 25-30.
Wilyus Dan E. Yudiawati. 2005 Kemangkusan Beauveria bassiana (Balsamo)
Vuillemin dalam Menghambat Perkembangan Spodoptera litura
Fabricius (Lepidoptera: Noctuidae). Jurusan Budidaya Pertanian.
Fakultas Pertanian. Universitas Jambi. Jurnal Agronomi: 9 (2): 103
Zare, R., and Gams, W. 2001. A revision of Verticillium sect. Prostrata. IV The
genera Lecanicillium and Simplicillium gen. Nova Hedwigian 73:
1-50.

Universitas Sumatera Utara

METODOLOGI PENELITIAN
Tempat dan Waktu Penelitian
Penelitian ini dilaksanakan di Laboratorium dan di Rumah kassa Fakultas
Pertanian Universitas Sumatera Utara, dengan ketinggian tempat ± 25 meter di
atas permukaan laut, mulai bulan Oktober 2015 sampai Februari 2016.
Bahan dan Alat
Bahan yang digunakan pada penelitian ini antara lain, tanaman tembakau
varietas Deli-4 berumur 2 bulan yang sehat sebagai tanaman inang, ulat grayak
(S.

litura)

sebagai

serangga

hama,

L.

lecanii,

M.

anisopliae,

dan

B. bassiana sebagai jamur entomopatogen, PDA (Potato Dextrose Agar) sebagai
media biakan S. litura yang terserang jamur entomopatogen, DOC-2 PDA sebagai
media biakan jamur entomopatogen, Bactopeptone, CuCl2, Crystal violet, HCl,
air, kentang, dextrose, aquadest sebagai bahan pembuatan medium PDA, cling
wrap, kapas, dan alumunium foil sebagai penutup larutan, kertas stensil sebagai
bahan sterilisasi, aquades sebagai bahan pembuatan media, alkohol 96% sebagai
bahan sterilisasi, chlorox sebagai bahan sterilisasi, polibeg ukuran 10kg sebagai
wadah media tanam tembakau, kertas label sebagai penanda perlakuan.
Alat yang digunakan pada penelitian ini antara lain, sungkup berukuran
40cmx1m sebagai kurungan hama pada tanaman, cawan petri diameter 9 cm
sebagai wadah media biakan jamur, erlenmeyer sebagai wadah larutan media,
gelas ukur untuk mengukur larutan media, tabung reaksi sebagai wadah larutan
pengenceran, hot plate sebagai alat untuk mencairkan media, jarum inokulum
untuk menginokulasi jamur entomopatogen, micropipet untuk mengambil cairan
1ml, mikroskop cahaya sebagai alat pengamatan mikroskopis, kaca pembesar

Universitas Sumatera Utara

untuk pengamatan hama terinfeksi di lapangan, autoclave sebagai alat untuk
sterilisasi media dan alat, timbangan analitik sebagai alat untuk menimbang bahan
pembuatan media, laminar air flow sebagai alat sterilisasi saat mengkulturkan
jamur entomopatogen, haemocytometer sebagai alat untuk menghitung jumlah
spora/konidia jamur, lemari pendingin sebagai alat penyimpanan PDA.
Metode Penelitian
Penelitian ini menggunakan metode Rancangan Acak Kelompok (RAK)
dengan 2 faktor.Terdiri dari 9 perlakuan dan tiga ulangan. Adapun perlakuannya
adalah:
Faktor 1 : Jamur entomopatogen
C1 : Jamur entomopatogen L. lecanii
C2 : Jamur entomopatogen M. anisopliae
C3 : Jamur entomopatogen B. bassiana
Faktor 2 : Kerapatan konidia Jamur
K1 : Kerapatan konidia 106/ml
K2 : Kerapatan konidia 107/ml
K3 : Kerapatan konidia 108/ml
Jumlah ulangan diperoleh dengan rumus:
(t-1) (r-1) ≥ 15
(8) (r-1) ≥ 15
8r – 8

≥ 15

8r

≥ 23

r

≥ 23/8

r

≥ 2,87

Universitas Sumatera Utara

Ulangan yang digunakan adalah sebanyak 3 ulangan, yaitu:
Total unit percobaan : 9 x 3 = 27 unit percobaan
Kombinasi perlakuan yang diperoleh adalah sebagai berikut:
C1K1

C2K1

C3K1

C1K2

C2K2

C3K2

C1K3

C2K3

C3K3

Pelaksanaan Penelitian
Di Laboratorium
Isolasi Jamur entomopatogen
Jamur entomopatogen diisolasi dengan cara mengambil S. litura yang
terinfeksi jamur entomopatogen yang berasal dari lahan pertanaman kubis
Berastagi. S. litura yang diambil dicuci dengan air mengalir selama 15 menit, S.
litura dipotong dan dimasukkan ke dalam beaker glass 150 ml. S. litura yang telah
bersih kemudian direndam dengan NaOCl 5% selama 1 menit kemudian dibilas
dengan akuades steril. Selanjutnya S. litura direndam dengan alkohol 96%
selama 1 menit dan dibilas dengan akuades steril setelah itu S. litura direndam
dengan akudes steril selama 15 menit sebanyak dua kali. S. litura yang telah
disterilisasi permukaan kemudian ditanam dalam media DOC PDA 02 selama 2
hari untuk mendeteksi kontaminan. S. litura yang bebas kontaminan, digunakan
untuk memperbanyak jamur entomopatogen dengan menggerus S. litura di dalam
mortal. Air gerusan S. litura digoreskan pada media DOC PDA 02 dan diamati
pertumbuhan jamur entomopatogen selama 7 hari dan dilakukan permurnian isolat
(Harni et al., 2007).

Universitas Sumatera Utara

Perbanyakan Larva Spodoptera litura F.
Dikumpulkan koloni telur S. litura dari lapangan, lalu dimasukkan ke
dalam wadah plastik dengan ukuran 20x28 (diameter x tinggi) telur S.litura
diperbanyak dengan cara mengembang biakkan dilaboratorium. Dimasukkan
pakan segar yaitu daun tembakau. Setelah telur menetas, dipisahkan larva instar 1
ke wadah lain dan diberi pakan daun tembakau. Makanan larva diganti setelah
habis atau sudah tidak segar lagi. Kotoran larva yang terkumpul di dalam wadah
harus dibersihkan setiap hari. Setelah larva berganti kutikula sampai instar 2,
diambil larva dan diinokulasikan pada tanaman tembakau sebanyak 5 ekor setiap
tanaman.
Perbanyakan jamur Entomopatogen
Cendawan entomopatogen ditumbuhkan pada media tumbuh PDA di
dalam cawan petri. Pada umur 21 hari setelah inokulasi (hsi), setiap biakan
cendawan yang ada di dalam cawan petri ditambahkan air 10 ml kemudian
konidia yang terbentuk diambil menggunakan kuas halus dan digerus pada bagian
permukaan koloni bagian atas lalu dicampurkan kedalam media cair DOC2.
Pengenceran Jamur Entomopatogen
Ditimbang bahan sediaan jamur sebanyak 1 gr. Kemudian dimasukkan ke
dalam tabung reaksi yang terlebih dahulu diisi aquades sebanyak 9 ml. Kemudian
diaduk larutan dengan menggunakan alat pengaduk. Selanjutnya diambil 1 ml
larutan tersebut dengan menggunakan mikropipet dan dimasukkan ke dalam
tabung reaksi baru yang telah diisi 9 ml aquades dan diaduk. Selanjutnya
dilakukan hal sama sampai diperoleh kerapatan spora yang dibutuhkan.

Universitas Sumatera Utara

Menghitung Kerapatan Spora
Larutan hasil pengenceran diambil menggunakan jarum suntik dan
diteteskan di atas haemocytometer. Kemudian ditutup dengan deck glass.
Kerapatan spora dihitung dibawah mikroskop dengan rumus :
Jumlah spora/ml = jumlah spora x 2,5 x 106
Sterilisasi Media Tanam Tembakau
Media tanam tembakau terdiri dari topsoil kompos dan pasir (2:1:1).
Media tumbuh kemudian dimasukan ke dalam plastik tahan panas dan disterilisai
dalam autoklaf dengan suhu 1210 C selama 1 jam.
Di Rumah Kasa
Persiapan Media Tanam
Dimasukkan media tanam yakni topsoil, kompos dan pasir yang telah
steril kedalam polibeg ukuran 10 kg.
Pemupukan
Pemupukan dasar dilakukan 1minggu sebelum tanam yaitu dengan
menggunakan pupuk ZA dan pupuk ZK dan TSP dengan cara ditugalkan di
sekitar lubang tanam.dosis pupuk yang direkomendasikan yaitu ZA 7,85
gr/tanaman, ZK 12,15 gr/tanaman dan TSP 7,53 gr/tanaman.
Penanaman Tembakau Pada Media Tanam
Penanaman bibit kedalam polibeg dilakukan setelah bibit tumbuh
sempurna yakni telah berumur 40 hari setelah disemai atau telah memiliki 5-6
helai daun sempurna. Penanaman dilakukan dengan cara memasukkan bibit
kedalam polibeg sebanyak satu bibit per polibeg. Setelah itu, bibit tembakau

Universitas Sumatera Utara

disungkup dengan menggunakan kain kasa agar terhindar dari serangan opt
lainnya.
Introduksi Spodoptera litura F. Pada Tanaman Tembakau
S. litura sesuai instar diintroduksikan sebanyak 5 larva/ tanaman tembakau
sesuai dengan masing-masing perlakuan.
Inokulasi Jamur Entomopatogen Pada Tanaman Tembakau
Jamur entomopatogen yang telah diformulasi dalam media cair diinokulasi
sebanyak 50 ml ke seluruh permukaan tanaman tembakau.
Pemeliharaan Tanaman
Pengendalian OPT
OPT lain diamati dan dikendalikan secara mekanis dengan cara
pengutipan langsung dan memusnahkannya.
Penyiraman Tanaman Tembakau
Penyiraman dilakukan pada pagi dan sore hari dengan menggunakan
gembor. Penyiraman dilakukan dengan kondisi di lapangan.

Universitas Sumatera Utara

Peubah Amatan
Mortalitas Spodoptera litura F.
Pengamatan terhadap mortalitas S. litura dilakukan setiap hari
setelah aplikasi hingga hama tersebut mati. Persentase mortalitas S. litura dihitung
dengan rumus :

P = Persentase mortalitas Spodoptera litura
n = Jumlah larva yang mati
N= Jumlah awal dari larva yang diuji (Laoh et al.,2003).
Gejala Spodoptera litura F. yang Terinfeksi Jamur Entomopatogen
Pengamatan dilakukan setiap hari pada sore hari sampai larva S. litura
mati terinfeksi jamur entompatogen.
Intensitas Serangan
Perhitungan terhadap tingkat kerusakan tanaman tembakau dilakukan
dengan menggunakan rumus:

Keterangan
IS

= Intensitas serangan

n

= Jumlah daun rusak tiap kategori serangan

v

= Nilai skala tiap kategori serangan

Z

= Nilai skala tertinggi kategori serangan

N

= Jumlah daun yang diamati

Nilai skala dapat dikategorikan sebagai berikut:

Universitas Sumatera Utara

0 = Daun sehat tidak ada serangan
1 = > 0-25 % yang terserang dari jumlah daun yang diamati
2 = > 25-50 % yang terserang dari jumlah daun yang diamati
3 = > 50-75 % yang terserang dari jumlah daun yang diamati
4 = > 75-100% yang terserang dari jumlah daun yang diamati
(BPTD, 2004).
Analisis Data
Untuk mengetahui pengaruh antar perlakuan, maka data-data yang
diperoleh diuji dengan analisis varian, dilanjutkan dengan Uji Jarak Berganda
Duncan (DMRT) taraf 5 % bila terdapat beda nyata.

Universitas Sumatera Utara

HASIL DAN PEMBAHASAN
Mortalitas Spodoptera litura F.
Hasil sidik ragam menunjukkan bahwa tingkat kerapatan konidia
L. lecanii, M. anisopliae dan B. bassiana berpengaruh nyata terhadap persentase
(%) mortalitas larva S. litura (Tabel 1 dan 2 Lampiran 4-8).
Tabel 1. Mortalitas larva Spodoptera litura pada berbagai tingkat kerapatan
konidia Lecanicillium lecanii, Metarhizium anisopliae, dan Beauveria
bassiana, (%) pada 1-7 hari setelah aplikasi (hsa).
Mortalitas (%)
Perlakuan
1 HSA 2 HSA 3 HSA 4 HSA 5 HSA 6 HSA 7 HAS
K1

0

0

2,22 b

4,44 c

11,11 c

24,44 b

31,11 c

K2

0

0

8,89 b

17,78 b

28,88 b

35,56 b

44,44 b

K3

0

0

22,22 a

31,11 a

51,11 a

66,67 a

73,33 a

Keterangan: Angka-angka yang diikuti notasi yang sama pada kelompok kolom yang sama
menunjukkan tidak berbeda nyata pada taraf 5% menurut Duncan Multiple Range
Test. hsa: hari setelah aplikasi. K1: Kerapatan spora 106/ml, K2: Kerapatan spora
107/ml, K3: Kerapatan spora 108/ml

Tabel 1 menunjukkan bahwa kematian larva mulai terjadi pada 3 hsa (hari
setelah aplikasi) pada K1 (kerapatan 106 konidia/ml) 2,22% hal ini tidak berbeda
nyata dengan K2 (kerapatan 107 konidia/ml) 8,89%, namun berbeda nyata pada
K3 (kerapataan 108 konidia/ml) 22,22%. Perbedaan tersebut dipengaruhi oleh
tingkat kerapatan konidia dan virulensi jamur entomopatogen yang berbeda.
Semakin meningkatnya konsentrasi jamur entomopatogen dan semakin banyak
konidia yang menempel pada tubuh serangga, maka semakin cepat proses infeksi
yang membuat sistem metabolisme terganggu pada tubuh sehingga persentase
kematian pada larva S. litura semakin tinggi. Hal ini sesuai dengan penelitian
Sibarani (2015) semakin meningkatnya konsentrasi jamur dan jumlah konidia

Universitas Sumatera Utara

semakin banyak serta semakin tinggi daya kecambah, maka akan membuat proses
infeksi berlangsung cepat, sehingga mempercepat kematian pada larva S. litura.
Hasil pengamatan menunjukkan terjadinya kematian larva yang terinfeksi
jamur entomopatogen dimulai dari 3 HSA. Hal ini menandakan bahwa jamur
entomopatogen membutuhkan waktu untuk menginfeksi dan mematikan larva,
karena konidia jamur yang menempel pada kutikula larva terlebih dahulu
berkecambah membentuk hifa agar dapat menembus kutikula. Wahyudi (2002)
menyatakan bahwa jamur entomopatogen ini membutuhkan waktu untuk
mematikan serangg inangnya, dikarenakan konidia jamur yang menempel pada
kutikula harus berkecambah membentuk hifa terlebih dahulu agar dapat
menembus kutikula. Hifa mengeluarkan senyawa enzim kitinase dan protease
yang dapat menghancurkan kutikula pada integumen. Lama waktu yang
dibutuhkan isolat jamur entomopatogen mulai dari infeksi jamur hingga larva
dapat mati berkisar 2-10 hari (Herlinda et al 2005).
Pada pengamatan 7 HSA persentase mortalitas tertinggi terdapat pada
perlakukan kerapatan 108 konidia/ml 73,33%. Dapat disimpulkan bahwa semakin
tinggi jumlah konsentrasi dan racun yang menempel pada permukaan tubuh larva,
mengakibatkan jamur lebih cepat berpenetrasi dan mendegradasi kutikula
sehingga, semakin tinggi angka kematian larva. Rustama et al., (2008) Semakin
banyak konidia yang melekat pada kutikula larva serangga, maka semakin banyak
pula konidia yang melakukan penetrasi terhadap kutikula. Mengakibatkan banyak
larva yang mati, maka akan meningkatkan persentase tingkat kematian.
Dari Tabel 1 dapat dilihat bahwa persentasi mortalitas larva terendah pada
K1 (kerapatan 106 konidia/ml) 31,11%, selanjutnya pada K2 (kerapatan konidia

Universitas Sumatera Utara

107/ml) 44,44%, dan persentase mortalitas tinggi dinyatakan pada K3 (kerapatan
konidia 108/ml) 73,33%. Hal ini dipengaruhi oleh daya tahan tubuh larva, tingkat
patogenisitas jamur yang rendah, jumlah konidia yang juga rendah serta racun
yang dihasilkan lebih sedikit mengakibatkan persentase kematian menjadi lebih
rendah. Menurut Castrillo et al., (2005) tingkat patogenitas cendawan
entomopatogen

ditentukan

potensi

serangga

inang

dan

lingkungan

disekelilingnya. Prayogo et al., 2005 serangga juga mengembangkan sistem
pertahanan diri dengan cara fagositosis atau enkapsulasi dengan membentuk
granuloma. Thungrabeab et al. (2006) mengklasifikasikan tingkat patogenisitas
menjadi tiga yaitu: patogenisitas tinggi dengan persentase kematian lebih dari
64,49 %, patogenisitas sedang dengan persentase kematian 64,49–30,99 % dan
patogenisitas rendah dengan persentase kematian kurang dari 30,99 %.

Gambar 9. Larva instar II yang terserang jamur entomopatogen

Tingginya tingkat mortalitas yang terjadi pada penelitian ini dikarenakan
larva yang digunakan adalah instar II yang memiliki kutikula yang sangat tipis,
sangat rentan terhadap infeksi jamur sehingga memudahkan jamur berpenetrasi
dan menginfeksi serangga. Semakin muda instar yang digunakan maka semakin
tinggi tingkat mortalitas larva. Menurut Prayogo et al (2005) keefektifan jamur

Universitas Sumatera Utara

disamping dipengaruhi oleh media tumbuh, tingkat virulensi dan frekuensi
aplikasi, juga sangat ditentukan oleh umur instar serangga tersebut.
Proses infeksi jamur entomopatogen dimulai dari bagian tubuh larva yang
lunak pada bagian kepala hingga torak selanjutnya miselium jamur menutupi
tubuh larva dan berkembang keseluruh tubuh larva (Gambar 9). Prayogo (2005)
menyatakan bahwa entomopatogen khususnya cendawan umumnya mengadakan
penetrasi integumen pada bagian diantara kapsul kepala dengan torak dan diantara
ruas-ruas anggota badan. Mekanisme penetrasi pathogen dimulai dengan
pertumbuhan konidia pada kutikula, selanjutnya jamur mengeluarkan senyawa
enzim khitinase dan lipase sehingga memudahkan dalam penetrasi kutikula.
Tabel 2. Persentase mortalitas larva Spodoptera litura terhadap cendawan
entomopatogen yang berbeda pada 1-7 hari setelah aplikasi (hsa).
Mortalitas (%)
Perlakuan
1 HSA 2 HAS 3 HSA 4 HSA 5 HSA 6 HSA 7 HSA
C1

0

0

0

11,11 c

22,22 b

33,33 b

40,00 b

C2

0

0

0

24,44 a

35,56 a

44,44 ab

57,78 a

C3

0

0

0

17,77 b

33,33 a

48,89 a

51,11 a

Keterangan: Angka-angka yang diikuti notasi yang sama pada kelompok kolom yang sama
menunjukkan tidak berbeda nyata pada taraf 5% menurut Duncan Multiple Range
Test. hsa: hari setelah aplikasi. C1: Lecanicillium lecanii, C2: Metarhizium anisopliae,
C3: Beauveria bassiana.

Tabel 2 menunjukkan bahwa perlakuan C2 (M. anisopliae) pada
4HSA-7HSA menghasilkan nilai mortalitas lebih tinggi dibandingkan dengan
perlakuan lainnya. Dapat diketahui bahwa jamur M. anisopliae paling efektif
dibandingkan dengan jamur lainnya, dikarenakan virulensi jamur tersebut lebih
tinggi, sehingga kematian larva menigkat,. Hal ini didukung dengan pernyataan
Prayogo et al., (2005) bahwa media tumbuh, tingkat virulensi dan patogenitas

Universitas Sumatera Utara

jamur entomopatogen sangat menentukan keberhasilan cendawan dalam proses
menginfeksi inang.
Dari Tabel 2 diketahui persentase mortalitas larva pada perlakuan
C2 (M. anisopliae) 57,78% lebih tinggi dibandingkan perlakuan C3 (B. bassiana)
51,11% dan C1 (L. lecanii) 40,00%. Hal ini eratkaitannya dengan beberapa jenis
toksin yang dihasilkan, kemampuan jamur M. anisopliae utnuk menginfeksi dan
melakukan penetrasi pada tubuh serangga lebih cepat, menyebabkan kematian
larva lebih tinggi. Menurut Widiyanti dan Muyadihardja (2004) Kematian larva S.
litura terjadi karena konidia jamur M. anisopliae memiliki aktivitas membunuh
larva karena menghasilkan cyclopeptida, destruxin A, B, C, D, E dan desmethyl
destruxin.
Tabel 2 menunjukkan bahwa dari ketiga jenis jamur entomopatogen yang
diuji terlihat bahwa jamur C1 (L. lecanii) merupakan jamur yang paling rendah
persentase infeksi 40,00% berbeda nyata dengan kedua jamur lainnya. Hal ini
dikarenakan rendahnya daya patogenisitas jamur L. lecanii dan tidak semua
konidia jamur entomopatogen yang diaplikasikan berhasil mencapai sasaran
sehingga kurang efektif apabila diaplikasikan ke lapangan. Heryanto dan Suharno
(2008) menyatakan bahwa penelitian yang dilakukan di laboratorium terkadang
berbeda hasilnya setelah dilakukan di lapangan, salah satu alasannya disebabkan
oleh turunnya daya patogenitas jamur karena tingkat patogenitas jamur ditentukan
oleh berbagai faktor seperti faktor internal dan eksternal tergantung pada potensi
serangga inang dan lingkungan disekelilingnya seperti. Tidak semua konidia
jamur entomopatogen yang diaplikasikan berhasil mencapai sasaran, karena
mobilitas serangga yang tinggi dan adanya peristiwa ganti kulit. Salah satu upaya

Universitas Sumatera Utara

mengatasi hal tersebut ialah dengan menambahkan bahan pembawa sebagai
pengaman

bagi

konidia

ketika

menempel

pada

integumen

serangga

(Prayogo 2006).
Persentase mortalitas larva S. litura terhadap cendawan entomopatogen
7 hari setelah aplikasi (HSA) menunjukkan hasil tidak berbeda nyata pada jenis
jamur C2 (M. anisopliae) 57,78% dan C3 (B. bassiana) 51,.11%. Hal ini
dikarenakan bahwa kedua jenis jamur ini mampu dan berpotensi dalam
mengendalikan dan menginfeksi serangga dengan mengeluarkan racun yang sama
sehingga mengakibatkan serangga sakit dan mengalami kematian. Jamur
menyebabkan mortalitas dengan satu atau lebih cara seperti: defisiensi nutrisi,
menyerang, dan merusak jaringan, dan melepaskan toksin. Beberapa diantaranya
bersifat virulen dan membunuh serangga dalam waktu yang singkat dan yang
lainnya menghasilkan infeksi kronik yang lama Tanada & Kaya (1993).
Gejala Kematian Spodoptera litura F.
Pada umumnya gejala kematian larva sama, jamur masuk ke tubuh
serangga melalui kutikula dimana konidia jamur menempel dan berpenetrasi pada
integumen S. litura, selanjutnya terjadi perubahan fisiologi larva. Hal ini
disebabkan oleh racun yang dihasilkan oleh jamur entomopatogen merusak
jaringan dan menyerap cairan tubuh larva, sehingga tubuh larva menjadi
mengering. Kaur et al. (2011) menyatakan bahwa jamur entomopatogen
menyebabkan

kematian

menyebarkan

racun

serangga

pada

inang

hemolymph

dengan

menyerap

sehingga

dapat

nutrisi

dan

mempengaruhi

perkembangan dan fisiologis serangga terutama reproduksi dan molting yang
memiliki tuntutan energik tinggi.

Universitas Sumatera Utara

(a)
(b)
Gambar 10. (a) Gejala serangan larva terinfeksi jamur entomopatogen yang terjadi
perubahan warna menjadi kepucatan (b) larva yang bersembunyi dibalik
daun

Gejala yang dialami pada serangga yang terinfeksi jamur entomopatogen
yaitu nafsu makan yang berkurang, gerakan tubuh menjadi lamban, bersembunyi
dibalik daun, terjadi perubahan warna pada tubuh serangga menjadi kepucatan,
bahkan sama sekali sulit untuk bergerak (Gambar 10a dan 10b). Seperti yang
dinyatakan Prayogo (2006) gejala yang timbul pada serangga terinfeksi jamur
patogen adalah adanya miselia pada serangga. Pada infeksi awal, serangga
menunjukkan gejala sakit yaitu tidak mau makan, lemah dan kurang orientasi.
Seringkali serangga tersebut berubah warna dan pada kutikula terlihat bercak
hitam yang menunjukkan tempat penetrasi jamur. Apabila keadaan lingkungan
mendukung maka akan muncul miselia pada permukaan badan serangga yang
terinfeksi.
Serangga yang terinfeksi jamur entomopatogen melalui 4 tahap yaitu
inokulasi, penetrasi infeksi dan invasi, setelah itu serangga berubah warna
menjadi kehitaman. Menurut Freimoser et al. (2003) kutikula serangga yang telah
mati akan berubah warna menjadi gelap. Pertumbuhan konidia dalam tubuh larva
melalui berbagai tahap seperti inokulasi, invasi, penetrasi dan dekstruksi.

Universitas Sumatera Utara

Pada penelitian ini dapat dilihat larva S. litura yang mati terinfeksi
M. anisopliae awalnya larva tidak mau makan, pergerakan lambat, mati kaku lalu
kering. Setelah larva mati muncul hifa jamur berwarna putih kehijauan. Hifa dari
spora M.anisoplae masuk ke rongga dalam tubuh inang karena bantuan enzim dan
tekanan mekanik, seluruh tubuh serangga inang penuh dengan propagul dan
bagian yang lunak dari tubuhnya akan ditembus keluar dan menampakan
pertumbuhan hifa di luar tubuh serangga inang. Pertumbuhan hifa eksternal akan
menghasilkan konidia, bila telah masak akan disebarkan ke lingkungan dan
menginfeksi serangga hama yang sehat (Prayogo et al., 2005).
Hasil pengamatan menunjukkan bahwa larva S. litura yang terinfeksi B.
bassiana terjadi melalui integumen yang merusak sistem kekebalan larva S. litura.
Suspensi spora yang kontak dengan integumen segera berkecambah membentuk
hifa dan menyerap nutrisi yang ada di tubuh larva serta mengeluarkan toksin yang
dihasilkannya, B. bassiana menghancurkan struktur dalam tubuh larva S. litura
dan mengakibatkan kematian larva tersebut. Spora jamur B. bassiana masuk ke
tubuh serangga inang melalui kulit, saluran pencernaan, spirakel dan lubang
lainnya. B. bassiana juga menghasilkan toksin seperti beauverisin, beauverolit,
bassianalit, isorolit, dan asam oksalat yang menyebabkan terjadinya kenaikan pH,
penggumpalan dan terhentinya peredaran darah serta merusak saluran pencernaan,
otot, system syaraf, dan pernafasan (Mahr, 2004).
B. bassiana menyerang tubuh inangnya dan menyerap cairan dari tubuh
inangnya. Jamur tumbuh keluar dari tubuh inangnya dan menghasilkan spora
sehingga tubuh inangnya menjadi keras (mumifikasi). Pengamatan menunjukkan
bahwa larva yang mati berubah warna menjadi hitam, disamping itu dapat dilihat

Universitas Sumatera Utara

tubuh larva menciut dan mengeras (mumifikasi). Hal ini diduga sebagai akibat
dari mulai bekerjanya toksin yang diproduksi oleh cendawan. Toksin tersebut
merusak jaringan dan menyerap cairan sel tubuh larva, sehingga menyebabkan
larva mengering dan mati. Menurut Kreb (2014) jamur hidup dan tumbuh dengan
memanfaatkan cairan di dalam tubuh serangga dan menghasilkan racun yang
dapat membunuh serangga. Setelah serangga mati, miselium akan tumbuh di
tubuh serangga.
Hasil penelitian menunjukkan bahwa larva yang terinfeksi telah
memperlihatkan adanya gejala infeksi yaitu badan menjadi kaku, berwarna hitam
selanjutnya disertai tumbuhnya miselia jamur dipermukaan tubuh S. litura
berwana putih seperti benang. Saleh

et al., (2000) menyatakan bahwa hasil

pembedahan terhadap larva yang mati, yang memperlihatkan isi saluran
percernaan larva yang kering dan berwarna hitam. Kulit larva bagian dalam
berwarna merah dengan warna putih di sekitarnya. Gejala-gejala ini adalah gejala
yang ditunjukkan oleh zat pengurai khitin yang dikenal dengan nama Beauvericin,
sebagai racun yamng dihasilkan oleh konidia jamur tersebut.
Hasil pengamatan menunjukkan bahwa serangga S. litura yang terinfeksi
oleh jamur l. lecanii pada hari I belum menunjukkan gejala, pada hari selanjutnya
dimulai gerakan lambat, nafsu makan berkurang, berubah warna menjadi
kepucatan, kemudian beberapa hari selanjutnya kehitaman, akhirnya larva
berubah warna dan menjadi kaku, pada beberapa hari kemudian awal tubuh larva
mengeluarkan miselium jamur berwarna putih lalu berubah menjadi putih
kepucatan. Jamur entomopatogen ini membutuhkan waktu untuk mematikan
serangga inangnya Wahyudi (2002) lama waktu yang dibutuhkan isolat jamur

Universitas Sumatera Utara

entomopatogen mulai dari infeksi jamur hingga larva dapat mati berkisar 2-10
hari (Herlinda et al 2005).
Menurut Prayogo (2012) setiap cendawan memiliki patogenitas yang
berbeda beda karena toksin yang dimiliki juga berbeda. Toksin merupakan salah
satu hal yang paling berperan penting dalam peningkatan mortalitas larva ulat
grayak dan aktifitas makannya. Jenis toksin yang dihasilkan oleh L. lecanii adalah
Cyclosporin A., dipicolinic acid, hydroxycarboxylic acid, dan cyclodepsipeptide
yang berfungsi mengganggu sistem syaraf.
Dari hasil pengamatan diketahui bahwa serangga yang terinfeksi jamur
entomopatogen sebagian dari nya tidak menunjukkan gejala tumbuhnya miselia
diatas permukaan tubuh serangga. Hal ini diakibatkan jamur entomopatogen tidak
mampu menembus integumen serangga. Menurut Prayogo et al., (2005) tidak
selalu cendawan tumbuh ke luar menembus integumen serangga. Apabila keadaan
kurang mendukung, perkembangan saprofit hanya berlangsung di dalam jasad
serangga tanpa ke luar menembus integumen.
Intensitas Serangan (%)
Dari hasil sidik ragam dapat dilihat bahwa banyaknya suspensi larva
S. litura yang terinfeksi jamur entomopatogen berpengaruh nyata terhadap
intensitas serangan (%). Hal ini dapat dilihat dari Tabel 3 (Lampiran 9).
Tabel 3. Banyaknya suspensi jamur entomopatogen yang menginfeksi larva
S. litura.
Rataan
Perlakuan
K1
42.22 a
K2
33.06 b
K3
22.50 c
Keterangan:

Angka yang diikuti oleh notasi huruf yang berada menunjukkan
data berbeda nyata menurut Uji Jarak Duncan pada taraf 5%. K1: Kerapatan spora
106/ml, K2: Kerapatan spora 107/ml, K3: Kerapatan spora 108/ml

Universitas Sumatera Utara

Tabel 3. menunjukkan intensitas serangan hama S. litura tertinggi 42.22%
yang menyebabkan terjadi banyak kerusakan daun tanaman (Gambar 11), hal ini
dikarenakan perlakuan yang digunakan dengan perlakuan K1 (Kerapatan
106 konidia/ml) dimana semakin rendah kerapatan konidia maka semakin tinggi
intensitas serangan daun dan semakin sedikit konidia yang menempel maka
semakin lama nafsu makan berhenti sehingga intensitas serangan daun tinggi.
Menurut Wahyudi (2008) semakin sedikit konidia yang menempel maka semakin
lama nafsu makan berhenti sehingga intensitas serangan daun tinggi.

Gambar 11. Intensitas serangan tertinggi Spodoptera litura pada tanaman tembakau Deli

Tabel 3 menunjukkan intensitas serangan hama S. litura terendah 22.50%
yang menyebabkan tidak terjadi banyak kerusakan daun tanaman (Gambar 12),
hal ini dikarenakan perlakuan yang digunakan dengan perlakuan K3 (kerapatan
108 konidia/ml). Hal ini dikarenakan semakin tinggi kerapatan konidia maka
semakin cepat penetrasi jamur masuk kedalam tubuh serangga, sehingga
menyebabkan berkurangnya aktivitas makan dan kemampuan mengkonsumsi
makanan. Menurut Saleh et al., (2000) berkurangnya aktivitas makan dan
kemampuan mengkonsumsi makanan dari larva-larva pada tanaman yang

Universitas Sumatera Utara

disemprot dengan konsentrasi jamur yang lebih tinggi juga dapat dilihat dari
besarnya kerusakan tanaman.

Gambar 12. Intensitas serangan terendah Spodoptera litura pada tanaman tembakau Deli

Pada parameter pengamatan intensitas serangan daun diketahui bahwa
setelah larva terinfeksi dan nafsu makan berkurang selanjutnya terjadi gangguan
pada metabolisme dan daya cerna larva sehingga larva menjadi lemas dan
menjahui daun sebagai sumber makanan. Kematian larva S. litura. yang terinfeksi
cendawan terjadi akibat pertumbuhan dan perkembangan cendawan di dalam
tubuh larva yang berakibat pada terjadinya gangguan pada metabolisme dan
menurunkan daya konsumsi dan daya cerna larva. Gangguan ini diawali oleh
turunnya nafsu makan, tubuh menjadi lemah, gerakannya lambat, sehingga lama
kelamaan larva menjadi diam dan akhirnya mati (Wilyus dan Yudiawati, 2005).

Universitas Sumatera Utara

KESIMPULAN DAN SARAN
Kesimpulan
1. Persentase mortalitas larva tertinggi terdapat pada perlakuan K3 (kerapatan
108 konidia/ml) yaitu 73,33% dan terendah pada perlakuan K1 (kerapatan
106 konidia/ml) yaitu 31,11%.
2.

Aplikasi

jamur

entomopatogen

lebih

efektif

pada

perlakuan

C2 (M. anisopliae) 57,78% dibandingkan pada perlakuan C3 (B. bassiana)
51.11% dan perlakuan C1 (L. lecanii) 40,00%.
3.

Gejala infeksi jamur entomopatogen pada larva S. litura pada umumnya
menunjukkan gejala yang sama, antara lain gerakannya lamban, nafsu
makannya berkurang bahkan berhenti, lama-kelamaan diam dan mati.

4.

Serangga uji yang terinfeksi jamur entomopatogen M. anisopliae berwarna
putih hijau kekuningan, yang terinfeksi B. bassiana diselimuti miselia
putih, dan yang terinfeksi L. lecanii diselimuti miselia putih pucat.

5.

Intensitas serangan yang tertinggi 42.22% pada perlakuan K1 (kerapatan
106 konidia/ml) dan intensitas serangan terendah 22.50% pada perlakuan
K3 (kerapatan 108 konidia/ml).

Saran
Perlu dilakukan penelitian lebih lanjut dengan menggunakan bahan
pelindung jamur entomopatogen untuk diaplikasikan ke lapangan.

Universitas Sumatera Utara

TINJAUAN PUSTAKA

Biologi Hama Spodoptera litura F. (Lepidoptera : Noctuidae)
Spodoptera litura merupakan serangga hama yang terdapat di banyak
negara seperti Indonesia, India, Jepang, Cina, dan negara-negara lain di Asia
Tenggara (Sintim et al., 2009). Ulat grayak (S. litura) bersifat polifag atau
mempunyai kisaran inang yang luas sehingga berpotensi menjadi hama pada
berbagai jenis tanaman pangan, sayuran, buah dan perkebunan
(Marwoto dan Suharsono, 2008).
Telur berbentuk hampir bulat dengan bagian datar daun melekat pada daun
(kadang tersusun 2 lapis), warna cokelat kekuning-kuningan, berkelompok
(masing-masing berisi 25-500 butir) tertutup bulu seperti beludru (Gambar 1)
(Tenrirawe dan Talanca, 2008). Stadia telur berlangsung selama 3 hari
(Rahayu et al., 2009).

Gambar 1. Telur Spodoptera litura .

Setelah 3 hari, telur menetas menjadi larva. Larva yang keluar dari telur
berkelompok dipermukaan daun. Setelah beberapa hari, ulat mulai hidup
berpencar. Panjang tubuh ulat yang telah tumbuh penuh sebesar 50 mm

Universitas Sumatera Utara

(Balitbang, 2006). Perpindahan larva instar-1 dan instar-2 dibantu tiupan angin
dan benang pintal untuk berayun (Noch et al, 1983). Masa stadia larva
berlangsung selama 15-30 hari (Gambar 2) (Rahayu et al., 2009).
Ulat mempunyai warna yang bervariasi, tetapi ada ciri utama, yaitu
adanya garis menyerupai kalung berwarna hitam yang melingkar pada ruas
ketiga.Warna

pupa

coklat

kemerahan

dengan

panjang

12,5-17,5

mm

(Sheparetal,2007).

Gambar 2. Larva Spodoptera litura.

S. litura berkepompong (pupa) berwarna coklat kemerahan dengan
panjang sekitar 1,6 cm dengan membentuk kokon dari butiran-butiran tanah yang
disatukan (Gambar 3). Lama stadia pupa menjadi imago antara 8 hari sampai 11
hari (Ardiansyah, 2007).

Gambar 3. Pupa Spodoptera litura

Universitas Sumatera Utara

Pada

stadia imago sayap depan berwarna coklat atau keperakan, sayap

belakang S. Litura berwarna keputihan dengan noda hitam (Gambar 4). Panjang
kupu betina 14 mm sedangkan jantan 17 mm. Umur ngengat pendek, bertelur
dalam 2-6 hari. Baru beberapa hari kemudian mereka tersebar mencari
makanan (Shepard et al, 2007). Siklus hidup S. litura berkisar antara 30-60 hari
(Ardiansyah, 2007).

Sumber: Natasha,2013.
Gambar 4. Ngengat Spodoptera litura

Gejala Serangan Spodoptera litura F.
S. litura merusak tanaman tembakau dengan cara membuat lubang pada
daun tembakau, sehingga mutu daun menjadi berkurang (Gambar 5). Ulat instar 4
memakan seluruh bagian daun dan menyisakan tulang daunnya (Park et al., 2013).
Serangga dewasa dari spesies ini meletakkan telurnya secara berkelompok pada
permukaan bawah daun. Penyerangan ulat grayak terjadi pada malam hari,
sedangkan pada siang hari ulat tersebut bersembunyi di dalam tanah yang lembab
(Surtikanti dan Yasin, 2009).
Ulat grayak aktif makan pada malam hari, meninggalkan epidermis atas
dan tulang daun sehingga daun yang terserang dari jauh terlihat berwarna putih

Universitas Sumatera Utara

(Balitbang, 2006). Larva yang masih kecil merusak daun dan menyerang secara
serentak berkelompok, dengan meninggalkan sisa-sisa bagian atas epidermis
daun, transparan dan tinggal tulang–tulang daun saja. Biasanya larva berada di
permukaan

bawah

daun

umumnya

terjadi

pada

musim

kemarau

(Tanrirawe dan Talanca, 2008).
Selain pada daun, ulat dewasa makan polong muda dan tulang daun muda,
sedangkan pada daun yang tua, tulang-tulangnya akan tersisa. Selain menyerang
kedelai, ulat grayak juga menyerang jagung, kentang, tembakau, kacang hijau,
bayam dan kubis (Balitbang, 2006).

Gambar 5. Gejala serangan Spodoptera litura

Pengendalian Spodoptera litura F.
Pengendalian ulat grayak pada tingkat petani kebanyakan masih
menggunakan insektisida kimia. Pengendalian hama dengan insektisida kimia
telah menimbulkan banyak masalah lingkungan, terutama rendahnya kepekaan
serangga terhadap insektisida kimia, munculnya hama sekunder yang lebih
berbahaya tercemarnya tanah dan air, dan bahaya keracunan pada manusia yang
melakukan kontak langsung dengan insektisida kimia. Jenis-jenis insektisida
yang biasa digunakan oleh petani adalah Basudin 60 EC, Dursban 20 EC, Nogos
50 EC dll. Penggunaan yang tidak tepat dapat menimbulkan dampak negatif

Universitas Sumatera Utara

terhadap lingkungan, yakni dapat menimbulkan resistensi, resurjensi, serta
mematikan musuh-musuh alami, dan pencemaran lingkungan (Budi et al., 2013).
Bila tidak segera diatasi maka daun atau buah tanaman di areal pertanian akan
habis (Hasnah et al., 2012).
Pengendalian hayati seperti pemanfaatan parasitoid, virus, predator dan
jamur patogen mempunyai harapan besar dimasa mendatang untuk menggantikan
insektisida karena tidak mempunyai dampak negatif terhadap kelestarian
lingkungan. Jamur patogen merupakan salah satu komponen pengendalian yang
dapat memberi peluang yang cukup baik (Surtikanti dan Yasin, 2009).
Beberapa

kelebihan

pemanfaatan

jamur

entomopatogen

dalam

pengendalian hama adalah mempunyai kapasitas produksi yang tinggi, siklus
hidupnya pendek, dapat membentuk spora yang tahan lama di alam walaupun
dalam kondisi yang tidak menguntungkan, relatif aman, bersifat selektif, relatif
mudah

diproduksi

dan

sangat

kecil

kemungkinan

terjadi

resistensi

(Prayogo, 2005).
Jamur Entomopatogen Metarhizium anisopliae
Menurut Bischoff et al., (2009), sistematika M. anisopliae adalah :
Divisio

: Deuteromycotina

Class

: Hyphomycetes

Subclass

: Hypocreomycetidae

Ordo

: Hypocreales

Family

: Clavicipitaceae

Genus

: Metarhizium

Spesies

: Metarhizium anisopliae

Universitas Sumatera Utara

Jamur M. anisopliae termasuk dalam kelas Hyphomycetes, ordo
Moniliales dan famili Monileaceae. Jamur M. anisopliae mampu menginfeksi
hama yang mempunyai tipe mulut menusuk dan mengisap (haustelata), seperti
golongan Aphis sp. baik stadia nimfa maupun imago (Sumartini et al., 2001). Di
samping itu, M. anisopliae juga mampu menginfeksi hama yang mempunyai tipe
mulut menggigit mengunyah, seperti S. litura (Prayogo et al., 2005).
Pada awal pertumbuhan koloni jamur ini berwarna putih, kemudian akan
berubah menjadi warna hijau gelap saat konidia matang Kemudian dilanjutkan
dengan pembentukan spora berwarna hijau (Gambar 6a). Miselium M. anisopliae
bersekat, konidiofor bersusun tegak, berlapis dan bercabang yang dipenuhi
konidia Konidia bersel satu dan berbentuk bulat silinder atau lonjong (Gambar 6b)
(Rustama et al, 2008).

(a)

(b)

Gambar 6. (a.) Makroskopis Metarhizium anisopliae (b) Mikroskopis
Metarhizium anisopliae

Salah satu keuntungan penggunaan jamur Metarhizium spp. untuk
pengendalian hayati adalah dapat digunakan untuk mengendalikan berbagai
tingkat perkembangan serangga mulai dari telur, larva, pupa dan imago
(Prayogo, 2004).

Universitas Sumatera Utara

Jamur M. anisopliae memiliki beberapa kelebihan antara lain berkapasitas
reproduksi tinggi, relatif aman, siklus hidupnya pendek, selektif, mudah
diproduksi, serta dapat bertahan dalam kondisi yang tidak menguntungkan
(Prayogo et al., 2005).
Jamur M. anisopliae dapat menginfeksi beberapa jenis serangga, antara
lain

serangga

yang

berasal

dari

Ordo

Lepidoptera

dan

Hemiptera

(Prayogo et al., 2005), ordo Coleoptera (Gallegos et al.,2003), Isoptera
(Krutmuang dan Supamit, 2005), Thysanoptera (Thungrabeab et al.,2006), dan
Orthoptera (Tsakadze et al.,2003).
Jamur M. anisopliae memiliki aktivitas membunuh larva karena
menghasilkan cyclopeptida, destruxin A, B, C, D, E dan desmethyl destruxin.
Destruxin telah dipertimbangkan sebagai bahan insektisida generasi baru. Efek
destruxin berpengaruh pada organella sel target (mitokondria, retikulum
endoplasma dan membran nukleus), menyebabkan paralisa sel dan kelainan fungsi
lambung

tengah,

tubulus

malphigi,

hemocyt

dan

jaringan

otot

(Widiyanti dan Muyadihardja, 2004).
Jamur Entomopatogen Beuveria bassiana Vuill.
Menurut Hughes (2014), sistematika B. bassiana adalah :
Divisio

: Ascomycota

Class

: Ascomycetes

Subclass

: Hypocreomycetidae

Ordo

: Hypocreales

Family

: Clavicipitaceae

Genus

: Beauveria

Universitas Sumatera Utara

Spesies

: Beauveria bassiana Vuill.
Jamur B. bassiana juga dikenal sebagai penyakit white muscardine karena

miselium dan konidium (spora) yang dihasilkan berwarna putih, bentuknya oval,
dan tumbuh secara zig zag pada konidiofornya (Soetopo dan Indrayani, 2007).
Pada konidia B. bassiana akan tumbuh suatu tabung yang makin lama makin
panjang mirip seuntai benang dan pada suatu waktu benang itu mulai bercabang.
Cabang-cabang yang timbul selalu akan tumbuh menjauhi hifa utama atau hifa
yang pertama. Cabang-cabang tersebut akan saling bersentuhan. Pada titik sentuh
akan terjadi lisis dinding sel (anastomosis) sehingga protoplasma akan mengalir
ke semua sel hifa. Miselium yang terbentukakan makin banyak dan membentuk
suatu koloni (Gandjar, 2006).
Miselium jamur B. bassiana bersekat dan bewarna putih (Gambar 7a),
didalam tubuh serangga yang terinfeksi jamur terdiri atas banyak sel, dengan
diameter 4 μm, sedang diluar tubuh serangga ukurannya lebih kecil, yaitu 2 μm.
Hifa

fertil

terdapat

pada

cabang,

tersusun

melingkar

dan

biasanya

menggelembung atau menebal. Koni