Uji Aktivitas Koagulan Ekstrak Etanol Daun Kelor (Moringa oleifera Lam.) Secara In Vitro Dan In Vivo
UJI AKTIVITAS KOAGULAN EKSTRAK ETANOL
DAUN KELOR (Moringa oleifera Lam.)
SECARA IN VITRO DAN IN VIVO
SKRIPSI
OLEH:
ALBERT DARWIN HERIYANTO
NIM 111501062
PROGRAM STUDI SARJANA FARMASI
FAKULTAS FARMASI
UNIVERSITAS SUMATERA UTARA
MEDAN
2015
Universitas Sumatera Utara
UJI AKTIVITAS KOAGULAN EKSTRAK ETANOL
DAUN KELOR (Moringa oleifera Lam.)
SECARA IN VITRO DAN IN VIVO
SKRIPSI
Diajukan sebagai salah satu syarat untuk memperoleh gelar
Sarjana Farmasi pada Fakultas Farmasi
Universitas Sumatera Utara
OLEH:
ALBERT DARWIN HERIYANTO
NIM 111501062
PROGRAM STUDI SARJANA FARMASI
FAKULTAS FARMASI
UNIVERSITAS SUMATERA UTARA
MEDAN
2015
Universitas Sumatera Utara
PENGESAHAN SKRIPSI
UJI AKTIVITAS KOAGULAN EKSTRAK ETANOL
DAUN KELOR (Moringa oleifera Lam.)
SECARA IN VITRO DAN IN VIVO
OLEH:
ALBERT DARWIN HERIYANTO
NIM 111501062
Dipertahankan di hadapan Panitia Penguji Skripsi
Fakultas Farmasi Universitas Sumatera Utara
Pada tanggal: 03 Agustus 2015
Disetujui oleh:
Pembimbing I,
Panitia Penguji,
Marianne, S.Si., M.Si., Apt.
NIP 198005202005012006
Prof. Dr. Rosidah, M.Si., Apt.
NIP 195103261978022001
Pembimbing II,
Marianne, S.Si., M.Si.,Apt.
NIP 198005202005012006
Prof. Dr. Sumadio Hadisahputra,Apt.
NIP 195311281983031002
Aminah Dalimunthe, S.Si., M.Si., Apt.
NIP 197806032005012004
Dr.Poppy Anjelisa Z.Hasibuan, M.Si., Apt
NIP 197506102005012003
Medan, 04 Agustus 2015
Fakultas Farmasi
Universitas Sumatera Utara
Wakil Dekan I,
Prof. Dr. Julia Reveny, M.Si., Apt.
NIP 195807101986012001
Universitas Sumatera Utara
KATA PENGANTAR
Puji dan syukur saya panjatkan kepada Tuhan Yang Maha Esa yang telah
memberikan karunia yang berlimpah sehingga penulis dapat menyelesaikan
penyusunan skripsi yang berjudul “Uji Aktivitas Koagulan Ekstrak Etanol Daun
Kelor (Moringa oleifera Lam.) Secara in vitro dan in vivo”. Skripsi ini diajukan
sebagai salah satu syarat untuk memperoleh gelar Sarjana Farmasi di Fakultas
Farmasi Universitas Sumatera Utara.
Pada kesempatan ini, dengan segala kerendahan hati penulis mengucapkan
terima kasih yang sebesar-besarnya kepada Ibu Prof. Dr. Julia Reveny, M.Si., Apt.
selaku Wakil Dekan I Fakultas Farmasi yang telah menyediakan fasilitas kepada
penulis selama perkuliahan di Fakultas Farmasi. Penulis juga mengucapkan terima
kasih kepada Ibu Marianne, S.Si., M.Si., Apt., dan Bapak Prof. Dr. Sumadio
Hadisahputra, Apt., yang telah meluangkan waktu dan tenaga dalam membimbing
penulis dengan penuh kesabaran dan tanggung jawab, memberikan petunjuk dan
saran-saran selama penelitian hingga selesainya skripsi ini. Ucapan terima kasih
juga penulis sampaikan kepada Ibu Prof. Dr. Rosidah, M.Si., Apt., selaku ketua
penguji, Ibu Aminah Dalimunthe, S.Si., M.Si., Apt., dan Ibu Dr. Poppy Anjelisa
Z. Hasibuan, M.Si., Apt., selaku anggota penguji yang telah memberikan saran
untuk menyempurnakan skripsi ini, dan Ibu Erly Sitompul, M.Si., Apt., selaku
dosen pembimbing akademik serta Bapak dan Ibu staf pengajar Fakultas Farmasi
USU yang telah banyak membimbing penulis selama masa perkuliahan hingga
selesai.
iv
Universitas Sumatera Utara
Penulis juga mengucapkan rasa terima kasih kepada keluarga tercinta,
Ayahanda Alex Wijaya dan Ibunda Lita Ervilina, adik-adik saya Deminshen
Heriyanto, Denny Ariadi, dan Imelda Fransisca atas kasih sayang, dukungan
semangat dan doa yang telah diberikan yang tak ternilai dengan apa pun. Penulis
juga mengucapkan terima kasih kepada teman-teman angkatan 2011 khususnya
jurusan Farmasi Klinis dan Komunitas; kepada para sahabat, Kiki, Ridha, Ditta,
Virginia, Arifandi, Amos, Feby, Benny, Sukma, Dian; kepada para asisten
farmakologi, yaitu Nana, Marta, Maulida, Indah, Elvi, Rendy, Gita, Fauzan,
Yunus, kak Ridha, kak Dara, bang Denny, dan bang Asyrun yang telah
memberikan semangat dan dukungan dalam menyelesaikan skripsi ini.
Penulis menyadari sepenuhnya bahwa penulisan skripsi ini masih belum
sempurna, oleh karena itu penulis mengharapkan saran dan kritik yang
membangun demi kesempurnaan skripsi ini. Akhir kata penulis berharap semoga
skripsi ini bermanfaat bagi ilmu pengetahuan khususnya di bidang farmasi.
Medan, 15 Juli 2015
Penulis,
Albert Darwin Heriyanto
NIM 111501062
v
Universitas Sumatera Utara
UJI AKTIVITAS KOAGULAN EKSTRAK ETANOL DAUN KELOR
(Moringa oleifera Lam.) SECARA IN VITRO DAN IN VIVO
ABSTRAK
Hemostatis merupakan proses penghentian perdarahan secara spontan pada
pembuluh darah, yang terkait dengan trombosit dan faktor pembekuan darah.
Beberapa gangguan hemostatis dapat menyebabkan meningkatnya waktu
perdarahan dan pembekuan darah, di antaranya adalah koagulopati, hemofilia dan
penyakit Von Willebrand. Pengobatan yang dapat dilakukan adalah dengan
mempersingkat waktu perdarahan dan waktu koagulasi darah yang terkait dengan
faktor pembekuan darah. Penelitian ini bertujuan untuk mengetahui aktivitas
koagulan ekstrak etanol daun kelor (Moringa oleifera Lam.) secara in vitro
dengan parameter waktu koagulasi darah dan bentuk sel darah yang membeku,
serta in vivo dengan parameter waktu perdarahan.
Percobaan in vitro dilakukan dengan metode Lee-White, terdiri dari 4
kelompok, yaitu kelompok 1 kontrol negatif yaitu darah segar, kelompok 2 darah
dan EDTA 15%, kelompok 3 darah dan ekstrak etanol daun kelor konsentrasi 1%
dosis 100μl, dan kelompok 4 darah, EDTA 15% dan ekstrak etanol daun kelor 1%
dosis 100μl. Selanjutnya dilakukan percobaan in vitro dengan metode Eustrek,
spesimen darah hasil metode Lee-White diambil dan dibuat sediaan hapusan darah
tipis, kemudian diamati di mikroskop dengan perbesaran 10x10 dan 10x100.
Percobaan in vivo dilakukan dengan metode Duke. Perlakuan yang digunakan
terdiri dari 5 kelompok, yaitu kelompok 1 kontrol negatif digunakan CMC-Na
0,5% dosis 1% BB, kelompok 2 kontrol positif digunakan asam traneksamat 10%
dosis 94,5 mg/KgBB, kelompok 3, 4, dan 5 merupakan kelompok uji digunakan
ekstrak etanol daun kelor dengan dosis 100, 150 dan 200 mg/KgBB diberikan
pada tikus jantan yang telah diinduksi dengan heparin 1 jam sebelumnya dengan
konsentrasi 100 IU/ml, dosis 450 IU/KgBB. Data hasil pengukuran dianalisis
dengan menggunakan ANOVA satu arah dan dilanjutkan dengan uji Post Hoc,
yaitu LSD dan Tukey.
Hasil penelitian ini menunjukkan bahwa pemberian ekstrak etanol daun
kelor pada percobaan in vitro mampu membentuk bekuan darah dalam waktu 1.9
± 1,11 menit dan secara signifikan lebih cepat bila dibandingkan dengan waktu
koagulasi darah normal (p > 0,05), selain itu juga mampu membentuk bekuan
darah pada perlakuan darah, EDTA dan ekstrak etanol daun kelor pada menit ke
28,8 ± 5,54 bila dibandingkan dengan perlakuan darah dan EDTA yang tidak
membeku selama 120 menit (p < 0,05). Pengamatan sel darah secara in vitro
menunjukkan adanya perlekatan antara sel yang satu dengan yang lain. Pada
percobaan in vivo, ekstrak etanol daun kelor yang paling baik dalam
mempersingkat waktu perdarahan setelah diinduksi dengan heparin adalah dosis
200 mg/KgBB, yang berbeda signifikan dengan dosis 100, 150 mg/KgBB dan
kontrol negatif (p < 0,05), dan memiliki efek yang sama dengan asam traneksamat
(p > 0,05).
Kata Kunci: daun kelor (Moringa oleifera Lam.), hemostatis, Lee-White, Duke,
Eustrek, waktu koagulasi, waktu perdarahan.
vi
Universitas Sumatera Utara
COAGULANT ACTIVITY TEST OF ETHANOLIC EXTRACT OF
HORSE RADISH LEAVES (Moringa oleifera Lam.) USING
IN VITRO AND IN VIVO METHODS
ABSTRACT
Haemostatis is a spontaneus stop for bleeding process at blood vessels,
related to trombocyte and blood coagulation factors. Some of haemostatis
disorders that could prolonged blood coagulation and bleeding time are
coagulopathy, haemophilia, and Von Willebrand disease. Medication that could be
done is to shortened blood coagulation time and bleeding time that interconnected
with blood coagulation factors. The purpose of this research is to find out
coagulation activity of ethanolic extract of horse radish tree in in vitro with blood
coagulation and morphology of coagulation cells as the parametre, and in vivo
with bleeding time as the parametre.
In in vitro using Lee-White methods, the treatments are divided in 4
groups. First group is fresh blood as negative control group, second group is blood
and EDTA 15% group, third group is blood and ethanolic extract of horse radish
leaves (Moringa oleifera Lam.) 1% dose 100 μl group, and fourth group is blood,
EDTA 15% and ethanolic extract of horse radish leaves 1% dose 100 μl group.
Next, in vitro using Eustrek methods, blood speciment from Lee-White methods
was taken, wipe blood preparation was made and examined under the microscope
with 10 x 10 and 10 x 100 zoom times. In in vivo using Duke methods, there are 5
groups. First group is CMC-Sodium 0.5% dose 1% B/W as negative control
group, second group is tranexamic acid 10% dose 94.5 mg/KgBB as positive
control group, third, fourth and fifth group used ethanolic extract of horse radish
leaves in various doses, 100, 150 and 200 mg/KgBB as test group, were given to
male rat that were induced with Heparin concentration 100 IU/ml dose 450
IU/KgBB an hour before. Data from both methods are analyzed with one way
ANOVA and continued with Post Hoc test, are LSD and Tukey.
Result of this research shows that ethanolic extract of horse radish leaves
(Moringa oleifera Lam.) can shortened blood coagulation time in in vitro in
minute 1.9 ± 1.11 and significantly different if it is compared with normal
coagulation time (p < 0.05). Besides, it can form blood clot in blood, EDTA and
ethanolic extract of horse radish leaves group in minute 28.8 ± 5.54 if it is
compared with blood and EDTA that did not form any clot in 120 minutes (p <
0.05). In vitro examination of blood cell shows that there is a presence of adhesion
between one cell and another. In in vivo, the best dose that could shortened
bleeding time induced by heparin, 2 hours after treatment is 200 mg/KgBB that
significantly different with dose 100, 150 mg/kgBB and negative control group (p
< 0.05), and has the same effect with tranexamid acid (p > 0.05).
Keyword: horse radish leaves (Moringa oleifera Lam.), haemostatis, Lee-White,
Duke, Eustrek, coagulation time, bleeding time.
vii
Universitas Sumatera Utara
DAFTAR ISI
Halaman
JUDUL .......................................................................................................
i
HALAMAN JUDUL .................................................................................
ii
HALAMAN PENGESAHAN ....................................................................
iii
KATA PENGANTAR ..............................................................................
iv
ABSTRAK .................................................................................................
vi
ABSTRACT ...............................................................................................
vii
DAFTAR ISI .............................................................................................
viii
DAFTAR TABEL ......................................................................................
xiii
DAFTAR GAMBAR .................................................................................
xiv
DAFTAR LAMPIRAN ..............................................................................
xv
BAB I PENDAHULUAN ..........................................................................
1
1.1 Latar Belakang .............................................................................
1
1.2 Perumusan Masalah .....................................................................
3
1.3 Hipotesis ......................................................................................
4
1.4 Tujuan Penelitian .........................................................................
4
1.5 Manfaat Penelitian .......................................................................
5
1.6 Kerangka Pikir Penelitian ............................................................
5
BAB II TINJAUAN PUSTAKA ...............................................................
7
2.1 Uraian Tumbuhan .......................................................................
7
2.1.1 Sistematika tumbuhan .......................................................
7
2.1.2 Nama lain ..........................................................................
7
2.1.3 Morfologi tumbuhan .........................................................
8
viii
Universitas Sumatera Utara
2.1.4 Kandungan kimia ..............................................................
8
2.1.5 Khasiat dan penggunaan tumbuhan ..................................
9
2.2 Ekstraksi ......................................................................................
10
2.2.1 Cara dingin ........................................................................
10
2.2.2 Cara panas .........................................................................
11
2.3 Hemostasis dan Koagulasi ...........................................................
12
2.4 Hemostatik ...................................................................................
13
2.4.1 Hemostatik lokal ...............................................................
13
2.4.1.1 Hemostatik serap ....................................................
13
2.4.1.2 Adstringen ..............................................................
14
2.4.1.3 Koagulan ................................................................
13
2.4.1.4 Vasokonstriktor .....................................................
14
2.4.2 Hemostatik sistemik ..........................................................
14
2.4.2.1 Vitamin K ...............................................................
14
2.4.2.2 Asam Aminokaproat ..............................................
15
2.4.3.3 Asam Traneksamat .................................................
15
2.5 Antikoagulan .................................................................................
16
2.5.1 Antikoagulan oral ...............................................................
16
2.5.2 Heparin ...............................................................................
17
2.5.3 Penarikan ion kalsium .........................................................
18
2.6 Faktor-Faktor Pembekuan Darah ..................................................
19
2.7 Trombosit .....................................................................................
19
2.8 Proses Koagulasi Darah ...............................................................
20
2.9 Kelainan Hemostasis dan Koagulasi ............................................
22
ix
Universitas Sumatera Utara
2.9.1 Trombositopenia dan trombositosis ....................................
23
2.9.2 Hemofilia ...........................................................................
24
2.9.3 Penyakit Von Willebrand ....................................................
24
2.9.4 Defisiensi faktor plasma didapat .........................................
24
BAB III METODE PENELITIAN ............................................................
26
3.1 Lokasi Penelitian ..........................................................................
26
3.2 Jenis Penelitian .............................................................................
26
3.3 Alat ...............................................................................................
26
3.4 Bahan ...........................................................................................
27
3.5 Hewan Percobaan .........................................................................
27
3.6 Pengambilan dan Pengolahan Tumbuhan ....................................
27
3.6.1 Pengumpulan tumbuhan ......................................................
27
3.6.2 Identifikasi tumbuhan ........................................................
28
3.6.3 Pembuatan simplisia ...........................................................
28
3.6.4 Pembuatan ekstrak etanol daun kelor .................................
28
3.7 Karakterisasi Simplisia ...............................................................
29
3.7.1 Pemeriksaan makroskopik ..................................................
29
3.7.2 Pemeriksaan mikroskopik ...................................................
29
3.7.3 Penetapan kadar air ............................................................
29
3.7.4 Penetapan kadar sari larut dalam air ...................................
30
3.7.5 Penetapan kadar sari larut dalam etanol ..............................
30
3.7.6 Penetapan kadar abu total ...................................................
31
3.7.7 Penetapan kadar abu yang tidak larut dalam asam .............
31
3.8 Skrining Fitokimia .......................................................................
31
x
Universitas Sumatera Utara
3.8.1 Pemeriksaan alkaloid .........................................................
31
3.8.2 Pemeriksaan flavonoid .......................................................
32
3.8.3 Pemeriksaan glikosida .......................................................
33
3.8.4 Pemeriksaan tanin ...............................................................
33
3.8.5 Pemeriksaan saponin ..........................................................
33
3.8.6 Pemeriksaan steroida/triterpenoid ......................................
33
3.9 Pembuatan Larutan dan Suspensi Bahan Uji ...............................
34
3.9.1 Pembuatan suspensi CMC-Na 0,5 % ..................................
34
3.9.2 Pembuatan larutan EDTA 15 % ..........................................
34
3.9.3 Pembuatan larutan heparin 100 IU/ml ................................
34
3.9.4 Pembuatan suspensi asam traneksamat 10 % ....................
35
3.9.5 Pembuatan suspensi ekstrak etanol daun kelor (EEDK)
1 % ....................................................................................
35
3.9.6 Penentuan konsentrasi ekstrak etanol daun kelor dengan
prinsip titrasi dosis .............................................................
35
3.10 Uji Aktivitas Koagulan ..............................................................
36
3.10.1 Uji aktivitas koagulan secara in vitro ................................
36
3.10.1.1 Waktu koagulasi dengan metode Lee-White ....
36
3.10.1.2 Koagulasi secara mikroskopik dengan teknik
Eustrek (hapusan darah) ....................................
37
3.10.2 Uji aktivitas koagulan secara in vivo ................................
38
3.10.2.1 Waktu perdarahan dengan metode Duke ..........
38
BAB IV HASIL DAN PEMBAHASAN ...................................................
39
4.1 Hasil Identifikasi Tumbuhan .........................................................
39
4.2 Hasil Karakterisasi Simplisia Daun Kelor ...................................
39
xi
Universitas Sumatera Utara
4.3 Hasil Skrining Fitokimia ...............................................................
40
4.4 Hasil Uji Aktivitas Koagulan Ekstrak Etanol Daun Kelor ...........
41
4.4.1 Uji aktivitas koagulan secara in vitro ..................................
42
4.4.1.1 Hasil waktu koagulasi dengan metode Lee-White ..
42
4.4.1.2 Hasil koagulasi secara mikroskopik dengan teknik
Eustrek (hapusan darah) .......................................
44
4.4.2 Uji aktivitas koagulan secara in vivo ..................................
48
4.4.2.1 Hasil waktu perdarahan dengan metode Duke .......
48
BAB V KESIMPULAN DAN SARAN .....................................................
55
5.1 Kesimpulan ............................................................................
55
5.2 Saran ........................... ...........................................................
55
DAFTAR PUSTAKA ................................................................................
56
LAMPIRAN ...............................................................................................
59
xii
Universitas Sumatera Utara
DAFTAR TABEL
Halaman
Tabel 2.1 Faktor-Faktor Pembekuan Darah ..............................................
19
Tabel 4.1 Hasil karakterisasi serbuk simplisia daun kelor .......................
39
Tabel 4.2 Hasil skrining fitokimia simplisia dan ekstrak etanol daun
kelor .........................................................................................
41
Tabel 4.3 Waktu pembekuan darah tikus secara in vitro .........................
42
Tabel 4.4 Hasil pengamatan bentuk sel darah secara mikroskopik
dengan 4 jenis perlakuan berbeda ............................................
45
Tabel 4.5 Hasil waktu perdarahan tikus secara in vivo ............................
49
xiii
Universitas Sumatera Utara
DAFTAR GAMBAR
Halaman
Gambar 1.1 Kerangka pikir penelitian .....................................................
6
Gambar 2.1 Rumus kimia asam traneksamat ...........................................
15
Gambar 2.2 Rumus kimia heparin ...........................................................
17
Gambar 2.4 Proses koagulasi darah .........................................................
22
Gambar 4.1 Waktu pembekuan darah secara in vitro ..............................
44
Gambar 4.2 Bentuk mikroskopik sel darah ............................................
46
Gambar 4.3 Waktu pembekuan darah secara in vivo ...............................
50
xiv
Universitas Sumatera Utara
DAFTAR LAMPIRAN
Halaman
Lampiran 1
Hasil persetujuan etik penelitian ..........................................
59
Lampiran 2
Hasil identifikasi tumbuhan ................................................
60
Lampiran 3
Karakteristik tumbuhan daun kelor (Moringa oleifera Lam.)
61
Lampiran 4
Hasil pemeriksaan mikroskopik daun kelor ........................
63
Lampiran 5
Perhitungan hasil pemeriksaan karakterisasi simplisia .......
65
Lampiran 6
Bagan kerja penelitian ........................................................
70
Lampiran 7
Bagan pembuatan ekstrak ...................................................
71
Lampiran 8
Bagan alur uji in vitro terhadap koagulasi darah tikus .......
72
Lampiran 9
Bagan alur uji in vivo terhadap waktu perdarahan tikus .....
74
Lampiran 10 Alat, bahan, dan objek yang digunakan ..............................
75
Lampiran 11 Contoh perhitungan ............................................................
82
Lampiran 12 Contoh gambar spesimen darah tikus perbesaran 10 x 100..
85
Lampiran 13 Data waktu perdarahan tikus ...............................................
86
Lampiran 14 Hasil uji normalitas waktu pembekuan secara in vitro dan
waktu perdarahan secara in vivo ..........................................
87
Lampiran 15 Hasil analisis ANOVA waktu pembekuan secara in vitro ...
88
Lampiran 16 Hasil analisis Post Hoc waktu pembekuan secara in vitro ...
89
Lampiran 17 Hasil analisis ANOVA waktu perdarahan secara in vivo .....
91
Lampiran 18 Hasil analisis Post Hoc waktu perdarahan secara in vivo ....
93
xv
Universitas Sumatera Utara
DAUN KELOR (Moringa oleifera Lam.)
SECARA IN VITRO DAN IN VIVO
SKRIPSI
OLEH:
ALBERT DARWIN HERIYANTO
NIM 111501062
PROGRAM STUDI SARJANA FARMASI
FAKULTAS FARMASI
UNIVERSITAS SUMATERA UTARA
MEDAN
2015
Universitas Sumatera Utara
UJI AKTIVITAS KOAGULAN EKSTRAK ETANOL
DAUN KELOR (Moringa oleifera Lam.)
SECARA IN VITRO DAN IN VIVO
SKRIPSI
Diajukan sebagai salah satu syarat untuk memperoleh gelar
Sarjana Farmasi pada Fakultas Farmasi
Universitas Sumatera Utara
OLEH:
ALBERT DARWIN HERIYANTO
NIM 111501062
PROGRAM STUDI SARJANA FARMASI
FAKULTAS FARMASI
UNIVERSITAS SUMATERA UTARA
MEDAN
2015
Universitas Sumatera Utara
PENGESAHAN SKRIPSI
UJI AKTIVITAS KOAGULAN EKSTRAK ETANOL
DAUN KELOR (Moringa oleifera Lam.)
SECARA IN VITRO DAN IN VIVO
OLEH:
ALBERT DARWIN HERIYANTO
NIM 111501062
Dipertahankan di hadapan Panitia Penguji Skripsi
Fakultas Farmasi Universitas Sumatera Utara
Pada tanggal: 03 Agustus 2015
Disetujui oleh:
Pembimbing I,
Panitia Penguji,
Marianne, S.Si., M.Si., Apt.
NIP 198005202005012006
Prof. Dr. Rosidah, M.Si., Apt.
NIP 195103261978022001
Pembimbing II,
Marianne, S.Si., M.Si.,Apt.
NIP 198005202005012006
Prof. Dr. Sumadio Hadisahputra,Apt.
NIP 195311281983031002
Aminah Dalimunthe, S.Si., M.Si., Apt.
NIP 197806032005012004
Dr.Poppy Anjelisa Z.Hasibuan, M.Si., Apt
NIP 197506102005012003
Medan, 04 Agustus 2015
Fakultas Farmasi
Universitas Sumatera Utara
Wakil Dekan I,
Prof. Dr. Julia Reveny, M.Si., Apt.
NIP 195807101986012001
Universitas Sumatera Utara
KATA PENGANTAR
Puji dan syukur saya panjatkan kepada Tuhan Yang Maha Esa yang telah
memberikan karunia yang berlimpah sehingga penulis dapat menyelesaikan
penyusunan skripsi yang berjudul “Uji Aktivitas Koagulan Ekstrak Etanol Daun
Kelor (Moringa oleifera Lam.) Secara in vitro dan in vivo”. Skripsi ini diajukan
sebagai salah satu syarat untuk memperoleh gelar Sarjana Farmasi di Fakultas
Farmasi Universitas Sumatera Utara.
Pada kesempatan ini, dengan segala kerendahan hati penulis mengucapkan
terima kasih yang sebesar-besarnya kepada Ibu Prof. Dr. Julia Reveny, M.Si., Apt.
selaku Wakil Dekan I Fakultas Farmasi yang telah menyediakan fasilitas kepada
penulis selama perkuliahan di Fakultas Farmasi. Penulis juga mengucapkan terima
kasih kepada Ibu Marianne, S.Si., M.Si., Apt., dan Bapak Prof. Dr. Sumadio
Hadisahputra, Apt., yang telah meluangkan waktu dan tenaga dalam membimbing
penulis dengan penuh kesabaran dan tanggung jawab, memberikan petunjuk dan
saran-saran selama penelitian hingga selesainya skripsi ini. Ucapan terima kasih
juga penulis sampaikan kepada Ibu Prof. Dr. Rosidah, M.Si., Apt., selaku ketua
penguji, Ibu Aminah Dalimunthe, S.Si., M.Si., Apt., dan Ibu Dr. Poppy Anjelisa
Z. Hasibuan, M.Si., Apt., selaku anggota penguji yang telah memberikan saran
untuk menyempurnakan skripsi ini, dan Ibu Erly Sitompul, M.Si., Apt., selaku
dosen pembimbing akademik serta Bapak dan Ibu staf pengajar Fakultas Farmasi
USU yang telah banyak membimbing penulis selama masa perkuliahan hingga
selesai.
iv
Universitas Sumatera Utara
Penulis juga mengucapkan rasa terima kasih kepada keluarga tercinta,
Ayahanda Alex Wijaya dan Ibunda Lita Ervilina, adik-adik saya Deminshen
Heriyanto, Denny Ariadi, dan Imelda Fransisca atas kasih sayang, dukungan
semangat dan doa yang telah diberikan yang tak ternilai dengan apa pun. Penulis
juga mengucapkan terima kasih kepada teman-teman angkatan 2011 khususnya
jurusan Farmasi Klinis dan Komunitas; kepada para sahabat, Kiki, Ridha, Ditta,
Virginia, Arifandi, Amos, Feby, Benny, Sukma, Dian; kepada para asisten
farmakologi, yaitu Nana, Marta, Maulida, Indah, Elvi, Rendy, Gita, Fauzan,
Yunus, kak Ridha, kak Dara, bang Denny, dan bang Asyrun yang telah
memberikan semangat dan dukungan dalam menyelesaikan skripsi ini.
Penulis menyadari sepenuhnya bahwa penulisan skripsi ini masih belum
sempurna, oleh karena itu penulis mengharapkan saran dan kritik yang
membangun demi kesempurnaan skripsi ini. Akhir kata penulis berharap semoga
skripsi ini bermanfaat bagi ilmu pengetahuan khususnya di bidang farmasi.
Medan, 15 Juli 2015
Penulis,
Albert Darwin Heriyanto
NIM 111501062
v
Universitas Sumatera Utara
UJI AKTIVITAS KOAGULAN EKSTRAK ETANOL DAUN KELOR
(Moringa oleifera Lam.) SECARA IN VITRO DAN IN VIVO
ABSTRAK
Hemostatis merupakan proses penghentian perdarahan secara spontan pada
pembuluh darah, yang terkait dengan trombosit dan faktor pembekuan darah.
Beberapa gangguan hemostatis dapat menyebabkan meningkatnya waktu
perdarahan dan pembekuan darah, di antaranya adalah koagulopati, hemofilia dan
penyakit Von Willebrand. Pengobatan yang dapat dilakukan adalah dengan
mempersingkat waktu perdarahan dan waktu koagulasi darah yang terkait dengan
faktor pembekuan darah. Penelitian ini bertujuan untuk mengetahui aktivitas
koagulan ekstrak etanol daun kelor (Moringa oleifera Lam.) secara in vitro
dengan parameter waktu koagulasi darah dan bentuk sel darah yang membeku,
serta in vivo dengan parameter waktu perdarahan.
Percobaan in vitro dilakukan dengan metode Lee-White, terdiri dari 4
kelompok, yaitu kelompok 1 kontrol negatif yaitu darah segar, kelompok 2 darah
dan EDTA 15%, kelompok 3 darah dan ekstrak etanol daun kelor konsentrasi 1%
dosis 100μl, dan kelompok 4 darah, EDTA 15% dan ekstrak etanol daun kelor 1%
dosis 100μl. Selanjutnya dilakukan percobaan in vitro dengan metode Eustrek,
spesimen darah hasil metode Lee-White diambil dan dibuat sediaan hapusan darah
tipis, kemudian diamati di mikroskop dengan perbesaran 10x10 dan 10x100.
Percobaan in vivo dilakukan dengan metode Duke. Perlakuan yang digunakan
terdiri dari 5 kelompok, yaitu kelompok 1 kontrol negatif digunakan CMC-Na
0,5% dosis 1% BB, kelompok 2 kontrol positif digunakan asam traneksamat 10%
dosis 94,5 mg/KgBB, kelompok 3, 4, dan 5 merupakan kelompok uji digunakan
ekstrak etanol daun kelor dengan dosis 100, 150 dan 200 mg/KgBB diberikan
pada tikus jantan yang telah diinduksi dengan heparin 1 jam sebelumnya dengan
konsentrasi 100 IU/ml, dosis 450 IU/KgBB. Data hasil pengukuran dianalisis
dengan menggunakan ANOVA satu arah dan dilanjutkan dengan uji Post Hoc,
yaitu LSD dan Tukey.
Hasil penelitian ini menunjukkan bahwa pemberian ekstrak etanol daun
kelor pada percobaan in vitro mampu membentuk bekuan darah dalam waktu 1.9
± 1,11 menit dan secara signifikan lebih cepat bila dibandingkan dengan waktu
koagulasi darah normal (p > 0,05), selain itu juga mampu membentuk bekuan
darah pada perlakuan darah, EDTA dan ekstrak etanol daun kelor pada menit ke
28,8 ± 5,54 bila dibandingkan dengan perlakuan darah dan EDTA yang tidak
membeku selama 120 menit (p < 0,05). Pengamatan sel darah secara in vitro
menunjukkan adanya perlekatan antara sel yang satu dengan yang lain. Pada
percobaan in vivo, ekstrak etanol daun kelor yang paling baik dalam
mempersingkat waktu perdarahan setelah diinduksi dengan heparin adalah dosis
200 mg/KgBB, yang berbeda signifikan dengan dosis 100, 150 mg/KgBB dan
kontrol negatif (p < 0,05), dan memiliki efek yang sama dengan asam traneksamat
(p > 0,05).
Kata Kunci: daun kelor (Moringa oleifera Lam.), hemostatis, Lee-White, Duke,
Eustrek, waktu koagulasi, waktu perdarahan.
vi
Universitas Sumatera Utara
COAGULANT ACTIVITY TEST OF ETHANOLIC EXTRACT OF
HORSE RADISH LEAVES (Moringa oleifera Lam.) USING
IN VITRO AND IN VIVO METHODS
ABSTRACT
Haemostatis is a spontaneus stop for bleeding process at blood vessels,
related to trombocyte and blood coagulation factors. Some of haemostatis
disorders that could prolonged blood coagulation and bleeding time are
coagulopathy, haemophilia, and Von Willebrand disease. Medication that could be
done is to shortened blood coagulation time and bleeding time that interconnected
with blood coagulation factors. The purpose of this research is to find out
coagulation activity of ethanolic extract of horse radish tree in in vitro with blood
coagulation and morphology of coagulation cells as the parametre, and in vivo
with bleeding time as the parametre.
In in vitro using Lee-White methods, the treatments are divided in 4
groups. First group is fresh blood as negative control group, second group is blood
and EDTA 15% group, third group is blood and ethanolic extract of horse radish
leaves (Moringa oleifera Lam.) 1% dose 100 μl group, and fourth group is blood,
EDTA 15% and ethanolic extract of horse radish leaves 1% dose 100 μl group.
Next, in vitro using Eustrek methods, blood speciment from Lee-White methods
was taken, wipe blood preparation was made and examined under the microscope
with 10 x 10 and 10 x 100 zoom times. In in vivo using Duke methods, there are 5
groups. First group is CMC-Sodium 0.5% dose 1% B/W as negative control
group, second group is tranexamic acid 10% dose 94.5 mg/KgBB as positive
control group, third, fourth and fifth group used ethanolic extract of horse radish
leaves in various doses, 100, 150 and 200 mg/KgBB as test group, were given to
male rat that were induced with Heparin concentration 100 IU/ml dose 450
IU/KgBB an hour before. Data from both methods are analyzed with one way
ANOVA and continued with Post Hoc test, are LSD and Tukey.
Result of this research shows that ethanolic extract of horse radish leaves
(Moringa oleifera Lam.) can shortened blood coagulation time in in vitro in
minute 1.9 ± 1.11 and significantly different if it is compared with normal
coagulation time (p < 0.05). Besides, it can form blood clot in blood, EDTA and
ethanolic extract of horse radish leaves group in minute 28.8 ± 5.54 if it is
compared with blood and EDTA that did not form any clot in 120 minutes (p <
0.05). In vitro examination of blood cell shows that there is a presence of adhesion
between one cell and another. In in vivo, the best dose that could shortened
bleeding time induced by heparin, 2 hours after treatment is 200 mg/KgBB that
significantly different with dose 100, 150 mg/kgBB and negative control group (p
< 0.05), and has the same effect with tranexamid acid (p > 0.05).
Keyword: horse radish leaves (Moringa oleifera Lam.), haemostatis, Lee-White,
Duke, Eustrek, coagulation time, bleeding time.
vii
Universitas Sumatera Utara
DAFTAR ISI
Halaman
JUDUL .......................................................................................................
i
HALAMAN JUDUL .................................................................................
ii
HALAMAN PENGESAHAN ....................................................................
iii
KATA PENGANTAR ..............................................................................
iv
ABSTRAK .................................................................................................
vi
ABSTRACT ...............................................................................................
vii
DAFTAR ISI .............................................................................................
viii
DAFTAR TABEL ......................................................................................
xiii
DAFTAR GAMBAR .................................................................................
xiv
DAFTAR LAMPIRAN ..............................................................................
xv
BAB I PENDAHULUAN ..........................................................................
1
1.1 Latar Belakang .............................................................................
1
1.2 Perumusan Masalah .....................................................................
3
1.3 Hipotesis ......................................................................................
4
1.4 Tujuan Penelitian .........................................................................
4
1.5 Manfaat Penelitian .......................................................................
5
1.6 Kerangka Pikir Penelitian ............................................................
5
BAB II TINJAUAN PUSTAKA ...............................................................
7
2.1 Uraian Tumbuhan .......................................................................
7
2.1.1 Sistematika tumbuhan .......................................................
7
2.1.2 Nama lain ..........................................................................
7
2.1.3 Morfologi tumbuhan .........................................................
8
viii
Universitas Sumatera Utara
2.1.4 Kandungan kimia ..............................................................
8
2.1.5 Khasiat dan penggunaan tumbuhan ..................................
9
2.2 Ekstraksi ......................................................................................
10
2.2.1 Cara dingin ........................................................................
10
2.2.2 Cara panas .........................................................................
11
2.3 Hemostasis dan Koagulasi ...........................................................
12
2.4 Hemostatik ...................................................................................
13
2.4.1 Hemostatik lokal ...............................................................
13
2.4.1.1 Hemostatik serap ....................................................
13
2.4.1.2 Adstringen ..............................................................
14
2.4.1.3 Koagulan ................................................................
13
2.4.1.4 Vasokonstriktor .....................................................
14
2.4.2 Hemostatik sistemik ..........................................................
14
2.4.2.1 Vitamin K ...............................................................
14
2.4.2.2 Asam Aminokaproat ..............................................
15
2.4.3.3 Asam Traneksamat .................................................
15
2.5 Antikoagulan .................................................................................
16
2.5.1 Antikoagulan oral ...............................................................
16
2.5.2 Heparin ...............................................................................
17
2.5.3 Penarikan ion kalsium .........................................................
18
2.6 Faktor-Faktor Pembekuan Darah ..................................................
19
2.7 Trombosit .....................................................................................
19
2.8 Proses Koagulasi Darah ...............................................................
20
2.9 Kelainan Hemostasis dan Koagulasi ............................................
22
ix
Universitas Sumatera Utara
2.9.1 Trombositopenia dan trombositosis ....................................
23
2.9.2 Hemofilia ...........................................................................
24
2.9.3 Penyakit Von Willebrand ....................................................
24
2.9.4 Defisiensi faktor plasma didapat .........................................
24
BAB III METODE PENELITIAN ............................................................
26
3.1 Lokasi Penelitian ..........................................................................
26
3.2 Jenis Penelitian .............................................................................
26
3.3 Alat ...............................................................................................
26
3.4 Bahan ...........................................................................................
27
3.5 Hewan Percobaan .........................................................................
27
3.6 Pengambilan dan Pengolahan Tumbuhan ....................................
27
3.6.1 Pengumpulan tumbuhan ......................................................
27
3.6.2 Identifikasi tumbuhan ........................................................
28
3.6.3 Pembuatan simplisia ...........................................................
28
3.6.4 Pembuatan ekstrak etanol daun kelor .................................
28
3.7 Karakterisasi Simplisia ...............................................................
29
3.7.1 Pemeriksaan makroskopik ..................................................
29
3.7.2 Pemeriksaan mikroskopik ...................................................
29
3.7.3 Penetapan kadar air ............................................................
29
3.7.4 Penetapan kadar sari larut dalam air ...................................
30
3.7.5 Penetapan kadar sari larut dalam etanol ..............................
30
3.7.6 Penetapan kadar abu total ...................................................
31
3.7.7 Penetapan kadar abu yang tidak larut dalam asam .............
31
3.8 Skrining Fitokimia .......................................................................
31
x
Universitas Sumatera Utara
3.8.1 Pemeriksaan alkaloid .........................................................
31
3.8.2 Pemeriksaan flavonoid .......................................................
32
3.8.3 Pemeriksaan glikosida .......................................................
33
3.8.4 Pemeriksaan tanin ...............................................................
33
3.8.5 Pemeriksaan saponin ..........................................................
33
3.8.6 Pemeriksaan steroida/triterpenoid ......................................
33
3.9 Pembuatan Larutan dan Suspensi Bahan Uji ...............................
34
3.9.1 Pembuatan suspensi CMC-Na 0,5 % ..................................
34
3.9.2 Pembuatan larutan EDTA 15 % ..........................................
34
3.9.3 Pembuatan larutan heparin 100 IU/ml ................................
34
3.9.4 Pembuatan suspensi asam traneksamat 10 % ....................
35
3.9.5 Pembuatan suspensi ekstrak etanol daun kelor (EEDK)
1 % ....................................................................................
35
3.9.6 Penentuan konsentrasi ekstrak etanol daun kelor dengan
prinsip titrasi dosis .............................................................
35
3.10 Uji Aktivitas Koagulan ..............................................................
36
3.10.1 Uji aktivitas koagulan secara in vitro ................................
36
3.10.1.1 Waktu koagulasi dengan metode Lee-White ....
36
3.10.1.2 Koagulasi secara mikroskopik dengan teknik
Eustrek (hapusan darah) ....................................
37
3.10.2 Uji aktivitas koagulan secara in vivo ................................
38
3.10.2.1 Waktu perdarahan dengan metode Duke ..........
38
BAB IV HASIL DAN PEMBAHASAN ...................................................
39
4.1 Hasil Identifikasi Tumbuhan .........................................................
39
4.2 Hasil Karakterisasi Simplisia Daun Kelor ...................................
39
xi
Universitas Sumatera Utara
4.3 Hasil Skrining Fitokimia ...............................................................
40
4.4 Hasil Uji Aktivitas Koagulan Ekstrak Etanol Daun Kelor ...........
41
4.4.1 Uji aktivitas koagulan secara in vitro ..................................
42
4.4.1.1 Hasil waktu koagulasi dengan metode Lee-White ..
42
4.4.1.2 Hasil koagulasi secara mikroskopik dengan teknik
Eustrek (hapusan darah) .......................................
44
4.4.2 Uji aktivitas koagulan secara in vivo ..................................
48
4.4.2.1 Hasil waktu perdarahan dengan metode Duke .......
48
BAB V KESIMPULAN DAN SARAN .....................................................
55
5.1 Kesimpulan ............................................................................
55
5.2 Saran ........................... ...........................................................
55
DAFTAR PUSTAKA ................................................................................
56
LAMPIRAN ...............................................................................................
59
xii
Universitas Sumatera Utara
DAFTAR TABEL
Halaman
Tabel 2.1 Faktor-Faktor Pembekuan Darah ..............................................
19
Tabel 4.1 Hasil karakterisasi serbuk simplisia daun kelor .......................
39
Tabel 4.2 Hasil skrining fitokimia simplisia dan ekstrak etanol daun
kelor .........................................................................................
41
Tabel 4.3 Waktu pembekuan darah tikus secara in vitro .........................
42
Tabel 4.4 Hasil pengamatan bentuk sel darah secara mikroskopik
dengan 4 jenis perlakuan berbeda ............................................
45
Tabel 4.5 Hasil waktu perdarahan tikus secara in vivo ............................
49
xiii
Universitas Sumatera Utara
DAFTAR GAMBAR
Halaman
Gambar 1.1 Kerangka pikir penelitian .....................................................
6
Gambar 2.1 Rumus kimia asam traneksamat ...........................................
15
Gambar 2.2 Rumus kimia heparin ...........................................................
17
Gambar 2.4 Proses koagulasi darah .........................................................
22
Gambar 4.1 Waktu pembekuan darah secara in vitro ..............................
44
Gambar 4.2 Bentuk mikroskopik sel darah ............................................
46
Gambar 4.3 Waktu pembekuan darah secara in vivo ...............................
50
xiv
Universitas Sumatera Utara
DAFTAR LAMPIRAN
Halaman
Lampiran 1
Hasil persetujuan etik penelitian ..........................................
59
Lampiran 2
Hasil identifikasi tumbuhan ................................................
60
Lampiran 3
Karakteristik tumbuhan daun kelor (Moringa oleifera Lam.)
61
Lampiran 4
Hasil pemeriksaan mikroskopik daun kelor ........................
63
Lampiran 5
Perhitungan hasil pemeriksaan karakterisasi simplisia .......
65
Lampiran 6
Bagan kerja penelitian ........................................................
70
Lampiran 7
Bagan pembuatan ekstrak ...................................................
71
Lampiran 8
Bagan alur uji in vitro terhadap koagulasi darah tikus .......
72
Lampiran 9
Bagan alur uji in vivo terhadap waktu perdarahan tikus .....
74
Lampiran 10 Alat, bahan, dan objek yang digunakan ..............................
75
Lampiran 11 Contoh perhitungan ............................................................
82
Lampiran 12 Contoh gambar spesimen darah tikus perbesaran 10 x 100..
85
Lampiran 13 Data waktu perdarahan tikus ...............................................
86
Lampiran 14 Hasil uji normalitas waktu pembekuan secara in vitro dan
waktu perdarahan secara in vivo ..........................................
87
Lampiran 15 Hasil analisis ANOVA waktu pembekuan secara in vitro ...
88
Lampiran 16 Hasil analisis Post Hoc waktu pembekuan secara in vitro ...
89
Lampiran 17 Hasil analisis ANOVA waktu perdarahan secara in vivo .....
91
Lampiran 18 Hasil analisis Post Hoc waktu perdarahan secara in vivo ....
93
xv
Universitas Sumatera Utara