KARAKTERISASI PRODUKSI EKSOPOLISAKARIDA (EPS) DARI LIMBAH JERAMI PADI OLEH ISOLAT BAKTERI ASAM LAKTAT LOKAL

(1)

ASAM

LAKTAT

LOKAL

Oleh

c&r,tina

ryidilsnti

Skripsi

Sebagai Salah Satu Syarat untuk Memperoleh Gelar SARJANA SAINS

Pada

Jurusan Kimia

Fakultas Matematika dan llmu Pengetahuan Alam

UNIVERSITAS LAMPUNG

BANDAR LAMPUNG

2014

f*:"'a

T


(2)

ABSTRAK

KARAKTERISASI PRODUKSI EKSOPOLISAKARIDA (EPS) DARI LIMBAH JERAMI PADI OLEH ISOLAT

BAKTERI ASAM LAKTAT LOKAL

Oleh

Karlina Widiyanti

Eksopolisakarida (EPS) merupakan polimer dari gula pereduksi dengan berat molekul tinggi yang disekresikan oleh mikroorganisme ke lingkungan eksternalnya. Polimer ini memiliki beberapa keunggulan untuk diaplikasikan dalam bidang farmasi dan bidang lainnya. Beberapa mikroba mampu menghasilkan EPS terutama bakteri asam laktat dengan memanfaatkan sumber karbon gula-gula pereduksi disintesis dan disekresikan keluar sel. Pada penelitian ini dilakukan modifikasi pembuatan EPS dari sirup gula-gula pereduksi hasil penguraian limbah jerami padi yang disintesis dengan bantuan isolat bakteri asam laktat lokal. Kondisi fermentasi meliputi pH dan waktu fermentasi dioptimasi untuk mengetahui kondisi optimum media fermentasi EPS, selain itu dilakukan karakterisasi EPS yang dihasilkan, meliputi Berat Molekul dengan menggunakan viskometer Ostwald, dan total gula dengan menggunakan metode Dubois (fenol-asam sulfat). Kondisi optimum media fermentasi EPS yang diperoleh dengan menambahkan larutan sukrosa 5% ke dalam filtrat jerami padi, pada pH 6,0 dan waktu inkubasi selama 48 jam. Kondisi ini digunakan untuk memproduksi EPS oleh isolat bakteri asam laktat LbK-19 dan menghasilkan EPS dengan kuantitas

2,51 mg mL-1. Karakterisasi terhadap EPS yang dihasilkan diperoleh berat

molekul EPS sebesar 94592,99 g mol-1 dan pengukuran kandungan gula total

sebesar 32,64 mg mL-1.


(3)

Nama Mahasiswa :

Kgrtlnc

Sltdtlsntl

Nomor Pokok Mahasiswa :

Jurusan

:

Fakultas

:

0817011016 Kimia

Matematika dan Ilmu Pengetahuan Alam

lleri

Satria, M.Si.

NrP 19711001 200501

MEFTYATUJUI

1. Komisi Pembimbing

2. Ketua Jurusan Kimia

@h^--Dr. Enf,suripto Dwi Yuwono, M.T. NIP 19740705 200003

I

001

|

002

Dr. Eng. Suripto

DwiYuworc,M-T.72


(4)

+YM

%

{L

1. Tim Penguji

Ketua

:

Heri Satria, M.Si.

Sekretaris

I

Dr. Eng. Suripto Dwi Yuwono, M,T. Penguji

Bukan Pembimbing

;

Dra. Aspita Laila, M.S.

Ilmu PengetahuanAlam

Thnggal Lulus lJjian Skripsi

:

15

Januari}Al4

Fakultas Matematika dan I


(5)

DAFTAR ISI

Halaman

DAFTAR ISI ... i

DAFTAR GAMBAR ... iii

DAFTAR TABEL ... iv

I. PENDAHULUAN A. Latar Belakang ... 1

B. Tujuan Penelitian ... 3

C. Manfaat Penelitian ... 3

II. TINJAUAN PUSTAKA A. Eksopolisakarida ... 4

1. Dekstran ... 5

2. Kefiran ... 5

3. Gellan. ... 6

4. Curdlan. ... 6

5. Xanthan. ... 7

6. Alginat. ... 7

7. Pullulan. ... 8

B. Bakteri Asam Laktat ... 9

C. Viskositas ... 12

D. Kromatografi Cair Kinerja Tinggi (KCKT) atau High Performance Liquid Chromatography (HPLC) ... 14

III. METODOLOGI PENELITIAN A. Waktu dan Tempat Penelitian ... 17

B. Alat dan Bahan ... 17

C. Prosedur Penelitian ... 18

1. Pembuatan Media dan Pereaksi ... 18

a. Pembuatan Larutan Garam Fisiolois (NaCl 0,85%). ... 18

b. Pembuatan Media Inokulum Yeast Maltosa Cair (YM). ... 18

c. Pembuatan Media de Man,Rogosa,Sharpe (MRS) Cair. ... 18

d. Pembuatan Pereaksi DNS. ... 18


(6)

1) Larutan Stok A (NaH2PO4.H2O 0,2M). ... 19

2) Larutan Stok B (Na2HPO4.H2O 0,2M). ... 19

f. Pembuatan Buffer Asetat. ... 19

1) Larutan Stok A (CH3COOH 0,2M). ... 19

2) Larutan Stok B (CH3COONa 0,2M). ... 19

2. Pembuatan Inokulum ... 19

3. Fermentasi Jerami Padi ... 19

4. Analisis Gula Pada Media Filtrat ... 20

5. Seleksi Bakteri Asam Laktat Penghasil EPS ... 21

6. Optimasi Produksi EPS Skala Laboratorium ... 22

7. Isolasi dan Pemurnian EPS ... 23

8. Karakterisasi EPS. ... 23

a. Pengukuran Berat Molekul (BM) Berdasarkan Metode Viskometri. ... 23

b. Analisis Kandungan Gula Pereduksi Total. ... 24

IV. HASIL DAN PEMBAHASAN A. Analisis Kandungan Gula pada Media Filtrat ... 25

B. Seleksi Bakteri Asam Laktat Penghasil EPS ... 29

C. Optimasi Produksi EPS Skala Laboratorium ... 33

D. Isolasi dan Pemurnian EPS. ... 36

E. Karakterisasi EPS. ... 36

1. Pengukuran Berat Molekul Berdasarkan Metode Viskometri. ... 36

2. Analisis Kandungan Gula Pereduksi Total. ... 38

V. SIMPULAN DAN SARAN A. Simpulan ... 39

B. Saran ... 39

DAFTAR PUSTAKA ... 40


(7)

I. PENDAHULUAN

A. Latar Belakang

Salah satu limbah pertanian yang jumlahnya cukup besar dan tersebar di

Indonesia adalah limbah jerami padi. Potensi limbah jerami padi sampai saat ini sekitar sebesar 5 ton/ton padi (Majalah padi, 2009). Limbah pertanian seperti jerami, bonggol jagung, kulit kacang-kacangan merupakan limbah lignoselulosa yang masih mempunyai nilai ekonomis bila dilakukan pengolahan lebih lanjut (Anindyawati, 2010). Lignoselulosa mengandung senyawa polisakarida yang

dapat dibiokonversi untuk berbagai kepentingan (Howard et al., 2003).

Hidrolisis lignoselulosa dari jerami padi oleh isolat Actinomycetes AcP-1 dan

AcP-7 pernah dilakukan oleh Satria dkk. (2010) yang mampu menghasilkan gula total masing-masing sebesar 6,88 dan 7,03 mg/mL. Hasil ini berpotensi untuk dikembangkan ke arah biokonversi lebih lanjut seperti pengembangan bahan baku untuk produksi bioetanol, fermentasi asam-asam organik, dan sintesis polimer seperti eksopolisakarida.

Eksopolisakarida (EPS) adalah salah satu polisakarida yang memiliki potensi untuk aplikasi di bidang industri farmasi, kesehatan dan pangan. Polimer ini dihasilkan oleh mikroba terutama bakteri asam laktat dengan memanfaatkan sumber karbon gula-gula pereduksi disintesis dan disekresikan keluar sel (Duboc


(8)

and Mollet, 2001). Banyak mikroorganisme laut menghasilkan polimer ekstraseluler yang berbentuk lapisan mengelilingi sel untuk melindungi dari pengaruh buruk dan kondisi lingkungan yang ekstrem. Lingkungan yang ekstrem juga memberi keanekaragaman mikroba novel untuk memproduksi jenis EPS

yang beraneka jenis dan menarik (Surekha et al., 2010).

Bakteri asam laktat merupakan penghasil EPS yang menarik perhatian para peneliti beberapa tahun belakangan ini. Bakteri asam laktat adalah bakteri jenis

food-grade, dan eksopolisakarida yang dihasilkan mengkontribusi pada reologi tertentu dan tekstur pada produk susu fermentasi dan aplikasi lain pada produk

olahan non susu (Frengova et al., 2002). Mikroorganisme penghasil EPS dapat

ditemukan di dalam berbagai lingkup ekologi, yaitu pada lingkungan yang memiliki kandungan organik tinggi. Mikroba penghasil EPS merupakan

mikroorganisme termofilik pada setiap phylum dari Archaea dan bakteria, dan

dapat diisolasi dari berbagai lingkungan termofilik baik dari perairan laut dalam dan dangkal, serta sumber air panas (Singha, 2012). Lingkungan laut adalah lingkungan yang dinamis, dimana mikroorganisme akan mengubah salinitas, tekanan, tingkat nutrisi dan sebagainya, yang dapat mempengaruhi produksi EPS pada mikroorganisme. Pada lingkungan asli dan di laboratorium, mikroorganisme cenderung menghasilkan EPS berlebih pada kondisi terbatas-kadar nitrogen rendah. Faktor lain yang mempengaruhi pertumbuhan organisme seperti pH, salinitas, aerasi dan temperatur juga dapat mempengaruhi produksi EPS (Bhaskar and Bhosle, 2005).


(9)

Pada penelitian ini telah dilakukan suatu inovasi yaitu membuat EPS dari sirup gula-gula pereduksi hasil penguraian limbah jerami padi yang disintesis dengan bantuan isolat bakteri asam laktat lokal. Pemilihan bahan berlignoselulosa diharapkan akan menghasilkan EPS yang beragam baik secara fisika maupun kimia, mengingat material ini merupakan polimer yang monomer penyusunnya bukan hanya glukosa tetapi monosakarida lainnya seperti xilosa, manosa, dan arabinosa.

B. Tujuan Penelitian

Adapun tujuan pada penelitian ini adalah:

1. Untuk memperoleh kondisi optimum fermentasi EPS dengan beberapa

parameter meliputi substrat optimum, waktu inkubasi, dan pH.

2. Mengkarakterisasi eksopolisakarida yang dihasilkan dengan beberapa

parameter antara lain: berat molekul dan pengukuran kandungan gula total.

C. Manfaat Penelitian

Penelitian ini diharapkan dapat meningkatkan pemanfaatan hasil fermentasi limbah jerami padi berbahan lignoselulosa berupa sirup gula-gula pereduksi. Hasil fermentasi tersebut dapat dimanfaatkan sebagai bahan dalam sintesis EPS dengan bantuan mikroorganisme dari sumber daya lokal berupa isolat-isolat

Actinomycetes dan bakteri asam laktat lokal. Sehingga penelitian ini

dikembangkan untuk memanfaatkan sumber daya lokal dalam pengembangan produksi EPS.


(10)

II. TINJAUAN PUSTAKA

A. Eksopolisakarida (EPS)

Eksopolisakarida (EPS) merupakan polimer dari gula pereduksi dengan berat molekul tinggi yang disekresikan oleh mikroorganisme ke lingkungan

eksternalnya. Polimer ini merupakan salah satu polimer yang mampu disintesis oleh bakteri asam laktat. EPS umumnya terdiri dari monosakarida dan beberapa substituen non-karbohidrat seperti asetat, piruvat, suksinat, dan fosfat (van Hijum

et al., 2002) juga biomolekul seperti protein, asam nukleat, lipid dan zat humat (Vu et al., 2009).

EPS biasanya dihasilkan oleh bakteri asam laktat yang merupakan ciri kontribusi bakteri ini sebagai probiotik yang memiliki efek positif bagi kesehatan (Suresh and Mody, 2009). Polimer ini memiliki daya bioaktivasi yang dapat digunakan dalam penggunaan obat seperti fungsinya sebagai anti virus, anti inflamasi

(Llamas et al., 2010). Dalam industri makanan EPS dapat berfungsi sebagai

pengental, pembuatan gel hingga pengemulsi. Beberapa EPS yang telah banyak

digunakan dalam bidang kesehatan diantaranya β-glukan, β-mannan, xanthan, curdlan, gellan, dan dekstran (Malik dkk, 2008).


(11)

Struktur eksopolisakarida sangat beragam, beberapa jenis eksopolisakarida antara lain :

1. Dekstran

Dekstran merupakan polimer kompleks dari glukosa yang mengalami

percabangan dengan membentuk ikatan α-1,6 dan α-1,3 glikosidik. Dekstran yang di biosintesis oleh bakteri asam laktat memiliki berat molekul yang besar antara 10-150 kDa. Dalam bidang kesehatan dekstran memiliki fungsi yang beragam seperti anti inflamasi, anti trombotik, anti koagulan, hingga memiliki peran yang penting sebagai intraarterial dan intravenous (Veronese and Caliceti, 2006).

Gambar 1. Struktur Dextran (Lapasin, 1999)

2. Kefiran

Kefiran merupakan kapsular polisakarida yang diproduksi oleh strain

Lactobacillus pada pembuatan susu fermentasi kefir. Struktur polimer kefiran dibentuk dari monomer D-glukosa atau heteropolisakarida D-galaktosa yang mengalami percabangan pada dua unit rantai serta delapan unit rantai. Polimer ini


(12)

Gambar 2. Struktur Kefiran (Micheli et al., 1999) 3. Gellan

Gellan merupakan polimer linier yang bermuatan negatif (anionik polisakarida). Polimernya tersusun dari perulangan tetrasakarida unit yang merupakan

kombinasi antara dua molekul glukosa dengan asam D-glukoronat atau L-ramnosa. Gellan biasanya digunakan untuk mensubtitusi agar, juga dapat

digunakan sebagai eksipien obat sebagai bagian dari drug delivery system (Vu et

al., 2009; Fialho et al., 2008).

Gambar 3. Struktur Gellan (Lapasin, 1999)

4. Curdlan

Curdlan merupakan polimer linier yang terbentuk dari ikatan β-1,3 glikosidik dari D-glukosa. Polimer ini bersifat sangat larut dalam air. Curdlan dapat dihasilkan

dari bakteri strain Alcaligenes faecalis dan juga Agrobacterium. Keunikan

curdlan adalah sifat gelnya yang elastis ketika dipanaskan pada suhu di atas 55°C, sehingga sering digunakan untuk memperbaiki tekstur makanan dan dalam bidang


(13)

farmasi dijadikan sebagai polimer yang berfungsi sebagai eksipien drug delivery

(Rehm, 2009; Gumadi et al., 2005).

Gambar 4. Struktur Curdlan (Jin et al., 2006)

5. Xanthan

Xanthan merupakan heteropolimer anionik yang disusun oleh glukosa dengan

rantai samping trisakarida dari α-D-manosa yang memiliki gugus asetil. Xanthan

diproduksi oleh strain Xanthomonas dengan berat molekul yang sangat besar

(Rehm, 2009). Sifat yang ditunjukkan xanthan adalah pseudoplastik dan pengemulsi yang stabil, sehingga kegunaannya sangat luas dibidang industri makanan, kosmetik, maupun farmasi (Sutherland, 1998).

Gambar 5. Struktur Xanthan (Sutherland, 2001)

6. Alginat

Alginat merupakan homopolimer linier dari kopolimer D-manuronat yang

membentuk ikatan β-1,4-glikosidik dan epimer α-L-glukoronat. Alginat banyak ditemukan pada tumbuh-tumbuhan terutama rumput laut. Dalam bidang farmasi


(14)

membentuk gel yang stabil. Sediaan bahan obat yang banyak beredar di pasaran adalah kalsium alginat (Raymond, 2009).

Gambar 6. Struktur Alginat (Ertesvag, 1998)

7. Pullulan

Pullulan merupakan polimer yang tersusun atas unit maltotriosa. Ikatan yang

terdapat pada unit maltotriosa adalah α-1,4-glikosidik, sedangkan unit-unit

maltotriosa dihubungkan dengan ikatan α-1,6-glikosidik. Penggunaan pullulan

yang paling dikenal adalah pada produk-produk yang berhubungan dengan penyegar dan pembersih mulut (Raymond, 2009).

Gambar 7. Struktur Pullulan (Vu et al., 2009)

Polisakarida disekresikan kepermukaan sel atau dilepaskan ke lingkungannya bersamaan dengan senyawa lipoprotein gabungan keduanya dikenal sebagai

glikokaliks (Ruas-Madiedo and Reyes-Gavila’n, 2005). EPS sebenarnya melekat

pada permukaan sel tetapi terjadi akumulasi yang berlebihan sehingga polimer ini dapat diperoleh pada media cair pertumbuhan mikrobanya. Gambaran letak EPS pada permukaan sel bakteri gram positif dan negatif dapat dilihat pada Gambar 8.


(15)

Gambar 8. Letak senyawa glikokaliks yang merupakan gabungan antara lipoprotein (CPS) dan eksopolisakarida (EPS) pada bakteri gram positif (kiri) dan bakteri gram negatif (kanan) (Ruas-Madiedo and

Reyes-Gavila’n, 2005)

B. Bakteri Asam Laktat

Bakteri asam laktat seperti Lactobacillus termasuk golongan organisme

food-grade yang memiliki status GRAS (Generally Recognized as Safe) dan diketahui memproduksi sejumlah jenis molekul ekstraseluler polisakarida (EPS) yang berkontribusi untuk tekstur pada makanan fermentasi. EPS dibagi dua golongan yaitu homopolisakarida dan heteropolisakarida. EPS dari bakteri ini

memungkinkan pengembangan generasi baru dari food-grade polisakarida.

Bakteri asam laktat juga sering berkontribusi positif pada rasa, bau, atau

preservasi dari produk akhir (van Hijum et al., 2002; de Vuyst et al., 2001).

Beberapa jenis bakteri asam laktat penghasil EPS yang telah diteliti oleh beberapa peneliti kurun waktu 10 tahun terakhir dapat dilihat pada Tabel 1.


(16)

Tabel 1. Bakteri Asam Laktat yang Diteliti Mampu Menghasilkan EPS

Strain Bakteri Karakteristik EPS Referensi

a) Bacillus megaterium b) Stapylococcus saprophyticus c) Mirococcus luteus d) Agrobacterium vitis a) Lactobacillus MR-1 b) Lactobacillus MR-3 c) Lacctobacillus MR-17

a) L. Casei CRL87

b) L. Paracasei CRL72 c) L. Rhamnosus CRL627

a) L. reuteri MBI-C42

b) L. reutei MBI-C43 c) L. panis MBI-V35

Salipiger mucocus A3

a) Glc, Man, Gal, Glc-a b) Glc, Gal

c) Glc, Gal, Rib d) Glc, Gal, Xyl

a) 100% glukosa

b) 99,18% galaktosa, 0,80% glukosa

c) 32,56% manosa, 36,42% ramnosa, 30,41% fruktosa

a) Glc, Gal, Rha (2:1:4) b) Glc, Gal, GlcN, GalN (1:1,5:1:1,5)

c) Glc, Gal, Rha (3:1:1) a) Glc, Fruc (1:0,8)

b) Glc, Fruc (1:2,1) c) Glc, Fruc (1:2,9) Heteropolysaccharide: 19,70% Glucose, 34,00% Mannose, 32,90%

Galactose, 13,40%

Fructose. BM 250 kDa

Kwon et al., 2002

Savadogo et al., 2004

Mozzi et al., 2006

Semnojov et al., 2008

Llamas et al., 2010

Media yang digunakan untuk mengoptimalkan produksi EPS sangat beragam, karena rantai utama dari polimer ini adalah glukosa. Banyak peneliti yang

menggunakan glukosa sebagai sumber karbon pada media fermentasi. Velasco et

al., (2006) menggunakan konsentrasi glukosa sebanyak 75 g/L untuk memperoleh

EPS sebanyak 1,08 g/L pada akhir fermentasi (120 jam) oleh bakteri Pediacoccus

parvulus 2.6. Sementara peneliti lainnya menggunakan konsentrasi glukosa

sebesar 30 g/L untuk menghasilkan EPS menggunakan isolat L. delbrueckii B-3,


(17)

selama masa inkubasi 18 jam masing-masing 255 mg/L, 224 mg/L, dan 174 mg/L

(Yuksekdag and Salim, 2008). Xu et al. (2010) menggunakan media modifikasi

yang dinamakan Chemically Defined Medium (CDM) yang mengandung 50 g/L

sukrosa dan beberapa mineral menghasilkan EPS sebesar 238,23 mg/L selama

fermentasi 48 jam menggunakan isolat L. paracasei. Beberapa kondisi fermentasi

untuk menghasilkan EPS disajikan pada Tabel 2.

Tabel 2. Kondisi Fermentasi untuk Menghasilkan EPS

Strain Bakteri Karakter Fermentasi Produk EPS Referensi

a) Lactobacillus MR-1 b) Lactobacillus MR-3 c) Lactobacillus MR-17 a) L. casei CRL87 b) L. paracasei CRL72 c) L. rhamnosus CRL627

Pedicoccus parvulus

2.6

a) L. delbrueckii B3 b) L. bulgaris G12 c) Streptococcus thermophilus W22

L. paracasei

Konsentrasi glukosa 20 g/L dan laktosa 75 g/L, pH tidak diketahui, waktu inkubasi 24 jam Konsentrasi sukrosa 120 g/L, pH tidak diketahui, waktu inkubasi 72 jam Konsentrasi glukosa 75 g/L, pH 5,20, waktu inkubasi 120 jam

Konsentrasi glukosa 30 g/L, pH tidak diketahui, waktu inkubasi 18 jam Media CDM dengan kandungan sukrosa 50 g/L dan mineral, pH 6,70, waktu inkubasi 48 jam

a) 219 mg/L b) 322 mg/L c) 357 mg/L

a) 6,0 g/L b) 5,4 g/L c) 8,6 g/L

1,08 g/L

a) 255 mg/L b) 224 mg/L c) 174 mg/L

238,23 mg/L

Savadogo et al.,

2004

Mozzi et al.,

2006

Velasco et al.,

2006

Yuksekdag and Salim, 2008

Xu et al., 2010

Sumber kabon yang digunakan pada penelitian tersebut merupakan gula-gula komersial. Sumber gula yang melimpah sebenarnya terdapat pada polimer


(18)

lignoselulosa yang banyak terdapat pada limbah pertanian. Satria dkk. (2010) melakukan degradasi lignoselulosa dari jerami padi menggunakan isolat

Actinomycetes AcP-1 dan AcP-7 dan berhasil memperoleh kandungan gula pereduksi total sebesar masing-masing dengan kisaran 20,65-27,51 g/L dan 20,98-22,80 g/L dengan fermentasi fase padat. Sementara penelitian lanjutan (belum dipublikasikan) menggunakan fermentasi cair dengan kandungan substrat jerami padi sebesar 30% mampu menghasilkan gula pereduksi total pada kisaran 50,55-67,45 g/L. Sumber gula ini berpotensi untuk digunakan sebagai sumber media yang dapat menghasilkan EPS menggunakan isolat-isolat bakteri asam laktat isolat lokal yang sedang dikerjakan.

C. Viskositas

Viskositas adalah ukuran kekentalan fluida yang menyatakan besar-kecilnya gesekan di dalam fluida. Semakin besar viskositas fluida, maka semakin sulit suatu benda bergerak di dalam fluida tersebut. Di dalam zat cair, viskositas dihasilkan oleh gaya kohesi antara molekul zat cair. Sedangkan dalam gas, viskositas timbul sebagai akibat tumbukan antara molekul gas. Dalam suatu fluida ideal (fluida tidak kental) tidak ada viskositas (kekentalan) yang

menghambat lapisan-lapisan fluida ketika lapisan-lapisan tersebut menggeser satu di atas lainnya. Untuk fluida yang sangat kental seperti madu, diperlukan gaya yang lebih besar, sedangkan untuk fluida yang kurang kental (viskositasnya kecil), seperti air, diperlukan gaya yang lebih kecil.

Tingkat kekentalan suatu fluida juga bergantung pada suhu. Semakin tinggi suhu zat cair, semakin kurang kental zat cair tersebut. Sebaliknya, semakin tinggi suhu


(19)

suatu zat gas, semakin kental zat gas tersebut. Tingkat kekentalan fluida

dinyatakan dengan koefisien viskositas. Jika fluida makin kental maka gaya tarik yang dibutuhkan juga makin besar. Dalam hal ini, gaya tarik berbanding lurus dengan koefisien kekentalan.

Gambar 9. Viskometer Ostwald`(Moechtar,1990).

Viskositas terbagi tiga jenis yaitu viskositas spesifik (ɳsp), kinematik, dan intrinsik

(ɳ). Viskositas spesifik dihitung berdasarkan perbandingan antara kecepatan

aliran suatu larutan dengan pelarutnya. Viskositas kinematik diperoleh dengan mempertimbangkan densitas larutan. Viskositas spesifik dan kinematik

dipengaruhi oleh konsentrasi larutan. Viskositas intrinsik dihitung dari

perbandingan antara viskositas spesifik dengan konsentrasi larutan (ɳsp/C) di

ekstrapolasi sehingga nilai konsentrasi larutan mendekati nol. Dengan demikian

nilai kelarutan tidak berpengaruh terhadap viskositas intrinsik (Hwang et al.,

1997).

Viskositas dari larutan polimer bergantung pada konsentrasi dan ukuran (berat molekul) dari polimer terlarut. Untuk menghitung viskositas suatu larutan kita harus mengetahui tentang berat molekul larutan polimer tersebut. Teknik pengukuran viskositas ini sangat terkenal karena merupakan eksperimen yang


(20)

sederhana. Salah satu alat untuk mengukur viskositas suatu larutan dapat digunakan viskometer sederhana, dengan menghitung waktu alir dan densitas larutan (Parthasarathi, 2011).

D. Kromatografi Cair Kinerja Tinggi (KCKT)

Kromatografi Cair Kinerja Tinggi (KCKT) merupakan salah satu metode kimia dan fisikokimia. KCKT termasuk metode analisis terbaru yaitu suatu teknik kromatografi dengan fasa gerak cairan dan padat. Banyak kelebihan metode ini jika dibandingkan dengan metode lainnya (Snyder and Kirkland, 1979; Johnson and Stevenson, 1978).

Kelebihan-kelebihan dari KCKT yaitu:

1. Cepat

Waktu analisis umumnya kurang dari 1 jam. Banyak analisis yang dapat diselesaikan sekitar 15-30 menit. Untuk analisis yang tidak rumit, waktu analisis kurang dari 5 menit bisa dicapai.

2. Resolusi

Berbeda dengan kromatografi gas, kromatografi cair mempunyai dua rasa dimana interaksi selektif dapat terjadi. Pada kromatografi gas, gas yang mengalir sedikit berinteraksi dengan zat padat, pemisahan terutama dicapai hanya dengan fasa diam. Kemampuan zat padat berinteraksi secara selektif dengan fasa diam dan fasa gerak pada KCKT memberikan parameter tambahan untuk mencapai pemisahan yang diinginkan.


(21)

3. Sensitivitas detektor

Detektor absorbsi UV yang biasa digunakan dalam KCKT dapat

mendeteksi kadar dalam jumlah nanogram (10-9 g) dari bermacam-macam

zat. Detektor-detektor Fluoresensi dan Elektrokimia dapat mendeteksi

jumlah sampai pikogram (10-12 g). Detektor-detektor seperti

Spektrofotometer Massa, Indeks Refraksi, Radiometri, dapat juga digunakan dalam KCKT.

4. Kolom yang dapat digunakan kembali

Berbeda dengan kolom kromatografi klasik, kolom KCKT dapat

digunakan kembali. Banyak analisis yang bisa dilakukan dengan kolom yang sama sebelum dari jenis sampel yang diinjeksi, kebersihan dari solven yang digunakan.

5. Ideal untuk zat bermolekul besar dan berionik

Zat-zat yang tidak bisa dianalisis dengan kromatografi gas karena volatilitas rendah, biasanya diderivatisasi untuk menganalisis spesies ionik. KCKT dengan tipe eksklusi dan penukar ion ideal sekali untuk analisis zat-zat tersebut.

6. Sampel dapat diperoleh kembali

Umumnya detektor yang digunakan dalam KCKT tidak menyebabkan

destruktif (kerusakan) pada komponen sampel yang diperiksa, oleh karena itu komponen sampel tersebut dapat dengan mudah dikumpulkan setelah melewati detektor. Solvennya dapat dihilangkan dengan diuapkan, kecuali untuk kromatografi penukar ion memerlukan prosedur khusus.


(22)

Berdasarkan polaritas relatif fasa gerak dan fasa diamnya, KCKT dibagi menjadi dua, yaitu fasa normal yang umumnya digunakan untuk identifikasi senyawa nonpolar sehingga fasa gerak yang digunakan kurang polar dibandingkan fasa diam dan fasa terbalik yang umumnya digunakan untuk identifikasi senyawa polar, menggunakan fasa gerak lebih polar dibandingkan fasa diam (Gritter dkk, 1991). Prinsip pemisahan senyawa menggunakan KCKT adalah perbedaan distribusi komponen diantara fasa diam dan fasa geraknya. Semakin lama


(23)

III. METEDOLOGI PENELITIAN

A. Waktu dan Tempat Penelitian

Penelitian ini telah dilaksanakan dari bulan Maret sampai bulan Nopember 2013 di Laboratorium Instrumentasi dan Laboratorium Biokimia Jurusan Kimia FMIPA Universitas Lampung.

B. Alat dan Bahan

Alat-alat yang digunakan pada penelitian ini antara lain autoklaf merek Speed

Clave Model S-90 N, Laminar air flow CRUMA model 9005-FL, inkubator

merek P-Selecta, Spektrofotometer UV-VIS merek Agilent Cary 100, shaker

merek Stuart model SSL2, Kromatografi Cair Kinerja Tinggi (KCKT) FLD &

RID merek KNAUER, viskometer Ostwald, sentrifugasi, freeze drying, oven,

rotary evaporator, lemari pendingin, neraca analitik, jarum ose, magnetic stirrer,

penangas air, effendroft dan tip, pH meter, dan peralatan gelas laboratorium

lainnya.

Bahan-bahan yang digunakan adalah media inokulum Yeast Maltosa Cair (YM),

media deMan, Ragosa, and Sharpe (MRS) Cair, buffer fosfat, buffer asetat, asam

sulfat (H2SO4), fenol 5%, natrium klorida (NaCl), asam asetat (CH3COOH) 0,5M,


(24)

trikloroasetik (TCA), air suling dan kertas saring. Sampel yang digunakan yaitu limbah jerami padi dan susu kambing segar berasal dari Batang Hari, Lampung Timur.

C. Prosedur Penelitian

1. Pembuatan Media dan Pereaksi

a. Pembuatan Larutan Garam Fisiologis (NaCl 0,85%)

Sebanyak 0,85 g NaCl dilarutkan dengan air suling hingga volume 100 ml.

b. Pembuatan Media Inokulum Yeast Maltosa Cair (YM)

Medium YM terdiri dari 4 g ekstrak khamir, 10 g ekstrak malt, 15 g glukosa per 1 liter media, kemudian diautoklaf selama 15 menit pada suhu 121ºC dan tekanan 1 atm.

c. Pembuatan Media de Man, Rogosa, Sharpe (MRS) Cair

Media MRS sebanyak 52 g dilarutkan dalam 1 L air suling yang dipanaskan pada suhu 60°C. Diaduk sampai tercampur, kemudian diautoklaf selama 15 menit pada suhu 121°C dan tekanan 1 atm.

d. Pembuatan Pereaksi DNS

Larutan A: 3 g NaOH; 0,6 g fenol; 3 g DNS dalam 240 mL air suling.

Larutan B: 0,25 g Na-sulfit; 2 g Na-K-tartrat dan 5 mL air suling. Sebanyak 3 mL larutan B ditambahkan pada 240 mL larutan A dan ditambahkan air suling hingga volume 300 mL.


(25)

e. Pembuatan Buffer Fosfat

1) Larutan Stok A (NaH2PO4.H2O 0,2M)

Sebanyak 27,8 g NaH2PO4·H2O dilarutkan dengan air

suling hingga volume 1000 mL.

2) Larutan Stok B (Na2HPO4·2H2O 0,2M)

Sebanyak 35,6 g Na2HPO4.2H2O dilarutkan dengan air

suling hingga volume 1000 mL.

f. Pembuatan Buffer Asetat

1) Larutan Stok A (CH3COOH 0,2M)

Sebanyak 11,36 mL CH3COOH dilarutkan dengan air

suling hingga volume 1000 mL.

2) Larutan Stok B (CH3COONa 0,2M)

Sebanyak 16,4 g CH3COONa dilarutkan dengan air suling

hingga volume 1000 mL.

2. Pembuatan Inokulum

Inokulum isolat Actinomycetes AcP-1 dan Acp-7 dibuat menggunakan

media yeast maltosa cair (YM) dengan komposisi 4 g ekstrak khamir ditambahkan 10 g ekstrak malt dan 15 g glukosa dalam 1 liter media, kemudian disterilkan pada suhu 121ºC dengan tekanan 1 atm selama 15 menit. Kedalam 10 mL media inokulum diinokulasikan 1 ose isolat dan


(26)

3. Fermentasi Jerami Padi

Sebanyak 10 mL inokulum isolat Actinomycetes AcP-1 dan AcP-7 yang

telah ditumbuhkan pada media YM selama 96–120 jam diinokulasikan ke

dalam media fermentasi steril yang berisi 10 g substrat jerami padi hasil

bio-pretreatment dengan ukuran ± 40 mesh, yang telah ditambahkan

dengan 30 mL buffer fosfat pH 7,5 sebagai moisture (pelembab),

kemudian diinkubasi sampai dengan 21 hari (Beg et al., 2000). Kultur

dilakukan dengan menggunakan wadah kaca dengan memperhatikan sisa ruang di atasnya untuk memberikan suasana fakultatif aerobik. Setelah periode fermentasi dilakukan pemanenan dengan cara penambahan 100 mL akuades yang telah disterilkan kemudian diaduk, dan disaring untuk mendapatkan filtrat yang akan digunakan sebagai media pada sintesis EPS.

4. Analisis Gula pada Media Filtrat

Filtrat yang diperoleh dianalisis kandungan gula pereduksi total. Kandungan gula pereduksi diukur menggunakan prosedur DNS (Miller, 1959). Sebanyak 1,5 mL filtrat ditambahkan 1,5 mL pereaksi DNS dan dipanaskan pada 100°C selama 15 menit lalu didinginkan pada suhu

ruang. Larutan hasil reaksi diukur absorbansinya pada λ 540 nm,

menggunakan spektrofotometer. Komponen gula pada filtrat dianalisis dengan menggunakan KCKT dengan kondisi reaksi pengukuran sebagai berikut:

 Kolom : Karbohidrat

 Detektor : Indeks bias


(27)

 Konsentrasi standar : 400 ppm

 Volume injeksi : 10-20 µL

 Temperatur kolom : Suhu ruang

Standar yang digunakan adalah glukosa dan xilosa yang berkualifikasi proanalisa.

5. Seleksi Bakteri Asam Laktat Penghasil EPS

Isolat-isolat bakteri asam laktat diperoleh dari penapisan bakteri asam laktat dari susu kambing segar. Sampel diencerkan dengan seri

pengenceran 100 sampai 10-6 kali lalu sebanyak 100 µL secara aseptis

ditebar ke atas media MRS agar (difco). Media diinkubasi selama 18-24 jam pada suhu 37°C. Koloni yang diperoleh dimurnikan untuk

mendapatkan galur murni. Seleksi dilakukan pada media MRS yang diperkaya dengan susu skim (90 g/L), isolat diambil secara aseptis menggunakan tusuk gigi steril dan ditumbuhkan kepermukaan media. Setelah inkubasi selama 24 jam pada suhu 30°C koloni yang tumbuh diseleksi berdasarkan fenotip yang ditunjukkan. Isolat-isolat yang menunjukkan aktivitas positif menghasilkan EPS secara fenotip tampak

ropy dan mucoid. Isolat-isolat yang menunjukkan aktivitas positif

menghasilkan EPS diinokulasikan ke dalam 10 mL media MRS cair (Kimmel and Robert, 1988) dan diinkubasi secara aerobik selama 24-48 jam pada suhu 37°C. Setelah masa inkubasi sel dipisahkan dengan cara disentrifugasi, 1 mL filratnya ditambahkan 2 mL etanol yang telah

didinginkan (van Geel-schutten et al., 1998). Isolat yang positif


(28)

penambahan etanol dingin pada filtrat. Secara kualitatif EPS yang

terbentuk ditimbang setelah dikeringkan menggunakan freeze drying.

Isolat yang menghasilkan EPS terbanyak akan digunakan untuk memproduksi EPS pada tahap selanjutnya.

6. Optimasi Produksi EPS Skala Laboratorium

Media hasil fermentasi jerami padi oleh Actinomycetes dikarakterisasi

kandungan gula, jenis gula, dan pHnya. Optimasi yang akan dilakukan adalah pengaruh pH awal media dengan memberikan pH awal fermentasi 4,0;4,5;5,0;5,5; 6,0; dan 6,5 yang diatur menggunakan buffer asetat. Sebanyak 100 mL media diinokulasikan dengan 1 mL inokulum bakteri asam laktat (18-24 jam kultur) yang telah dipersiapkan sebelumnya lalu diinkubasi secara aerobik pada suhu 37°C selama 48 jam. Pertumbuhan sel diketahui dengan melakukan sub-sampling setiap 2 jam mulai jam ke 6 inkubasi hingga diperoleh jumlah sel yang mulai menurun (fase kematian). Pertumbuhan sel dilihat menggunakan spektrofotometer dengan mengukur

OD pada λ 610 nm. Hasil yang diperoleh diplotkan ke dalam bentuk grafik untuk mengetahui fase pertumbuhan sel dikaitkan dengan waktu inkubasi. EPS yang dihasilkan selama fermentasi diukur dengan melakukan sub-sampling pada mulai jam ke 12 setiap 4 jam sekali. Sebanyak 2 mL media hasil sub-sampling disentrifugasi lalu filtratnya ditambahkan 4 mL etanol yang telah didinginkan lalu disimpan pada suhu dingin. EPS akan terlihat seperti lapisan gel, kemudian dikeringkan

menggunakan freeze drying. Secara kuntitatif EPS ditimbang lalu hasil


(29)

produksi EPS oleh bakteri asam laktat pada media. Sehingga diperoleh informasi pH optimum.

7. Isolasi dan Pemurnian EPS

Isolasi dan pemurnian EPS mengikuti prosedur yang dilakukan oleh Garicia dan Marshall (1991). Sel bakteri asam laktat dipisahkan dengan cara sentrifugasi, filtrat yang diperoleh ditambahkan 1/3 volume 40% asam trikloroasetik (TCA) untuk mengendapkan protein, lalu

disentrifugasi dengan kecepatan 10.000 rpm selama 20 menit pada suhu

4°C. Supernatan yang diperoleh dipekatkan dengan menggunakan rotary

evaporator, EPS diperoleh dengan menambahkan 3x volume etanol dingin atau aseton dingin dan dibiarkan selama satu malam pada suhu dingin. EPS akan mengendap dan dipisahkan dengan filtratnya lalu dikeringkan

dengan menggunakan freeze drying. Secara kuantitatif berat EPS yang

diperoleh ditimbang untuk mengetahui perolehan rendemen hasil produksi.

8. Karakterisasi EPS

a. Pengukuran Berat Molekul Berdasarkan Metode Viskometri

Viskositas EPS diukur menggunakan viskometer Ostwald. Sebanyak 0,1 g EPS dilarutkan dalam 100 mL asam asetat 0,5M, kemudian diambil sebanyak 5 mL dan dimasukkan ke dalam viskometer Ostwald untuk ditentukan waktu alirnya. Pengukuran dilakukan dengan konsentrasi berbeda dan waktu alir dibaca dengan tiga kali pengulangan (Tarbojevich and Cosani, 1996).

Viskositas relatif : � =

0 ≈ ɳ ɳ0


(30)

Viskositas spesifik : ɳ = ɳ − 1

Viskositas kinematika : ɳ���= × ����

Keterangan:

kkin = koefisien kinematika ostwald (9,671 x 10-3 cSt per detik)

t = waktu alir larutan sampel (detik)

t0 = waktu alir pelarut (detik)

Berat molekul EPS diukur berdasarkan viskositas intrinsik (ɳ).

Data yang diperoleh dipetakan pada grafik ɳsp/C terhadap C.

Viskositas intrinsik adalah titik pada grafik yang menunjukkan nilai C = 0. Berat molekul ditentukan berdasarkan persamaan

Mark-Houwink (Hwang et al., 1997) yaitu:

� =���

Keterangan:

[ɳ] = viskositas intrinsik

k = konstanta pelarut (k = 3,5 × 10-4 mL/g)

α = konstanta (α = 0,76)

M = berat molekul

b. Analisis Kandungan Gula Pereduksi Total

Sebanyak 40,0 mg EPS ditambahkan ke dalam 1 mL air suling

dalam tabung ulir kaca lalu ditambahkan 2 N H2SO4 sampai larut

dan dipanaskan pada suhu 100°C selama 2 jam. Analisis total gula

pereduksi dilakukan menggunakan metode Dubois (Dubois et al.,


(31)

V. SIMPULAN DAN SARAN

A. Simpulan

Dari hasil penelitian yang telah dilakukan, dapat disimpulkan bahwa:

1. Kondisi fermentasi yang optimum untuk EPS adalah dengan menggunakan

media fermentasi yang mengandung larutan sukrosa 5%, dengan waktu inkubasi 48 jam, pada pH 6, dan menghasilkan EPS sebesar 2,51 mg/mL.

2. Karakterisasi EPS yang dihasilkan:

a. Pengukuran viskositas EPS menghasilkan viskositas intrinsik [ɳ] sebesar

2,117 mL/g dan berat molekul EPS yang didapat sebesar 94592,99 g/mol.

b. Pengukuran kandungan gula total dengan metode Dubois, menghasilkan

kadar glukosa 32,64 mg/mL untuk isolat LbK-19.

B. Saran

Berdasarkan hasil penelitian yang telah diperoleh, maka untuk penelitian selanjutnya disarankan untuk mengoptimasikan waktu inkubasi isolat LbK-19 agar mendapatkan waktu yang lebih optimum. Mempelajari lebih lanjut karakterisasi EPS yang dihasilkan secara kimia dan mempelajari tentang kemungkinan pemanfaatan EPS lebih lanjut.


(32)

DAFTAR PUSTAKA

Anindyawati, T. 2010. Potensi selulase dalam mendegradasi lignoselulosa

limbah pertanian untuk pupuk organik. Berita Selulosa. 45:70-77.

Beg, Q.K., M. Kapoor, K. Mahajan, G.S. Hoondal. 2000. Microbial Xylanases

and their industrial applications: a review. Appl. Microbiol. Biothecnol.

56:326-338.

Bradford, Marion M. 1976. A rapid and sensitive method for the quantitation of microgram quantities of protein utilizing the principle of protein-dye

binding. Anal. Biochem. 72:248-254.

Bhaskar, P.V. and N.B. Bhosle. 2005. Microbial extracelluler polymeric

substances in marine biogeochemical process. Current Sci. 88:45-53.

Clark, J. 2007. Kromarografi Cair Kinerja Tinggi (KCKT).

http://www.Chem-is-try.org diakses pada tanggal 04 Maret 2013. 10.07 WIB.

De Vuyst, L., F. De Vin, F. Vaningelgem, and B. Degeest. 2001. Recent developments in the biosynthesis and applications of

heteropolysaccharides from lactic acid bacteria. Int.Dairy J. 11:687-708.

Duboc, P., B. Mollet. 2001. Application of exopolysaccharides in the dairy

industry. Int. Dairy J. 11:759-768.

Dubois, M., K.A. Gilles, J.K. Hamilton, P.A. Rebers, and F. Smith. 1956. Colorimetric method for determination of sugar and related substances.

Anal.Chem. 28:350-356.

Ekawati, I. 2008. Dekomposisi Komponen Lignoselulosa Jerami Padi oleh

Beberapa Isolat Bakteri. J. Natural vol.7.

Ertesvåg, H., S. Valla. 1998. Biosynthesis and applications of alginates. Polym.

Degrad. Stab. 59:85-91.

Fialho, A.M., L.M. Moreira, A.T. Granja, A.O. Popescu, K. Hoffmann, I. Sá-Correia. 2008. Occurence, production, and applications of gellan: current


(33)

Frengova, G.I., E.D. Simova, D.M. Besshkova, and Z.I. Simo. 2002.

Exopolysaccharides prodeced by Lactic acid bacteria of Kefir Grains. Z Naturforsh. 57c:805-810.

Garcia-Garibay, M., M. Marshall. 1991. Polymer production by Lactobacillus

delbrueckii bulgaris.J. Appl. Bacteriol. 70:325-328.

Gritter, R.J., Bobbit J.M., dan Schwarting A.E. 1991. Pengantar Kromatografi. Terbitan kedua. Diterjemahkan oleh Kosasih Padmawinata. Bandung. ITB. Hal 108-109, 160-179.

Gummadi, S.N., K. Kumar. 2005. Production of extracelluler water insoluble β

-1,3-glucan (curdlan) from Bacillus sp. SN07. Biotechnol. Bioprocess Eng.

10:546-551.

Howard, R.L., E. Abotsi, E.L. Jansen van Rensburg, S. Howard. 2003. Lignocellulose biotechnology: issues of bioconversion and enzyme

production. Afr. J. Biotechnol. 2:602-619.

Hwang, J.K., S.P. Hong, and C.T. Kim. 1997. Effect of molecular weight and

NaCl concentration on dilute solution properties of chitosan. J. Food

Sci.Nutr. 2:1-5.

Jin, Y., H. Zhang, Y. Yin, K. Nishinari. 2006. Conformation of curdlan as

observed by tapping mode atomic force microscopy. Colloid Polym. Sci.

284:1371-1377.

Johnson, E. L. and R. Stevenson. 1978 . Basic liquid chromatography. Varian. California

Kimmel, S. A. and R.F.Roberts. 1998. Development of a growth medium suitable

for exopolysaccharide production by Lactobacillus delbrueckii ssp.

bulgaricus RR. Int. J. Food Microbiol. 40:87–92.

Kwon, K.K., H.S. Lee, Jung Sung-Young, J.H. Yim, J.H. Lee, H.K. Lee. 2002. Isolation and identification of biofilm-forming marine bacteria on glass

surfaces in Dae-Ho Dike, korea. The J. of Microbiol. 4:260-266.

Lapasin, R.,and S. Pricl. 1999. Rheology of industrial polysaccharides: Theory and applications. Aspen Publisher: New York. USA. pp.1-118.

Llamas, I., J.A. Mata, R. Tallon, P. Philippe Bressollier, M.C. Urdaci, E. Quesada, V. Béjar. 2010. Characterization of the exopolysaccharide produced by

Salpiger mucosus A3T, a halophilic species belonging to the

Alphaproteobacteria, isolated on the Spanish Mediterranean Seaboard.


(34)

Malik, A., D.M. Ariesanti, A. Nurfactiyani, A. Yanuar. 2008. Skrining gen glukosiltransferase (gtf) dari bakteri asam laktat penghasil

eksopolisakarida. Makara Sains. 12:1-6.

Micheli, L., D. Uccelletti, C. Palleschi, V. Crescenzi. 1999. Isolation and

characterisation of a ropy Lactobacillus strain producing the

exopolysaccharide kefiran. Appl.Environ. Microbiol. 53:69-74.

Miller, G.I. 1959. Dinitrosalicylic assay. Analytical Chemistry. 31:426-428.

Mozzi, F., G. Rollán, G.S. de Giori, and G.F. de Valdez. 2006. Effect of galactose and glucose on the exopolysaccharide production and the

activities of biosynthetic enzymes in Lactobacillus casei CRL87.

J.Appl.Microbiol. 91:160-167.

Moechtar. 1990. Farmasi Fisik. UGM-Press. Yogyakarta.

Noermala, S.R., Purbowatiningrum, R.S., Nies, S.M. 2013. Aktivitas Fusarium

oxysporum dalam Menghidrolisis Eceng Gondok (Eichhornia crassipes) dengan variasi Temperatur. 1: 220-225.

Parthasarathi, S., K. Saravanakuamr, R. Baskaran, T.R. Kubendran. 2011. A volumetric and viscosity study for the binary mixtures of

dimethylsulfoxide with benzen, ethyl benzene, chlorobenzene and bromobenzene at temperatures of (303.15, 308.15 and 313.15) K and a

Pressure of 0,1MPa. Int. J. of Sci. And Technol. Vol. 1. 2:96-101.

Raymond, R. 2009. “Adipic Acid”, Handbook of Pharmaceutical Excipients.

pp.11-12.

Rehm, B. 2009. Microbial exopolisaccharides: Variety and potential

applicatoins. In Microbial production of biopolymers and polymer

precursors: applications and perspectives. Caister Academic: Norfolk, UK. pp. 229-254.

Rohaeti, E., R. Heryanto, M. Rafi, A. Wahyuningrum, dan L.K. Darusman. 2011.

Prediksi kadar flavonoid total tempuyung (Sonchus arvensis L.)

Menggunakan kombinasi spektroskopi IR dengan Regresi kuadrat terkecil

parsial. J. Kimia. 5:101-108.

Ruas-Mediedo, P. And C.G. de Los reyes-Gavilan. 2005. Invited review: methods for the screening, isolation, and characterization of

exopolysaccharides produced by lactic acid bacteria. J. Dairy Sci.

88:843-856.

Satria, H., Nurhasanah, F. Martasih. 2010. Aktivitas selulase isolat

Actinomycetes terpilih pada fermentasi padat jerami padi. Proseeding SATEK III Universitas Lampung.


(35)

Savadogo, A., C.A.T. Outtara, P.W. Savadogo, N. Barro, A.S. Outtara, A.S. Traore. 2004. Identification of exopolysaccharides-producing lactic acid

bacteria from Burkina faso fermented milk samples. Afr. J. Biothecnol.

3:189-194.

Semnojovs, P., J. Jasko, L. Auzina, P. Zikmanis. 2008. The use of

exopolysaccharides-production cultures of lactic acid bacteria to improve

the functional value of fermented food. J. Food Technol. 6:101-109.

Silverstein, R.M., G.C. Basseler, dan T.C. morril. 1986. Penyelidikan

Soektrimerik senyawa organik. Edisi keempat. Alih bahasa. A.J.Hatono dan Purba A.V. Erlangga. Jakarta. Hal: 17-33.

Singha, T.K. 2012. Microbial extracelluler polymeric substances: Production,

Isolation and Applications. IOSR. J of Pharm. 2:276-281.

Snyder, L.R. and J.J. Kirkland. 1979. Introduction to modern liquid

chromatography. Second edition. John Wiley & Sons Inc. New York. Chihester. Briebane. Toronto. Singapore.

Stuart, B. 2004. Infrared Spectroscopy: Fundamentals and Applications. John Willey & Sons. Ltd.

Surekha, K.S., G.B. Arun, A.C. Balu, M.B. Ibrahim, and K.D. Prashant. 2010. Biosurfactants, bioemulsifiers and exopolisaccharides from marine

microorganisms. J. Biotechnol. Adv. 28:436-450.

Suresh and Mody. 2009. Microbiol Exopholysaccharides: Variety and Potential Applications Microbial Production of Biopolymer and Polymer Precursors. Caister Academic Press. USA.

Sutherland, I.W. 2001. Microbial polysaccharides from Gram-negative bacteria.

Int. Dairy J. 11:663-674.

Sutherland, I.W. 1998. Novel and established application of microbial

polysaccharides. Trends Biotechnol. 16:4146.

Tarbojevich, M., & Cosani, A. 1996. Molecular weight determination of chitin

and chitosan. Di dalam Muzarelli RAA & Peter MG (Editor) 1997. Chitin

Handbook. Ancona: European chitin society 85-108.

van Hijum. S.A.F.T., G.H. van Geel-Schuten, H. Rahaouni, M.J.E.C. van der Maarel, and L. Dijkhuizen. 2002. Characterizazion of a novel

fructosiltransferase from Lactobacillus reuteri that synthesizes

high-moleculer-weight inulin and inulin oligosaccharides. Appl. And Env.


(36)

Van Geel-Schutten, G.H., F. Flesch, B. ten Brink, M.R. Smith, and L. Dijkhuizen.

1998. Screening and characterization of Lactobacillus strains producing

large amounts of exopolysaccharides. Appl. Microbiol. Biotechnol.

50:697–703.

Velasco, S., E. Arskold, M. Paese, H. Grage, A. Irastorza, P. Radstrom, E.W.J. van Niel. 2006. Environmental factor influencing growth of and

exopolysaccharide formation by Peddiococcus parvullus 2.6. Int. J. Food

Microb. 111:252-258.

Veronese, F.M., P. Caliceti. In: Meibohm (Editor). 2006. Pharmacokinetics and Pharmacodynamics of Biotech Drugs: Principles and Case Studies in Drus Development. Wiley CH. Weinhem. pp 272-273.

Vu, B, M. Chen, R.J. Crawford, and E.P. Ivanova. 2009. Bacterial extracelluler

polysaccharides involved in biofilm formation. Molecules. 14:2535-2554.

Xu, R., S. Ma, Y. Wang, L. Liu, and P. Li. 2010. Screening, identification and statistic optimatization of a novel exopolysaccharide producing

Lactobacillus paracasei HTC. Afr. J. of Microbiol Research. 4:783-795. Yuksekdag, Z.N. and B. Salim. 2008. Influence of different carbon sources on

exopolysaccharide production by Lactobacillus delbruekii sub sp

bulgaricus (B3, G12) and Streptococcus thermophilus (W22).


(37)

Lampiran 1

Gambar 20. Skema Tahapan Penelitian Fermentasi Substrat Jerami Padi

Sirup Gula Pereduksi

Penapisan Isolat Bakteri Asam Laktat

Isolat Penghasil EPS

Kondisi Fermentasi EPS Optimum Optimasi Fermentasi

EPS, meliputi: 1. Substrat Optimum 2. Prosentase Inokulum 3. Waktu Inkubasi 4. pH Optimum Sirup Gula Pereduksi

EPS Ekstrak Kasar

Fermentasi

EPS Murni

1. Penambahan TCA 2. Sentrifugasi 3. Evaporasi 4. Freeze drying

1. Analisis BM, viskometri 2. Analisis produk gula, Dubois


(38)

Lampiran 2

Susu kambing segar

LbK-1 LbK-4 LbK-7 LbK-18

LbK-19 LbK-20 LbK-22 LbK-23

Gambar 21. Sampel Susu Kambing Segar dan Isolat Bakteri Asam Laktat 10-2

(Metode Spread)

10-3


(39)

Lampiran 3

Tabel 5. Hasil Pengukuran Berat EPS yang dihasilkan

No. Nama Isolat

Berat EPS (mg/mL)

MRS + Larutan sukrosa Media

Fermentasi

2% 5%

1 LbK-1 1,70 2,13 2,54

2 LbK-4 2,00 2,43 3,70

3 LbK-7 1,37 1,90 3,44

4 LbK-18 1,73 2,67 3,28

5 LbK-19 2,03 2,50 4,20

6 LbK-20 1,93 2,06 3,44

7 LbK-22 1,93 2,70 4,04


(40)

Lampiran 4

Tabel 6. Optimasi pH Awal Media MRS Broth (Larutan Sukrosa 5%)

No. Kode pH berat EPS (mg/mL)

1 4,0 0,853

2 4,5 1,835

3 5,0 2,531

4 5,5 2,416

5 6,0 2,607

6 6,5 2,312

Tabel 7. Optimasi Waktu Inkubasi Bakteri Isolat LbK-19

No Jam ke - OD (λ 610 nm)

1 0 0,6805

2 8 0,7833

3 16 2,4561

4 24 4,1434

5 32 4,1583

6 40 4,1643

7 48 4,1797

8 56 4,1651

9 64 3,9871


(41)

Lampiran 5

Tabel 8. Uji Viskositas dan Penentuan Bobot Molekul Eksopolisakarida (EPS) Konsentrasi EPS dalam asam asetat 0,5 M (%, b/v) Waktu alir (detik) Rerata waktu (detik) Viskositas spesifik Viskositas

kinematika ln

ɳ

0 1,86 1,88 0 0 0

1,9 1,88

0,05 2,21 2,16 0,147 0,021 1,080

2,15 2,11

0,1 2,7 2,91 0,548 0,028 1,701

2,91 3,12

0,15 3,91 4,07 1,167 0,039 2,051

4,08 4,23

0,2 5,85 5,86 2,115 0,057 2,359

5,87 5,85

Dari perhitungan di atas,dibuat kurva hubungan antara ɳsp/c dengan c sehingga

diperoleh persamaan: lnɳ� = [ɳ]+ [ɳ]

y a b x

Viskositas intrinsik : [ɳ]= (ɳ� ⁄ ) =

Bobot molekul EPS dihitung menggunakan persamaan Mark-Houwink: ɳ = �

Dengan = , × −4 /


(42)

Dengan menggunakan model regresi linier diperoleh persamaan:

lnɳ� = [ɳ]+ [ɳ] sama dengan y = 8,375x + 0,750

untuk rumus ɳ = � , maka 0,750 = 3,5 x 10-4 M0,76

sehingga diperoleh M = 94592,99 g/mol.

y = 8.3753x + 0.7506 R² = 0.9699

ln ns

p/c

Konsentrasi


(43)

Lampiran 6

Tabel 9. Penentuan Kurva Standar Glukosa Konsentrasi Glukosa

(mg/mL) Absorbansi

0 0

0,1 0,1691

0,2 0,3703

0,3 0,4573

0,4 0,5554

0,5 0,7176

x 0,4837

y = 1.3811x + 0.033 R² = 0.9827

Ab

so

rbans

i

Konsentrasi Glukosa (mg/mL)


(44)

Persamaan kurva standar:

= + Dimana;

a = 0,033 b = 1,381

Absorbansi sampel (y) = 0,4837

Sehingga,

= , + ,

, = , + ,

= , , − , = ,

Karena sampel awal di lakukan pengenceran 100 kali, maka:

= , ×

= , × = , /


(1)

Lampiran 3

Tabel 5. Hasil Pengukuran Berat EPS yang dihasilkan

No. Nama Isolat

Berat EPS (mg/mL)

MRS + Larutan sukrosa Media Fermentasi

2% 5%

1 LbK-1 1,70 2,13 2,54

2 LbK-4 2,00 2,43 3,70

3 LbK-7 1,37 1,90 3,44

4 LbK-18 1,73 2,67 3,28

5 LbK-19 2,03 2,50 4,20

6 LbK-20 1,93 2,06 3,44

7 LbK-22 1,93 2,70 4,04


(2)

Tabel 6. Optimasi pH Awal Media MRS Broth (Larutan Sukrosa 5%)

No. Kode pH berat EPS (mg/mL)

1 4,0 0,853

2 4,5 1,835

3 5,0 2,531

4 5,5 2,416

5 6,0 2,607

6 6,5 2,312

Tabel 7. Optimasi Waktu Inkubasi Bakteri Isolat LbK-19 No Jam ke - OD (λ 610 nm)

1 0 0,6805

2 8 0,7833

3 16 2,4561

4 24 4,1434

5 32 4,1583

6 40 4,1643

7 48 4,1797

8 56 4,1651

9 64 3,9871


(3)

Lampiran 5

Tabel 8. Uji Viskositas dan Penentuan Bobot Molekul Eksopolisakarida (EPS) Konsentrasi EPS dalam asam asetat 0,5 M (%, b/v) Waktu alir (detik) Rerata waktu (detik) Viskositas spesifik Viskositas kinematika ln

ɳ

0 1,86 1,88 0 0 0

1,9 1,88

0,05 2,21 2,16 0,147 0,021 1,080

2,15 2,11

0,1 2,7 2,91 0,548 0,028 1,701

2,91 3,12

0,15 3,91 4,07 1,167 0,039 2,051

4,08 4,23

0,2 5,85 5,86 2,115 0,057 2,359

5,87 5,85

Dari perhitungan di atas,dibuat kurva hubungan antara ɳsp/c dengan c sehingga diperoleh persamaan:

lnɳ� = [ɳ]+ [ɳ]

y a b x

Viskositas intrinsik : [ɳ]= (ɳ� ⁄ )

=

Bobot molekul EPS dihitung menggunakan persamaan Mark-Houwink:

ɳ = �

Dengan = , × −4 / � = ,


(4)

Dengan menggunakan model regresi linier diperoleh persamaan: lnɳ� = [ɳ]+ [ɳ] sama dengan y = 8,375x + 0,750

untuk rumus ɳ = � , maka 0,750 = 3,5 x 10-4 M0,76 sehingga diperoleh M = 94592,99 g/mol.

y = 8.3753x + 0.7506 R² = 0.9699

ln ns

p/c

Konsentrasi


(5)

Lampiran 6

Tabel 9. Penentuan Kurva Standar Glukosa Konsentrasi Glukosa

(mg/mL) Absorbansi

0 0

0,1 0,1691

0,2 0,3703

0,3 0,4573

0,4 0,5554

0,5 0,7176

x 0,4837

y = 1.3811x + 0.033 R² = 0.9827

Ab

so

rbans

i

Konsentrasi Glukosa (mg/mL)


(6)

= + Dimana;

a = 0,033 b = 1,381

Absorbansi sampel (y) = 0,4837

Sehingga,

= , + ,

, = , + ,

= , , − ,

= ,

Karena sampel awal di lakukan pengenceran 100 kali, maka:

= , ×

= , × = , /