Pengujian Sediaan Gel Ekstrak Etanol Daun Kelapa Sawit(Elaeis guineensis Jacq.) Sebagai Obat Luka Bakar
(2)
Lampiran 2. Gambar tumbuhan dan daun segar kelapa sawit
Tumbuhan kelapa sawit
(3)
Lampiran 3. Simplisia daun kelapa sawit
Simplisia daun kelapa sawit
(4)
Lampiran 4. Bagan penelitian
1. Bagan pembuatan ekstrak etanol daun kelapa sawit (EEDKS)
Daun kelapa sawit
Simplisia
Simplisia serbuk
Ampas Maserat I
Ekstrak kental
Ekstrak kental Maserat II
Ampas
Dicuci sampai bersih Ditiriskan dan dirajang
Ditimbang
Dikeringkan di dalam lemari pengering
Dihaluskan
Dimaserasi dengan etanol 80% selama 5 hari
Diremaserasi 2 hari
Di rotary evaporator
(5)
Lampiran 4. (Lanjutan)
2. Bagan pembuatan sediaan gel EEDKS
EEDKS HPMC
Dilarutkan dengan beberapa tetes etanol sampai larut
Didispersikan secara merata ke dalam lumpang panas yang telah berisi air panas dan tunggu sampai
mengental.
Ditambahkan metil paraben dan propil paraben yang dilarutkan dalam propilen glikol dan ditambahkan sisa akuades
Digerus perlahan hinga homogen
Dasar gel
Sediaan gel EEDKS
(6)
Lampiran 5. Perhitungan hasil karakterisasi serbuk simplisia dan EEDKS
1. Perhitungan penetapan kadar air simplisia
No Berat sampel (g) Volume awal (ml) Volume akhir (ml)
Simplisia Ekstrak Simplisia Ekstrak Simplisia Ekstrak
1 5,0000 5,0000 2,2 2,0 1,8 1,8
2 5,0400 5,0200 2,5 2,1 2,2 2,0
3 5,0200 5,0320 2,8 2,2 2,5 2,1
% Kadar air =
x 100% Kadar air simplisia
% Kadar air =
x 100% = 8,00% % Kadar air =
x 100% = 5,95% % Kadar air =
x 100% = 5,98%
% Kadar air rata-rata = = 6,64% Kadar air ekstrak
% Kadar air =
x 100% = 4,00% % Kadar air =
x 100% = 1,99% % Kadar air =
x 100% = 1,98%
(7)
Lampiran 5. (Lanjutan)
II. Perhitungan penetapan kadar sari yang larut dalam air
No
Berat sampel (g) Berat sari air (g)
Simplisia Ekstrak Simplisia Ekstrak
1 5,0153 5,0000 0,1230 0,2000
2 5,0260 5,0200 0,1450 0,1890
3 5,0243 5,0020 0,1386 0,1998
% Kadar sari yang larut dalam air
=
x
x 100%
Kadar sari simplisia
Kadar sari larut dalam air
=
x
x 100% = 12,26% Kadar sari larut dalam air
=
x
x 100% = 14,42% Kadar sari larut dalam air
=
x
x 100% = 13,79%
% Kadar sari larut dalam air rata-rata =
=
13,49%Kadar sari ekstrak
Kadar sari larut dalam air
=
x
x 100% = 20,00% Kadar sari larut dalam air
=
x
x 100% = 18,82% Kadar sari larut dalam air
=
x
x 100% = 19,90%
(8)
Lampiran 5. (Lanjutan)
III. Perhitungan penetapan kadar sari yang larut dalam etanol
No Berat sampel (g) Berat sari etanol (g)
Simplisia Ekstrak Simplisia Ekstrak
1 5,0030 5,0210 0,1650 0,5000
2 5,0035 5,0052 0,1710 0,4001
3 5,0050 5,0130 0,1740 0,4200
% Kadar sari yang larut dalam etanol
=
x
x 100%
Kadar sari simplisia
Kadar sari larut dalam etanol
=
x
x 100% = 16,49% Kadar sari larut dalam etanol
=
x
x 100% = 17,08% Kadar sari larut dalam etanol
=
x
x 100% = 17,38%
% Kadar sari larut dalam etanol rata-rata =
=
16,98%Kadar sari ekstrak
Kadar sari larut dalam etanol
=
x
x 100% = 49,79% Kadar sari larut dalam etanol
=
x
x 100% = 39,96% Kadar sari larut dalam etanol
=
x
x 100% = 41,89%
(9)
Lampiran 5. (Lanjutan)
IV. Perhitungan penetapan kadar abu total
No Berat sampel (g) Berat abu (g)
Simplisia Ekstrak Simplisia Ekstrak
1 2,0002 2,0005 0,0748 0,0450
2 2,0004 2,0003 0,0751 0,0500
3 2,0006 2,0002 0,0758 0,0515
% Kadar abu total
=
x 100%
Kadar abu total simplisia
Kadar abu total
=
x 100% = 3,73% Kadar abu total
=
x 100% = 3,75% Kadar abu total
=
x 100% = 3,78%
% Kadar abu total rata-rata =
=
3,75%Kadar abu total ekstrak
Kadar abu total
=
x 100% = 2,24% Kadar abu total
=
x 100% = 2,49% Kadar abu total
=
x 100% = 2,57%
(10)
Lampiran 5. (Lanjutan)
V. Perhitungan penetapan kadar abu yang tidak larut dalam asam
No Berat sampel (g) Berat abu tidak larut asam (g)
Simplisia Ekstrak Simplisia Ekstrak
1 2,0002 2,0002 0,0140 0,0065
2 2,0004 2,0003 0,0160 0,0041
3 2,0006 2,0002 0,0174 0,0045
% Kadar abu tidak larut asam
=
x 100%
Kadar abu simplisia
Kadar abu tidak larut asam
=
x 100% = 0,69% Kadar abu tidak larut asam
=
x 100% = 0,79% Kadar abu tidak larut asam
=
x 100% = 0,86%
% Kadar abu tidak larut asam rata-rata =
=
0,78% Kadar abu ekstrakKadar abu tidak larut asam
=
x 100% = 0,32% Kadar abu tidak larut asam
=
x 100% = 0,20% Kadar abu tidak larut asam
=
x 100% = 0,22%
(11)
A B C D
Lampiran 6. Sediaan gel dengan variasi konsentrasi EEDKSKeterangan : A : Gel EEDKS 7,5% B : Gel EEDKS 5% C : Gel EEDKS 2,5% D : Gel tanpa EEDKS
(12)
F1
F2
F4
F3
Lampiran 7. Gambar homogenitas sediaan gel EEDKS
Keterangan : F1: Basis gel, F2: Gel EEDKS 2,5%, F3: Gel EEDKS 5%, F4: Gel EEDKS 7,5%
(13)
Lampiran 8. Contoh perhitungan viskositas sediaan gel EEDKS
Perhitungan viskositas = faktor koreksi x skala = cp
Nomor spindel : 64
Nomor speed : 30
Faktor koreksi : 200
1. F1 : 200 x 17.5 = 3500cp
2. F2 : 200 x 16,0 = 3200cp
3. F3 : 200 x 15,0 = 3000cp
4. F4 : 200 x 14,0 = 2800cp
Keterangan : F: Formula, 1: gel tanpa EEDKS, 2: gel EEDKS 2,5%, 3: gel EEDKS 5%, 4: gel EEDKS 7,5%
(14)
(15)
Lampiran 10. Gambar alat-alat yang digunakan
pH meter Viskometer brookfield
(16)
Lampiran 11. Data pengukuran diameter luka bakar sediaan gel EEDKS hari ke-0 sampai
hari ke-25
Hari Ke-
Diameter Luka (cm)
K1 K2 K3 K4 K5 K6
0 2,20±0,00 2,20±0,00 2,20±0,00 2,20±0,00 2,20±0,00 2,20±0,00 1 2,15±0,00 2,17±0,00 2,17±0,00 2,16±0,01 2,17±0,00 2,16±0,01 2 1,95±0,00 2,07±0,00 2,12±0,03 2,06±0,01 2,04±0,03 1,97±0,00 3 1,84±0,03 2,01±0,01 2,07±0,00 1,91±0,01 1,87±0,02 1,82±0,00 4 1,70±0,00 1,86±0,01 1,91±0,01 1,85±0,02 1,74±0,02 1,63±0,04 5 1,62±0,04 1,72±0,00 1,80±0,00 1,75±0,00 1,63±0,01 1,54±0,02 6 1,51±0,01 1,70±0,00 1,73±0,02 1,63±0,01 1,59±0,03 1,34±0,02 7 1,46±0,01 1,66±0,01 1,71±0,01 1,61±0,01 1,54±0,02 1,32±0,02 8 1,41±0,01 1,64±0,02 1,68±0,02 1,54±0,02 1,48±0,02 1,27±0,00 9 1,24±0,01 1,59±0,02 1,63±0,02 1,48±0,03 1,39±0,04 1,13±0,03 10 1,19±0,01 1,56±0,03 1,59±0,02 1,44±0,02 1,28±0,04 1,04±0,04 11 1,12±0,00 1,50±0.01 1,56±0,01 1,36±0,01 1,19±0,02 0,92±0,02 12 1,00±0,02 1,46±0,02 1,51±0,04 1,24±0,01 1,08±0,03 0,85±0,00 13 0,93±0,02 1,39±0,03 1,46±0,01 1,15±0,00 0,99±0,01 0,77±0,02 14 0,83±0,02 1,30±0,02 1,37±0,01 1,04±0,01 0,86±0,04 0,62±0,02 15 0,60±0,00 1,21±0,01 1,24±0,02 0,84±0,01 0,74±0,01 0,45±0,02 16 0,41±0,01 1,09±0,02 1,12±0,02 0,71±0,01 0,62±0,00 0,23±0,03 17 0,17±0,00 0,98±0,01 1,01±0,01 0,54±0,01 0,45±0,00 0,11±0,01 18 0,00±0,00 0,86±0,01 0,92±0,03 0,43±0,02 0,31±0,01 0,00±0,00 19 0,00±0,00 0,73±0,01 0,81±0,01 0,29±0,01 0,17±0,00 0,00±0,00 20 0,00±0,00 0,59±0,01 0,71±0,01 0,16±0,01 0,00±0,00 0,00±0,00 21 0,00±0,00 0,43±0,01 0,59±0,02 0,00±0,00 0,00±0,00 0,00±0,00 22 0,00±0,00 0,31±0,01 0,43±0,04 0,00±0,00 0,00±0,00 0,00±0,00 23 0,00±0,00 0,16±0,01 0,31±0,01 0,00±0,00 0,00±0,00 0,00±0,00 24 0,00±0,00 0,00±0,00 0,15±0,00 0,00±0,00 0,00±0,00 0,00±0,00 25 0,00±0,00 0,00±0,00 0,00±0,00 0,00±0,00 0,00±0,00 0,00±0,00
(17)
Lampiran 12. Gambar penyembuhan luka bakar setelah pemberian sediaan gel
EEDKS
1. Kontrol positif (bioplacenton)
Hari 0 Hari 1 Hari 2 Hari 3
Hari 4 Hari 5 Hari 6 Hari 7
Hari 8 Hari 9 Hari 10 Hari 11
(18)
Hari 16 Hari 17 Hari 18
Lampiran 12. (Lanjutan)
2. Kontrol negatif (basis gel)
Hari 0 Hari 1 Hari 2 Hari 3
Hari 4 Hari 5 Hari 6 Hari 7
(19)
Hari 12 Hari 13 Hari 14 Hari 15
Hari 16 Hari 17 Hari 18 Hari 19
Lampiran 12. (Lanjutan)
Hari 20 Hari 21 Hari 22 Hari 23
(20)
3. Gel EEDKS 2,5%
Hari 0 Hari 1 Hari 2 Hari 3
Hari 4 Hari 5 Hari 6 Hari 7
Hari 8 Hari 9 Hari 10 Hari 11
Lampiran 12. (Lanjutan)
Hari 12 Hari 13 Hari 14 Hari 15
(21)
Hari 16 Hari 17 Hari 18 Hari 19
Hari 20 Hari 21
4. Gel EEDKS 5%
Hari 0 Hari 1 Hari 2 Hari 3
(22)
Lampiran 12. (Lanjutan)
Hari 8 Hari 9 Hari 10 Hari 11
Hari 12 Hari 13 Hari 14 Hari 15
Hari 16 Hari 17 Hari 18 Hari 19
(23)
4. Gel EEDKS 7,5%
Hari 0 Hari 1 Hari 2 Hari 3
Lampiran 12. (Lanjutan)
Hari 4 Hari 5 Hari 6 Hari 7
Hari 8 Hari 9 Hari 10 Hari 11
(24)
Hari 16 Hari 17 Hari 18
6. Tanpa perlakuan
Hari 0 Hari 1 Hari 2 Hari 3
Lampiran 12. (Lanjutan)
(25)
Hari 8 Hari 9 Hari 10 Hari 11
Hari 12 Hari 13 Hari 14 Hari 15
Hari 16 Hari 17 Hari 18 Hari 19
Hari 20 Hari 21 Hari 22 Hari 23
(26)
(27)
Lampiran 13. Hasil uji variansi (ANAVA) terhadap diameter luka bakar menggunakan
sediaan EEDKS
ANOVA
Sum of Squares df Mean Square F Sig.
H0 Between Groups .000 5 .000 . .
Within Groups .000 12 .000
Total .000 17
H1 Between Groups .004 5 .001 9.412 .001
Within Groups .001 12 .000
Total .006 17
H2 Between Groups .057 5 .011 35.490 .000
Within Groups .004 12 .000
Total .061 17
H3 Between Groups .147 5 .029 114.874 .000
Within Groups .003 12 .000
Total .150 17
H4 Between Groups .177 5 .035 75.106 .000
Within Groups .006 12 .000
Total .183 17
H5 Between Groups .115 5 .023 45.046 .000
Within Groups .006 12 .001
Total .121 17
H6 Between Groups .298 5 .060 162.327 .000
Within Groups .004 12 .000
Total .302 17
H7 Between Groups .298 5 .060 198.967 .000
Within Groups .004 12 .000
Total .302 17
H8 Between Groups .348 5 .070 250.772 .000
Within Groups .003 12 .000
Total .352 17
H9 Between Groups .572 5 .114 177.510 .000
(28)
Total .580 17
H10 Between Groups .694 5 .139 193.730 .000
Within Groups .009 12 .001
Total .703 17
H11 Between Groups .880 5 .176 442.854 .000
Within Groups .005 12 .000
Total .884 17
H12 Between Groups 1.018 5 .204 327.186 .000
Within Groups .007 12 .001
Total
1.025 17
H13 Between Groups 1.071 5 .214 470.363 .000
Within Groups .005 12 .000
Total 1.077 17
H14 Between Groups 1.252 5 .250 321.819 .000
Within Groups .009 12 .001
Total
1.261 17
H15 Between Groups 1.550 5 .310 416.312 .000
Within Groups .003 12 .000
Total 1.553 17
H16 Between Groups 1.917 5 .383 896.117 .000
Within Groups .005 12 .000
Total 1.922 17
H17 Between Groups 2.234 5 .447 309.33 .000
Within Groups .002 12 .000
Total 2.235 17
H18 Between Groups 2.422 5 .484 307.63 .000
Within Groups .003 12 .000
Total 2.425 17
H19 Between Groups .912 3 .304 165.93 .000
Within Groups .001 8 .000
(29)
H20 Between Groups 1.038 3 .346 244.13 .000
Within Groups .001 8 .000
Total 1.039 11
H21 Between Groups .559 2 .279 396.3 .000
Within Groups .001 6 .000
Total .560 8
H22 Between Groups .020 1 .020 28.488 .006
Within Groups .003 4 .001
Total .023 5
H23 Between Groups .031 1 .031 231.125 .000
Within Groups .001 4 .000
Total .031 5
H24 Between Groups .034 1 .034 .031 .
Within Groups .000 4 .000 .000
Total .034 5
H25 Between Groups .000 1 .034 . .
Within Groups .000 4 .000
Total .000 5
H24 Between Groups .034 1 .034 . .
Within Groups .000 4 .000
(30)
Lampiran 14. Hasil uji Tukey terhadap perubahan diameter luka bakar dengan
menggunakan ekstrak etanol daun kelapa sawit
H1
Tukey HSD
Perlakuan N
Subset for alpha = 0.05
1 2 3
Bioplacenton (Kontrol positif) 3 2.1500
Gel EEDKS 2,5% 3 2.1633 2.1633
Gel EEDKS 7,5% 3 2.1633 2.1633
Gel EEDKS 5% 3 2.1700 2.1700
Basis gel (Kontrol negatif) 3 2.1800 2.1800
Tanpa perlakuan 3 2.2000
Sig. .192 .348 .192
Means for groups in homogeneous subsets are displayed.
H2
Tukey HSD
(31)
1 2 3
Bioplacenton (Kontrol positif) 3 1.9567
Gel EEDKS 7,5% 3 1.9700
Gel EEDKS 5% 3 2.0367
Gel EEDKS 2,5% 3 2.0633
Basis gel (Kontrol negatif) 3 2.0700 2.0700
Tanpa perlakuan 3 2.1167
Sig. .937 .275 .067
Means for groups in homogeneous subsets are displayed.
Lampiran 14. (Lanjutan)
H3
Tukey HSD
Perlakuan N
Subset for alpha = 0.05
1 2 3 4 5
Gel EEDKS 7,5% 3 1.8200
Bioplacenton (Kontrol positif) 3 1.8467 1.8467
Gel EEDKS 5% 3 1.8733 1.8733
Gel EEDKS 2,5% 3 1.9067
(32)
Tanpa perlakuan 3 2.0700
Sig. .375 .375 .183 1.000 1.000
Means for groups in homogeneous subsets are displayed.
H4
Tukey HSD
Perlakuan N
Subset for alpha = 0.05
1 2 3 4
Gel EEDKS 7,5% 3 1.6300
Bioplacenton (Kontrol positif) 3 1.7000
Gel EEDKS 5% 3 1.7467
Gel EEDKS 2,5% 3 1.8467
Basis gel (Kontrol negatif) 3 1.8633 1.8633
Tanpa perlakuan 3 1.9133
Sig. 1.000 .163 .928 .121
(33)
Lampiran 14. (Lanjutan)
H5
Tukey HSD
Perlakuan N
Subset for alpha = 0.05
1 2 3 4
Gel EEDKS 7,5% 3 1.5467
Bioplacenton (Kontrol positif) 3 1.6233
Gel EEDKS 5% 3 1.6300
Gel EEDKS 2,5% 3 1.6500
Basis gel (Kontrol negatif) 3 1.7200
Tanpa perlakuan 3 1.8000
Sig. 1.000 .702 1.000 1.000
Means for groups in homogeneous subsets are displayed.
H6
Tukey HSD
(34)
1 2 3 4
Gel EEDKS 7,5% 3 1.3467
Bioplacenton (Kontrol positif) 3 1.5067
Gel EEDKS 5% 3 1.5867
Gel EEDKS 2,5% 3 1.6300
Basis gel (Kontrol negatif) 3 1.7000
Tanpa perlakuan 3 1.7300
Sig. 1.000 1.000 .131 .436
Means for groups in homogeneous subsets are displayed.
Lampiran 14. (Lanjutan)
H7
Tukey HSD
Perlakuan N
Subset for alpha = 0.05
1 2 3 4 5
Gel EEDKS 7,5% 3 1.3233
Bioplacenton (Kontrol positif) 3 1.4633
Gel EEDKS 5% 3 1.5467
(35)
Basis gel (Kontrol negatif) 3 1.6633
Tanpa perlakuan 3 1.7067
Sig. 1.000 1.000 1.000 1.000 .082
Means for groups in homogeneous subsets are displayed.
H8
Tukey HSD
Perlakuan N
Subset for alpha = 0.05
1 2 3 4 5
Gel EEDKS 7,5% 3 1.2700
Bioplacenton (Kontrol positif) 3 1.4067
Gel EEDKS 5% 3 1.4800
Gel EEDKS 2,5% 3 1.5467
Basis gel (Kontrol negatif) 3 1.6400
Tanpa perlakuan 3 1.6800
Sig. 1.000 1.000 1.000 1.000 .100
(36)
Lampiran 14. (Lanjutan)
H9
Tukey HSD
Perlakuan N
Subset for alpha = 0.05
1 2 3 4 5
Gel EEDKS 7,5% 3 1.1367
Bioplacenton (Kontrol positif) 3 1.2400
Gel EEDKS 5% 3 1.3900
Gel EEDKS 2,5% 3 1.4867
Basis gel (Kontrol negatif) 3 1.5900
Tanpa perlakuan 3 1.6300
Sig. 1.000 1.000 1.000 1.000 .431
Means for groups in homogeneous subsets are displayed.
(37)
Tukey HSD
Perlakuan N
Subset for alpha = 0.05
1 2 3 4 5
Gel EEDKS 7,5% 3 1.0467
Bioplacenton (Kontrol positif) 3 1.1900
Gel EEDKS 5% 3 1.2767
Gel EEDKS 2,5% 3 1.4400
Basis gel (Kontrol negatif) 3 1.5567
Tanpa perlakuan 3 1.5900
Sig. 1.000 1.000 1.000 1.000 .657
Means for groups in homogeneous subsets are displayed.
Lampiran 14. (Lanjutan)
H11
Tukey HSD
Perlakuan N
Subset for alpha = 0.05
1 2 3 4 5
Gel EEDKS 7,5% 3 .9233
Bioplacenton (Kontrol positif) 3 1.1200
(38)
Gel EEDKS 2,5% 3 1.3633
Basis gel (Kontrol negatif) 3 1.5037
Tanpa perlakuan 3 1.5567
Sig. 1.000 1.000 1.000 1.000 .059
Means for groups in homogeneous subsets are displayed.
H12
Tukey HSD
Perlakuan N
Subset for alpha = 0.05
1 2 3 4 5
Gel EEDKS 7,5% 3 .8500
Bioplacenton (Kontrol positif) 3 1.0033
Gel EEDKS 5% 3 1.0833
Gel EEDKS 2,5% 3 1.2400
Basis gel (Kontrol negatif) 3 1.4633
Tanpa perlakuan 3 1.5067
Sig. 1.000 1.000 1.000 1.000 .336
(39)
Lampiran 14. (Lanjutan)
H13
Tukey HSD
Perlakuan N
Subset for alpha = 0.05
1 2 3 4 5
Gel EEDKS 7,5% 3 .7733
Bioplacenton (Kontrol positif) 3 .9333
Gel EEDKS 5% 3 .9900
Gel EEDKS 2,5% 3 1.1500
Basis gel (Kontrol negatif) 3 1.3867
Tanpa perlakuan 3 1.4567
Sig. 1.000 .060 1.000 1.000 1.000
Means for groups in homogeneous subsets are displayed.
(40)
Tukey HSD
Perlakuan N
Subset for alpha = 0.05
1 2 3 4 5
Gel EEDKS 7,5% 3 .6233
Bioplacenton (Kontrol positif) 3 .8333
Gel EEDKS 5% 3 .8633
Gel EEDKS 2,5% 3 1.0400
Basis gel (Kontrol negatif) 3 1.2967
Tanpa perlakuan 3 1.3733
Sig. 1.000 .771 1.000 1.000 1.000
Means for groups in homogeneous subsets are displayed.
Lampiran 14. (Lanjutan)
H15
Tukey HSD
Perlakuan N
Subset for alpha = 0.05
1 2 3 4 5
Gel EEDKS 7,5% 3 .4467
(41)
Gel EEDKS 5% 3 .7400
Gel EEDKS 2,5% 3 .8400
Basis gel (Kontrol negatif) 3 1.2067
Tanpa perlakuan 3 1.2400
Sig. 1.000 1.000 1.000 1.000 .214
Means for groups in homogeneous subsets are displayed.
H16
Tukey HSD
Perlakuan N
Subset for alpha = 0.05
1 2 3 4 5
Gel EEDKS 7,5% 3 .2333
Bioplacenton (Kontrol positif) 3 .4067
Gel EEDKS 5% 3 .6200
Gel EEDKS 2,5% 3 .7067
Basis gel (Kontrol negatif) 3 1.0867
(42)
Sig. 1.000 1.000 1.000 1.000 .317
Means for groups in homogeneous subsets are displayed.
Lampiran 14. (Lanjutan)
H17
Tukey HSD
Perlakuan N
Subset for alpha = 0.05
1 2 3 4
Gel EEDKS 7,5% 3 .1133
Bioplacenton (Kontrol positif) 3 .1700
Gel EEDKS 5% 3 .4500
Gel EEDKS 2,5% 3 .5400
Basis gel (Kontrol negatif) 3 .8667
Tanpa perlakuan 3 1.0067
Sig. .704 .269 1.000 1.000
(43)
H18
Tukey HSD
Perlakuan N
Subset for alpha = 0.05
1 2 3 4 5
Bioplacenton (Kontrol positif) 3 .0000
Gel EEDKS 7,5% 3 .0000
Gel EEDKS 5% 3 .3133
Gel EEDKS 2,5% 3 .4300
Basis gel (Kontrol negatif) 3 .8633
Tanpa perlakuan 3 .9167
Sig. 1.000 1.000 1.000 1.000 1.000
Means for groups in homogeneous subsets are displayed.
Lampiran 14. (Lanjutan)
H19
Tukey HSD
Perlakuan N
Subset for alpha = 0.05
1 2 3 4 5
(44)
Gel EEDKS 7,5% 3 .0000
Gel EEDKS 5% 3 .1700
Gel EEDKS 2,5% 3 .2900
Basis gel (Kontrol negatif) 3 .7300
Tanpa perlakuan 3 .8133
Sig. 1.000 1.000 1.000 1.000 1.000
Means for groups in homogeneous subsets are displayed.
H20
Tukey HSD
Perlakuan N
Subset for alpha = 0.05
1 2 3 4
Bioplacenton (Kontrol positif) 3 .0000
Gel EEDKS 5% 3 .0000
Gel EEDKS 7,5% 3 .0000
Gel EEDKS 2,5% 3 .1633
(45)
Tanpa perlakuan 3 .7133
Sig. 1.000 1.000 1.000 1.000
Means for groups in homogeneous subsets are displayed.
Lampiran 14. (Lanjutan)
H21
Tukey HSD
Perlakuan N
Subset for alpha = 0.05
1 2 3
Bioplacenton (Kontrol positif) 3 .0000
Gel EEDKS 2,5% 3 .0000
Gel EEDKS 5% 3 .0000
Gel EEDKS 7,5% 3 .0000
Basis gel (Kontrol negatif) 3 .4300
Tanpa perlakuan 3 .5900
Sig. 1.000 1.000 1.000
(46)
H22
Tukey HSD
Perlakuan N
Subset for alpha = 0.05
1 2 3
Bioplacenton (Kontrol positif) 3 .0000
Gel EEDKS 2,5% 3 .0000
Gel EEDKS 5% 3 .0000
Gel EEDKS 7,5% 3 .0000
Basis gel (Kontrol negatif) 3 .3133
Tanpa perlakuan 3 .4300
Sig. 1.000 1.000 1.000
Means for groups in homogeneous subsets are displayed.
Lampiran 14. (Lanjutan)
H23
Tukey HSD
Perlakuan N
Subset for alpha = 0.05
(47)
Bioplacenton (Kontrol positif) 3 .0000
Gel EEDKS 2,5% 3 .0000
Gel EEDKS 5% 3 .0000
Gel EEDKS 7,5% 3 .0000
Basis gel (Kontrol negatif) 3 .1633
Tanpa perlakuan 3 .3067
Sig. 1.000 1.000 1.000
(48)
DAFTAR PUSTAKA
Abdassah, M., Rusdiana, T., Subghan, A., Hidayati, G. (2009). Formulasi Gel Pengelupas Kulit Mati yang Mengandung Etil Vitamin C dalam Sistem Penghantaran Macrobead. Jurnal Ilmu Kefarmasian Indonesia. 107.
Adlin, L. (2008). Kelapa Sawit (Elaeis guineensis Jacq.) di Indonesia. Edisi 2. Medan: Pusat Penelitian Kelapa Sawit. Halaman 24-25.
Ansel, C.H. (1989). Penghantar Bentuk Sediaan Farmasi. Edisi Keempat. Jakarta: UI Press. Halaman 390, 489.
Arisanty, L. P. (2013). Konsep Dasar Manajemen Perawatan Luka. Jakarta: Penerbit Buku Kedokteran EGC. Halaman 1-7, 29.
Aulton, M.E. (2007). Aulton’s Pharmaceutics. The Design and Manufactures of
Medicine. Third Edition. New York. Churcill Livingstone Elsevier. Halaman
70-72.
Balick, M.A. (1996). Plant, People and Culture: The Science Of Ethnobotany. New York: Scientific American Library W.H Freeman and Company. Halaman 12. Barku, V.Y.A. Boye, A., dan Ayaba, S. (2013). Phytochemical Screening and
Assessment of Wound Healing Activity of The Leaves of Anogeissus leiocarpus. European Journal of experimental Biology. 3(4):25.
Brown, G.R., dan Burns, T., (2005). Dermatologi. Jakarta: Penerbit Erlangga. Halaman 1, 8.
Chong, K.H., Zuraini, Z., Sasidharan, S., Devi, K., Latha, Y.L., dan Ramanathan, S. (2008). Antimicrobial of Elaeis guineensis leaf. Pharmacology online. 3: 379-386.
David, P.S. (2007). Anatomi Fisiologi Kulit dan Penyembuhan Luka. Surabaya: Airlangga University Press. Halaman 1.
Departemen Kesehatan RI. (1979). Farmakope Indonesia. Edisi Tiga. Jakarta: Departemen Kesehatan RI. Halaman 7, 33, 534, 744, 748.
Direktoral Jenderal POM, (1985). Formularium Kosmetika Indonesia. Jakarta : Departemen Kesehatan RI. Halaman 32-36.
Direktoral Jenderal POM, (1995). Farmakope Indonesia. Edisi Keempat. Jakarta: Departemen Kesehatan RI. Halaman 551, 712-713.
(49)
Direktoral Jendral POM, (2000). Parameter Standar Umum Ekstrak Tumbuhan
Obat. Cetakan Pertama. Jakarta: Departemen Kesehatan RI. Halaman 10-17.
MIMS, (2009). MIMS Indonesia Petunjuk Konsultasi. Jakarta : PT Bhuana Ilmu Populer. Halaman 356.
Fauzi, Y., Widyastuti, Y.E., Setyawibawa, I., Hartono, R. 2002. Kelapa Sawit:
Budidaya, Pemanfaatan Hasil Limbah, Analisa Usaha dan Pemasaran.
Jakarta: Penebar Swadaya. Halaman 1.
Ganong, W.F., (2003). Buku Ajar Fisiologi Kedokteran. Jakarta: Penerbit Buku EGC. Halaman 609-610.
Garg, A., D. Aggarwal, S. Garg, dan S.K. Sigla. (2002). Spreading of Semisolid
Formulation. USA: Pharmaceutical Technology. Halaman 84-1-4.
Guyton, A, C. (2007). Buku Ajar Fisiologi Kedokteran. Jakarta: Penerbit Buku Kedokteran EGC. Halaman 122.
Hetharia, R., (2009). Asuhan Keperawatan Gangguan Sistem Integumen. Jakarta: Trans Info Media. Halaman 1, 4-5, 54.
Heyne, K. (1987). Tumbuhan Berguna Indonesia. Jilid I. Jakarta: Yayasan Sarana Wana Jaya. Halaman 465.
Hunter, J. (2003). Clinical Dermatology. 3rd edition. Massachusetts, USA: Blackwell Science. Halaman 208-209.
Ida, N., dan Noer, S.F. (2012). Uji Stabilitas Fisik Gel Ekstrak Lidah Buaya (Aloe
Vera L.,) Majalah Farmasi dan Farmakologi. 16(2):82.
Lachman, L., Herbet, A. L. and Joseph, L.K. (1994).Teori dan Praktek Farmasi
Industri.Terjemahan Siti Suyatmi. Edisi ketiga. Jakarta: Penerbit Universitas
Indonesia. Halaman 1095, 1117.
Mackay, D., dan Miller, A.L. (2003). Nutritional Support For Wound Healing.
Alternative Medicine Review. (8)369-370.
Mammone, T., dan Gan, D.C. (2002). Methods of Exfoliation Using N-acetyl Glucosamine. United States Patent. No.6413525.
Mappa.T., Edy, H.J., dan Kojong, N. (2013). Formulasi Gel Ekstrak Daun Sasaladahan (Pereromia Pellucida (L) H.B.K) dan Uji Efektivitasnya Terhadap Luka Bakar Pada Kelinci (OryctologusCuniculus). Pharmacon. Jurnal Ilmiah
(50)
Martin, A. (1993). Farmasi Fisik. Edisi Ketiga. Jilid I. Jakarta: Penerbit UI Press. Halaman 888-889.
Moenadjat, Y. (2001). Luka Bakar Masalah Dan Tatalaksana. Jakarta : Fakultas Kedokteran Universitas Indonesia. Halaman 34.
Mun’im, A., Azizahwati, dan Finani, A. (2010).Pengaruh Pemberian Infusa Daun Sirih Merah (Paper Cf. Fragile, Benth) Secara Topical Terhadap Penyembuhan Luka Pada Tikus Putih Diabet. Depok: Laboratorium
Farmakognosi-Fitokimia, Departemen Farmasi FMIPA UI, Kampus UI dan Laboratorium Farmakologi-Toksikologi, Departemen Farmasi FMIPA UI Kampus UI. Halaman 8.
Muttaqin, A ., dan Sari, K. (2011). Asuhan Keperawatan Gangguan Sistem
Integumen. Jakarta: Penerbit Salemba Medika. Halaman 1-4, 200-201.
Paju, N., Yamlean, P. V.Y., dan Kojang , N. (2013). Uji Efektivitas Salep Ektrak Daun Binahong (Anredera cordifolia (Ten). Steenis) pada Kelinci (Oryctolagus
cuniculus) yang Terinfeksi Bakteri Staphylococcus aureus.Pharmacon Jurnal Ilmiah Farmasi. 2 (1): 9.
Rassner. (1995). Dermatology. Jakarta: Penerbit Buku Kedokteran EGC. Halaman 93-98.
Rawlins, E.A. (2003). Bentleys of Pharmaceutics.Edition 18. London Baillierre Tindall. Halaman 22, 35.
Reynold, J.E.F. (1989). Martindale: The Extra Pharmacopeia. Twenty-seventh Edition. London. The Pharmaceutical Press. Halaman 925, 1285.
Rismana, E., Rosidah, I., Prasetyawan., Bunga, O., Erna. (2012). Efektivitas Khasiat Pengobatan Luka Bakar Sediaan Gel Mengandung Fraksi Ekstrak Pegagan Berdasarkan Analisis Hidroksipolin Dan Histopatologi Pada Kulit Kelinci.
Pusat Teknologi Farmasi Dan Medika.
Robinson, T. (1995). Kandungan Organik Tumbuhan Tinggi. Edisi VI. Bandung: Penerbit ITB. Halaman 193.
Rogers, T.L., Rowe, R.C., Paul, J.S. dan Marian E.Q. (2009). Hypromellose.
Handbook of Pharmaceutical Excipient. USA: Pharmaceutical Press. Halaman
326.
Rowe, R.C., Sheskey, P.J., and Owen, S.C. (2005). Handbook of Pharmaceutical
Excipients. Pharmaceutical Press, American Pharmaceutical Association. 5rd
(51)
Sashidaran, S., Logeswaran, S., Yoga L, L. (2012). Wound Healing Activity of
Elaeisguineensis Leaf Extract Ointment. International Journal of molecular Sciences. 13(1): 336-347.
Sastrosayono, S. (2008). Budidaya Kelapa Sawit. Jakarta: PT Agromedia Pustaka. Halaman 6.
Sjamsuhidajat, R., dan Jong, D.W., (2005). Buku Ajar Ilmu Bedah. Jakarta: Penerbit Buku Kedokteran EGC. Halaman 67-68.
Sloane, E. ( 2004). Anatomi Dan Fisiologi Untuk Pemula. Jakarta: Penerbit Buku Kedokteran EGC. Halaman 85-86.
Smeltzer, S, C. (2001). Keperawatan Medikal Bedah. Jakarta: Penerbit Buku Kedokteran EGC. Halaman 1916.
Soeratri, W. (2004). Pengaruh Penambahan Asam Glikolat Terhadap Efektivitas
Sediaan Tabir Surya Kombinasi Anti UV-A dan Anti UV-B Dalam Basis Gel.
Surabaya: Majalah Farmasi Airlangga. 4(3): 76.
Soni, M.G. (2002). Evaluation of The Health Aspect of Methyl Paraben. Food Chem.
Toxicol. 40(10): 1335.
Sreenivasan, S., Rajoo, N., Rathinam, X., Lachimanan, Y. L., dan Rajoo, A. (2010). Wound Healing Potential of Elaeis Guineensis Jacq Leaves in an Infected Albino Rat Model. Molecules. 1(5). 3186-3199.
Steinberg, D.C. (2005). Preservatives Use Frequency Report and Registration.
Cosmetic and Toiletries. 121(71):65-69.
Suardi, M., Armenia, dan Murhayati, A. (2008). Formulasi dan Uji Klinik Gel Anti Jerawat Benzoil Peroksida-HPMC. Jurnal. Padang: Fakultas Farmasi FMIPA UNAND.
Sulaiman, T.N., dan Kuswahyuning, R., (2008). Teknologi dan Formulasi Sediaan Semi Padat.Yogyakarta : Laboratorium Teknologi Farmasi Fakultas Farmasi
Universitas Gadjah Mada. 110-111.
Voigt, R. (1995). Buku Pelajaran Teknologi Farmasi. Cetakan Kedua. Yogyakarta: UGM Press. Halaman 335, 565, 568.
Wade, A., and Weller, P.J. (1994). Handbook of Pharmaceutical Exicipients. 2nd edition. Washington D.C: American Pharmaceutical Association Publ. Halaman 13,89 257, 390, 526, 663.
World Health Organization. (1998). Quality Control Methods For Medical Plant Materils. Journal of WHO. 92(4):25-28.
(52)
Yenti, R., Afrianti, R., dan Afriani, L. (2011). Formulasi Krim Ekstrak Etanol Daun Kirinyuh (Euphatorium odoratum. L) untuk Penyembuhan Luka. Majalah
(53)
BAB III
METODE PENELITIAN
Penelitian ini menggunakan metode eksperimental dengan tahapan penelitian
yaitu pengumpulan dan pengolahan bahan, pembuatan ekstrak, karakterisasi
simplisia, pembuatan sediaan gel ekstrak etanol daun kelapa sawit dengan
menggunakan HPMC sebagai basis gel, pengujian efektivitas sediaan gel terhadap
penyembuhan luka bakar dan uji stabilitas sediaan gel. Pengamatan efek
penyembuhan luka bakar dilakukan secara visual terhadap pengurangan diameter
luka bakar dan analisis data statistik.
3.1 Alat dan Bahan 3.1.1 Alat-alat
Alat-alat yang digunakan dalam penelitian ini meliputi alat-alat gelas laboratorium, blender (national), jangka sorong, kandang kelinci, lemari pengering,
lempeng besi berdiameter 2,2 cm, mortir dan stamfer, neraca analitis (vibra), pH
meter (HANNA instrument), rotary evaporator (Heidolph Wb 2000), spuit 1 ml
(Terumo), stopwatch, termometer, viskometer Brookfield dengan spindle nomor 4,
waterbath.
3.1.2 Bahan-bahan
Bahan-bahan yang digunakan dalam penelitian ini adalah daun kelapa sawit
(Elaeis guineensis Jacq.) yang masih dalam keadaan baik dengan usia dewasa, tidak
terlalu tua dan tidak terlalu muda. Bahan kimia yang digunakan adalah air suling
(54)
larutan dapar pH 4 dan netral pH 7, lidokain HCl, metil paraben, natrium klorida
0,9% , propilen glikol, propil paraben.
3.2 Hewan Percobaan
Hewan yang digunakan pada penelitian ini adalah kelinci dengan berat 1,5-2
kg. Hewan kelinci ditempatkan dalam kandang yang terpisah yaitu 1 ekor setiap
kandang.
3.3 Prosedur
3.3.1 Penyiapan bahan tumbuhan 3.3.1.1 Pengambilan bahan tumbuhan
Pengumpulan sampel dilakukan secara purposif, yaitu tanpa membandingkan
dari daerah lain. Bahan yang digunakan dalam penelitian ini adalah daun kelapa
sawit yang diambil dari perkebunan kelapa sawit PTPN Nusantara II di Tanjung
Morawa Provinsi Sumatera Utara.
3.3.1.2 Identifikasi tumbuhan
Identifikasi tumbuhan dilakukan di Laboratorium Herbarium Medanense
(MEDA), Departemen Biologi, Fakultas Matematika dan Ilmu Pengetahuan Alam,
Universitas Sumatera Utara (Bate’e, 2013). 3.3.1.3 Pengolahan bahan tumbuhan
Sampel yang diperoleh dipisahkan dari tulang daunnya, dicuci hingga bersih,
ditiriskan, ditimbang, lalu dikeringkan di dalam lemari pengering pada suhu 40-50oC. Selanjutnya sampel dihaluskan atau diserbukkan menggunakan blender, dimasukkan
ke dalam wadah plastik, kemudian disimpan pada suhu kamar.
(55)
Serbuk simplisia diekstraksi dengan cara maserasi menggunakan pelarut
etanol. Sebanyak 1200 g serbuk simplisia dimasukkan kedalam suatu bejana,
dituangi dengan 9 L (75 bagian) etanol, ditutup. Dibiarkan selama 5 hari terlindung
dari cahaya sambil sering diaduk lalu diserkai. Ampas dimaserasi dengan etanol
secukupnya hingga diperoleh 12 L (100 bagian). Pindahkan maserat ke dalam bejana
tertutup, dibiarkan ditempat sejuk dan terlindung dari cahaya selama 2 hari, enap
tuangkan. Pemekatan ekstrak dilakukan dengan alat rotary evaporator pada suhu ±
50oC hingga diperoleh ekstrak kental, selanjutnya di freeze dryer pada suhu -40oC hingga diperoleh ekstrak kering (Depkes RI, 1979).
3.3.2 Karakterisasi simplisia dan ekstrak 3.3.2.1 Penetapan kadar air
Penetapan kadar air dilakukan menurut metode azeotropi (destilasi toluen).
Alat terdiri dari labu alas bulat 500 ml, pendingin, tabung penyambung, tabung
penerima 5 ml berskala 0,05 ml, alat penampung dan pemanas listrik.
Cara kerja:
Dimasukkan 200 ml toluena dan 2 ml air suling ke dalam labu alas bulat, lalu
didestilasi selama 2 jam. Setelah itu, toluena dibiarkan mendingin selama 30 menit,
dan dibaca volume air pada tabung penerima dengan ketelitian 0,05 ml. Kemudian
kedalam labu tersebut dimasukkan 5 g sampel yang telah ditimbang seksama, labu
dipanaskan hati-hati selama 15 menit. Setelah toluena mendidih, kecepatan tetesan
diatur lebih kurang 2 tetes tiap detik sampai sebagian besar air terdestilasi, kemudian
kecepatan tetesan dinaikkan hingga 4 tetes tiap detik. Setelah semua air terdestilasi,
bagian dalam pendingin dibilas dengan toluena. Destilasi dilanjutkan selama 5 menit,
(56)
toluena memisah sempurna, volume air dibaca dengan ketelitian 0,05 ml. Selisih
kedua volume air yang dibaca sesuai dengan kandungan air yang terdapat dalam
bahan yang diperiksa. Kadar air dihitung dalam persen (WHO, 1998).
3.3.2.2 Penetapan kadar sari larut air
Sebanyak 5 g sampel dimaserasi selama 24 jam dalam 100 ml air-kloroform
(2,5 ml kloroform dalam air suling sampai 1 liter) dalam labu bersumbat sambil
dikocok sesekali selama 6 jam pertama. Kemudian dibiarkan selama 18 jam, lalu
disaring. Sejumlah 20 ml filtrat pertama yang diperoleh selanjutnya diuapkan sampai
kering ke dalam cawan penguap yang berdasar rata yang telah ditara dan sisa
dipanaskan pada suhu 1050C sampai bobot tetap. Kadar dalam persen yang larut dalam air dihitung terhadap bahan yang telah dikeringkan (WHO, 1998).
3.3.2.3 Penetapan kadar sari larut etanol
Sebanyak 5 g sampel dimaserasi selama 24 jam di dalam 100 ml etanol 96%
dalam labu bersumbat sambil dikocok sesekali selama 6 jam pertama, kemudian
dibiarkan selama 18 jam. Kemudian disaring cepat untuk menghindari penguapan
etanol. Sejumlah 20 ml filtrat yang diperoleh selanjutnya diuapkan sampai kering
dalam cawan penguap yang berdasar rata yang telah dipanaskan dan ditara. Sisa
dipanaskan pada suhu 1050C sampai bobot tetap. Kadar dalam persen sari yang larut dalam etanol 96% dihitung terhadap bahan yang telah dikeringkan (WHO, 1998).
3.3.2.4 Penetapan kadar abu total
Sebanyak 2 g sampel dimasukkan dalam krus porselin yang telah dipijar dan
ditara, kemudian diratakan. Krus pijar perlahan-lahan sampai arang habis, jika arang
masih tidak dapat dihilangkan ditambahkan air panas saring melalui kertas saring
(57)
dalam krus, uapkan, pijarkan hingga bobot tetap, timbang. Kadar abu total dalam
persen dihitung terhadap bahan yang telah dikeringkan (WHO, 1998).
3.3.2.5 Penetapan kadar abu tidak larut asam
Abu yang diperoleh dalam penetapan kadar abu didihkan dalam 25 ml asam
klorida encer selama 5 menit, bagian yang tidak larut dalam asam dikumpulkan,
disaring melalui kertas saring bebas abu, cuci dengan air panas, dipijarkan, kemudian
didingankan dan ditimbang sampai bobot tetap. Kadar abu yang tidak larut asam
dihitung terhadap bahan yang telah dikeringkan (WHO, 1998).
3.3.3 Pembuatan formula sediaan 3.3.3.1 Pembuatan basis gel
Pembuatan basis gel menurut Soeratri (2004), adalah sebagai berikut:
R/ Hidroksipropilmetilselulosa (HPMC) 2,75 g
Propilen glikol 20 g
Metil paraben 0,15 g
Propil paraben 0,05 g
Akuades 77,05 g (ad 100 g)
Cara pembuatan: HPMC didispersikan terlebih dahulu dengan menaburkan
secara merata ke dalam air panas, lalu didiamkan beberapa saat hingga HPMC
mengembang. Metil paraben dan propil paraben dilarutkan ke dalam propilen glikol.
Campuran yang diperoleh ditambahkan sedikit demi sedikit ke dalam HPMC yang
telah mengembang dan terdispersi dengan baik, lalu ditambahkan dengan sisa
akuades hingga 100 g dan digerus perlahan sampai homogen.
(58)
Sediaan gel yang dibuat menggunakan basis gel HPMC kemudian dibuat
dalam 4 formula dengan komposisi masing-masing 10 g yang terlihat pada Tabel 3.1
di bawah ini
Tabel 3.1 Komposisi formula gel EEDKS
No Formula Komposisi
Basis gel (g) EEDKS (g)
1 F1 10 -
2 F2 9,75 0,25
3 F3 9,5 0,5
4 F4 9,25 0,75
Keterangan: F1: basis gel tanpa EEDKS, F2: gel EEDKS 2,5%, F3: gel EEDK 5% F4: gel EEDKS 7,5%.
Cara pembuatan: pada lumpang yang panas dimasukkan EEDKS
masing-masing dengan konsentrasi 2,5, 5 dan 7,5%, lalu ditambahkan sedikit demi sedikit
basis gel sambil di gerus sampai homogen.
3.3.4 Uji stabilitas sediaan gel
Uji stabilitas sediaan gel meliputi pemeriksaan stabilitas fisik sediaan,
pemeriksaan homogenitas, pemeriksaan pH dan pemeriksaan viskositas yang
dilakukan selama 28 hari penyimpanan. Pengamatan dilakukan pada suhu kamar,
yaitu pada hari ke-0, 7, 14, 21, dan 28 hari (Abdassah, dkk., 2009).
3.3.4.1 Pemeriksaan stabilitas fisik sediaan
Pemeriksaan stabilitas fisik sediaan meliputi bentuk, warna dan bau yang
diamati secara visual (Suardi, dkk., 2008). Sediaan dinyatakan stabil apabila warna,
bau dan penampilan tidak berubah secara visual selama penyimpanan.
(59)
Cara: sejumlah tertentu sediaan dioleskan pada keping kaca atau bahan
transparan lain yang cocok, sediaan harus menunjukkan susunan yang homogen, dan
tidak terlihat adanya butiran kasar (Ditjen POM, 1985).
3.3.4.3 Penentuan pH sediaan
Penentuan pH sediaan gel ekstrak etanol daun kelapa sawit dilakukan dengan
menggunakan pH meter dengan cara: alat pH meter yang akan digunakan terlebih
dahulu dikalibrasi dengan menggunakan larutan dapar standar pH netral (pH 7,0) dan
larutan dapar pH asam (pH 4,0) hingga alat menunjukkan harga pH tersebut,
elektroda dicuci dengan air suling, lalu dikeringkan dengan kertas tissue. Sediaan gel
yang akan di uji dibuat dalam konsentrasi 1% yaitu dengan menimbang 1 g sediaan
gel lalu dilarutkan dalam 100 ml air suling, kemudian elektroda dicelupkan dalam
larutan tersebut, sampai alat menunjukkan harga yang konstan. Angka yang
ditunjukkan pH meter merupakan harga pH sediaan (Rawlins, 2003).
3.3.4.4 Penentuan viskositas sediaan
Penentuan viskositas sediaan gel menggunakan viskometer Brookfield
dengan cara: sediaan gel dimasukkan ke dalam beaker glass sampai mencapai
volume 100 ml, lalu spindel diturunkan hingga spindel tercelup ke dalam formulasi.
Selanjutnya alat dihidupkan dengan menekan tombol ON. Kecepatan spindel diatur,
kemudian dibaca skalanya (dial reading) dimana jarum merah yang bergerak telah
stabil. Nilai viskositas dalam sentipoise (cps) diperoleh dari hasil perkalian skala
baca (dial reading) dengan faktor koreksi (f) khusus untuk masing-masing kecepatan
spindel.
(60)
D1
D2
D3
D4
Kelinci terlebih dahulu dicukur bagian punggungnya, kemudian dibuat luka
bakar pada kelinci dengan cara menempelkan lempeng besi berdiameter 2,2 cm yang
telah dipanaskan dalam air mendidih dengan suhu 100oC selama 15 menit dan ditempelkan pada punggung kelinci yang telah dianastesi dengan lidokain HCl
selama 15 detik, selanjutnya diameter luka diukur dengan menggunakan jangka
sorong dan dianggap sebagai diameter hari ke-0. Selanjutnya pada kulit yang
melepuh atau yang mengalami luka bakar, dioleskan sediaan gel EEDKS satu kali
sehari secara merata pada luka bakar untuk semua kelompok. Pengamatan dilakukan
secara visual setiap hari sampai luka bakar sembuh dengan mengukur pengurangan
diameter luka menggunakan jangka sorong. Luka dianggap sembuh jika diameter
luka sama dengan nol.
Diameter luka dihitung rumus:
Keterangan: d : diameter rata-rata d1 : diameter pertama d2 : diameter kedua d3 : diameter ketiga d4 : diameter keempat
(61)
3.3.6 Analisa data
Data hasil penelitian dianalisis dengan menggunakan program SPSS (statistic
Product and Service Solution) 16. Data dianalisis menggunakan metode One Way
ANAVA untuk menentukan perbedaan rata-rata diantara kelompok. Jika terdapat
perbedaan, dilanjutkan dengan menggunakan uji Post Hoc Tukey HSD untuk melihat
(62)
BAB IV
KESIMPULAN DAN SARAN 4.1 Kesimpulan
Berdasarkan hasil penelitian dapat disimpulkan sebagai berikut:
a. Ekstrak etanol daun kelapa sawit dapat dibuat dalam bentuk sedian gel
EEDKS 2,5, 5 dan 7,5%.
b. Ketiga sediaan gel EEDKS dapat menyembuhkan luka bakar
c. Sediaan gel EEDKS yang paling efektif adalah gel EEDKS 7,5% yang dapat
menyembuhkan luka pada hari ke-18.
4.2 Saran
a. Diharapkan kepada peneliti selanjutnya melakukan uji aktivitas biologi
lainnya dari ekstrak etanol daun kelapa sawit.
b. Diharapkan kepada peneliti selanjutnya melakukan pengambilan sampel
(63)
BAB II
TINJAUAN PUSTAKA
2.1 Uraian Tumbuhan 2.1.1 Habitat
Kelapa sawit (Elaeis guinensis Jacq.) merupakan tumbuhan tropis yang
berasal dari Afrika Barat (Fauzi, dkk., 2002). Habitat asli kelapa sawit adalah di
hutan dekat dengan sungai di Guinea Savanna Afrika Barat yang kering. Tumbuhan
ini dapat tumbuh dengan baik pada daerah di luar habitat aslinya, yaitu 16o lintang utara hingga 15o lintang selatan. Penyebarannya di Indonesia meliputi daerah Aceh, pantai timur Sumatera, Jawa dan Sulawesi (Adlin, 2008).
2.1.2 Morfologi
Ciri-ciri morfologi tumbuhan kelapa sawit yaitu merupakan pohon yang
tingginya dapat mencapai 24 meter, mempunyai akar serabut yang mengarah
kebawah dan kesamping. Selain itu terdapat beberapa akar yang tumbuh mengarah
kesamping atas untuk mendapatkan tambahan aerasi. Daunnya tersusun majemuk
menyirip, bewarna hijau tua dan pelepah bewarna sedikit lebih muda. Batang
tanaman diselimuti bekas pelepah hingga umur 12 tahun dan kemudian pelepah yang
mengering akan terlepas sehingga penampilan menjadi mirip dengan kelapa
(Sastrosayono, 2008).
(64)
Nama lain dari tumbuhan kelapa sawit adalah afrikaanse oliepalm (Belanda),
oelpalme (Jerman), oilpalm (Inggris), kelapa bali (Melayu), salak minyak (Sunda)
dan kelapa sawit (Jawa) (Heyne, 1987).
2.1.4 Sistematika tumbuhan
Sistematika tumbuhan kelapa sawit adalah sebagai berikut:
Kingdom : Plantae
Divisi : Spermatophyta
Kelas : Monocotyledona
Ordo : Arecales
Famili : Aracaceae
Genus : Elaeis
Spesies : Elaeis guineensis Jacq.
Nama lokal : Kelapa sawit
2.1.5 Kandungan kimia
Daun kelapa sawit mengandung alkaloid, flavonoid, glikosida,
steroid/triterpenoid, saponin dan tanin (Sreenivasan, dkk., 2010).
2.1.6 Khasiat tumbuhan
Semua bagian tumbuhan ini memiliki manfaat, daging buahnya dapat
(65)
untuk memasak, membuat sabun, krim, dan kosmetik lainnya. Kayunya sebagai
bahan bangunan rumah, getah digunakan sebagai bahan pencahar (Chong et, all.,
2008). Akar digunakan untuk mengobati sakit kepala, bubuk akar ditambahkan ke
minuman sebagai obat untuk gonore dan menorrhagia dan bronchitis (Sreenivasan et,
all., 2010). Daunn ya merupakan obat tradisional untuk kanker, sakit kepala dan
rematik. Ekstrak daun dan jus dari tangkai daun muda dapat mengobati luka (Balick,
1996). Hasil penelitian Sashidaran et all (2008), menunjukkan bahwa ekstrak etanol
daun kelapa sawit dapat menyembuhkan luka yang terinfeksi.
2.2 Ekstraksi
Ekstraksi adalah kegiatan penarikan kandungan kimia yang dapat larut
sehingga terpisah dari bahan yang tidak dapat larut dengan pelarut cair. Senyawa
aktif yang terdapat dalam berbagai simplisia dapat digolongkan ke dalam golongan
minyak atsiri, alkaloid, flavonoid, dan lain-lain. Simplisia yang lunak seperti
rimpang dan daun mudah diserap oleh pelarut sehingga pada proses ekstraksi tidak
perlu diserbuk sampai halus. Simplisia yang keras seperti biji, kulit kayu dan kulit
akar susah diserap oleh pelarut maka perlu diserbuk sampai halus (Ditjen POM,
2000).
Ada beberapa metode ekstraksi yang sering digunakan antara lain yaitu:
1. Maserasi
Maserasi berasa dari kata “macerare” artinya melunakkan. Maserat adalah
hasil penarikan simplisia dengan cara maserasi. Maserasi adalah cara penarikan
simplisia dengan merendam simplisia tersebut dalam cairan penyari (Syamsuni,
(66)
beberapa kali pengocokan atau pengadukan pada temperatur ruangan. Remaserasi
adalah pengulangan penambahan pelarut setelah dilakukan penyaringan maserat
pertama dan seterusnya (Ditjen POM, 2000).
2. Perkolasi
Perkolasi berasal dari kata “percolare” yang artinya penetesan (Voigt, 1995).
Perkolasi adalah ekstraksi dengan pelarut yang selalu baru sampai sempurna yang
umumnya dilakukan pada temperatur ruangan. Proses terdiri dari tahapan
pengembangan bahan, tahap maserasi antara, tahap perkolasi sebenarnya terus
menerus sampai diperoleh ekstrak (perkolat). Serbuk simplisia yang akan diperkolasi
tidak langsung dimasukkan kedalam bejana perkolator, tetapi dibasahi atau
dimaserasi terlebih dahulu dengan cairan penyari sekurang-kurangnya selama 3 jam
(Ditjen POM, 2000).
2.3 Gel
Gel merupakan sistem semipadat yang terdiri dari suspensi yang dibuat dari
partikel anorganik yang kecil atau molekul organik yang besar, terpenetrasi oleh
suatu cairan (Ditjen POM, 1995). Sediaan gel memilik sifat yang lunak, lembut,
mudah dioleskan, serta tidak meninggalkan lapisan berminyak pada permukaan kulit
(Mammone dan Gan, 2002). Pembuatan gel dilakukan dengan proses peleburan atau
diperlukan suatu prosedur khusus berkenaan dengan sifat mengembang dari gel
(Lachman., dkk, 1994).
Massa gel yang terdiri dari jaringan partikel kecil yang terpisah, digolongkan
(67)
organik yang tersebar merata dalam suatu cairan hingga tidak terlihat ikatan antara
molekul makro yang terdispersi dan cairan digolongkan sebagai sistem fase tunggal
(Ditjen POM, 1995). Polimer-polimer yang biasa digunakan untuk membuat gel
meliputi gom alam, tragakan, pektin, karagen, agar, asam alginat, serta bahan-bahan
sintetis dan semisintesis seperti metil selulosa, hidroksietilselulosa,
karboksimetilselulosa, dan karbopol (Aulton, 2007).
Dasar gel yang umum digunakan adalah gel hidrofobik dan gel hidrofilik.
1. Dasar gel hidrofobik
Dasar gel hidrofobik umumnya terdiri dari partikel-partikel anorganik, bila
ditambhakan ke dalam fase pendispersi, hanya sedikit sekali interaksi antara kedua
fase. Berbeda dengan bahan hidrofilik, bahan hidrofobik tidak secara spontan
menyebar, tetapi harus dirangsang dengan prosedur yang khusus (Ansel, 1989:
Aulton, 2007).
2. Dasar gel hidrofilik
Dasar gel hidrofilik umumnya terdiri dari molekul-molekul organik yang
besar dan dapat dilarutkan atau disatukan dengan molekul dari fase pendispersi.
Umumnya daya tarik menarik pada pelarut dari bahan-bahan hidrofilik kebalikan
dari tidak adanya daya tarik menarik dari bahan hidrofobik. Sistem koloid hidrofilik
biasanya lebih mudah untuk dibuat dan memiliki stabilitas yang lebih besar (Ansel,
1989: Aulton, 2007). Gel hidrofilik umumnya mengandung komponen bahan
pengembang, air, humektan dan bahan pengawet (Voigt, 1995).
(68)
Beberapa keuntungan sediaan gel (Voigt, 1995) adalah sebagai berikut:
1. Kemampuan penyebarannya baik pada kulit
2. Efek dingin, yang dijelaskan melalui penguapan lambat pada kulit
3. Tidak ada penghambatan fungsi rambut secara fisiologis
4. Kemudahan pencuciannya dengan air yang baik
5. Pelepasan obatnya baik
Tingginya kandungan air dalam sediaan gel dapat menyebabkan terjadinya
kontaminasi mikrobial, yang secara efektif dapat dihindari dengan penambahan
bahan pengawet. Upaya stabilisasi dari segi mikrobial disamping penggunaan
bahan-bahan pengawet seperti dalam balsam, khususnya untuk basis ini sangat cocok untuk
pemakaian metil dan propil paraben yang umumnya disatukan dalam bentuk larutan
pengawet. Upaya lain yang diperlukan adalah perlindungan terhadap penguapan
yaitu untuk menghindari masalah pengeringan (Voigt, 1995: Aulton, 2007).
2.3.1 Hidroksi propil metil selulosa (HPMC)
Hidroksi propil metil selulosa adalah turunan selulosa eter semisintetik yang
telah digunakan secara luas sebagai polimer hidrofilik dalam sistem pemberian obat
oral dan topikal (Rogers, 2009). HPMC memiliki ciri-ciri serbuk atau butiran putih,
tidak memiliki bau dan rasa. Sangat sukar larut dalam eter, etanol atau aseton, mudah
larut dalam air panas dan segera menggumpal membentuk koloid. HPMC sebagai
pengemulsi, pensuspensi dan sebagai penstabil pada sediaan topikal seperti gel dan
(69)
aplikasi produk kosmetik dan aplikasi lainnya (Rowe., dkk, 2005: Reynold, 1989).
Rumus bangun HPMC dapat dilihat pada Gambar 2.1.
Gambar 2.1 Rumus bangun HPMC 2.3.2 Propilen glikol
Propilen glikol adalah cairan kental, jernih, tidak bewarna, tidak berbau, rasa
agak manis. Dapat bercampur dengan air, etanol, kloroform dan minyak lemak
(Departemen Kesehatan, 1979). Propilen glikol telah banyak digunakan sebagai
pelarut dan pengawet dalam berbagai formulasi parental dan non parental. Propilen
glikol secara umum merupakan pelarut yang lebih baik dari gliserin dan dapat
melarutkan berbagai bahan seperti kortikosteroid, obat-obatan sulfa, barbiturat,
vitamin A dan D, alkaloid dan banyak anastetik lokal (Rowe., dkk, 2005: Reynold,
(70)
Gambar 2.2 Rumus bangun propilen glikol 2.3.3 Metil paraben
Metil paraben memiliki ciri-ciri serbuk hablur kecil, tidak bewarna atau
serbuk hablur putih, tidak berbau atau berbau khas lemah dan mempunyai sedikit
rasa terbakar (Ditjen POM , 1995).
Metil paraben banyak digunakan sebagai pengawet dan antimikroba dalam
kosmetik, produk makanan dan formulasi farmasi, digunakan baik sendiri atau dalam
kombinasi dengan paraben lain atau antimikroba lain. Pada kosmetik, metil paraben
adalah pengawet antimikroba yang paling sering digunakan. Kemampuan pengawet
metil paraben ditingkatkan dengan penambahan propilen glikol (Soni, 2002). Rumus
bangun metil paraben dapat dilihat pada Gambar 2.3
Gambar 2.3 Rumus bangun metil paraben 2.3.4 Propil paraben
Propil paraben merupakan serbuk putih atau hablur kecil tidak bewarna
(Ditjen POM, 1995). Bentuknya kristalin putih, tidak berbau, dan tidak berasa serta
berfungsi sebagai pengawet (Steinberg, 2005). Konsentrasi propil paraben yang
(71)
pengawet pada rentang pH 4-8. Peningkatan pH dapat menyebabkan penurunan
aktivitas antimikrobanya. Propil paraben sangat larut dalam aseton dan etanol, larut
dalam 250 bagian gliserin dan sukar larut di dalam air (Wade and Weller, 1994;
Reynold, 1989). Rumus propil paraben dapat dilihat pada Gambar 2.4.
Gambar 2.4 Rumus bangun propil paraben
2.4 Kulit
Kulit merupakan organ tubuh yang terletak paling luar dan membatasi tubuh
dari lingkungan luar, kulit tidak bisa terpisah dari kehidupan manusia yang
merupakan organ esensial dan vital, kulit juga merupakan cermin kesehatan dari
kehidupan seseorang. Keadaan kulit sangat kompleks, elastis, sensitif dan bervariasi
dan dipengaruhi oleh iklim, umur, seks dan ras (Hetharia, 2009).
Kulit bekerja melindungi struktur-struktur di bawahnya, kulit juga
mencerminkan emosi dan stres yang kita alami, serta berdampak pada penghargaan
orang lain terhadap kita. Selama hidup, kulit dapat terpotong, tergigit, mengalami
iritasi, terbakar, atau terinfeksi. Akan tetapi, kulit memiliki kapasitas dan daya tahan
yang luar biasa untuk pulih (Muttaqin dan Sari, 2011).
Fungsi-fungsi kulit sangat banyak bagi tubuh kita, beberapa fungsi kulit :
(72)
2. Melindungi dari masuknya zat-zat kimia beracun dari lingkungan dan
mikroorganisme
3. Fungsi-fungsi imunologis
4. Melindungi dari kerusakan akibat radiasi UV
5. Mengatur suhu tubuh
6. Sintesis vitamin D
7. Berperan penting dalam daya tarik seksual dan interaksi sosial ( Brown and
Burns, 2005).
Kulit terdiri dari atas tiga lapisan, yang masing-masing memiliki berbagai
jenis sel dan memiliki fungsi yang bermacam-macam. Ketiga lapisan tersebut adalah
epidermis, dermis dan subkutis (Muttaqin dan Sari, 2011).
(73)
2.4.1 Epidermis
Epidermis adalah bagian terluar dari kulit. Bagian ini tersusun dari jaringan
epitel skuamosa bertingkat yang mengalami keratinasi; jaringan ini tidak memiliki
pembuluh darah; dan sel-selnya sangat rapat. Bagian epidermis yang paling tebal
dapat ditemukan pada telapak tangan dan telapak kaki (Sloane, 2004). Sel-sel
epidermis terus-menerus mengalami mitosis, dan berganti dengan yang baru sekitar
30 hari. lapisan ini mengandung reseptor-reseptor sensorik sentuhan, suhu, getaran
dan nyeri (Muttaqin dan Sari, 2011).
Lapisan epidermis merupakan epitel gepeng (skuamosa) berlapis, dengan
beberapa lapisan yang jelas terlihat. Jenis sel yang utama disebut keratinosit, yang
merupakan hasil pembelahan sel pada lapisan epidermis yang paling dalam (stratum
basale), tumbuh terus kearah permukaan kulit dan sewaktu bergerak ke atas
keratinosit mengalami proses yang disebut diferensiasi terminal untuk membentuk
sel-sel lapisan permukaan atau stratum korneum (Brown and Burns, 2005).
Menurut (Sloane, 2004), lapisan epidermis terdiri dari 5 lapisan berikut:
1. Stratum basale, adalah lapisan tunggal sel-sel yang melekat pada jaringan ikat dari
lapisan kulit dibawahnya (dermis). Pembelahan sel yang cepat berlangsung pada
lapisan ini, dan sel baru didorong masuk ke lapisan berikutnya.
2. Stratum spinosum, adalah lapisan sel spina atau tanduk, disebut demikian karena
sel-sel tersebut disatukan oleh tonjolan yang menyerupai spina. Spina adalah bagian
(74)
3. Stratum granulosum, terdiri dari tiga atau lima lapisan atau barisan sel dengan
granula-granula keratohialin yang merupakan prekursor pembentukan keratin.
Keratin adalah protein keras dan resilien, anti air serta melindungi permukaan kulit
yang terbuka.
4. stratum lusidum, adalah lapisan jernih dan tembus cahaya dari sel-sel gepeng tidak
bernukleus yang mati atau hampir mati dengan ketebalan empat sampai tujuh lapisan
sel.
5. Stratum korneum, adalah lapisan epidermis teratas, terdiri dari 25 sampai 30
lapisan sisik tidak hidup yang sangat terkeratinisasi dan semakin gepeng saat
mendekati permukaan kulit.
2.4.2 Dermis
Dermis atau kutan merupakan lapisan kulit dibawah epidermis yang
membentuk bagian terbesar kulit dengan memberikan kekuatan dan struktur pada
kulit (Muttaqin dan Sari, 2011). Lapisan ini jauh lebih tebal daripada epidermis dan
terdiri dari lapisan elastis dan fibriosa padat (Hetharia, 2009).
Lapisan dermis dipisahkan dari lapisan epidermis dengan adanya membran
dasar atau disebut dengan lamina. Membran ini tersusun dari dua lapisan jaringan
ikat, yaitu:
1. Lapisan papilar adalah jaringan ikat areolar renggang dengan firoblas, sel mast,
dan makrofag. Lapisan ini mengandung banyak pembuluh darah, yang memberi
(75)
2. Lapisan retikular terletak lebih dalam dari lapisan papilar, lapisan ini tersusun dari
jaringan ikat reguler yang rapat, kolagen dan serat elastik (Sloane, 2004).
Pembuluh darah di dermis menyuplai makanan dan oksigen pada dermis dan
epidermis, serta membuang produk-produk sisa. Aliran darah dermis memungkinkan
tubuh mengontrol temperaturnya. Pada penurunan suhu tubuh, saraf-saraf simpatis ke
pembuluh darah meningkatkan pelepasan norepinefrin. Pelepasan norepinefrin
menyebabkan kontriksi pembuluh sehingga panas tubuh dapat dipertahankan.
Apabila suhu tubuh terlalu tinggi, maka rangsangan simpatis terhadap pembuluh
darah berkurang sehingga terjadi dilatasi pembuluh darah sehingga panas tubuh akan
dipindahkan ke lingkungan Muttaqin dan Sari, 2011).
2.4.3 Lapisan subkutis
Lapisan ini adalah kelanjutan dari dermis dan terdiri dari jaringan ikat
longgar berisi sel-sel lemak yang disebut panikulus adipose yang berfungsi sebagai
cadangan makanan (Hetharia, 2009). Lapisan ini mengikat kulit secara longgar
dengan organ-organ yang terdapat dibawahnya Lapisan ini mengandung jumlah sel
lemak yang beragam, tergantung pada area tubuh dan nutrisi individu, serta berisi
banyak pembulu darah dan ujung saraf (Sloane, 2004)
2.5 Luka Bakar
Luka adalah hilang atau rusaknya sebagian jaringan tubuh. Keadaan ini dapat
disebabkan oleh trauma benda tajam atau tumpul, perubahan suhu, zat kimia,
ledakan, sengatan listrik ataupun gigitan hewan (Sjamsuhidajat dan Jong, 2005).
(76)
dengan luka yang unik dan dapat menimbulkan jaringan mati yang menetap pada
lokasi dalam jangka waktu lama. Penyebab dari luka bakar antara lain adalah api,
benda-benda panas, air panas, minyak yang panas, udara yang panas, bahan kimia
dan listrik (Hetharia, 2009).
Jenis umum sebagian besar luka bakar adalah luka bakar akibat panas.
Jaringan lunak akan mengalami cedera bila terkena suhu diatas 46oC. Luasnya kerusakan bergantung pada suhu permukaan dan lama kontak. Cedera luka bakar
dapat menyebabkan keadaan hipermetabolik dimanifestasikan dengan adanya
demam, peningkatan laju metabolisme, peningkatan ventilasi, peningkatan curah
jantung, peningkatan glukoneogenesis, serta meningkatkan katabolisme otot viseral
dan rangka (Muttaqin dan Sari, 2011).
Proses yang kemudian terjadi pada jaringan yang rusak ini ialah
penyembuhan luka yang dapat dibagi dalam tiga fase, yaitu fase inflamasi, proliferasi
dan penyudahan yang merupakan perupaan kembali jaringan.
Fase inflamasi berlangsung sejak terjadinya luka sampai kira-kira hari
kelima. Pembuluh darah yang terputus pada luka akan menyebabkan pendarahan dan
tubuh akan berusaha menghentikannya dengan vasokontriksi, pengerutan ujung
pembuluh yang putus (retraksi), dan reaksi homeostatis. Homeostatis terjadi karena
trombosit yang keluar dari pembuluh darah saling melengket, dan bersama jala fibrin
yang terbentuk membekukan darah yang keluar dari pembuluh darah. Pada fase ini
terjadi reaksi inflamasi. Sel mast dalam jaringan ikat menghasilkan serotonin dan
histamin yang meningkatkan permeabilitas kapiler sehingga terjadi eksudasi dan
(77)
Tanda dan gejalan klinis reaksi radang menjadi jelas yang berupa warna kemerahan
karena kapiler melebar (rubor), rasa hangat (kalor), nyeri (dolor), dan pembengkakan
(tumor).
Fase proliferasi disebut juga fase fibroplasia karena yang menonjol adalah
proses proliferasi fibroblast. Fase ini berlangsung dari akhir fase inflamasi sampai
kira-kira akhir minggu ketiga. Firoblast berasal dari sel mesenkim yang belum
berdiferensiasi, menghasilkan mukopolisakarida, asam aminoglisin, dan prolin yang
merupakan bahan dasar kolagen serat yang akan mempertautkan tepi luka. Pada fase
ini luka dipenuhi dengan sel radang, fibroplast dan kolagen yang membentuk
jaringan berwarna kemerahan dengan permukaan yang berbenjol halus yang disebut
dengan jaringan granulasi. Epitel tepi luka yang terdiri dari sel basal terlepas dari
dasarnya dan berpindah mengisi permukaan luka, tempatnya kemudian diisi oleh sel
baru yang terbentuk dari proses mitosis, proses migrasi hanya terjadi kearah yang
lebih rendah atau datar. Proses ini baru terhenti setelah epitel saling menyentuh dan
menatap seluruh permukaan luka, dengan tertutupnya luka maka proses fibroplasia
dengan pembentukan jaringan granulasi juga akan berhenti dan mulailah proses
pematangan dalam fase penyudahan.
Fase selanjutnya adalah fase penyudahan, pada fase ini terjadi proses
pematangan yang terdiri atas penyerapan kembali jaringan yang berlebih, pengerutan
sesuai dengan gaya gravitasi, dan akhirnya perupaan kembali jaringan yang baru
terbentuk. Fase ini dapat berlangsung lama bahkan sampai berbulan-bulan dan
dinyatakan berakhir jika semua tanda radang sudah hilang. Tubuh berusaha
menormalkan kembali semua yang menjadi abnormal karena proses penyembuhan.
(78)
diserap dan sisanya mengerut sesuai dengan regangan yang ada. Selama proses ini
dihasilkan jaringan parut yang pucat, tipis dan lemas serta mudah digerakkan dari
dasar kulit (Sjamsuhidajat dan Jong, 2005).
2.6 Pemberian Obat Melalui Kulit
Tujuan umum penggunaan obat pada terapi dermatologi adalah untuk
menghasilkan efek terapetik pada tempat-tempat spesifik di jaringan epidermis.
Absorbsi perkutan didefenisikan sebagai absorbsi yang dapat menembus lapisan
stratum korneum (lapisan tanduk) dan berlanjut menembus lapisan di bawahnya dan
akhirnya masuk ke sirkulasi darah (Lachman., dkk, 1994; Hunter 2003).
Absorbsi perkutan suatu obat umumnya disebabkan oleh penetrasi obat
melalui stratum korneum. Stratum korneum sebagai jaringan keratin akan berlaku
sebagai membran buatan yang semi permeabel, dan molekul obat berpenetrasi
dengan cara difusi pasif, jadi jumlah obat yang pindah menyebrangi lapisan kulit
tergantung pada konsentrasi obat atau airnya. Bahan-bahan yang mempunyai sifat
larut dalam keduanya, minyak dan air, merupakan bahan yang baik untuk difusi
melalui stratum korneum seperti juga melalui epidermis dan lapisan-lapisan kulit
(Ansel, 1989; David, 2007).
Prinsip absorbsi obat melalui kulit adalah difusi pasif yaitu proses dimana
suatu substansi bergerak dari daerah suatu sistem ke daerah lain dan terjadi
penurunan kadar gradien yang diikuti bergeraknya molekul. Difusi pasif merupakan
bagian terbesar dari proses trans-membran bagi umumnya obat. Daya dorong untuk
(79)
Difusi obat berbanding lurus dengan konsentrasi obat, koefisien difusi, viskositas dan
ketebalan membran (Martin, 1993: Rassner, 1995).
2.7 Senyawa Kimia Tumbuhan Berkhasiat Penyembuh Luka Bakar
Senyawa kimia tumbuhan yang dapat berkhasiat terhadap penyembuhan luka
bakar antara lain alkaloid, flavonoid, tanin, saponin dan steroid/triterpenoid.
2.7.1 Alkaloid
Alkaloid diduga memiliki kemampuan sebagai antibakteri dengan mekanisme
mengganggu komponen penyusun peptidoglikan pada sel bakteri, sehingga lapisan
dinding sel tidak terbentuk secara utuh dan menyebabkan kematian sel tersebut
(Paju, dkk., 2013).
2.7.2 Flavonoid
Flavonoid bertindak sebagai penampung radikal hidroksi dan superhidroksi
atau memperlambat timbulnya sel nekrosis tetapi juga dengan meningkatkan
vaskularisasi dengan demikian melindungi lipid membran terhadap reaksi yang
merusak. Flavonoid dapat menghambat pendarahan (Robinson, 1995; Barku, dkk.,
2013). Flavonoid juga dikenal untuk mempercepat proses penyembuhan luka
terutama karena memiliki aktivitas antimikroba dan adstringen, yang memiliki peran
dalam penyusutan luka dan peningkatan laju epitelisasi (Barku, dkk., 2013).
2.7.3 Tanin
Tanin merupakan komponen yang banyak terdapat dalam ekstrak tanaman
(80)
pendarahan dan mengurangi peradangan (Mun’im, dkk., 2010). Menurut Masduki
(1996) menyatakan bahwa tanin bermanfaat sebagai antiseptik dan juga
menyembuhkan luka bakar dengan cara mempresipitasikan protein karena ada daya
antibakterinya.
2.7.4 Saponin
Menurut Mackay dan Miller (2003), saponin yang terdapat dalam tumbuhan
dapat memacu pembentukan kolagen yang berperan dalam penyembuhan luka,
mampu menurunkan fibrosis pada luka sehingga mencegah pembentukan bekas luka.
Menurut Yenti, dkk., (2011), saponin juga memiliki kemampuan sebagai pembersih
dan antiseptik yang berfungsi membunuh atau mencegah pertumbuhan
mikroorganisme yang biasa timbul pada luka sehingga luka tidak mengalami infeksi
yang berat.
2.7.5 Steroid/Triterpenoid
Steroid/Triterpenoid dikenal untuk mempercepat proses penyembuhan luka
terutama karena memiliki aktivitas antimikroba dan adstringen, yang memiliki peran
(81)
BAB I PENDAHULUAN
1.1 Latar Belakang
Kulit merupakan suatu organ yang kompeten secara imunologis dan berperan
penting bagi pertahanan tubuh (Brown dan Burns, 2005). Fungsi kulit bagi tubuh
sangat banyak, diantaranya adalah melindungi bagian dalam tubuh terhadap
gangguan fisis dan kimiawi, mengontrol suhu tubuh dengan cara mengeluarkan
keringat dan mengerutkan otot pembuluh darah kulit, serta mensekresikan zat-zat
yang tidak berguna atau sisa metabolisme tubuh berupa NaCl, urea, asam urat dan
ammonia (Hetharia, 2009). Fungsi kulit yang penting bagi tubuh dapat terganggu
akibat suatu cedera, salah satu diantaranya luka bakar (Muttaqin dan Sari, 2011).
Luka bakar adalah kerusakan atau kehilangan jaringan yang disebabkan
kontak antara kulit dengan sumber panas seperti api, air panas, bahan kimia, listrik
dan radiasi (Moenadjat, 2003). Hilangnya lapisan kulit akibat luka bakar dapat
menyebabkan terganggunya kemampuan tubuh untuk mengatur suhunya, sehingga
seseorang dapat mengalami penurunan suhu tubuh pada beberapa jam pertama
setelah mengalami luka bakar (Smeltzer, 2001). Kerusakan jaringan akibat luka
bakar bukan hanya terjadi pada permukaan kulit saja, juga jaringan bagian bawah
kulit. Jaringan yang terbakar akan rusak, sehingga cairan tubuh bisa keluar melalui
kapiler pembuluh darah pada jaringan yang mengalami pembengkakan akibat luka
bakar (Guyton, 2007).
Dipasaran obat luka bakar telah banyak beredar dalam bentuk gel dan krim,
namun jenis sediaan bentuk gel lebih banyak digunakan karena rasa dingin dikulit,
(82)
kulit (Suardi, dkk., 2008). Pemilihan hidroksi propil metil selulosa (HPMC) sebagai
dasar gel karena tidak berbau dan tidak berasa, mudah larut dalam air panas dan
sebagai penstabil pada sediaan topikal seperti gel dan salep sedangkan propilen
glikol dapat digunakan sebagai pelarut dan pengawet (Rowe, dkk., 2005).
Penggunaan HPMC yang bersifat netral sebagai basis gel dapat menghasilkan
sediaan gel dengan pH yang stabil serta tahan terhadap pengaruh asam dan basa
(Rogers, dkk., 2009).
Masyarakat Indonesia sudah sejak zaman dahulu mengenal dan
memanfaatkan tanaman berkhasiat obat sebagai salah satu upaya dalam
penanggulangan masalah kesehatan. Menurut Chong et all (2008), semua bagian dari
tanaman kelapa sawit memiliki banyak manfaat, misalnya ramuan akar di Nigeria
digunakan untuk penyembuhan sakit kepala. Ekstrak daun dan jus dari tangkai muda
digunakan sebagai obat luka. Minyak dari inti kelapa sawit digunakan sebagai
penangkal racun yang digunakan secara topikal dengan kombinasi beberapa herbal
lain sebagai lotion untuk penyakit kulit. Daun dari tanaman kelapa sawit dapat
digunakan dalam beberapa pengobatan seperti kanker, sakit kepala dan rematik dan
sebagai afrodisiak, diuretik, dan obat gosok. Menurut Sashidaran et all (2012)
menyebutkan bahwa daun kelapa sawit mengandung alkaloid, flavonoid, gula
reduksi, saponin, steroid, terpenoid, dan tanin. Menurut Barku et all (2013),
flavonoid memiliki aktivitas antimikroba dan astringen yang memiliki peran dalam
penyusutan luka dan peningkatan laju epitelisasi. Banyaknya kandungan senyawa
kimia yang dimiliki daun kelapa sawit sangat berpotensi sebagai obat luka, oleh
karena itu penelitian ini perlu dilakukan untuk mengetahui efektivitas sediaan gel
(83)
1.2 Perumusan Masalah
Berdasarkan uraian di atas, maka permasalahan dalam penelitian ini dapat
dirumuskan sebagai berikut :
a. Apakah ekstrak etanol daun kelapa sawit dapat diformulasi dalam bentuk sediaan
gel menggunakan basis gel HPMC?
b. Apakah sediaan gel ekstrak etanol daun kelapa sawit mempunyai efek
penyembuhan luka bakar?
c. Berapakah konsentrasi yang paling efektif dalam penyembuhan luka bakar?
1.3 Hipotesis
Hipotesis dalam penelitian ini adalah:
a. Ekstrak etanol daun kelapa sawit dapat diformulasi dalam bentuk sediaan gel
menggunakan basis gel HPMC.
b. Sediaan gel ekstrak etanol daun kelapa sawit mempunyai efek penyembuhan
luka bakar.
c. Diperoleh konsentrasi yang paling efektif dalam penyembuhan luka bakar.
1.4 Tujuan Penelitian
Tujuan penelitian ini adalah untuk:
a. Memformulasikan ekstrak etanol daun kelapa sawit dalam bentuk sediaan gel.
b. Mengetahui efek penyembuhan luka bakar dari sediaan gel ekstrak etanol daun
kelapa sawit.
c. Mengetahui konsentrasi yang paling efektif dalam penyembuhan luka bakar.
(84)
Manfaat penelitian ini adalah sebagai informasi tentang efektivitas
penyembuhan luka bakar dari sediaan gel ekstrak etanol daun kelapa sawit.
1.6 Kerangka Penelitian
Variabel bebas Variabel terikat Parameter
Gambar 1.1 Kerangka penelitian
Simplisia daun kelapa sawit
Ekstrak etanol daun kelapa sawit
- (Kelompok kontrol) Basis gel HPMC
-(Kelompok uji) Sediaan gel EEDKS konsentrasi 2,5%, 5% dan 7,5%
- (Kelompok pembanding) Bioplacenton®
Kelinci
Uji stabilitas gel
Penyembuhan luka bakar
- Stabilitas fisik (bentuk, warna, bau) - pH
- Homogenitas - Viskositas
- Diameter luka bakar - Hari kesembuhan
(85)
PENGUJIAN SEDIAAN GEL EKSTRAK ETANOL DAUN KELAPA SAWIT (Elaeis guineensis Jacq.) SEBAGAI OBAT LUKA BAKAR
Abstrak
Daun kelapa sawit (Elaeis guineensis Jacq.) mengandung alkaloid yang memiliki kemampuan sebagai antibakteri, flavonoid yang memiliki aktivitas astringen dan saponin yang dapat memacu pembentukan kolagen yang berperan dalam proses penyembuhan luka. Penelitian ini bertujuan untuk menguji efektivitas sediaan gel ekstrak etanol daun kelapa sawit terhadap penyembuhan luka bakar.
Serbuk daun kelapa sawit diekstraksi dengan pelarut etanol 80% secara maserasi selama 5 hari, diserkai, ampasnya dicuci dengan etanol. Filtrat didiamkan selama 2 hari kemudian dienap tuangkan. Maserat yang diperoleh diuapkan dengan bantuan rotary evaporator (±500C) dan di freeze dryer (-40oC). Serbuk simplisia dan ekstrak etanol daun kelapa sawit (EEDKS) dikarakterisasi dan diformulasi menjadi sediaan gel berbasis HPMC dengan konsentrasi 2,5, 5, dan 7,5%. Selanjutnya diuji efektivitasnya terhadap kelinci yang dibuat luka bakar (diameter 2,2 cm) dengan pengolesan sediaan gel EEDKS satu kali sehari dimulai dari hari ke-0 sampai luka bakar sembuh, sebagai pembanding digunakan bioplacenton, kemudian sediaan gel diuji stabilitasnya.
Hasil karakterisasi serbuk simplisia dan EEKDS masing-masing diperoleh kadar air (6,64% dan 2,65%), kadar sari larut air (13,49% dan 19,57%), kadar sari larut etanol (16,98% dan 43,88%), kadar abu total (3,75% dan 2,43%) dan kadar abu yang tidak larut asam (0,78% dan 0,24%). Hasil pemeriksaan sediaan gel EEDKS mampu menyembuhkan luka bakar dengan konsentrasi 7,5% (18 hari), 5% (20 hari), 2,5% (21 hari). Konsentrasi yang paling efektif adalah 7,5% memberikan hasil yang signifikan dengan bioplacenton (18 hari). Hasil uji stabilitas gel EEDKS stabil selama 28 hari penyimpanan, hasil sediaan gel homogen, dengan nilai pH 6,6-6,9, nilai viskositas basis gel (3500cps), gel EEDKS 2,5% (3200cps), gel EEDKS 5% (3000cps), gel EEDKS 7,5% (2800cps).
(86)
EFFECTIVENESS TEST THE ETHANOL EXTRACT GEL OF OIL PALM LEAF (Elaeis guineensis Jacq.) FOR BURNS HEALING
Abstract
Leaves of palm (Elaeis guineensis Jacq.) Contain alkaloids that have the ability as an antibacterial, astringent activity of flavonoids and saponins that can stimulate the formation of collagen, which plays a role in wound healing process and. This study aimed to test the effectiveness of the ethanol extract gel palm leaves for the healing of burns.
Palm’ leaf powder macerated by ethanol 80% for 5 days, filtered, the residue has extraction by ethanol, then the filtrate leave for 2 day and poured ponder. The maserat has evaporated by using rotary evaporator (±500C) and dried by freeze dryer (±-40oC). Simplicia powder and ethanol extract of palm’s leaf have executed in characteristic and then has formulated to gel preparations that have HPMC for the basic with its concentration 2.2, 5, and 7.5%. Subsequently, gel preparations tested its effectiveness on the backs of rabbit made burns with a diameter 2.2 cm by measuring diameter and applying ethanol extract gel of oil palm leaf once a day starting from 0 day until the burns healed, then gel preparations tested his stability which include examining homogenity, pH and viscosity.
The result from characteristic simplicia powder and extract respectively have obtained by water level (6.64% and 2.65%), water soluble extract (13,49% and 19.57%), ethanol soluble extract level (16.98% and 43.88%), total ash content (3.75% and 2.43%), and ash level which insoluble in acid (0.78% and 0.24%). The results of examination have significant correlation to healing the wound with each concentration 7.5% (18 days), 5.0% (20 days), 2.5% (21 days), the most effective concentration is 7.5% which can provide significant results with Bioplacenton as a
comparison (18 days). Results of stability test of ethanol extract of oil palm’s leaf is
stable in storage for 28 days. Homogenity examination of gel preparation have showed homogenous, the pH value of gel preparation is 6.6-6.9, viscosity value of basic gel is 3500 sentipoise, 3200 sentipoise for gel 2.5% , 3000 sentipoise for gel 5%, and 2800 sentipoise for gel 7.5%.
(1)
2.1.6 Khasiat tumbuhan ... 6
2.2 Ekstraksi ... 7
2.3 Gel ... ... 8
2.3.1 Hidroksi propil metil selulosa (HPMC) ... 10
2.3.2 Propilen glikol ... 10
2.3.3 Metil paraben ... 11
2.3.4 Propil paraben ... 12
2.4 Kulit ... 12
2.4.1 Epidermis ... 13
2.4.2 Dermis ... 15
2.4.3 Lapisan subkutis ... 16
2.5 Luka Bakar ... 16
2.6 Pemberian Obat Melalui Kulit ... 18
2.7 Senyawa Kimia Tumbuhan Berkhasiat Penyembuh Luka ... 19
2.7.1 Tanin ... 19
2.7.2 Flavonoid ... 20
2.7.3 Tanin ... 20
2.7.4 Saponin ... 20
2.7.5 Triterpenoid/steroid ... 21
BAB III METODE PENELITIAN 3.1 Alat dan Bahan ... 22
3.1.1 Alat- alat ... 22
3.1.2 Bahan-bahan ... 22
3.2 Hewan Percobaan ... 23
3.3 Prosedur ... 23
(2)
3.3.1.1 Pengambilan bahan tumbuhan ... 23
3.3.1.2 Identifikasi tumbuhan ... 23
3.3.1.3 Pengolahan bahan tumbuhan ... 23
3.3.1.4 Pembuatan ekstrak etanol daun kelapa sawit ... 24
3.3.2 Karakterisasi simplisia dan ekstrak ... 24
3.3.2.1 Penetapan kadar air ... 24
3.3.2.2 Penetapan kadar sari larut dalam air ... 25
3.3.2.3 Penetapan kadar sari larut etanol ... 25
3.3.2.4 Penetapan kadar abu total ... 26
3.3.2.5 Penetapan kadar abu tidak larut asam ... 26
3.3.3 Pembuatan formula sediaan ... 26
3.3.3.1 Pembuatan basis gel ... 26
3.3.3.2 Komposisi formula ... 27
3.3.4 Uji stabilitas sediaan ... 27
3.3.4.1 Pemeriksaan stabilitas fisik sediaan ... 28
3.3.4.2 Pemeriksaan homogenitas sediaan ... 28
3.3.4.3 Penentuan pH sediaan ... 28
3.3.4.4 Penentuan viskositas sediaan ... 28
3.3.5 Pengujian gel terhadap penyembuhan luka bakar ... 29
3.3.6 Analisa data ... 30
BAB IV HASIL DAN PEMBAHASAN 4.1 Hasil Identifikasi Tumbuhan ... 31
4.2 Hasil Ekstraksi ... 31
4.3 Hasil Karakterisasi Simplisia dan Ekstrak . ... 31
4.4 Hasil Uji Stabilitas Sediaan ... 32
4.4.1 Hasil pemeriksaan stabilitas fisik sediaan ... 32
(3)
4.4.2 Hasil pengamatan homogenitas sediaan ... 33
4.4.3 Hasil penentuan pH sediaan ... 34
4.4.4 Hasil penentuan viskositas sediaan ... 34
4.5 Hasil Uji Efektivitas Penyembuhan Luka Bakar ... 35
BAB V KESIMPULAN DAN SARAN ... 40
(4)
DAFTAR TABEL
Tabel Halaman
3.1 Komposisi formula gel EEDKS ... ... 27
4.1 Hasil karakterisasi simplisia dan ekstrak ... ... 32
4.2 Data pemeriksaan stabilitas fisik sediaan gel EEDKS ... ... 33
4.3 Data pengamatan homogenitas sediaan ... ... 33
4.4 Data pengukuran pH ... ... 34
4.5 Data pengukuran viskositas ... ... 34
4.6 Data rata-rata hasil pengukuran diameter luka ... ... 36
(5)
DAFTAR GAMBAR
Gambar
Halaman
1.1 Kerangka penelitian ... ... 4
2.1 Gambar rumus bangun HPMC ... ... 10
2.2 Gambar rumus bangun Propilen Glikol ... .. 11
2.3 Gambar rumus bangun metil paraben ... .. 11
2.4 Gambar rumus bangun propil paraben ... .. 12
2.5 Struktur kulit ... .. 13
3.1 Gambaran perhitungan diameter luka bakar ... .. 30
4.1 Grafik perubahan diameter luka bakar ... .. 35
(6)
DAFTAR LAMPIRAN
Lampiran Halaman
1 Hasil identifikasi tumbuhan kelapa sawit ... ... 46
2 Gambar tumbuhan dan daun segar kelapa sawit ... ... 47
3 Gambar simplisia dan serbuk daun kelapa sawit ... ... 48
4 Bagan penelitian ... ... 49
5 Perhitungan hasil karakterisasi simplisia ... 51
6 Gambar sediaan gel EEDKS ... ... 56
7 Gambar homogenitas sediaan EEDKS ... .. 57
8 Perhitungan viskositas sediaan gel EEDKS ... . 58
9 Surat persetujuan etik ... ... 59
10 Gambar alat yang digunakan ... ... 60
11 Data pengukuran diameter luka bakar ... ... 61
12 Gambar penyembuhan luka bakar ... ... 62
13 Hasil variansi ANAVA ... ... 70
14 Hasil uji Tukey ... ... 73