Respons Pertumbuhan Dan Produksi Kedelai (Glycine max (L.) Merril) Varietas Grobogan Dengan Pemberian Asam Askorbat Pada Tanah Salin

Lampiran 1. Bagan Percobaan

Lampiran 2. Bagan tanaman per plot

1,1 m

A1 A0 A3 A3 A2 A3 A0 A3

Blok 1 Blok 2 Blok 3 Blok 4 Blok 5 Blok 6 Blok 7 Blok 8

A3 A1 A2 A2 A3 A1 A3 A1

A0 A2 A3 A2 A0 A1 A1 A0 A1 A0 A2 A0 A1 A2 A2 A0 50 cm 50 cm 30 cm U 1 m 30 cm 20 cm 10 cm 10 cm

Lampiran 3. Deskripsi Varietas Kedelai Grobogan

Nama Varietas : Grobogan

SK : 238/Kpts/SR.120/3/2008

Tahun : 2008

Tetua : Pemurnian populasi lokal Malabar Grobogan Potensi Hasil (t/ha) : 2,77 t/ha

Rataan Hasil : 3.40 t/ha

Karakter : polong masak tidak mudah pecah, dan pada saat panen daun luruh 95-100% saat panen >95% daunnya telah luruh

Pemulia : Suhartina, M. Muchlish Adie, T. Adisarwanto, Sumarsono, Sunardi, Tjandramukti, Ali Muchtar, Sihono, SB. Purwanto, Siti Khawariyah, Murbantoro, Alrodi, Tino Vihara, Farid Mufhti, dan Suharno

Warna Hipokotil : Ungu

Warna Epikotil : Ungu

Warna Bunga : Ungu

Warna daun : Hijau agak tua

Warna Bulu : coklat

Warna Kulit Biji : Kuning muda Warna Hilum : cokelat Bentuk Daun : lanceolate Tipe Pertumbuhan : Determinate Umur Berbunga (hari) : 30-32 hari Umur Masak (hari) : ±76 hari Tinggi Tanaman(cm) : 50-60 cm Berat 100 biji (g) : ±18 gram Kandungan Nutrisi

Protein (% bk) : 43,9% Lemak (% bk) : 18,4%

Daerah Sebaran : beradaptasi baik pada beberapa kondisi lingkungan tumbuh yang berbeda cukup besar, pada musim hujan dan daerah beririgasi baik

Pengusul : Pemerintah Daerah Kabupaten Grobogan, BPSB Jawa Tengah, Pemerintah Daerah Provinsi Jawa Tengah

Lampiran 4. Jadwal Kegiatan

Kegiatan Minggu

1 2 3 4 5 6 7 8 9 10 11 12 13 14 Persiapan Lahan X

Penanaman Benih X

Pemupukan X X

Aplikasi Asam

Askorbat

X X X X

Pemeliharaan Tanaman

Penyiraman Disesuaikan dengan kondisi lapangan

Penjarangan X

Penyulaman X

Penyiangan Disesuaikan dengan kondisi lapangan Pembumbunan Disesuaikan dengan kondisi lapangan Pengendalian hama

penyakit

Disesuaikan dengan kondisi lapangan

Panen X

Pengamatan Parameter

Tinggi Tanaman (cm) X X X

Jumlah Cabang Primer (cabang)

X X

Jumlah Cabang

Produktif(cabang)

X

Umur Berbunga (hari) X

Umur Panen (hari) X

Jumlah Polong

Berisi/tanaman (polong)

X

Jumlah Polong

Hampa/tanaman (polong)

X

Jumlah Biji/tanaman (biji)

X

Bobot Biji/tanaman (g) X

Lampiran 5 : Gambar Tanaman

3 MST

berbunga

A0 A1

1.daun dihaluskan 0.10 gr

2. aceton diambil menggunakan pipet

3. aceton diberi pada daun yg sudah halus 4.campuran aceton dengan

daun yang halus

5.ekstrak daun dimasukkan kedalam botol

Bagan Analisis Klorofil

Lampiran 6 : Analisis Klorofil

7.ekstrak dalam botol yang telah siap utk diukur klorofilya

8.spektrofotometri

9. ekstrak dimasukkan kedalam cuffet

10. cuffet yang berisi estrak dimasukkan kedalam

spektrofotometri

11. pembacaan angka pada spektrofotometri

12. cuffet dikeluarkan dan dituang kembali kedalam botol utk diukur lagi

Lampiran 7 : Komposisi Asam Askorbat

Komposisi :

1. Assay (Iodometri) min. 99.7 % 2. Identitiy (IR-Spectrum) Passes Test 3. H2O 10 % + 20.5-21.5

4. Insoluble In water max. 0.005% 5. pH (5%.H2O) 2.2-2.5 %

6. Chlorides (Cl) max 0.005% 7. Sulfates (SO4) max 0.002% 8. Copper (Cu) max 0.00003%

9. Heavey metals (as pb) max 0.0002% 10. Iron (Fe) max 0.001%

11. Lead (Pb) max 0.001% 12. Nickel (Ni) max 0.05% 13. Sulfated ash max 0.1%

Loss on drying (105oC)

Gambar : Asam Askorbat Merk dagang : Scharlau

Lampiran 8. Bagan Alir Penelitian

Tanggal tanam 28 April 2012 DHL 6,7

9 HST (07 Mei 2012) DHL 7,3 (Banjir I)

21 HST (19 Mei 2012) DHL 8,6 (Banjir II)

36 HST (03 Juni 2012) DHL 10

Lampiran 9 :Data Pengamatan Tinggi Tanaman 3 MST (cm)

Perlakuan Blok Total Rataan

I II III IV V VI VII VIII

A0 15.15 15.00 14.05 13.90 13.55 13.85 14.65 15.15 115.30 14.41 A1 13.30 12.75 14.30 14.45 14.25 14.25 14.00 14.10 111.40 13.93 A2 15.30 14.90 15.25 14.80 13.80 14.20 13.90 16.15 118.30 14.79 A3 15.90 15.10 16.10 13.95 13.95 13.90 14.55 16.20 119.65 14.96 Total 59.65 57.75 59.70 57.10 55.55 56.20 57.10 61.60 464.65 Rataan 14.91 14.44 14.93 14.28 13.89 14.05 14.28 15.40 14.52 Lampiran 10 : Sidik Ragam Tinggi Tanaman 3 MST

Sumber db JK KT Fhit Ket F.05

Blok 7 7.36 1.05 2.31 tn 2.49

Perlakuan 3 5.02 1.67 3.68 * 3.07

Linear 1 2.49 2.49 5.53 * 4.32

Kuadratik 1 0.86 0.86 1.91 tn 4.32

Kubik 1 1.67 1.67 3.71 tn 4.32

Error 21 9.54 0.45

Total 31 21.92

FK 6746.86

KK 4.64%

Lampiran 11 : Data Pengamatan Tinggi Tanaman 4 MST (cm)

Perlakuan Blok Total Rataan

I II III IV V VI VII VIII

A0 18.90 18.15 18.80 18.50 18.85 18.80 19.10 19.85 150.95 18.87 A1 16.75 16.70 18.50 18.45 18.80 19.05 17.70 19.00 144.95 18.12 A2 19.60 17.60 19.05 19.05 18.45 19.70 18.85 20.05 152.35 19.04 A3 18.85 18.95 20.55 19.95 18.05 18.40 18.85 20.70 154.30 19.29 Total 74.10 71.40 76.90 75.95 74.15 75.95 74.50 79.60 602.55 Rataan 18.53 17.85 19.23 18.99 18.54 18.99 18.63 19.90 18.83 Lampiran 12 : Sidik Ragam Tinggi Tanaman 4 MST

Sumber db JK KT Fhit Ket F.05

Blok 7 10.13 1.45 3.37 * 2.49

Perlakuan 3 6.10 2.03 4.72 * 3.07

Linear 1 1.90 1.90 4.42 * 4.32

Kuadratik 1 1.98 1.98 4.60 * 4.32

Kubik 1 2.22 2.22 5.16 * 4.32

Error 21 9.04 0.43

Total 31 25.27 FK 11345.83

Lampiran 13 : Data Pengamatan Jumlah Cabang 3 MST (cabang)

Perlakuan Blok Total Rataan

I II III IV V VI VII VIII

A0 1.00 1.00 1.00 1.00 1.00 1.00 1.00 1.00 8.00 1.00 A1 1.00 1.00 1.00 1.50 1.00 1.00 1.00 1.00 8.50 1.06 A2 1.50 1.00 1.50 1.00 1.00 1.00 1.00 1.00 9.00 1.13 A3 1.00 1.00 1.00 1.00 1.00 1.00 1.00 1.50 8.50 1.06 Total 4.50 4.00 4.50 4.50 4.00 4.00 4.00 4.50 34.00 Rataan 1.13 1.00 1.13 1.13 1.00 1.00 1.00 1.13 1.06

Lampiran 14: Sidik Ragam Jumlah Cabang 3 MST Sidik Ragam

Sumber db JK KT Fhit Ket F.05

Blok 7 0.13 0.02 0.55 tn 2.49

Perlakuan 3 0.06 0.02 0.64 tn 3.07

Linier 1 0 0 0 - 4.32

Kuadratik 1 0 0 0 - 4.32

Kubik 1 0 0 0 - 4.32

Error 21 0.69 0.03

Total 31 0.88

FK 36.13

KK 17.03%

Lampiran 15 : Data Pengamatan Jumlah Cabang 4 MST (cabang)

Perlakuan Blok Total Rataan

I II III IV V VI VII VIII

A0 2.00 2.00 2.00 2.00 2.00 2.00 2.00 2.00 16.00 2.00 A1 2.00 2.00 2.00 2.50 2.00 2.00 2.00 2.00 16.50 2.06 A2 2.50 2.00 2.00 2.00 2.00 2.00 2.00 2.00 16.50 2.06 A3 2.00 2.50 2.00 2.00 2.00 2.00 2.00 2.50 17.00 2.13 Total 8.50 8.50 8.00 8.50 8.00 8.00 8.00 8.50 66.00 Rataan 2.13 2.13 2.00 2.13 2.00 2.00 2.00 2.13 2.06

Lampiran 16 : Sidik Ragam Jumlah Cabang 4 MST (cabang) Sidik Ragam

Sumber db JK KT Fhit Ket F.05

Blok 7 0.13 0.02 0.55 tn 2.49

Perlakuan 3 0.06 0.02 0.64 tn 3.07

Linier 1 0 0 0 - 4.32

Kuadratik 1 0 0 0 - 4.32

Kubik 1 0 0 0 - 4.32

Error 21 0.69 0.03

Total 31 0.88

FK 136.13

KK 8.77%

Lampiran 17 : Data Pengamatan Jumlah Cabang 5 MST (cabang)

Perlakuan Blok Total Rataan

I II III IV V VI VII VIII

A0 3.50 4.00 4.50 4.00 4.00 4.00 4.00 4.50 32.50 4.06 A1 4.00 4.00 4.00 4.50 4.50 4.00 4.50 4.00 33.50 4.19 A2 4.50 5.00 4.00 5.50 4.50 4.50 4.50 4.50 37.00 4.63 A3 4.00 4.50 5.00 4.00 4.00 4.50 4.50 4.50 35.00 4.38 Total 16.00 17.50 17.50 18.00 17.00 17.00 17.50 17.50 138.00 Rataan 4.00 4.38 4.38 4.50 4.25 4.25 4.38 4.38 4.31

Lampiran 18 : Sidik Ragam Jumlah Cabang 5 MST

Sumber db JK KT Fhit Ket F.05

Blok 7 0.63 0.09 0.67 tn 2.49

Perlakuan 3 1.44 0.48 3.58 * 3.07

linier 1 0.76 0.76 5.65 * 4.32

kudratik 1 0.28 0.28 2.10 tn 4.32

kubik 1 0.40 0.40 2.99 tn 4.32

Error 21 2.81 0.13

Total 31 4.88

FK 595.13

Lampiran 19 : Data Pengamatan Umur Berbunga (HST)

Perlakuan Blok Total Rataan

I II III IV V VI VII VIII

A0 29.50 29.50 28.50 29.00 29.50 30.00 30.00 28.50 234.50 29.31 A1 28.50 29.00 29.50 28.50 29.00 29.50 28.50 30.00 232.50 29.06 A2 28.50 28.00 30.50 28.00 28.50 28.50 28.50 28.50 229.00 28.63 A3 29.50 28.50 28.00 29.50 30.00 28.50 28.50 28.00 230.50 28.81 Total 116.00 115.00 116.50 115.00 117.00 116.50 115.50 115.00 926.50 Rataan 29.00 28.75 29.13 28.75 29.25 29.13 28.88 28.75 28.95

Lampiran 20 : Sidik Ragam Umur Berbunga

Sumber db JK KT Fhit Ket F.05

Blok 7 1.12 0.16 0.28 tn 2.49

Perlakuan 3 2.15 0.72 1.26 tn 3.07

Linier 1 0 0 0 - 4.32

Kuadratik 1 0 0 0 - 4.32

Kubik 1 0 0 0 - 4.32

Error 21 11.91 0.57

Total 31 15.18

FK 26825.07

KK 2.60%

Lampiran 21 : Data Pengamatan Umur Panen (HST)

Perlakuan Blok Total Rataan

I II III IV V VI VII VIII

A0 75.00 75.50 74.50 75.00 75.50 76.00 75.50 73.50 600.50 75.06 A1 75.50 74.50 75.50 74.50 75.00 75.00 74.50 76.00 600.50 75.06 A2 74.50 74.50 76.00 73.50 73.50 73.50 73.50 73.50 592.50 74.06 A3 75.50 73.50 73.00 75.50 76.00 73.00 73.00 73.00 592.50 74.06 Total 300.50 298.00 299.00 298.50 300.00 297.50 296.50 296.00 2386.00 Rataan 75.13 74.50 74.75 74.63 75.00 74.38 74.13 74.00 74.56

Lampiran 22 : Sidik Ragam Umur Panen

Sumber db JK KT Fhit Ket F.05

Blok 7 4.38 0.63 0.64 tn 2.49

Perlakuan 3 8.00 2.67 2.73 tn 3.07

Linier 1 0 0 0 - 4.32

Kuadratik 1 0 0 0 - 4.32

Kubik 1 0 0 0 - 4.32

Error 21 20.50 0.98

Total 31 32.88

FK 177906.13

Lampiran 23: Data Pengamatan Jumlah Polong Berisi Pertanaman (polong)

Perlakuan Blok Total Rataan

I II III IV V VI VII VIII

A0 3.50 5.00 4.00 4.00 3.50 4.50 3.50 4.50 32.50 4.06 A1 5.00 3.50 3.00 3.50 5.00 6.50 6.50 7.50 40.50 5.06 A2 6.50 10.50 9.00 7.00 8.00 10.50 9.00 8.50 69.00 8.63 A3 6.50 7.00 6.00 6.50 8.00 8.00 6.00 6.50 54.50 6.81 Total 21.50 26.00 22.00 21.00 24.50 29.50 25.00 27.00 196.50 Rataan 5.38 6.50 5.50 5.25 6.13 7.38 6.25 6.75 6.14 Lampiran 24 : Sidik Ragam Jumlah Polong Berisi Pertanaman

Sumber db JK KT Fhit Ket F.05

Blok 7 15.30 2.19 1.80 tn 2.49

Perlakuan 3 96.84 32.28 26.61 * 3.07

linier 1 55.81 55.81 46.01 * 4.32

kuadratik 1 15.82 15.82 13.04 * 4.32

kubik 1 25.20 25.20 20.77 * 4.32

Error 21 25.48 1.21

Total 31 137.62

FK 1206.63

KK 17.94%

Lampiran 25 : Data Pengamatan Jumlah Polong Hampa Pertanaman (polong)

Perlakuan Blok Total Rataan

I II III IV V VI VII VIII

A0 0.00 0.00 0.00 0.00 0.00 0.00 1.00 0.00 1.00 0.13 A1 0.50 0.00 0.50 0.50 0.00 0.00 1.00 1.00 3.50 0.44 A2 0.50 0.50 0.50 0.00 0.00 0.00 2.00 0.00 3.50 0.44 A3 0.00 0.00 0.00 1.50 0.50 1.00 0.00 0.00 3.00 0.38 Total 1.00 0.50 1.00 2.00 0.50 1.00 4.00 1.00 11.00 Rataan 0.25 0.13 0.25 0.50 0.13 0.25 1.00 0.25 0.34 Lampiran 26 : Sidik Ragam Jumlah Polong Hampa Pertanaman

Sumber db JK KT Fhit Ket F.05

Blok 7 2.34 0.33 1.32 tn 2.49

Perlakuan 3 0.53 0.18 0.70 tn 3.07

Linier 1 0 0 0 - 4.32

Kuadratik 1 0 0 0 - 4.32

Kubik 1 0 0 0 - 4.32

Error 21 5.34 0.25

Total 31 8.22

FK 3.78

Lampiran 27 : Data Pengamatan Jumlah Biji Pertanaman (biji)

Perlakuan Blok Total Rataan

I II III IV V VI VII VIII

A0 6.50 9.00 7.00 8.00 7.00 8.50 7.50 8.00 61.50 7.69 A1 9.00 6.00 5.50 7.50 11.00 12.50 12.00 14.50 78.00 9.75 A2 15.50 22.50 18.00 15.50 17.00 20.50 21.50 19.50 150.00 18.75 A3 13.50 14.50 12.00 12.50 15.50 17.00 12.00 12.50 109.50 13.69 Total 44.50 52.00 42.50 43.50 50.50 58.50 53.00 54.50 399.00 Rataan 11.13 13.00 10.63 10.88 12.63 14.63 13.25 13.63 12.47 Lampiran 28 : Sidik Ragam Jumlah Biji Pertanaman

Sumber db JK KT Fhit Ket F.05

Blok 7 58.59 8.37 1.86 tn 2.49

Perlakuan 3 569.53 189.84 42.26 * 3.07

Linier 1 291.60 291.60 64.91 * 4.32

Kuadratik 1 101.53 101.53 22.60 * 4.32

Kubik 1 176.40 176.40 39.26 * 4.32

Error 21 94.34 4.49

Total 31 722.47

FK 4975.03

KK 17.00%

Lampiran 29: Data Pengamatan Bobot Biji Pertanaman (g)

Perlakuan Blok Total Rataan

I II III IV V VI VII VIII

A0 0.60 0.80 0.55 0.65 0.75 0.75 0.55 0.60 5.25 0.66 A1 0.90 0.45 0.35 0.55 1.10 1.15 0.95 1.45 6.90 0.86 A2 1.70 2.65 1.95 1.75 1.80 2.15 1.95 2.00 15.95 1.99 A3 1.30 1.55 1.25 0.90 1.25 1.40 1.20 1.25 10.10 1.26 Total 4.50 5.45 4.10 3.85 4.90 5.45 4.65 5.30 38.20 Rataan 1.13 1.36 1.03 0.96 1.23 1.36 1.16 1.33 1.19 Lampiran 30 : Sidik Ragam Bobot Biji Pertanaman

Sumber db JK KT Fhit Ket F.05

Blok 7 0.65 0.09 1.48 tn 2.49

Perlakuan 3 8.35 2.78 44.32 * 3.07

Linear 1 3.48 3.48 55.42 * 4.32

Kuadratik 1 1.76 1.76 28.03 * 4.32

Kubik 1 3.11 3.11 49.52 * 4.32

Error 21 1.32 0.06

Total 31 10.32

FK 45.60

Lampiran 31: Data Pengamatan Bobot 100 Biji (g)

Perlakuan Blok Total Rataan

I II III IV V VI VII VIII

A0 9.45 8.88 7.75 7.08 10.72 9.85 7.14 7.50 68.35 8.54 A1 7.82 7.57 6.34 6.50 8.06 9.62 8.11 10.88 64.88 8.11 A2 11.00 9.86 10.92 11.22 10.61 10.33 8.76 9.73 82.42 10.30 A3 9.83 10.69 10.33 7.18 8.13 7.51 9.93 9.94 73.53 9.19 Total 38.09 37.00 35.34 31.98 37.50 37.30 33.94 38.05 289.17 Rataan 9.52 9.25 8.83 7.99 9.38 9.32 8.48 9.51 9.04 Lampiran 32 : Sidik Ragam Bobot 100 Biji

Sumber db JK KT Fhit Ket F.05

Blok 7 8.55 1.22 0.67 tn 2.49

Perlakuan 3 21.81 7.27 3.97 * 3.07

Linear 1 6.83 6.83 3.73 tn 4.32

Kuadratik 1 0.92 0.92 0.50 tn 4.32

Kubik 1 14.06 14.06 7.68 * 4.32

Error 21 38.46 1.83

Total 31 68.82

FK 2613.10

KK 14.98%

Lampiran 33 : Data Pengamatan Jumlah Klorofil a (mg/l)

Perlakuan BLOK Total Rataan

I II III IV V VI VII VIII

A0 1.58 1.89 1.99 1.29 1.79 1.84 1.44 0.85 12.67 1.58375 A1 1.33 1.93 1.25 1.56 1.99 1.46 1.39 1.55 12.46 1.5575 A2 1.13 1.39 1.85 1.29 1.48 1.63 2.55 1.84 13.16 1.645 A3 2.19 2.18 2.09 2.21 2.11 2.21 2.24 2.28 17.51 2.18875 Total 6.23 7.39 7.18 6.35 7.37 7.14 7.62 6.52 55.8 Rataan 6.23 7.39 7.18 6.35 7.37 7.14 7.62 6.52 1.74375 Lampiran 34 : Sidik Ragam Jumlah Klorofil a

Sumber db JK KT Fhit Ket F.05

Blok 7 0.49 0.07 0.60 tn 2.49

Perlakuan 3 2.14 0.71 6.15 * 3.07

Linier 1 1.45 1.45 12.45 * 4.32

Kuadratik 1 0.65 0.65 5.59 * 4.32

Kubik 1 0.05 0.05 0.40 tn 4.32

Error 21 2.44 0.12

Total 31 5.08

FK 97.30125 KK 19.55%

Lampiran 35: Data Pengamatan Jumlah Klorofil b (mg/l)

Perlakuan BLOK Total Rataan

I II III IV V VI VII VIII

A0 0.45 0.49 0.58 0.35 0.55 0.55 0.4 0.27 3.64 0.455 A1 0.39 0.55 0.32 0.4 0.7 0.42 0.37 0.43 3.58 0.4475 A2 0.28 0.41 0.6 0.31 0.41 0.51 0.84 0.6 3.96 0.495 A3 1.14 0.8 0.68 1.02 0.6 0.63 0.75 0.73 6.35 0.79375 Total 2.26 2.25 2.18 2.08 2.26 2.11 2.36 2.03 17.53 Rataan 2.26 2.25 2.18 2.08 2.26 2.11 2.36 2.03 0.547813 Lampiran 36 : Sidik Ragam Jumlah Klorofil b

Sumber db JK KT Fhit Ket F.05

Blok 7 0.02 0.00 0.10 tn 2.49

Perlakuan 3 0.66 0.22 7.00 * 3.07

Linier 1 0.45 0.45 14.50 * 4.32

Kuadratik 1 0.19 0.19 6.01 * 4.32

Kubik 1 0.02 0.02 0.49 tn 4.32

Error 21 0.66 0.03

Total 31 1.33

FK 9.603153 KK 32.25%

Lampiran 37: Data Pengamatan Jumlah Klorofil Total (mg/l)

Perlakuan BLOK Total Rataan

I II III IV V VI VII VIII

A0 2.03 2.38 2.57 1.64 2.34 2.39 1.84 1.12 16.31 2.03875 A1 1.72 2.48 1.57 1.96 2.69 1.88 1.76 1.98 16.04 2.005 A2 1.41 1.80 2.45 1.60 1.89 2.14 3.39 2.44 17.12 2.14 A3 3.33 2.98 2.77 3.23 2.71 2.84 2.99 3.01 23.86 2.9825 Total 8.49 9.64 9.36 8.43 9.63 9.25 9.98 8.55 73.33 Rataan 8.49 9.64 9.36 8.43 9.63 9.25 9.98 8.55 2.291563 Lampiran 38 : Sidik Ragam Jumlah Klorofil Total

Sumber db JK KT Fhit Ket F.05

Blok 7 0.63 0.09 0.37 tn 2.49

Perlakuan 3 5.17 1.72 7.04 * 3.07

Linier 1 3.52 3.52 14.37 * 4.32

Kuadratik 1 1.54 1.54 6.27 * 4.32

Kubik 1 0.12 0.12 0.47 tn 4.32

Error 21 5.14 0.24

Total 31 10.94

FK 168.0403 KK 21.59%

DAFTAR PUSTAKA

Afzal, I., S.M.A. Basra, N. Ahmad, and M. Farooq. 2005. Optimization of hormonal priming techniques for alleviation of salinity stress in wheat (Triticum aestivum L.). Cardeno de Pesquisa Sėr. Bio., Santa Cruz do sul. 17(1):95-109.

Afzal, I., N. Islam, F. Mahmood, A. Hameed, S. Irfan, and G. Ahmad. 2004. Enhancement of germination and emergence of canola seeds by different

priming techniques. Cardeno de Pesquisa Sėr. Bio., Santa Cruz do sul.

16(1):19-34.

Agung, T dan A. Y. Rahayu. 2004. Analisis Efisiensi Serapan N, Pertumbuhan, dan Hasil Beberapa Kultivar Kedelai Unggul Baru dengan Cekaman Kekeringan dan Pemberian Pupuk Hayati. Agrosains 6(2): 70-74, Semarang.

Amor NB, Hamed KB, Ahmed D, Grigon C, Chedly-Abdelly (2005). Physiological and antioxidant responses of the potential halophyte Chrithmum maritimum to salinity. Plant Sci. 168(4): 889-899.

Andarwulan, N., dan S. Koswara. 1992. Kimia Vitamin. Rajawali, Jakarta.

Andrianto, T. T., dan N. Indarto, 2004. Budidaya dan Analisis Usaha Tani Kedelai, Kacang Hijau dan Kacang Panjang. Absolut, Yogyakarta.

Arora, A., R.K. Sairam and G.C. Srivastava. 2002. Oxidative Stress And Antioxidative System In Plants. Current Science. 82(10):1227-1238. Atman, 2009. Strategi Peningkatan Produksi Kedelai di Indonesia. Jurnal Ilmiah

Tambua. Vol VIII No. 1 : 39-45

Basra, S.M.A., M. Farooq, A. Wahid and M.B. Khan. 2006. Rice seed invigoration by hormonal and vitamin priming. Seed Sci. & Technol., 34:753-758.

Basri, H., 1991. Pengaruh Stres Garam Terhadap Pertumbuhan dan Produksi Empat Varietas Kedelai. Thesis Program Pascasarjana IPB, Bogor.

Beltagi, M. S., 2008. Exogenous Ascorbic Acid (Vitamin C) Induced Anabolic Changes For Salt Tolerance In Chick Pea (Cicer Arietinum L.) Plants. African Journal of Plant Science Vol. 2 (10), pp. 118-123, October 2008. Bonhert, H. J., Nelson D. E., Jensen RG. 1995. Adaptations to Environmental

Stresses. The plant Cell 7: 1099-111.

Chen, Z., and Gallie, D. R. 2004. The Absorbic Acid Redox State Controls Guard Cell Signaling an Stomata Movement. The Plant Cell 16: 1143-1162. Conklin, P.L., and C. Barth. 2004. Ascorbic acid, a familiar small molecule

interwined in the response of plants to ozone, pathogenes, and the onset of senescence. Plant Cell and Environment. 27:656-970.

Damardjati, D. S., Marwoto, D. K. S.Swastika, D. M. Arsyad, dan Y. Hilman. 2005. Prospek dan Arah Pengembangan Agribisnis Kedelai. Badan Litbang Pertanian, Departemen Pertanian, Jakarta

Departemen Pertanian. 1990. Upaya Peningkatan Produksi Kedelai. Departemen Pertanian, Balai Informasi Pertanian, Sumatera Utara, Medan.

Departemen Pertanian.1996. Direktorat Jenderal Tanaman Pangan dan Hortikultura. Budidaya Tanaman Palawijaya Pendukung Program Makanan Tambahan Anak Sekolah (PMT-AS). Jakarta.

Dolatabadian, A., and S. A. M. Modarressanavy. 2008. Effect of the ascorbic acid, pyridoxine and hydrogen peroxide treatments on germination, catalase activity, protein and malondialdehyde content of three oil seeds. Not. Bot. Hort. Agrobot. Cluj. 36(2):61-66.

Drevan, 2011. http://drevan.blogspot.com/2011/06/makalah-vitamin-c-asam-askorbat.html. Diakses tanggal 20 Februari 2012.

El-Zawahry, A.M. and A.M. Hamada. 1994. The Effect of Soaking Seeds in ascorbic acid, pyridoxine or thiamine solutions on nematode (Meloidogyne javanica) infection and on some metabolic processes in egg plant. Assiut journal of Agricultural Science. 25(3):233-247.

Farooq, M., S.M.A. Basra, and A. wahid. 2006a. Priming of field-sown rice seed enhances germination seedling establishment, allometry and yield. Plant Growth Regul. 49:285-294.

Farooq, M., S.M.A. Basra, R.Tabassum and I. Afzal. 2006b. Enhancing the performance of direct seeded fine rice by seed priming. Plant Prod Sci. 9(4):446-445.

Farooq, M., S.M.A. Basra, and N. Ahmad. 2007. Improving the performance of transplanted rice by seed priming. Plant Growth Regul. 51:129-137. Gill, S. S., and Tuteja, N., 2010. Reactive Oxygen Species And Antioxidant

Machinery In Abiotic Stress Tolerance In Crop Plants. Plant Physiology and Biochemistry 48 (2010) 909-930.

Greenway, H., and Munns, R. 1980. Mechanisms of Salt Tolerance in Non Halophytes. Ann. Rev. Plant Physiol 31:149-160.

Hanafiah, K.A. 2005. Dasar-dasar Ilmu Tanah. Raja Grafindo persada, Jakarta. hlm: 338-341

Hidayat, O. O., 1985 dalam Somaatmadja S., M. Ismunadji, Sumarno, M. Syam, S. O. Manurung dan Yuswadi. 1985. Kedelai : Morfologi Tanaman Kedelai. Pusat Penelitian dan Pengembangan Tanaman Pangan, Bogor. http://warintek.ristek.go.idpertanian/kedelai.pdf, 2008. Diakses tanggal 03

Februari 2011.

Kong-ngern K, Daduang S, Wongkham C, Bunnag S, Kosittrakun M, Theerakulpisut P (2005). Protein profile in response to salt stress in leaf sheaths of rice seedlings. Sci. Asia 31: 403-408.

Kusnawidjaja, K., 1987. Biokimia. Alumni, Bandung.

Malau, S., 1995. Biometrika Genetik Dalam Pemuliaan Tanaman. Universitas HKBP Nomensen, Medan.

Mangoendidjojo, 2003. Dasar-dasar Pemuliaan Tanaman. Kanisius, Yogyakarta. Miyake C, Asada K (1992). Thylakoid Bound Ascorbate Peroxidase In Spinach

Chloroplasts And Photoreduction Of Its Primary Oxidation Product, Monodehydroascorbate Radicals In The Thylakoids. Plant Cell Physiol. 33: 541-553.

Mursito. D., 2003. heritabilitas dan sidik lintas karakter fenotipik beberapa galur kedelai (Glycine max (L) Merrill). Fakultas Pertanian, Universitas Sebelas Maret. Surakarta.

Nahed, G. A, S. Taha Lobna and M. M. Ibrahim Soad. Some Studies on the Effect of Putrescine, Ascorbic Acid and Thiamine on Growth, Flowering and Some Chemical Constituents of Gladiolus Plants at Nubaria. Ozean Journal of Applied Sciences 2(2), 2009 Dalam Smirnoff, N., 1996. The Function and Metabolism of Ascorbic Acid in Plants. http://jxb.oupjournals.org/egi/content/full.

Noor, M. 2004. Lahan Rawa, Sifat dan Pengolahan Tanah Bermasalah Sulfat Masam. Raja Grafindo Persada, Jakarta. hlm: 144-145.

Phang, T.H., G. Shao and H.M. Lam. 2008. Salt tolerance in Soybean. Journal of Integrative Plant Biology 50 (10) : 1196-1212.

Poehlman, J. M., and D. A., Sleper. 1995. Beerding Field Crops. Pamina Publishing Coorporation, New Delhi.

Poedjiadi, A., 1994. Dasar-Dasar Biokimia. UI Press, Jakarta.

Rosmarkam, A dan N.W Yuwono. 2002. Ilmu Kesuburan Tanah. Kanisius, Yogyakarta.hlm: 198-202.

Rubatzky, V. E., dan M. Yamaguchi. 1998. Sayuran Dunia, Prinsip, Produksi, dan Gizi. Edisi Kedua. Penerjemah C. Herison. ITB Press, Bandung.

Rukmana, R. & Y. Yuniarsih, 2004. Kedelai Budidaya dan Pasca Panen. Kanisius. Yogyakarta.

Sipayung, R., 2003. Stress Garam dan Mekanisme Toleransi Tanaman. Fakultas Pertanian Jurusan Budidaya Pertanian, Universitas Sumatera Utara, Medan.

Shaddad, M. A., A.F. radi., A.M., Abdel-Rahman., and M.M. Azooz. 1989. Response of seeds of Lupinus termis and Vicia faba to the interactive effect of salinity and ascorbic acid or pyridoxine. Plant and Soil. 177-183. Shalata, A. and P. M. Neuman, 2001. Exogenous Ascorbic Acid (Vitamin C)

Increases Resistance to Salt Stress and Reduces Lipid Peroxidation. Journal of Experimental Botany., 52(346): 2207-2211.

Sharma, O. P., 1993. Plant Taxonomy. Tata Mc Graw Hill Publishing Company Limited, New Delhi.

Slinger, D. and Tenison, K. 2005. Salinity Glove Box Guide - NSW Murray and Murrumbidgee Catchments. An initiative of the Southern Salt Action Team, NSW Department of Primary Industries.

Smirnoff, N., 1996. The Function and Metabolism of Ascorbic Acid in Plants. http://jxb.oupjournals.org/egi/content/full.

Suherman, V.E. 2005. Penggunaan antioksidan pada beberapa lot benih yang berbeda vigornya untuk meningkatkan viabilitas benih bunga matahari. Skripsi. Dept. AGH. IPB. Bogor. 36hal.

Winarno, F. G., 1992. Kimia Pangan dan Gizi. Gramedia, Jakarta.

Wolucka, B. A., Goossens, A., and Inze, D., 2005. Methyl Jasmonate Stimulates the de novo Biosynthesis of Vitamin C in Plant Cell Suspensions, J. Exp. Botany, 56: 2527-2538.

Yuniati, R., 2004. Penapisan Galur Kedelai Glycine max (L.) Merrill Toleran Terhadap Nacl Untuk Penanaman Di Lahan Salin.

BAB III

BAHAN DAN METODE PENELITIAN Tempat dan Waktu Penelitian

Penelitian ini dilaksanakan di Lahan Percobaan Desa Paluh 80 Kecamatan Percut Sei Tuan Kabupaten Deli Serdang dengan ketinggian tempat ±1.5 m dpl, yang dilakukan pada bulan Maret 2012 sampai dengan Juni 2012.

Bahan dan Alat

Bahan yang digunakan dalam penelitian ini adalah benih kedelai varietas Grobogan generasi F3 hasil seleksi terhadap salinitas, asam askorbat, pupuk (Urea, TSP, KCl), kompos sebagai penutup lubang tanam, Insektisida Decis 2,5 EC 0,5cc/L air, Fungisida Dithane M-45 1cc/L air, air untuk menyiram tanaman serta bahan lain yang mendukung penelitian ini.

Alat yang digunakan adalah cangkul untuk membersihkan lahan dari gulma dan sampah, meteran untuk mengukur luas lahan dan tinggi tanaman, handsprayer sebagai alat aplikasi insektisida dan fungisida, gembor, pacak sampel, timbangan analitik, oven, alat tulis dan kertas label serta alat lain yang mendukung penelitian ini.

Metode Penelitian

Rancangan percobaan yang digunakan adalah Rancangan Acak Kelompok (RAK) Non Faktorial yang terdiri dari 4 taraf perlakuan asam askorbat yaitu :

A0 : 0 ppm (Kontrol) A1 : 200 ppm

A2 : 400 ppm A3 : 600 ppm

Jumlah ulangan =8

Jumlah plot = 32

Jarak antar blok = 50 cm Jarak antar plot = 30 cm

Jarak tanam = 20 x 30 cm

Jumlah tanaman/ plot = 20 tanaman Jumlah sampel/ plot = 4 tanaman Jumlah sampel seluruhnya = 128 tanaman Jumlah tanaman seluruhnya = 640 tanaman

Ukuran plot = 1,1 m x 1 m

Data hasil penelitian dianalisis dengan sidik ragam berdasarkan model linier sebagai berikut :

Yij = µ + ρi + σj + εij

i = 1,2,3,4,5,6,7,8 j=1,2,3,4 Dimana :

Yij = Hasil pengamatan pada blok ke-I dalam perlakuan ke-j

µ

= Nilai tengah umum

ρi = pengaruh blok ke-i

σj = pengaruh perlakuan ke-j

εij = pengaruh galat terhadap blok ke-i pada perlakuan ke-j

Hasil data yang dianalisis dalam sidik ragam berpengaruh nyata, dilanjutkan dengan uji Jarak Berganda Duncan (DMRT) pada taraf 5%.

BAB IV

PELAKSANAAN PENELITIAN Persiapan Lahan

Areal pertanaman yang akan digunakan, dibersihkan dari gulma yang tumbuh pada areal tersebut. Tanah diolah kemudian dibuat plot dengan ukuran 1.1 m x 1 m. Dibuat parit drainase dengan jarak antar plot 30 cm dan jarak antar blok 50 cm untuk mengurangi masuknya air kelahan penelitian. Kemudian tanah plot digemburkan menggunakan cangkul.

Penanaman Benih

Penanaman dilakukan dengan membuat lubang tanam diplot yang telah dibuat dengan kedalaman ± 2cm, kemudian dimasukkan 1 benih per lubang tanam dan ditutup dengan kompos. Jarak tanam yang digunakan adalah 20 cm x 30 cm. Pemupukan

Pemupukan dilakukan sesuai dengan dosis anjuran kebutuhan pupuk kedelai yaitu 100 kg Urea/ha (0,6 g/lubang tanam), 200 kg TSP/ha (1,2 g/lubang tanam), dan 100 kg KCl/ha (0,6 g/lubang tanam). Pemupukan TSP dan KCL dilakukan 1 minggu sebelum tanam dan pupuk Urea dilakukan 2 minggu setelah tanam.

Aplikasi Asam Askorbat

Asam askorbat diaplikasikan sebanyak 3 kali yaitu pada saat tanaman berumur 2 MST, 4 MST dan 6 MST dengan menyemprotkan pada daun tanaman. Pemeliharaan Tanaman

Penyiraman dilakukan dua kali sehari yaitu pada pagi dan sore hari, apabila terjadi hujan tidak dilakukan penyiraman dan diperkirakan telah mencukupi kebutuhan tanaman atau disesuaikan dengan kondisi di lapangan. Penyiraman dilakukan dengan menggunakan gembor.

Penyulaman

Penyulaman dilakukan apabila dalam satu lubang tanam tidak ada benih yang tumbuh atau pertumbuhannya abnormal. Penyulaman dilakukan paling lama 2 MST.

Penyiangan

Penyiangan dilakukan 3 minggu setelah tanam dan seterusnya dilakukan setiap 1 minggu sekali atau disesuaikan dengan perkembangan gulma yang ada di areal penelitian secara manual dengan mencabut gulma atau dengan menggunakan garu. Penyiangan dilakukan sesuai dengan kondisi di lapangan.

Pembumbunan

Agar tanaman tidak mudah rebah dan berdiri tegak serta kokoh, pembumbunan dilakukan dengan cara membuat gundukan tanah di sekeliling tanaman.

Pengendalian Hama dan Penyakit

Pengendalian hama dan penyakit dilakukan dengan penyemprotan insektisida dengan dosis 0,5 cc/liter air, sedangkan pengendalian penyakit dilakukan dengan menyemprot fungisida dengan dosis 1 cc/liter air. Penyemprotan dilakukan pada saat 3 minggu setelah tanam dan selanjutnya tergantung dari intensitas serangan hama dan penyakit.

Panen dilakukan dengan cara dipetik satu persatu dengan menggunakan tangan. Adapun kriteria panen yaitu adalah ditandai dengan kulit polong sudah berwarna kuning kecoklatan sebanyak 95% dan daun sudah berguguran tetapi bukan karena adanya serangan hama dan penyakit.

Pengamatan Parameter Tinggi Tanaman (cm)

Pengukuran tinggi tanaman dilakukan dari pangkal batang sampai titik tumbuh dengan menggunakan meteran. Pengukuran tinggi tanaman dilakukan sejak tanaman berumur 2 MST hingga 4 MST.

Jumlah Cabang (cabang)

Penghitungan jumlah cabang dilakukan dengan menghitung jumlah cabang yang muncul di sekitar batang utama. Penghitungan jumlah cabang dilakukan sejak tanaman berumur 3 MST hingga 5 MST.

Umur Berbunga (hari)

Pengamatan umur berbunga dilakukan dengan menghitung umur tanaman pada saat tanaman sudah berbunga.

Umur Panen (hari)

Pengamatan umur panen dilakukan dengan menghitung umur panen pada saat tanaman telah memiliki polong yang telah mencapai warna polong matang ± 95% yang ditandai warna kecoklatan pada polong.

Jumlah Polong Berisi Pertanaman (polong)

Jumlah polong berisi dihitung pada setiap tanaman yaitu polong yang menghasilkan biji. Perhitungan dilakukan pada saat tanaman telah dipanen.

Dihitung jumlah polong hampa pada setiap tanaman, yaitu polong yang tidak berisi biji. Perhitungan dilakukan pada saat tanaman telah dipanen.

Jumlah Biji Pertanaman (biji)

Penghitungan dilakukan saat stadia R8 (matang penuh / 95 % dari polong

telah mencapai warna polong matang) atau saat panen dilakukan. Untuk mengetahui jumlah biji pada tiap polong tanaman dilakukan dengan membuka / mengupas tiap polong, lalu dihitung semua biji yang ada pada polong tersebut. Bobot Biji Pertanaman (g)

Diambil seluruh biji dari masing-masing perlakuan pada tanaman sampel dengan menggunakan timbangan analitik. Penimbangan dilakukan dengan kondisi biji kering.

Bobot 100 biji (g)

Diambil 100 biji dari masing-masing perlakuan pada tanaman sampel. Untuk memperoleh 100 biji kedelai dilakukan pengambilan biji secara acak. Jumlah Klorofil Daun (g/ml)

Metode yang digunakan dalam menghitung jumlah klorofil a dan b adalah metode Henry dan Grime (1993), dengan langkah sebagai berikut :

- Digerus daun segar sebanyak 0.1 gram dengan mortal, dan menggunakan aceton 80% sebanyak 10 ml.

- Ekstrak disaring dengan kertas saring dan dipindahkan ke dalam botol.

- Absorbansi diukur pada panjang gelombang 645 nm dan panjang gelombang 663 nm.

- Total klorofil, klorofil a, dan klorofil b dihitung dengan menggunakan rumus

Klorofil a = (12.7 x A663) – (2.69 x A645) 10

BAB V

HASIL DAN PEMBAHASAN

Hasil

Dari hasil penelitian dan pengujian sidik ragam ternyata perlakuan berpengaruh nyata terhadap tinggi tanaman, jumlah cabang, jumlah polong berisi pertanaman, jumlah biji pertanaman, bobot biji pertanaman, bobot 100 biji, dan jumlah klorofil daun. Tetapi tidak berpengaruh nyata terhadap umur berbunga, umur panen, dan jumlah polong hampa pertanaman.

Tinggi Tanaman (cm)

Data pengamatan tinggi tanaman 3 MST dan 4 MST dan daftar sidik ragam tinggi tanaman dapat dilihat pada lampiran 9 sampai 12. diketahui bahwa perlakuan berbeda nyata terhadap tinggi tanaman pada 3 MST dan 4 MST. Rataan tinggi tanaman dapat dilihat pada Tabel 1.

Tabel 1. Rataan Tinggi Tanaman Pada 3 MST dan 4 MST

Perlakuan Tinggi Tanaman (cm)

3 MST 4 MST

A0 14.41ab 18.87a

A1 13.93b 18.12b

A2 14.79a 19.04a

A3 14.96a 19.29a

Keterangan : Angka yang diikuti huruf yang sama pada kolom yang sama menunjukkan tidak berbeda nyata pada Uji Duncan (Duncan’s Multiple Range Test/DMRT) pada taraf 5 %

Pada pengamatan 4 MST perlakuan A1 berbeda nyata terhadap semua perlakuan. Dari tabel 1 dapat dilihat bahwa rataan tinggi tanaman tertinggi pada perlakuan A3 yaitu : 14.96 cm, dan 19.29 cm. Sedangkan rataan tinggi tanaman terendah pada perlakuan A1 yaitu : 13.93 cm, dan 18.12 cm.

Grafik tinggi tanaman 3 MST dan 4 MST dapat dilihat pada gambar dibawah ini

Gambar 3. Grafik Pertambahan Tinggi Tanaman 3 MST dan 4 MST

Pada Gambar 3 dapat dilihat bahwa pengaruh perlakuan asam askorbat terhadap tinggi tanaman menunjukkan hubungan linier positif, yang artinya dengan menambahkan dosis asam askorbat cenderung meningkatkan tinggi tanaman pada 3 dan 4 MST.

Jumlah Cabang (cabang)

Dari data penelitian dan analisis sidik ragam yang dapat dilihat pada lampiran 13 sampai 18, diketahui bahwa perlakuan berbeda nyata terhadap jumlah cabang pada 5 MST tetapi tidak berbeda nyata terhadap 3 dan 4 MST. Rataan jumlah cabang tanaman dapat dilihat pada tabel 2.

Tabel 2. Rataan Jumlah Cabang Pada 3, 4 dan 5 MST (cabang)

Perlakuan Jumlah Cabang (cabang)

3 MST 4 MST 5 MST

A0 1.00 2.00 4.06b

A1 1.06 2.06 4.19b

A2 1.13 2.06 4.63a

A3 1.06 2.13 4.38ab

Keterangan : Angka yang diikuti huruf yang sama pada kolom yang sama menunjukkan tidak berbeda nyata pada Uji Duncan (Duncan’s Multiple Range Test/DMRT) pada taraf 5 %

y = 0.0012x + 14.146 r = 0.245

y = 0.0011x + 18.503 r = 0.097

0.00 5.00 10.00 15.00 20.00 25.00

0 200 400 600

Ti n g g i Tan am an (c m )

Dosis Asam Askorbat (ppm)

3 MST

Pada pengamatan jumlah cabang 5 MST, perlakuan A2 berbeda nyata terhadap A0 dan A1, dan tidak berbeda nyata terhadap A3. Dari tabel 2 diketahui bahwa rataan jumlah cabang terbanyak terdapat pada perlakuan A2 (4.63 cabang) dan terendah pada perlakuan A0 (4.06 cabang).

Grafik jumlah cabang 5 MST dapat dilihat pada gambar dibawah ini

Gambar 4. Grafik Jumlah Cabang 5 MST

Pada Gambar 4 dapat dilihat bahwa pengaruh perlakuan asam askorbat terhadap jumlah cabang menunjukkan hubungan linier positif, artinya dengan menambahkan dosis asam askorbat cenderung meningkatkan jumlah cabang pada 5 MST.

Umur Berbunga (hari setelah tanam/ HST)

Dari data penelitian dan analisis sidik ragam dapat dilihat pada lampiran 19 dan 20, diketahui bahwa perlakuan berpengaruh tidak nyata terhadap parameter umur berbunga. Rataan umur berbunga dapat dilihat pada tabel 3.

y = 0.0007x + 4.1063 r = 0.276

4 4.1 4.2 4.3 4.4 4.5 4.6 4.7

0 200 400 600

Ju m lah C ab an g ( cab an g )

Tabel 3. Rataan Umur Berbunga (HST)

Perlakuan Umur Berbunga (HST)

A0 29.31

A1 29.06

A2 28.63

A3 28.81

Umur Panen (HST)

Dari data penelitian dan analisis sidik ragam dapat dilihat pada lampiran 21 dan 22, diketahui bahwa perlakuan berpengaruh tidak nyata terhadap parameter umur panen. Rataan umur panen dapat dilihat pada tabel 4.

Tabel 4. Rataan Umur Panen (HST)

Perlakuan Umur Panen (HST)

A0 75.06

A1 75.06

A2 74.06

A3 74.06

Jumlah Polong Berisi Pertanaman (polong)

Dari data penelitian dan analisis sidik ragam dapat dilihat pada lampiran 23 dan 24, diketahui bahwa perlakuan berpengaruh nyata terhadap jumlah polong berisi pertanaman. Rataan jumlah polong berisi pertanaman dapat dilihat pada tabel 5.

Tabel 5. Rataan Jumlah Polong Berisi Pertanaman (polong)

Perlakuan Jumlah Polong Berisi Pertanaman

A0 4.06c

A1 5.06c

A2 8.63a

A3 6.81b

Keterangan : Angka yang diikuti huruf yang sama pada kolom yang sama menunjukkan tidak berbeda nyata pada Uji Duncan (Duncan’s Multiple Range Test/DMRT) pada taraf 5 %

Dari data diatas diketahui bahwa A2 berbeda nyata terhadap semua perlakuan. Rataan jumlah polong berisi pertanaman paling banyak pada perlakuan A2 yaitu 8.63 polong dan paling sedikit pada perlakuan A0 yaitu 4.06 polong.

Grafik jumlah polong berisi pertanaman dapat dilihat pada gambar dibawah ini

Gambar 5. Grafik Jumlah Polong Berisi Pertanaman

Pada Gambar 5 dapat dilihat bahwa pengaruh perlakuan asam askorbat terhadap jumlah polong berisi pertanaman menunjukkan kurva kuadratik dimana pengaruh dosis asam askorbat mencapai jumlah polong berisi maksimum pada dosis 412.5 ppm.

Jumlah Polong Hampa Pertanaman (polong)

Dari data penelitian dan analisis sidik ragam dapat dilihat pada lampiran 25 dan 26, diketahui bahwa perlakuan berpengaruh tidak nyata terhadap jumlah polong hampa pertanaman. Rataan jumlah polong hampa pertanaman dapat dilihat pada tabel 6.

y = -2E-05x2 _{+ 0.0165x + 3.6656}

R2 _{= 0.7397}

0 1 2 3 4 5 6 7 8 9 10

0 200 400 600

Ju m lah Po lo n g B e ri si ( p o lo n g )

Dosis Asam Askorbat (ppm)

Tabel 6. Rataan Jumlah Polong Hampa Pertanaman (polong)

Perlakuan Jumlah Polong Hampa Pertanaman

A0 0.13

A1 0.44

A2 0.44

A3 0.38

Jumlah Biji Pertanaman (biji)

Dari data penelitian dan analisis sidik ragam dapat dilihat pada lampiran 27 dan 28, diketahui bahwa perlakuan berpengaruh nyata terhadap jumlah biji pertanaman. Rataan jumlah biji pertanaman dapat dilihat pada tabel 7.

Tabel 7. Rataan Jumlah Biji Pertanaman (biji)

Perlakuan Rataan

A0 7.69c

A1 9.75c

A2 18.75a

A3 13.69b

Keterangan : Angka yang diikuti huruf yang sama pada kolom yang sama menunjukkan tidak berbeda nyata pada Uji Duncan (Duncan’s Multiple Range Test/DMRT) pada taraf 5 %

Dari data diatas diketahui bahwa A2 berbeda nyata terhadap semua perlakuan. Rataan jumlah biji pertanaman paling banyak pada perlakuan A2 yaitu 18.75 biji dan paling sedikit pada perlakuan A0 yaitu 7.69 biji.

Gambar 6. Grafik Jumlah Biji Pertanaman

Pada Gambar 6 dapat dilihat bahwa pengaruh perlakuan asam askorbat terhadap jumlah biji menunjukkan kurva dimana pengaruh dosis asam askorbat mencapai jumlah biji maksimum pada dosis 502.5 ppm.

Bobot Biji Pertanaman (g)

Dari data penelitian dan analisis sidik ragam dapat dilihat pada lampiran 29 dan 30, diketahui bahwa perlakuan berpengaruh nyata terhadap bobot biji pertanaman. Rataan bobot biji pertanaman dapat dilihat pada tabel 8.

Tabel 8. Rataan Bobot Biji Pertanaman (g)

Perlakuan Bobot Biji Pertanaman (g)

A0 0.66c

A1 0.86c

A2 1.99a

A3 1.26b

Keterangan : Angka yang diikuti huruf yang sama pada kolom yang sama menunjukkan tidak berbeda nyata pada Uji Duncan (Duncan’s Multiple Range Test/DMRT) pada taraf 5 %

Dari data diatas diketahui bahwa A2 berbeda nyata terhadap semua perlakuan. Rataan bobot biji pertanaman paling banyak pada perlakuan A2 yaitu 1.99 g dan paling sedikit pada perlakuan A0 yaitu 0.66 g.

Grafik bobot biji pertanaman dapat dilihat pada gambar dibawah ini y = -4E-05x2 _{+ 0.0402x + 6.6375}

R² = 0.6903

0.00 5.00 10.00 15.00 20.00

0 200 400 600

Ju m lah B iji (b iji )

Dosis Asam Askorbat (ppm)

Gambar 7. Grafik Bobot Biji Pertanaman

Pada Gambar 7 dapat dilihat bahwa pengaruh perlakuan asam askorbat terhadap bobot biji menunjukkan kurva kuadratik dimana pengaruh dosis asam askorbat mencapai bobot biji maksimum pada dosis 416.67 ppm.

Bobot 100 biji (g)

Dari data penelitian dan analisis sidik ragam dapat dilihat pada lampiran 31 dan 32, diketahui bahwa perlakuan berpengaruh nyata terhadap bobot 100 biji. Rataan bobot 100 biji dapat dilihat pada tabel 9.

Tabel 9. Rataan Bobot 100 Biji (g)

Perlakuan Rataan Bobot 100 Biji (g)

A0 8.54b

A1 8.11b

A2 10.30a

A3 9.19ab

Keterangan : Angka yang diikuti huruf yang sama pada kolom yang sama menunjukkan tidak berbeda nyata pada Uji Duncan (Duncan’s Multiple Range Test/DMRT) pada taraf 5 %

y = -6E-06x2 _{+ 0.005x + 0.5169}

R² = 0.6276

0.00 0.50 1.00 1.50 2.00 2.50

0 200 400 600

B o b o t B iji ( g )

Dosis Asam Askorbat (ppm)

Dari data diatas diketahui bahwa A2 berbeda nyata terhadap A0 dan A1dan tidak berbeda nyata terhadap A3. Rataan bobot 100 biji paling banyak pada perlakuan A2 yaitu 10.30 g dan paling sedikit pada perlakuan A1 yaitu 8.11g.

Grafik bobot 100 biji dapat dilihat pada gambar dibawah ini

Gambar 8. Grafik Bobot 100 Biji

Pada Gambar 8 dapat dilihat bahwa pengaruh dosis asam askorbat belum dapat dijelaskan oleh kurva apakah dengan menambah atau mengurangi dosis asam askorbat berpengaruh terhadap bobot 100 biji.

Jumlah Klorofil Daun (g/ml)

Dari data penelitian dan analisis sidik ragam dapat dilihat pada lampiran 33 sampai 38, diketahui bahwa perlakuan berpengaruh nyata terhadap jumlah klorofil a, klorofil b dan klorofil total. Rataan klorofil a, klorofil b dan klorofil total dapat dilihat pada tabel 10.

Tabel 10. Rataan Klorofil a, Klorofil b dan Klorofil Total (g/ml)

Perlakuan Rataan Klorofil

klorofil a klorofil b klorofil total

A0 1.58b 0.45b 2.04b

A1 1.56b 0.45b 2.00b

A2 1.64b 0.50b 2.14b

A3 2.19a 0.79a 2.98a

y = -1E-07x3 _{+ 0.0001x}2 _{- 0.0186x + 8.5438}

R² = 1

0.00 2.00 4.00 6.00 8.00 10.00 12.00

0 200 400 600

B o b o t 100 b iji (g)

Keterangan : Angka yang diikuti huruf yang sama pada kolom yang sama menunjukkan tidak berbeda nyata pada Uji Duncan (Duncan’s Multiple Range Test/DMRT) pada taraf 5 %

Pada pengamatan parameter jumlah klorofil a, klorofil b dan klorofil total, perlakuan A3 berbeda nyata terhadap semua perlakuan. Dengan jumlah klorofil paling banyak terdapat pada perlakuan A3 yaitu 2.19 g/ml, 0.79 g/ml dan 2.98 g/ml.

Grafik jumlah klorofil a, klorofil b dan klorofil total dapat dilihat pada gambar dibawah ini

Gambar 9. Grafik Jumlah Klorofil a, Klorofil b dan Klorofil Total

Pada Gambar 9 dapat dilihat bahwa pengaruh perlakuan asam askorbat terhadap jumlah klorofil menunjukkan hubungan yg linier positif dimana dengan menambahkan dosis asam askorbat cenderung meningkatkan jumlah klorofil. Pembahasan

Pengaruh Asam Askorbat Terhadap Parameter Pertumbuhan Vegetatif Kedelai di Tanah Salin

Berdasarkan analisis sidik ragam diperoleh hasil bahwa perlakuan asam askorbat berpengaruh nyata pada parameter tinggi tanaman pada saat 3 MST dan

y = 0.001x + 1.4584 r = 0.456

y = 0.0005x + 0.3883 r = 0.477 y = 0.0015x + 1.8466

r = 0.463

0.00 0.50 1.00 1.50 2.00 2.50 3.00 3.50

0 200 400 600

Ju m lah Kl o ro fi l (g/m l)

Dosis Asam Askorbat (ppm)

Klorofil a

Klorofil b

4 MST. Hal ini menunjukkan bahwa asam askorbat dapat mengurangi dampak negatif dari tanah salin dengan cara menurunkan konsentrasi ROS (senyawa oksigen reaktif) yang dapat dilihat dari jumlah klorofil yang lebih banyak dibandingkan dengan perlakuan tanpa pemberian asam askorbat sehingga aktivitas metabolisme pembentukan sel tidak terganggu. Hal ini sesuai dengan literatur Nahed, et al. 2009 Dalam Smirnoff (1996) menyatakan bahwa asam askorbat membantu dalam proses pembelahan sel tanaman. Literatur lain yang mendukung adalah Conklin dan Barth (2004) yang menyatakan bahwa Asam askorbat merupakan salah satu senyawa yang penting dalam proses selular termasuk pembelahan dan pembesaran sel serta dalam mengaktifkan aktivitas metabolisme ketika proses perkecambahan dimulai. Menetralisir racun, melindungi sel dari senyawa oksigen reaktif dan radikal bebas serta mencegah kematian sel.

Asam askorbat tidak berpengaruh nyata terhadap parameter jumlah cabang 3 MST dan 4 MST, hal ini diduga karena intensitas aplikasi yang kurang tepat, sehingga asam askorbat yang diberikan pada 2 MST belum tercukupi untuk pembentukan jumlah cabang 3 MST dan 4 MST. Namun aplikasi asam askorbat pada 4 MST menyebabkan perlakuan asam askorbat berpengaruh nyata terhadap jumlah cabang 5 MST dan hal ini mungkin disebabkan karena pada saat 5 MST tidak ada lagi penambahan tinggi tanaman sehingga asam askorbat yang diaplikasikan lebih diarahkan untuk pembentukan cabang dari pada tinggi tanaman.

Pengaruh Asam Askorbat Terhadap Parameter Produksi Kedelai di Tanah Salin

Pemberian asam askorbat akan meningkatkan produksi. Produksi yang tinggi didapat dengan pemberian asam askorbat pada konsentrasi 400 ppm.

Tingginya produksi pada konsentrasi ini disebabkan karena didukung oleh meningkatnya komponen-komponen produksi, yaitu jumlah jumlah polong berisi pertanaman, jumlah biji pertanaman, bobot biji pertanaman, bobot 100 biji, dan jumlah klorofil. Hal ini disebabkan karena asam askorbat melindungi sel dari senyawa oksigen reaktif dan radikal bebas yang mengganggu fungsi kloroplas, sehingga tanaman dapat berfotosintesis dengan baik yang mendukung meningkatnya produksi. Hal ini sesuai literatur Afzal et al. (2005) yang menyatakan bahwa perlakuan asam askorbat dapat mengurangi dampak negatif dari konsentrasi garam yang tinggi yaitu melindungi fungsi kloroplas sehingga menurunkan konsentrasi ROS. Literatur lain yang mendukung adalah Farooq et al (2006) yang menyatakan bahwa priming dengan asam askorbat mampu meningkatkan kinerja, pertumbuhan dan produksi benih padi Super Basmati yang ditanam dengan system tebar langsung.

Pemberian asam askorbat dengan konsentrasi 600 ppm menurunkan produksi karena pada konsentrasi 400 ppm sudah cukup bagi tanaman untuk mengatasi masalah stress garam.

Berdasarkan analisis sidik ragam diperoleh hasil bahwa perlakuan asam askorbat berpengaruh yang nyata pada parameter jumlah polong berisi pertanaman, jumlah biji pertanaman, bobot biji pertanaman, bobot 100 biji, jumlah klorofil a, jumlah klorofil b dan klorofil total. Hal ini menunjukkan bahwa aplikasi asam askorbat pada tanaman berpengaruh positif pada parameter produksi, hal ini dapat terjadi karena kandungan asam askorbat yang semula berkurang akibat cekaman salin menjadi relatif tercukupi. Hal ini sesuai dengan literatur Afzal et al. (2005) yang meyatakan bahwa perlakuan menggunakan asam

askorbat dapat mengurangi dampak negatif yang ditimbulkan dari konsentrasi garam yang tinggi.

Dari hasil pengamatan dan analisis sidik ragam dapat diketahui bahwa perlakuan A2 mempunyai rataan tertinggi pada jumlah polong berisi pertanaman, jumlah biji pertanaman, dan bobot biji pertanaman. Hal ini diduga karena tanaman telah mampu untuk menurunkan jumlah senyawa oksigen reaktif akibat stress garam, sehingga tanaman dapat melakukan fotosintesis yang memicu pembentukan dan pengisian polong. Hal ini sesuai dengan literatur Shalata and Neumann (2001) yang menyatakan bahwa efek penambahan asam askorbat pada tanaman dapat mendukung tanaman tersebut untuk bertahan hidup dengan menghambat beberapa partikel merugikan yang ditimbulkan akibat senyawa oksigen reaktif.

Dari data penelitian dan analisis sidik ragam dapat diketahui bahwa perlakuan asam askorbat berpengaruh nyata terhadap bobot 100 biji. Ukuran biji yang dihasilkan ditentukan secara genetik, namun faktor lingkungan selama fase pengisian biji juga berpengaruh. Salah satu faktor lingkungan yang merugikan pada saat penelitian ini adalah meningkatnya DHL tanah dari 6.7 mmhos hingga 10 mm/hos akibat adanya luapan air laut yang masuk ke lokasi penanaman. Mursito (2003) menjelaskan bahwa ukuran biji suatu varietas ditentukan secara genetik, namun ukuran biji yang terbentuk juga ditentukan oleh lingkungan semasa pengisian biji.

Berdasarkan data penelitian dan analisis sidik ragam, pengamatan jumlah klorofil a, klorofil b dan klorofil total dapat dilihat bahwa perlakuan A3 berbeda nyata terhadap semua perlakuan dimana perlakuan A3 ini memilki jumlah klorofil

paling banyak. Hal ini merupakan salah satu fungsi asam askorbat dalam menghindari efek negatif dari salinitas yang dapat merusak fungsi kloroplas yang memacu pembentukan senyawa oksigen reaktif. Hal ini sesuai dengan literatur Arora et al. (2002) yang meyatakan bahwa stress garam dapat menyebabkan terhambatnya proses fisiologis pada tanaman, seperti penutupan stomata. Penutupan stomata berdampak pada keterbatasan CO2 utk berfotosintesis yang memicu pembentukan senyawa oksigen reaktif dalam jumlah besar. Amin, et al. (2008) menambahkan aplikasi asam askorbat lebih efektif dari asam salisilat dalam meningkatkan pigmen fotosintesis, dimana meningkatnya klorofil a, klorofil b dan karotenoid dengan aplikasi asam askorbat hingga 400 mg/L.

BAB VI

KESIMPULAN DAN SARAN Kesimpulan

1. Perlakuan asam askorbat berpengaruh nyata terhadap pertumbuhan vegetatif tanaman yaitu pada parameter tinggi tanaman 3 MST ,4 MST, dan jumlah cabang 5 MST.

2. Pemberian asam askorbat akan meningkatkan produksi. Produksi maksimum akan dicapai pada pemberian asam askorbat pada konsentrasi 416.67 ppm. Penambahan dosis diatas dosis maksimum akan menurunkan produksi.

3. Meningkatnya produksi pada konsentrasi 400 ppm disebabkan karena didukung oleh meningkatnya komponen-komponen produksi, yaitu jumlah jumlah polong berisi pertanaman, jumlah biji pertanaman, bobot biji pertanaman, bobot 100 biji, dan jumlah klorofil.

Saran

Sebaiknya dilakukan penelitian lain dengan aplikasi asam askorbat dengan konsentrasi dan intensitas aplikasi yang berbeda.

BAB II

TINJAUAN PUSTAKA Botani Tanaman

Menurut Sharma (1993) tanaman kedelai diklasifikasikan sebagai berikut: Kingdom : Plantae

Divisio : Spermatophyta Subdivisio : Angiospermae Class : Dicotyledoneae Ordo : Polypetales Famili : Papilionaceae Genus : Glycine

Spesies : Glycine max (L.) Merill

Susunan akar kedelai pada umumnya sangat baik. Pertumbuhan akar tunggang lurus masuk kedalam tanah dan mempunyai banyak akar cabang. Pada akar cabang banyak terdapat bintil akar berisi bakteri Rhizobium japonicum, yang mempunyai kemampuan mengikat zat lemas bebas (N2) dari udara yang kemudian

dipergunakan untuk menyuburkan tanah (Andrianto dan Indarto, 2004).

Kedelai adalah tanaman setahun yang tumbuh tegak (tinggi 70-150cm). Menyemak berbulu halus (pubescens), dengan sistem perakaran luas (Rubatzky dan Yamaguchi, 1998). Waktu tanaman kedelai masih sangat muda, atau setelah fase menjadi kecambah dan saat keping biji belum jatuh, batang dapat dibedakan menjadi dua. Bagian batang dibawah keping biji yang belum lepas disebut hypokotil, sedangkan bagian di atas keping biji disebut epycotil. Batang kedelai tersebut berwarna ungu atau hijau (Andrianto dan Indarto, 2004).

Terdapat empat tipe daun yang berbeda yaitu kotiledon atau daun biji, daun primer sederhana, daun bertiga, dan daun profila. Daun primer sederhana berbentuk telur (oval) berupa daun tunggal (unifoliat) dan bertangkai sepanjang 1-2 cm, terletak berseberangan pada buku pertama di atas kotiledon. Daun-daun berikutnya daun bertiga (trifollit), namun adakalanya terbentuk daun berempat atau daun berlima (Hidayat dalam Somaatmadja dkk, 1985).

Kultivar kedelai memiliki bunga bergerombol terdiri atas 3-15 bunga yang tersusun pada ketiak daun. Karakteristik bunganya seperti famili Papilionaceae lainnya, yaitu corolla (mahkota bunga) terdiri atas 5 petal yang menutupi sebuah pistil dan 10 stamen (benang sari). 9 stamen berkembang membentuk seludang yang mengelilingi putik, sedangkan stamen yang kesepuluh terpisah bebas (Poehlman and Sleper, 1995).

Banyaknya polong tergantung pada jenisnya. Ada jenis kedelai yang menghasilkan banyak polong, ada pula yang sedikit. Berat masing-masing biji pun berbeda-beda, ada yang bisa mencapai berat 50-500 gram per 100 butir biji. Selain itu, warna biji juga berbeda-beda. Perbedaan warna biji dapat dilihat pada belahan biji ataupun pada selaput biji, biasanya kuning atau hijau transparan (tembus cahaya). Ada pula biji yang berwarna gelap kecoklat-coklatan sampai hitam atau berbintik-bintik (Andrianto dan Indarto, 2004).

Semua varietas kedelai mempunyai bulu pada batang, cabang, daun dan polong-polongnya. Lebat atau tidaknya bulu serta kasar atau halusnya bulu tergantung dari varietas masing-masing. Begitu pula warna bulu berbeda-beda, ada yang berwarna coklat dan ada pula yang berwarna putih kehijauan (Andrianto dan Indarto, 2004).

Syarat Tumbuh Iklim

Tanaman kedelai sebagian besar tumbuh di daerah yang beriklim tropis dan subtropis. Sebagai barometer iklim yang cocok bagi kedelai adalah bila cocok bagi tanaman jagung. Bahkan daya tahan kedelai lebih baik daripada jagung. Tanaman kedelai dapat tumbuh baik di daerah yang memiliki curah hujan sekitar 100-400 mm/bulan (Sugeno, 2008).

Tanaman kedelai sebagian besar tumbuh di daerah beriklim tropis dan subtropis. Bahkan daya tahan kedelai lebih baik daripada jagung. Iklim kering lebih disukai tanaman kedelai dibandingkan dengan iklim lembab. Tanaman kedelai dapat tumbuh baik di daerah yang memiliki curah hujan 100-400 mm/bulan. Sedangkan untuk mendapatkan hasil yang opimal, tanaman kedelai membutuhkan curah hujan antara 100-200 mm/bulan. Suhu yang dikehendaki tanaman kedelai antara 21-340C, akan tetapi suhu optimum bagi pertumbuhan tanaman kedelai adalah 23-270C. Pada proses perkecambahan benih kedelai, diperlukan suhu yang cocok (http://warintek.ristek.go.idpertanian/kedelai.pdf, 2008).

Air merupakan faktor yang penting bagi tanaman, karena berfungsi sebagai pelarut hara, berperan dalam translokasi hara dan fotosintesis. Pada periode kering tanaman sering mendapatkan cekaman kekeringan, karena kurang suplai air di daerah perakaran dan atau laju transpirasi melebihi laju absorbsi air oleh tanaman. Apabila cekaman kekeringan berkepanjangan maka tanaman akan mati. Cekaman kekeringan mempengaruhi pembukaan stomata, makin tinggi tegangan air akan mengurangi pembukaan stomata. Cekaman kekeringan yang

terjadi pada saat pertumbuhan generatif, misalnya saat pengisian polong, akan menurunkan produksi. Kekeringan dapat juga menurunkan bobot biji, sebab bobot biji sangat dipengaruhi oleh jumlah air yang diberikan dalam musim tanam. Balittan Malang (1990) melaporkan bahwa pemberian air yang intensif akan berpengaruh terhadap hasil biji kedelai. Pemberian air setiap 10 hari selama musim tanam dapat meningkatkan hasil menjadi 2 ton/ha diban dibandingkan pemberian 3 kali selama musim tanam (1.71 ton/ha) dan tanpa irigasi teratur hanya 1.47 ton/ha (Agung dan Rahayu, 2004).

Tanah

Kedelai termasuk tanaman yang mampu beradaptasi terhadap berbagai agroklimat, menghendaki tanah yang cukup gembur, tekstur lempung berpasir dan liat. Tanaman kedelai dapat tumbuh dengan baik pada tanah yang mengandung bahan organik dan pH antara 5,5-7 (optimal 6,7). Tanah hendaknya mengandung cukup air tapi tidak sampai tergenang (Departemen Pertanian, 1996).

Kedelai dapat tumbuh baik pada berbagai jenis tanah asal darinase dan aerase tanah cukup baik. Tanah-tanah yang cocok yaitu alluvial, regosol, grumosol, latosol dan andosol. Pada tanah-tanah podsolik merah kuning dan tanah yang mengandung banyak pasir kwarsa, pertumbuhan kedelai kurang bagus. Kecuali kalau diberi tambahan pupuk organik atau kompos dalam jumlah yang cukup (Andrianto dan Indarto, 2004).

Untuk pertumbuhan kedelai yang optimal, tanah perlu mengandung unsur hara yang cukup gembur dan bebas dari gulma. Tingkat keasaman (pH) tanah: 6,0-6,8 merupakan keadaan optimal untuk pertumbuhan kedelai dan pertumbuhan bakteri Rhizobium. Pada tanah dengan pH 5,5 kedelai masih memberikan hasil

dan pemberian kapur sebanyak 2-3 ton/Ha pada tanah yang ber-pH 5,5 pada umumnya dapat menaikkan hasil (Departemen Pertanian, 1990).

Salinitas

Salinitas, proses ini terjadi di daerah kering dan panas merupakan gerakan garam dari profil tanah bawah (sub soil) ke bagian atas (top soil). Pada bagian atas terjadi penguapan yang intensif (suasana panas dan kering), sehingga menyebabkan larutan garam bergerak secara kapilaritas ke atas, menguap, dan meninggalkan endapan garam dipermukaan tanah. Apabila proses ini berlangsung terus menerus sepanjang tahun, maka terbentuk tanah garam (saline soil). Di Indonesia proses ini tidak berlangsung sepanjang tahun, hanya terdapat di daerah panas dan kering. Pada musim kemarau terjadi salinisasi, sebaliknya pada musim hujan terjadi desilinisasi. Pengurangan kadar garam dipermukaan tanah terjadi karena curah hujan yang turun kemudian melindi ke bawah. Proses salinisasi hanya terjadi pada tanah yang mempunyai tekstur halus sampai sangat halus (Rosmarkam dan Yuwono, 2002).

Toleransi terhadap salinitas adalah beragam dengan spektrum yang luas diantara spesies tanaman mulai dari yang peka hingga yang cukup toleran. Lima tingkat pengaruh salinitas tanah terhadap tanaman, mulai dari tingkat non-salin hingga tingkat salinitas yang sangat tinggi.

Tingkat salinitas Konduktivitas mmhos cm-1

Pengaruh terhadap tanaman Non Salin Rendah Sedang Tinggi Sangat Tinggi 0-2 2-4 4-8 8-16 >16 Dapat diabaikan

Tanaman yang peka terganggu Kebanyakan tanaman terganggu Tanaman yang toleran terganggu Hanya beberapa jenis tanaman toleran yang dapat tumbuh

Suatu tanah disebut tanah alkali atau tanah salin jika kapasitas tukar kation (KTK) atau muatan negative koloid-koloidnya dijenuhi oleh > 15% Na, yang mencerminkan unsur ini merupakan komponen dominan dari garam-garam larut yang ada. Pada tanah-tanah ini, mineral sumber utamanya adalah halit (NaCl) (Hanafiah, 2005).

Tanah-tanah salin dan sodik, yang kini disebut Aridisol, adalah tanah-tanah daerah iklim kering dengan curah hujan rata-rata kurang dari 500 mm (20 in.) per tahun. Jumlah H2O yang berasal dari presipitasi tidak cukup untuk

menetralkan jumlah H2O yang hilang oleh evaporasi dan evapotranspirasi.

Sewaktu air luapan ke atmosfer, garam-garam tertinggal dalam tanah. Proses penimbunan garam mudah larut dalam tanah ini disebut salinisasi. Garam-garam tersebut terutama adalah NaCl, Na2SO4, CaCO3, dan/atau MgCO3. Dulu

tanah-tanah yang terbentuk disebut tanah-tanah salin, tanah-tanah alkali putih, atau solonchak. Mereka termasuk tipe tanah zonal. Salinisasi dapat juga terjadi secara setempat dan membentuk tanah salin tipe intrazonal, seperti misalnya tanah-tanah yang direklamasi dari dasar laut dan tanah-tanah didaerah pantai yang dipengaruhi oleh pasang surut (Tan, 2004).

Pengaruh Salinitas Terhadap Tanah dan Tanaman

Salinitas menekan proses pertumbuhan tanaman dengan efek yang menghambat pembesaran dan pembelahan sel, produksi protein dan penambahan biomassa tanaman. Tanaman yang mengalami stress garam umumnya tidak menunjukkan respon dalam bentuk kerusakan langsung tapi pertumbuhan yang tertekan dan perubahan secara perlahan. Gejala pertumbuhan tanaman pada tanah dengan tingkat salinitas yang cukup tinggi adalah pertumbuhan yang tidak normal

seperti daun mongering dibagian ujung dan gejala khlorosis. Gejala ini timbul karena konsentrasi garam terlarut yang tinggi menyebabkan menurunnya potensial larutan tanah sehingga tanaman kekurangan air (Sipayung, 2003).

Garam-garam yang menimbulkan stress tanaman antara lain NaCl, NaSO4,

CaCl2, MgSO4, MgCl2 yang larut dalam air. Dalam larutan tanah garam-garam ini

mempengaruhi pH dan daya hantar listrik. Menurut Sipayung (2003) tanah salin memiliki pH < 8,5 dengan daya hantar listrik >4mmhos/cm. Nilai daya hantar listrik (DHL) mencerminkan kadar garam yang terlarut. Peningkatan konsentrasi garam yang terlarut akan menaikkan nilai DHL larutan yang diukur dengan menggunakan elektroda platina.

Garam-garam atau Na+ yang apat dipertukarkan akan mempengaruhi sifat-sifat tanah jika terdapat dalam keadaan yang berlebihan dalam tanah. Kekurangan unsur Na+ dan Cl- dapat menekan pertumbuhan dan mengurangi produksi. Peningkatan konsentrasi garam terlarut di dalam tanah akan meningkatkan tekanan osmotik sehingga menghambat penyerapan air dan unsur-unsur hara yan berlangsung melalui proses osmosis. Jumlah air yang masuk ke akar berkurang sehingga mengakibatkan menipisnya jumlah persediaan air dalam tanaman (Sipayung 2003).

Dalam proses fisiologi tanaman Na+ dan Cl- di duga mempengaruhi pengikatan air oleh tanaman, sehingga menyebabkan tanaman tahan terhadap kekeringan. Sedangkan Cl diperlukan pada reaksi fotosintesis yang berkaitan dengan produksi oksigen. Sementara penyerapan Na+ oleh partikel-partikel tanah akan mengakibatkan pembengkakan dan penutupan pori-pori tanah yang memperburuk pertukaran gas, serta dispersi koloid tanah.

Menurut Sipayung (2003), salinitas akan mempengaruhi sifat fisik dan kimia tanah yaitu : 1) tekanan osmotik yang meningkat, 2) peningkatan potensi ionisasi, 3) infiltrasi tanah menjadi buruk, 4) kerusakan dan terganggunya struktur tanah, 5) permeabilitas tanah yang buruk, 6) penurunan konduktivitas. Salinitas atau konsentrasi garam-garam terlarut yang cukup tinggi akan menimbulkan stress dan memberikan tekanan terhadap pertumbuhan tanaman. Salinitas dapat menghambat pertumbuhan tanaman dengan dua cara yaitu :

a. Dengan merusak sel-sel yang sedang tumbuh sehingga pertumbuhan tanaman terganggu.

b. Dengan membatasi jumlah suplai hasil-hasil metabolisme esensial bagi pertumbuhan sel melalui pembentukan tyloses.

Kelarutan garam yang tinggi dapat menghambat penyerapan (up take) air dan hara oleh tanaman seiring dengan terjadinya peningkatan tekanan osmotic. Secara khusus, kegaraman yang tinggi menimbulkan keracunan tanaman, terutama oleh ion Na+ dan Cl-. Beberapa tanaman peka terhadap kegaraman (<4 dS.m-1) seperti apel, jeruk, dan kacang-kacangan, tanaman lain nisbi tahan kegaraman (4-10 dS.m-1) seperti padi, kentang, mentimun, sorgum dan jagung dan tanaman yang lainnya lebih tahan kegaraman (>10 dS.m-1) seperti kapas, bayam, dan kurma (Noor,2004).

Salinitas menekan proses pertumbuhan tanaman dengan efek yang menghambat pembesaran dan pembelahan sel, produksi protein, serta penambahan biomassa tanaman. Tanaman yang mengalami stress garam umumnya tidak menunjukkan respon dalam bentuk kerusakan langsung tetapi pertumbuhan yang tertekan dan perubahan secara perlahan. Gejala pertumbuhan

tanaman pada tanah dengan tingkat salinitas yang cukup tinggi adalah pertumbuhan yang tidak normal seperti daun mengering di bagian ujung dan gejala khlorosis. Gejala ini timbul karena konsentrasi garam terlarut yang tinggi menyebabkan menurunnya potensi larutan tanah sehingga tanaman kekurangan air (Sipayung, 2003).

Menurut Phang, et al (2008), tingginya konsentrasi garam menyebabkan gangguan pada seluruh siklus hidup kedelai. Tingkat toleransi kedelai pada berbagai varietas kedelai bervariasi menurut tingkat pertumbuhan. Perkecambahan biji kedelai akan terhambat pada konsentrasi garam rendah. Konsentrasi garam yang lebih tinggi secara nyata akan menurunkan persentase perkecambahan. Pengaruh garam pada tahap awal dan penurunan persentase perkecambahan lebih menonjol pada varietas yang sensitive dibandingkan varietas toleran. Sifat-sifat agronomi kedelai sangat dipengaruhi oleh salinitas yang tinggi, diantaranya :

1. Pengurangan tinggi tanaman, ukuran daun, biomassa, jumlah ruas, jumlah cabang, jumlah polong, bobot tanaman dan bobot 100 biji

2. Penurunan kualitas biji

3. Penurunan kandungan protein biji

4. Menurunkan kandungan minyak pada biji kedelai 5. Nodulasi kedelai

6. Mengurangi efisiensi fiksasi nitrogen 7. Menurunkan jumlah dan bobot bintil akar

Mekanisme toleransi tanaman terhadap salinitas dapat dilihat dalam dua bentuk adaptasi yaitu dengan mekanisme morfologi dan fisiologi. Mekanisme toleransi yang paling jelas adalah dengan adaptasi morfologi (Sipayung, 2003).

Respon perubahan struktural dapat beragam pada berbagai jenis tanaman dan tipe salinitas. Salinitas klorida umumnya menambah sukulensi pada banyak spesies tanaman. Sukulensi terjadi dengan meningkatnya konsentrasi SO4. Dengan

adaptasi struktural ini kondisi air akan berkurang dan mungkin akan menurunkan kehilangan air pada transpirasi. Namun pertumbuhan akar yang terekspos pada lingkungan salin biasanya kurang terpengaruh dibandingkan dengan pertumbuhan tajuk atau buah. Hal ini diduga terjadi akibat perbaikan keseimbangan dengan mempertahankan kemampuan menyerap air (Sipayung, 2003).

Berbagai cekaman abiotik menyebabkan kelebihan spesies oksigen reakif (ROS) pada tanaman yang sangat reaktif dan beracun yang menyebabkan kerusakan protein, lipid, karbohidrat dan DNA yang akhirnya mengakibatkan stress oksidatif. ROS terdiri dari radikal bebas (O2), radikal superoksida (OH),

radikal hidroksil (HO2), radikal perhydroxy dan non radikal (H2O2). ROS juga

mempengaruhi ekspresi sejumlah gen, oleh karena itu ROS mengontrol banyak proses seperti pertumbuhan, siklus sel, penuaan sel, respon stress abiotik, pertahanan pathogen, dan pertumbuhan (Gill and Tuteja, 2010).

Karena stress garam dapat mengakibatkan stress oksidatif melalui peningkatan ROS yang sangat reaktif dan menyebabkan kerusakan sel, salah satu metode biokimia yang dianjurkan adalah askorbat yang bertindak sebagai antioksidan dengan pembilasan hydrogen peroksida (kloroplas tidak memiliki katalase) saat pembentukannya (Miyake and Asada, 1992).

Asam Askorbat (Vitamin C)

Vitamin adalah senyawa-senyawa organic tertentu yang diperlukan dalam jumlah kecil dalam tubuh tetapi esensial untuk reaksi metabolism dalam sel, penting untuk melangsungkan pertumbuhan normal, serta memelihara kesehatan. Vitamin C (asam askorbat) merupakan vitamin yang dapat disintesis oleh tumbuhan tetapi tidak dapat disintesis oleh manusia, kera, dan sebagian mamalia lainnya (Poedjiadi, 1994).

Vitamin C mempunyai rumus empiris C6H8O6 dalam bentuk murni

merupakan Kristal putih, tidak berbau dan mencair pada suhu 190-1920C. Vitamin C merupakan senyawa yang sangat mudah larut dalam air, mempunyai sifat asam dan sifat pereduksi yang kuat. Sifat-sifat tersebut terutama disebabkan karena adanya struktur enediol yang berkonjugasi dengan gugus karbonil dalam cincin lakton. Bentuk vitamin C yang ada di alam terutama adalah L-asam askorbat. D-asam askorbat jarang terdapat di alam dan hanya memiliki 10 persen aktivitas vitamin C. Biasanya D-asam askorbat ditambahkan ke dalam bahan pangan sebagai antioksidan, bukan sebagai sumber vitamin C (Andarwulan dan Koswara, 1992).

Vitamin C disebut juga asam askorbat (ascorbic acid), merupakan vitamin yang paling sederhana strukturnya, mudah berubah akibat oksidasi tetapi amat berguna bagi manusia. Struktur kimia vitamin C terdiri atas rantai 6 atom karbon yang keberadaannya tidak stabil karena mudah bereaksi dengan oksigen di udara menjadi asam dehidroaskorbat. Vitamin C stabil keadaannya jika berupa Kristal (murni). Menyimpan vitamin C dalam keadaan terbuka atau dalam ruangan yang

lembab akan menyebabkan terdegradasi menjadi zat lainnya sehingga hilang potensi vitamin C-nya (Kusnawidjaja, 1987).

Winarno (1992), vitamin C merupakan vitamin yang paling mudah rusak, sangat larut dalam air, serta mudah teroksidasi. Proses oksidasi tersebut dipercepat oleh panas, sinar, alkali, enzim, oksidator, serta oleh katalisis tembaga dan besi. Oksidasi akan terhambat bila vitamin C dibiarkan dalam keadaan asam atau pada suhu rendah. Asam askorbat merupakan salah satu senyawa yang penting dalam proses selular termasuk pembelahan dan pembesaran sel serta dalam mengaktifkan aktivitas metabolisme ketika proses perkecambahan dimulai. Menetralisir racun, melindungi sel dari senyawa oksigen reaktif dan radikal bebas serta mencegah kematian sel (Conklin dan Barth, 2004).

Metabolisme Vitamin C pada Tanaman

Vitamin C (asam askorbat) pada tumbuhan banyak terdapat di kloroplas, karena asam ini berfungsi sebagai senyawa antara dalam metabolisme karbohidrat. Bioseintesis asam askorbat membutuhkan D_glukosa. Biosintesis asam askorbat dalam tumbuhan menurut Smirnoff (1996) adalah sebagai berikut :

Asam askorbat bersifat sangat sensitif terhadap pengaruh-pengaruh dari luar yang menyebabkan kerusakan seperti suhu, konsentrasi gula dan garam, pH, oksigen, enzim, katalisator logam, konsentrasi awal asam askorbat baik dalam larutan, serta perbandingan asam askorbat dan asam dehidroaskorbat (Muchtadi dkk, 1993).

Asam askorbat sangat mudah teroksidasi menjadi asam dehidroaskorbat dimana reaksi yang terjadi bersifat reversible (bolak-balik). Asam L-askorbat dan asam L-dehidroaskorbat mempunyai 100% aktivitas vitamin C, sedangkan 2,3 asam diketogulonat sudah tidak mempunyai aktivitas vitamin C lagi.

Peranan Asam Askorbat Pada Tanaman

Askorbat memilki sifat antioksidan yang baik dalam mendeteksi spesies oksigen reaktif (ROS) dan spesies nitrogen reaktif, serta mendaur ulang α -tokoferol yang teroksidasi. Singkatnya, sistem in vitro telah menunjukkan askorbat sebagai pendeteksi superoksida, hidroksil, hidrofilik peroksil, thiyl, dan

Gambar 2 : Skema pembentukan asam askorbat (sumber : http://eprints.undip.ac.id)

radikal nitroksida sebaik asam hipoklorit dan hidrogen peroksida. Hal ini telah dikemukakan secara rinci sebelumnya. Fungsi lain askorbat adalah dalam metabolisme besi dengan mempertahankan besi pada tingkat reduksi askorbat sehingga memicu penyerapan besi. Selain itu askorbat juga memobilisasi besi dari deposit feritin (Drevan, 2011).

Hasil penelitian Basra et al. (2006) menunjukkan bahwa priming mampu meningkatkan vigor benih padi, priming dengan asam askorbat dan asam salsilat mampu meningkatkan keseragaman perkecambahan, mempercepat waktu terjadinya perkecambahan, menurunkan T50, meningkatkan panjang radikula dan

plumula serta meningkatkan bobot basah dan bobot kering bibit.

Hasil penelitian Shaddad et al. (1989) menunjukkan bahwa perendaman benih Lupinus termis dan Vicia faba dalam larutan asam askorbat 50 ppm selama 4 jam sebelum tanam mampu meningkatkan persentase perkecambahan, panjang kecambah, bobot kering kecambah, kandungan karbohidrat, protein, dan asam amino serta mengurangi efek merugikan yang ditimbulkan oleh kondisi cekaman garam.

El-Zawahry dan Hamada (1994) menggunakan tiga senyawa yaitu asam askorbat, pyridoxine dan thiamin dengan konsentrasi masing-masing 50 dan 100 ppm selama 5 jam sebagai perakuan pra tanam pada benih terong (Solanum melongena) kultivar Black Balady, hasilnya menunjukkan bahwa perlakuan dengan ketiganya mampu meningkatkan bobot segar dan bobot kering tanaman, mengurangi efek inhibitor nematode pada tanaman terinfeksi dan mengurangi total asam amino bebas pada organ yang berbeda dari tanaman terinfeksi ataupun

yang sehat, thiamin dan pyridoxin mampu mengurangi jumlah nematode tetapi tidak dengan asam askorbat.

Hasil penelitian Basra et al. (2006) menunjukkan bahwa priming benih padi kultivar KS-282 dan Super Basmati dengan asam askorbat dan asam salsilat 10 dan 20 ppm selama 48 jam mampu meningkatkan vigor bibit, keseragaman dan keserempakan tumbuh, menurunkan waktu untuk memulai perkecambahan dan T50, meningkatkan panjang plumula dan radikula serta meningkatkan bobot segar dan bobot kering bibit. Priming dengan asam askorbat 10 ppm selama 24 jam juga mampu meningkatkan kinerja, pertumbuhan dan produksi benih padi Super Basmati yang ditanam dengan system tebar langsung (Farooq et al, 2006) dan yang ditanam melalui persemaian (Farooq et al., 2007).

Hasil penelitian Dolatabadian dan Modarressanavy (2008) menunjukkan bahwa perlakuan pra tanam dengan asam askorbat dan pyridoxine terhadap benih Helianthus annus L., dan Brassica napus L., mampu meningkatkan daya berkecambah, mencegah kerusakan protein dan peroksidasi lemak.

Perlakuan asam askorbat dan α-tokoferol mampu meningkatkan vigor benih bunga matahari (suherman, 2005). Perlakuan asam salsilat 50 ppm dan asam askorbat 50 ppm sebagai perlakuan pra tanam pada benih gandum (Triticum aestivum L.) cv. Ugab-2000 mampu meningkatkan vigor kecambah, bobot segar dan bobot kering kecambah normal pada kondisi optimum ataupun kondisi cekaman garam. Perlakuan ini juga mengurangi dampak negatif dari konsentrasi garam yang tinggi (Afzal et al., 2005).

BAB I PENDAHULUAN Latar Belakang

Kedelai merupakan komoditas pangan penghasil protein nabati yang sangat penting, baik karena gizinya, aman dikonsumsi, maupun harganya yang relatif murah dibandingkan dengan sumber protein hewani. Di Indonesia, kedelai umumnya dikonsumsi dalam bentuk pangan olahan seperti tahu, tempe, susu kedelai dan berbagai bentuk makanan ringan (Damardjati dkk, 2005).

Proyeksi konsumsi kedelai menunjukkan bahwa total kebutuhan terus mengalami peningkatan yaitu 2,71 juta ton pada tahun 2015 dan 3,35 juta ton pada tahun 2025. Jika sasaran produktivitas rata-rata nasional 1,5 t/ha bisa dicapai, maka kebutuhan areal tanam diperkirakan sebesar 1,81 juta ha pada tahun 2015 dan 2,24 juta ha pada tahun 2025 (Simatupang, dkk, 2005). Tantangannya adalah bagaimana mencapai areal tanam tersebut sementara lahan yang tersedia terbatas dan digunakan untuk berbagai tanaman palawija lainnya yang lebih kompetitif (Atman, 2009). Penurunan produksi, menurut pendataan BPS, utamanya terjadi karena luas panen tanaman kedelai yang pada 2010 tercatat 660.823 hektar berkurang menjadi 631.425 hektar pada 2011.

Salah satu usaha untuk meningkatkan produksi kedelai Indonesia adalah perluasan areal penanaman kedelai. Perluasan penanaman kedelai mengalami kendala, di mana tanah-tanah produktif banyak digunakan untuk areal industri dan perumahan. Di sisi lain masih banyak tanah di Indonesia belum dimanfaatkan akibat keterbatasan teknik budidaya. Tanah salin adalah salah satu lahan yang belum dimanfaatkan secara luas untuk kegiatan budidaya tanaman, hal ini

disebabkan adanya efek toksik dan peningkatan tekanan osmotik akar yang mengakibatkan terganggunya pertumbuhan tanaman (Slinger and Tenison, 2005).

Pada kondisi salin, pertumbuhan dan perkembangan tanaman terhambat karena akumulasi berlebihan Na dan Cl dalam sitoplasma, menyebabkan perubahan metabolisme di dalam sel. Aktivitas enzim terhambat oleh garam. Kondisi tersebut juga mengakibatkan dehidrasi parsial sel dan hilangnya turgor sel karena berkurangnya potensial air di dalam sel (Yuniati, 2004). Stomata berperan penting sebagai alat untuk adaptasi tanaman terhadap cekaman kekeringan. Pada kondisi cekaman kekeringan maka stomata akan menutup sebagai upaya untuk menahan laju transpirasi.

Stres lingkungan memicu berbagai macam respon tanaman, mulai dari mengubah ekspresi dan metabolisme seluler untuk mempercepat penuaan daun dan layu permanen, semuanya mengarah pada perubahan tingkat pertumbuhan dan produksi tanaman. Stress garam memberikan pengaruh buruk terhadap pertumbuhan dan produktivitas tanaman (Reddy et al., 2004; Baek et al., 2005; Amor et al., 2005). Melalui peningkatan Reactive Spesies Oxygen (ROS) yang dapat menyebabkan stress oksidatif mengakibatkan kerusakan sel oleh oksidasi lipid, protein dan asam nukleat (McKersie and Leshem, 1994; Pastori and Foyer, 2002; Apel and Hirt, 2004). Untuk meminimalkan efek stres garam oksidatif, sel-sel tumbuhan telah berevolusi membentuk system antioksidan kompleks yang akan menurunkan konsentrasi ROS (Beltagi, 2008).

Salah satu pendekatan untuk mendorong toleransi stres oksidatif yang akan meningkatkan substrat enzim pada tingkat sel adalah asam askorbat. Asam askorbat merupakan metabolit utama yang penting pada tanaman yang berfungsi

DAFTAR ISI

ABSTRACT ... i

ABSTRAK ... ii

RIWAYAT HIDUP ... iii

KATA PENGANTAR ... iv

DAFTAR ISI ... v

DAFTAR TABEL ... vii

DAFTAR GAMBAR ... viii

DAFTAR LAMPIRAN ... ix

PENDAHULUAN Latar Belakang ... 1

Tujuan Penelitian ... 3

Hipotesis Penelitian ... 3

Kegunaan Penelitian ... 4

TINJAUAN PUSTAKA Botani Tanaman... 5

Syarat Tumbuh... 7

Iklim... 7

Tanah... 8

Salinitas ... .…... 9

Pengaruh Salinitas Terhadap Tanah dan Tanaman ... 10

Asam Askorbat (Vitamin C) ... 15

Metabolisme Vitamin C Pada Tanaman ... 16

Peranan Asam Askorbat Pada Tanaman ... 17

BAHAN DAN METODE Tempat dan Waktu Penelitian ... 20

Bahan dan Alat... ... 20

Metode Penelitian... 20

PELAKSANAAN PERCOBAAN Persiapan Lahan ... 22

Penanaman Benih ... 22

Pemupukan ... 22

Aplikasi Asam Askorbat ... 22

Pemeliharaan Tanaman ... 22

Penyiraman ... 22

Penyulaman ... 23

Penyiangan ... 23

Pembumbunan ... 23

Pengendalian Hama dan Penyakit ... 23

Panen ... 23

Pengamatan Parameter ... 24

Tinggi Tanaman (cm) ... 24

Jumlah Cabang (cabang) ... 24

Umur Berbunga (hari) ... 24

Umur Panen (hari) ... 24

Jumlah Polong Berisi Pertanaman (polong) ... 24

Jumlah Polong Hampa Pertanaman (polong) ... 24

Jumlah Biji Pertanaman (buah) ... 25

Bobot Biji Pertanaman (g) ... 25

Bobot 100 Biji (g) ... 25

Jumlah Klorofil Daun (g/ml) ... 25

HASIL DAN PEMBAHASAN Hasil ... 26

Pembahasan ... 36

Kesimpulan dan Saran Kesimpulan ... 41

Saran ... 41 DAFTAR PUSTAKA

DAFTAR TABEL

No. Judul Hal

Tabel 1 Rataan Tinggi Tanaman Pada 3MST dan 4 MST (cm) 26 Tabel 2 Rataan Jumlah Cabang Pada 3 MST, 4 MST dan 5 MST 27

(cabang)

Tabel 3 Rataan Umur Berbunga (HST) 28

Tabel 4 Rataan Umur Panen (HST) 28

Tabel 5 Rataan jumlah polong berisi pertanaman (polong) 30 Tabel 6 Rataan Jumlah Polong Hampa Pertanaman (polong) 31

Tabel 7 Rataan Jumlah Biji Pertanaman (biji) 31

Tabel 8 Rataan Bobot Biji Pertanaman (g) 33

Tabel 9 Rataan Bobot 100 Biji (g) 34

Tabel 10 Rataan klorofil a, klorofil b dan klorofil total (g/ml) 35

DAFTAR GAMBAR

No. Judul Hal

Gambar 1 Struktur Kimia Asam Askorbat 16

Gambar 2 Skema pembentukan asam askorbat 17

Gambar 3 Grafik Pertambahan Tinggi Tanaman Pada 3 MST 27 dan 4 MST

Gambar 4 Grafik Jumlah Cabang Tanaman Pada 5 MST 28

Gambar 5 Grafik Jumlah Polong Berisi Pertanaman 30

Gambar 6 Grafik Jumlah Biji Pertanaman 32

Gambar 7 Grafik Bobot Biji Pertanaman 32

Gambar 8 Grafik Bobot 100 Biji 33

DAFTAR LAMPIRAN

No. Judul Hal

Lampiran 1 Bagan Percobaan 46

Lampiran 2 Bagan Tanaman Per Plot 46

Lampiran 3 Deskripsi Varietas Kedelai Grobogan 47

Lampiran 4 Jadwal Kegiatan 48

Lampiran 5 Gambar Tanaman dan Hasil Tanaman 49

Lampiran 6 Bagan Analisis Klorofil 54

Lampiran 7 Komposisi Asam Askorbat 56

Lampiran 8 Bagan Alir Penelitian 57

Lampiran 9 Data Pengamatan Tinggi Tanaman 3 MST (cm) 58

Lampiran 11 Sidik Ragam Tinggi Tanaman 3 MST 58

Lampiran 12 Data Pengamatan Tinggi Tanaman 4 MST (cm) 58

Lampiran 13 Sidik Ragam Tinggi Tanaman 4 MST 58

Lampiran 14 Data Pengamatan Jumlah Cabang 3 MST (cabang) 59

Lampiran 15 Sidik Ragam Jumlah Cabang 3 MST 59

Lampiran 16 Data Pengamatan Jumlah Cabang 4 MST (cabang) 59 Lampiran 17 Sidik Ragam Jumlah Cabang 4 MST (cabang) 60 Lampiran 18 Data Pengamatan Jumlah Cabang 5 MST (cabang) 60

Lampiran 19 Sidik Ragam Jumlah Cabang 5 MST 60

Lampiran 20 Data Pengamatan Umur Berbunga (HST) 61

Lampiran 21 Sidik Ragam Umur Berbunga 61

Lampiran 22 Data Pengamatan Umur Panen (HST) 61

Lampiran 23 Sidik Ragam Umur Panen 61

Lampiran 24 Data Pengamatan Jumlah Polong Berisi Pertanaman 62 (polong)

Lampiran 25 Sidik Ragam Jumlah Polong Berisi Pertanaman 62 Lampiran 26 Data Pengamatan Jumlah Polong Hampa Pertanaman 62

(polong)

Lampiran 27 Sidik Ragam Jumlah Polong Hampa Pertanaman 62 Lampiran 28 Data Pengamatan Jumlah Biji Pertanaman (biji) 63

Lampiran 29 Sidik Ragam Jumlah Biji Pertanaman 63

Lampiran 30 Data Pengamatan Bobot Biji Pertanaman (g) 63

Lampiran 31 Sidik Ragam Bobot Biji Pertanaman 63

Lampiran 32 Data Pengamatan Bobot 100 Biji (g) 64

Lampiran 33 Sidik Ragam Bobot 100 Biji 64

Lampiran 34 Data Pengamatan Jumlah Klorofil a (mg/l) 64

Lampiran 35 Sidik Ragam Jumlah Klorofil a 64

Lampiran 36 Data Pengamatan Jumlah Klorofil b (mg/l) 65

Lampiran 37 Sidik Ragam Jumlah Klorofil b 65

Lampiran 38 Data Pengamatan Jumlah Klorofil Total (mg/l) 65