Perbandingan Efek Ekstrak Daun Sirih Hijau (Piper betle L.) Dengan Metode Difusi Disk dan Sumuran terhadap Pertumbuhan Bakteri Staphylococcus aureus
i
PERBANDINGAN EFEK EKSTRAK
DAUN SIRIH HIJAU (
Piper betle
L.) DENGAN METODE
DIFUSI DISK DAN SUMURAN TERHADAP PERTUMBUHAN
BAKTERI
Staphylococcus aureus
Laporan penelitian diajukan sebagai salah satu syarat untuk memperoleh gelar SARJANA KEDOKTERAN
Disusun Oleh :
EKO PRAYOGA
NIM : 110103000059
PROGRAM STUDI PENDIDIKAN DOKTER
FAKULTAS KEDOKTERAN DAN ILMU KESEHATAN
UNIVERSITAS ISLAM NEGERI SYARIF HIDAYATULLAH
JAKARTA
1434H/2013
(2)
(3)
(4)
(5)
v
KATA PENGANTAR
Assalamu’alaikum Warahmatullahi Wabarakatuh,
Segala puji dan syukur penulis panjatkan kehadirat Allah SWT Yang Maha Esa, yang telah memberikan rahmat dan karunia-Nya serta nikmat yang tiada hentinya kepada manusia. Terutama nikmat akal yang menjadikan manusia sebagai makhluk yang paling sempurna. Dengan nikmat akal tersebutlah kita dituntut untuk dapat memanfaatkannya dengan sebaik-baiknya tanpa menyimpang dari perintah-Nya.
Shalawat serta salam penulis sanjungkan bagi makhluk termulia junjungan kita baginda Nabi Muhammad SAW, yang telah membawa kita dari alam kebodohan menuju alam kepintaran, serta keluarga dan para sahabatnya.
Alhamdulillah, penulis dapat menyelesaikan Laporan Penelitian ini yang berjudul ―Perbandingan Efek Ekstrak Daun Sirih Hijau (Piper betle L.) Dengan Metode Difusi Disk dan Metode Sumuran terhadap Pertumbuhan Bakteri Staphylococcus aureus‖,
sebagai salah satu syarat untuk memperoleh gelar Sarjana Kedokteran di Fakultas Kedokteran dan Ilmu Kesehatan UIN Syarif Hidayatullah Jakarta.
Dalam kesempatan kali ini penulis ingin mengucapkan terimakasih kepada Prof. DR. (hc). dr. M.K. Tadjudin, SpAnd. dan dr. Witri Ardini, M.Gizi, SpGk, selaku Dekan Fakultas Kedokteran dan Ilmu Kesehatan dan ketua Program Studi Pend. Dokter UIN Syarif Hidayatullah Jakarta.
Ucapan terima kasih juga penulis sampaikan kepada dr. Lucky Briallintina, M.Biomed dan dr. Lady Koesoema, SpKk sebagai dosen pembimbing riset penulis, yang telah banyak menyediakan waktu, tenaga dan pikiran untuk memberikan bimbingan, arahan, dan nasihat kepada penulis selama penelitian dan penyusunan riset ini.
Penulis juga mengucapkan terima kasih kepada Pak Bacok dan Mba Novi selaku laboran beserta OB yang telah membantu penulis dalam penelitian di laboratorium.
Ucapan terima kasih sebesar besarnya juga penulis ucapkan untuk kedua orang tua tercinta Ibunda Maslihat, Ayahanda Saiful Anwar yang telah memberikan motivasi serta kasih sayang yang berlebih terhadap penulis, serta pengertian orang tua selama penulis melakukan penelitian ini.
(6)
vi
Penulis juga mengucapkan terima kasih kepada Pemerintah Kabupaten Musi Banyuasin, serta Tim Pengelola Beasiswa Santri Jadi Dokter yang telah memberikan penulis kesempatan untuk menyelesaikan studi Pendidikan Dokter di FKIK UIN Syarif Hidayatullah Jakarta.
Dan tak lupa juga penulis ucapkan terima kasih untuk teman-teman satu seperjuangan riset Tenia Alfitri, Angga Maulana Ibrahim, dan untuk teman seangkatan PSPD 2010, semoga kita semua menjadi makhluk mulia dunia akhirat dan dapat menggunakan ilmu yang telah kita peroleh ke dalam jalan Allah SWT.
Tidak ada harapan dari penulis, semoga dengan terselesaikannya Laporan Penelitian ini dapat menambah pengetahuan kita semua. Sesungguhnya kesempurnaan hanya lah milik Allah SWT dan kesalahan pasti datangnya dari penulis. Karena itu tidak menutup kemungkinan jika dalam penulisan Laporan Penelitian ini terdapat banyak kesalahan dan kekurangan. Untuk itu, segala kritik dan saran penulis harapkan demi kesempurnaan laporan penelitian ini dan akan penulis terima dengan senang hati.
Wassalamu’alaikum Warahmatullahi Wabarakatuh.
Jakarta, 12 September 2013
(7)
vii
ABSTRAK
Eko Prayoga. Program Studi Pendidikan Dokter. Perbandingan Efek Ekstrak Daun Sirih Hijau (Piper betle L.) Dengan Metode Difusi Disk dan Sumuran terhadap Pertumbuhan Bakteri Staphylococcus aureus.
Metode uji antibakteri dibagi menjadi difusi, dilusi dan difusi dilusi. Metode difusi disk dan sumuran merupakan metode difusi, yang menggunakan media padat. Banyak penelitian yang menggunakan metode difusi disk, metode sumuran masih jarang digunakan untuk penelitian. Penelitian ini bertujuan untuk membandingkan kedua metode tersebut berdasarkan diameter zona hambat. Penelitian ini menggunakan ekstrak daun sirih karena daun sirih sudah banyak dilakukan penelitian lain dan terbukti memiliki daya antibakteri. Bakteri yang digunakan adalah Staphylococcus aureus, karena bakteri ini mudah berkembang biak namun tidak mudah terkontaminasi. Pada penelitian ini menggunakan konsentrasi 25%, 50%, 75%, dan 100%. Data dari penelitian ini dianalisa menggunakan SPSS 16, dengan uji one way anova kemudian dilakukan Uji T Penelitian ini membuktikan bahwa dengan metode sumuran lebih besar zona hambat nya.
Kata kunci: Difusi disk, sumuran, ekstrak daun sirih
ABSTRACT
Eko Prayoga. Medical Education Department. Comparison Effect of Betel Leaf Extract (Piper betle L.) With Method Diffusion disk and Method Hole Cup Towards The Growth Staphylococcus aureus.
Many kind of method anti bacterial test, such as diffusion and dilution. Method diffusion disk is the most method use for research. The aim of this study is to see what the most effective between method diffusion disk and hole cup. Bactery used in this study is
Staphylococcus aureus, because this bacteria easy to grow up but not easy to contaminate from other bacteria. This study use extract of piper betle leaf, because this plant have benefit for antibacterial and use concentration 25%, 50%, 75%, and 100%. All of data in this study will be analized uses SPSS 16, with hypothesis test one way anova and then T-test. This study prove that method hole cup it‘s more effective because the higher concentrate, the diameter will be high.
(8)
viii DAFTAR ISI
Halaman
LEMBAR PERNYATAAN ... ii
LEMBAR PERSETUJUAN ... iii
LEMBAR PENGESAHAN ... iv
KATA PENGANTAR ... v
ABSTRAK ... vii
ABSTRACT ... vii
DAFTAR ISI... viii
DAFTAR TABEL ... xi
DAFTAR GAMBAR ... xii
DAFTAR BAGAN ... xiii
DAFTAR LAMPIRAN ... ... xiv
BAB I PENDAHULUAN ... 1
1.1 Latar Belakang ... 1
1.2 Rumusan Masalah ... 3
1.3 Hipotesis ... 3
1.4 Tujuan Penelitian... 3
1.4.1 Tujuan Umum ... 3
1.4.2 Tujuan Khusus ... 3
1.5 Manfaat Penelitian ... 3
BAB II TINJAUAN PUSTAKA ... 5
2.1 Landasan Teori... 5
2.1.1 Tanaman Daun Sirih Hijau (Piper betle L.) ... 5
2.1.2 Staphylococcus Aureus ... 6
2.1.3 Mekanisme Anti Bakteri ... 7
2.1.4 Metode Pengujian Antibakteri ... 8
2.2 Kerangka Konsep ... 11
2.3 Definisi Operasional ... 11
BAB III METODOLOGI PENELITIAN ... 12
3.1 Desain Penelitian ... 12
(9)
ix
3.3 Bahan yang Diuji ... 12
3.4 Sampel Bakteri ... 12
3.5 Identifikasi Variabel... 12
3.5.1 Variabel Bebas ... 12
3.5.2 Variabel Terikat ... 12
3.6 Alat dan Bahan Penelitian ... 13
3.6.1 Alat Penelitian ... 13
3.6.2 Bahan Penelitian ... 13
3.7 Alur Penelitian ... 14
3.8 Cara Kerja Penelitian ... 15
3.8.1 Tahap Persiapan ... 15
3.8.1.1 Sterilisasi Alat dan Bahan ... 15
3.8.1.2 Persiapan dan Determinasi Daun Sirih Hijau... 15
3.8.1.3 Pembuatan Ekstrak Daun Sirih Hijau (Piper betle.L) ... 15
3.8.1.4 Pembuatan Stok Variabel Konsentrasi ... 15
3.8.1.5 Regenerasi Bakteri ... 16
3.8.2 Tahap Pengujian ... 16
3.8.2.1 Uji Penghambatan Pertumbuhan Bakteri Dengan Difusi Disk ... 16
3.8.2.2 Uji Penghambatan Pertumbuhan Bakteri Dengan Sumuran... 16
3.9 Analisis Data ... 17
BAB IV HASIL DAN PEMBAHASAN ... 18
4.1 Hasil Ekstrak Sirih Hijau Dengan Metode Difusi... 18
4.2 Disk Hasil Ekstrak Sirih Hijau Dengan Metode Sumuran... 19
4.3 Pembahasan... 21
BAB V SIMPULAN DAN SARAN ... 23
5.1 Simpulan ... 23
5.2 Saran ... 23
DAFTAR PUSTAKA ... 24
(10)
x
DAFTAR TABEL
Halaman
Tabel 2.1. Klasifikasi Respon Hambatan Pertumbuhan Bakteri ... 9 Tabel 4.1. Hasil Analisis Multikomparasi dengan Uji One way anova ... 28
(11)
xi
DAFTAR GAMBAR
Halaman
Gambar 2.1. Daun Sirih Hijau ... 5
Gambar 2.2. Hasil Pewarnaan Gram S.aureus ... 6
Gambar 4.1 Hasil efek ekstrak sirih hijau dengan metode sumuran ... 18
(12)
xii
DAFTAR BAGAN
Halaman Bagan 2.2 Kerangka Konsep ... 11 Bagan 3.7 Alur Penelitian ... 14
(13)
xiii
DAFTAR LAMPIRAN
Halaman
Lampiran 1 Surat Hasil Determinasi Tanaman ... 26
Lampiran 2 Surat Pengujian Ekstraksi Tanaman ... 27
Lampiran 3 Hasil Uji Statistik ... 28
Lampiran 4 Alat dan Bahan Penelitian ... 32
(14)
1 BAB I
PENDAHULUAN 1.1Latar Belakang
Akhir-akhir ini sudah banyak antibiotik yang resisten terhadap bakteri. Sebagai alternatif, telah banyak obat-obatan herbal yang digunakan untuk mengobati berbagai penyakit. Contoh tanaman yang sering dijadikan sebagai obat tradisional adalah daun sirih, daun pepaya, daun sirsak, daun gambir, dan lain-lain.1
Untuk membuktikan adanya efek antibakteri dari tanaman itu terhadap bakteri tertentu, perlu dilakukan uji antibakteri.2 Dari uji antibakteri ini, dapat dilihat apakah terdapat efek antibakteri di tanaman tersebut, kemudian kita juga dapat menentukan kadar hambat minimum (KHM) dan kadar bunuh minimum (KBM). 3
Metode uji antibakteri dibagi menjadi dua, yaitu dengan difusi dan dilusi. Metode difusi kemudian dibagi lagi menjadi metode disk, sumuran, dan parit. Sedangkan metode dilusi dibagi menjadi broth dilution dan agar dilution.4 Yang membedakan dua macam metode ini adalah berdasarkan media nya. Biasa nya metode difusi menggunakan medium padat, sedangkan pada dilusi digunakan medium cair.5
Dari beberapa metode tersebut, metode yang sering digunakan dalam penelitian adalah dengan menggunakan metode difusi disk. Metode disk ini termasuk ke dalam metode difusi karena menggunakan medium yang padat. Selain metode disk, masih ada metode sumuran dan metode parit yang termasuk metode difusi.6 Tujuan dari ketiga metode ini adalah untuk mengamati diameter zona hambat terhadap bakteri uji.6,7
Metode sumuran jarang digunakan untuk melakukan penelitian karena sulitnya proses perlakuan, namun berdasarkan banyak teori, hasil dari metode sumuran akan lebih mudah terlihat dan lebih menampakan hasil yang nyata.8
Menjadi suatu hal yang menarik untuk membandingkan 2 metode ini dengan melihat efek dari tanaman herbal. Salah satu tanaman tradisional yang sering digunakan masyarakat serta di percaya masyarakat dapat menyembuhkan banyak penyakit yaitu tanaman daun sirih.9 Tanaman sirih ini yang mempunyai khasiat dalam mengobati
(15)
2 penyakit adalah dari daun nya, baik itu ekstrak nya atau dari air daun tersebut.10 Daun sirih dipercaya dapat menyembuhkan beberapa penyakit, antara lain untuk sariawan, mimisan, bau badan, batuk, keputihan, sakit kepala, gusi bengkak, dan radang tenggorokan. 11
Efek daun sirih dapat menyembuhkan beberapa penyakit diatas,disebabkan karena dalam daun sirih mengandung minyak atsiri 1-4,2% yang terdiri dari hidroksikavikol, kavikol, kavibetol,metal eugenol, karvakol, terpena, seskuiterpena, fenilpropana, tannin, enzim diastasae 0,8-1,8%, enzim katalase, gula, pati,vitamin A, B dan C.12
Penelitian mengenai efek dari daun sirih ini telah banyak dilakukan. Contoh nya penelitan yag telah dilakukan oleh Anang Hermawan (2007), penelitian ini menunjukan bahwa ekstrak daun sirih hijau dengan menggunakan pelarut DMSO (Dimethil sulfoxide) dapat menghambat pertumbuhan bakteri Staphylococcus aureus.13 Penelitian yang juga mendukung ke arah tersebut adalah penelitian yang dilakukan oleh Suliantari (2008) menunjukan bahwa ekstrak daun sirih dengan menggunakan pelarut etanol yang menggunakan metode dilusi dapat menghambat pertumbuhan bakteri Staphylococcus aureus. 14
Penelitian lain yang mendukung juga ada penelitian yang telah dilakukan Wahyu Susilowati (2001) menyatakan uji bakteri terhadap Streptococcus alpha menggunakan ekstrak biji alpukat secara invitro dengan teknik sumuran menggunakan konsentrasi 2,5% ; 5% ; 10% ; 20% dan 40%, semakin tinggi konsentrasi maka semakin besar diameter zona hambat yang dihasilkan. Pada penelitian yang telah dilakukan Sudayana (2006) melakukan perbandingan uji cakram disk dan metode dilusi menggunakan ekstrak daun sirih hijau terhadap bakteri Staphylococcus aureus, kedua metode ini memiliki hasil yang berbeda dan tujuan yang berbeda. Metode difusi didapatkan hasil berupa diameter zona hambat bakteri terhadap antibakteri sedangkan metode dilusi didapatkan hasil berupa konsentrasi hambat minimal (KHM) dan konsentrasi bunuh minimal (KBM).3,4
Alasan penulis membandingkan metode difusi disk dan sumuran, karena kedua metode ini termasuk kategori difusi dan memiliki hasil yang sama, yaitu dengan cara menghitung zona hambat bakteri terhadap antibakteri yang di uji, hanya saja cara kerja yang memiliki perbedaan. Dan kedua metode ini merupakan metode yang cukup sering digunakan untuk penelitian, namun masih sedikit penelitian yang membandingkan antara kedua metode ini.
(16)
3 Berdasarkan latar belakang masalah dalam penulisan ini dapat dirumuskan masalah penelitian, yaitu :
1.2Rumusan Masalah
1.2.1Apakah terdapat pengaruh aktifitas antibakteri dari ekstrak daun sirih hijau terhadap Bakteri Staphylococcus aureus?
1.2.2Bagaimana perbandingan efek antibakteri dari ekstrak daun sirih hijau (Piper betle
L.) terhadap pertumbuhan bakteri Staphylococcus aureus berdasarkan metode difusi disk dan sumuran?
1.3Hipotesis
1.3.1 Terdapat pengaruh antara aktivitas antibakteri dari ekstrak daun sirih hijau terhadap bakteri Staphylococcus aureus.
1.3.2 Efek antibakteri dari ekstrak daun sirih terhadap pertumbuhan bakteri
Staphylococcus aureus lebih terlihat dengan menggunakan metode sumuran.
1.4Tujuan Penelitian
1.4.1 Tujuan Umum
Tujuan penelitian adalah untuk mengetahui aktifitas anti bakteri dengan menggunakan metode sumuran jauh lebih jelas di bandingkan metode difusi disk pada Ekstrak daun sirih hijau terhadap Bakteri Staphylococcus aureus.
1.4.2 Tujuan Khusus
1. Untuk mengetahui besar konsentrasi ekstrak daun sirih hijau yang mampu menghambat pertumbuhan bakteri Staphylococcus aureus.
2. membandingkan besar konsentrasi 25%,50%,75%,dan 100% berdasarkan metode difusi disk dan sumuran.
1.5Manfaat Penelitian 1.5.1 Bagi Peneliti
Penelitian diharapkan dapat menambah pengetahuan serta informasi mengenai manfaat dari ekstrak daun sirih hijau sebagai anti bakteri dalam menghambat pertumbuhan Bakteri Staphylococcus aureus.
(17)
4 1.5.2 Bagi Masyarakat
Ekstrak daun sirih hijau yang selama ini di percaya dapat mengobati penyakit, dengan ada nya penelitian ini diharapkan mampu menunjukkan manfaat ekstrak daun sirih hijau sebagai anti bakteri dalam menghambat pertumbuhan
Staphylococcus aureus.
1.5.3 Bagi Institusi
Penelitian ini dapat memberikan bukti bahwa dengan metode sumuran ternyata dapat dilakukan lebih mudah dan dapat memberikan hasil yang lebih jelas dan lebih besar diameter zona hambat nya.
(18)
5 BAB II
TINJAUAN PUSTAKA 2.1 Landasan Teori
2.1.1 Daun Sirih (Piper Betle L.)
Sirih adalah salah satu jenis tumbuhan yang berasal dari famili Piperaceae.15 Sirih banyak tumbuh subur di wilayah Asia Pasifik hingga Afrika Timur. Tanaman daun sirih ini merupakan tanaman merambat yang panjang nya bisa mencapai 15 m.15,16 Daun sirih memiliki batang yang berwarna cokelat kehijauan, berbentuk bulat, berbuku-buku,beralur dan merupakan tempat keluarnya akar. Tanaman ini memiliki daun yang tunggal, bulat panjang, pangkal nya mempunyai bentuk jantung, ujung meruncing sedangkan tepi daun nya rata.17 Permukaan nya halus,memiliki bentuk pertulangan yang menyirip. Panjang daun nya sekitar 5-8 cm, lebar 2-5 cm.18
Gbr 2.1 Daun sirih hijau Sumber : dokumen pribadi
Tanaman ini dapat diperbanyak dengan menggunakan stek sulur, yaitu stek diambil dari sulur yang tumbuh dibagian ujung atas yang panjang nya 40cm-50 cm. Untuk memperoleh pertumbuhan yang baik diperlukan tanah yang kaya akan humus, subur dan pengairan yang baik.19
(19)
6 Daun Sirih di setiap daun nya mengandung 1-4,2% minyak atsiri,mengandung hidroksikavikol, kavikol, kavibetol, estradiol, eugenol, metal-eugenol, karvakrol, terpeneba, seskuiterpena, fenil propane, tannin; diastase 0,8%-1,8%, gula; pati.20
Tanaman daun sirih ini dapat digunakan untuk obat sakit kulit, obat bisul, hidung berdarah, radang selaput lender mata, trachoma, bau mulut, keputihan, gigi goyah, gusi bengkak, radang tenggorokan, encok, jantung berdebar-debar, kepala pusing, terlalu banyak keluar air susu, batuk kering, demam nifas, sariawan. Getah nya dapat juga digunakan untuk menghentikan gusi berdarah, sakit gigi, obat kumur, mengurangi produksi air susu yang berlebihan.21
2.1.2 Staphylococcus Aureus
Staphylococcus aureus merupakan salah satu bakteri Gram positif berbentuk bulat berdiameter 0,7-1,2 μm, tersusun dalam kelompok-kelompok yang tidak teratur seperti buah anggur, non motil, tidak membentuk spora, dapat tumbuh pada berbagai media pada suasana aerob dan memproduksi katalase yang merupakan bakteri patogen bagi manusia. Bakteri ini tumbuh pada suhu optimum 37 ºC, tetapi membentuk pigmen paling baik pada suhu kamar (20-25 ºC). Koloni pada perbenihan padat berwarna abu-abu sampai kuning keemasan, berbentuk bundar, halus, menonjol, dan berkilau. Bakteri ini dapat memfermentasikan beberapa karbohidrat dan dapat menghasilkan pigmen yang berwarna, tidak larut dalam air.22
Gbr 2.2 S.aureus dengan pewarnaan Gram Sumber : slide kuliah mikrobiologi
(20)
7 Sistematika Staphylococus aureus adalah sebagai berikut22 :
Divisi : Protophyta Kelas : Schizomycetes Bangsa : Eubacteriales Suku : Micrococcaceae Marga : Staphylococcus Jenis : Staphylococcus aureus
Staphylococcus aureus mengandung polisakarida dan protein yang bersifat antigenik. Antigen ini merupakan kompleks peptidoglikan asam teikhoat dan dapat menghambat fagositosis dan bagian ini yang diserang bakteriofaga. Selain itu Staphylococcus aureus juga bersifat lisogenik yaitu mengandung faga yang tidak berpengaruh pada dirinya sendiri, tetapi menyebabkan lisis pada anggota dari spesies sama. S.aureus merupakan kuman patogen yang bersifat invasif, penyebab hemolisis, membentuk koagulase, mencairkan gelatin, membentuk pigmen kuning emas. Staphylococcus aureus umumnya dapat memfermentasi manitol dan menghemolisis sel darah merah.. Setiap jaringan ataupun organ tubuh dapat terinfeksi dan menyebabkan timbulnya penyakit dengan tanda-tanda khas yaitu peradangan lokal, nekrosis, dan pembentukan abses. Pada penyebaran ke bagian tubuh lain melewati pembuluh getah bening dan pembuluh darah. Infeksinya dapat berupa furunkel yang ringan pada kulit sampai berupa suatu piemia yang fatal, serta keracunan makanan, dan toxic shock syndrome. Umumnya bakteri ini menimbulkan penyakit yang bersifat sporadik. 23
2.1.3 Mekanisme Antibakteri
Antibakteri merupakan obat pembasmi bakteri, khusus nya bakteri patogen yang dapat merugikan manusia. Antibakteri adalah zat yang dihasilkan oleh suatu mikroba yang dapat menghambat pertumbuhan atau dapat membasmi jenis mikroba lain. Obat yang dapat digunakan untuk membasmi mikroba memiliki ketentuan yaitu harus memiliki sifat toksisitas selektif setinggi mungkin. Artinya, obat tersebut haruslah bersifat sangat toksik untuk mikroba tapi tidak toksik untuk hospes. Berdasarkan sifat toksisitas selektif, dibagi menjadi 2 yaitu : 24
1. Antibakteri yang mempunyai sifat menghambat pertumbuhan bakteri (aktivitas bakteriostatik)
(21)
8 Dalam menghambat pertumbuhan bakteri ataupun membunuhnya, terdapat kadar minimal. Kadar minimal tersebut masing-masing dikenal sebagai kadar hambat minimal (KHM) dan kadar bunuh minimal (KBM). Antimikroba tertentu dapat meningkat aktivitasnya dari bakteriostatik menjadi bakterisid apabila kadar antimikrobanya ditingkatkan melebihi kadar hambat minimal (KHM). 24
2.1.4 Metode Pengujian Antibakteri
Pada uji ini, yang akan diukur adalah respons pertumbuhan populasi mikroorganisme terhadap agen antimikroba. Salah satu manfaat dari uji antimikroba adalah diperolehnya satu system pengobatan yang efektif dan efisien. Penentuan setiap kepekaan kuman terhadap suatu obat adalah dengan menentukan kadar obat terkecil yang dapat menghambat pertumbuhan kuman in vitro. Beberapa cara pengujian antibakteri adalah sebagai berikut :
a. Metode Difusi
Pada metode ini, penentuan aktivitas didasarkan pada kemampuan difusi dari zat antimikroba dalam lempeng agar yang telah diinokulasikan dengan mikroba uji. Hasil pengamatan yang akan diperoleh berupa ada atau tidak nya zona hambatan yang akan terbentuk disekeliling zat antimikroba pada waktu tertentu masa inkubasi.23 Pada metode ini dapat dilakukan dengan 3 cara,yaitu :
1) Cara Cakram (Disc)
Cara ini merupakan cara yang paling sering digunakan untuk menentukan kepekaan kuman terhadap berbagai macam obat-obatan. Pada cara ini, digunakan suatu cakram kertas saring (paper disc) yang berfungsi sebagai tempat menampung zat antimikroba. Kertas saring tersebut kemudian diletakkan pada lempeng agar yang telah diinokulasi mikroba uji, kemudian diinkubasi pada waktu tertentu dan suhu tertentu, sesuai dengan kondisi optimum dari mikroba uji. Pada umumnya, hasil yang di dapat bisa diamati setelah inkubasi selama 18-24 jam dengan suhu 37oC. Hasil pengamatan yang diperoleh berupa ada atau tidaknya daerah bening yang terbentuk disekeliling kertas cakram yang menunjukkan zona hambat pada pertumbuhan bakteri.24 Menurut greenwood (1995) efektifitas suatu zat antibakteri bisa diklasifikasikan pada tabel berikut :10
(22)
9
Metode cakram disk atau cakram kertas ini memiliki kelebihan dan kekurangan. Kelebihannya adalah mudah dilakukan, tidak memerlukan peralatan khusus dan relatif murah. Sedangkan kelemahannya adalah ukuran zona bening yang terbentuk tergantung oleh kondisi inkubasi, inokulum, predifusi dan preinkubasi serta ketebalan medium.24,25 Apabila keempat faktor tersebut tidak sesuai maka hasil dari metode cakram disk biasanya sulit untuk diintepretasikan. Selain itu, metode cakram disk ini tidak dapat diaplikasikan pada mikroorganisme yang pertumbuhannya lambat dan mikroorganisme yang bersifat anaerob obligat. 25
2) Cara Parit (ditch)
Suatu lempeng agar yang telah diinokulasikan dengan bakteri uji dibuat sebidang parit. Parit tersebut berisi zat antimikroba, kemdian diinkubasi pada waktu dan suhu optimum yang sesuai untuk mikroba uji. Hasil pengamatan yang akan diperoleh berupa ada tidaknya zona hambat yang akan terbentuk di sekitar parit.25
3) Cara Sumuran (hole/cup)
Pada lempeng agar yang telah diinokulasikan dengan bakteri uji dibuat suatu lubang yang selanjutnya diisi dengan zat antimikroba uji. Kemdian setiap lubang itu diisi dengan zat uji. Setelah diinkubasi pada suhu dan waktu yang sesuai dengan mikroba uji, dilakukan pengamatan dengan melihat ada atau tidaknya zona hambatan di sekeliling lubang.25
b. Metode Dilusi
Pada metode ini dilakukan dengan mencampurkan zat antimikroba dan media agar, yang kemudian diinokulasikan dengan mikroba uji. Hasil pengamatan yang akan diperoleh berupa tumbuh atau tidaknya mikroba didalam media. Aktivitas zat
Diameter zona terang Respon hambatan pertumbuhan
>20 mm Kuat
16-20 mm Sedang
10-15 mm Lemah
(23)
10 antimikroba ditentukan dengan melihat konsentrasi hambat minimum (KHM) yang merupakan konsentrasi terkecil dari zat antimikroba uji yang masih memberikan efek penghambatan terhadap pertumbuhan mikroba uji.26 Metode ini terdiri atas dua cara, yaitu:
1) Pengenceran Serial dalam tabung
Pengujian dilakukan dengan menggunakan sederetan tabung reaksi yang diisi dengan inokculum kuman dan larutan antibakteri dalam berbagai konsentrasi. Zat yang akan diuji aktivitas bakterinya diencerkan sesuai serial dalam media cair,kemudian diinokulasikan dengan kuman dan diinkubasi pada waktu dan suhu yang sesuai dengan mikroba uji. Aktivitas zat ditentukan sebagai kadar hambat minimal (KHM).26
2) Penipisan Lempeng Agar
Zat antibakteri diencerkan dalam media agar dan kemudian dituangkan kedalam cawan petri. Setelah agar membeku, diinokulasikan kuman kemudian diinkubasi pada waktu dan suhu tertentu. Konsentrasi terendah dari larutan zat antibakteri yang masih memberikan hambatan terhadap pertumbuhan kuman ditetapkan sebagai konsentrasi Hambat Minimal (KHM).26
c. Metode difusi dan dilusi
E-test atau biasa disebut juga dengan tes epsilometer adalah metode tes dimana huruf ‗E‘ dalam nama E-test menunjukan simbol epsilon (). E-test merupakan metode kuantitatif untuk uji antimikroba. Metode ini termasuk gabungan antara metode dilusi dari antibakteri dan metode difusi antibakteri kedalam media. Metode ini dilakukan dengan menggunakan strip plastic yang sudah mengandung agen antibakteri dengan konsentrasi terendah sampai konsentrasi tertinggi diletakan pada media agar yang telah ditanami mikroorganisme. Hambatan pertumbuhan mikroorganisme bisa diamati dengan adanya area jernih di sekitar strip tersebut. 27
E-test dapat digunakan untuk menentukan kadar hambat minimum (KHM) untuk bakteri seperti Streptococcus pneumoniae, Streptococcus ß-hemolitik, Neisseria gonorrhoeae, Haemophilus sp. dan bakteri anaerob. Dapat juga digunakan untuk bakteri Gram negative seperti Pseudomonas sp. dan Burkholderia pseudomallei.27
(24)
11 2.2 Kerangka Konsep
2.3 Definisi Operasional
No. Variebel Definisi Operasional Alat Ukur Hasil Ukur Skala Ukur 1. Zona hambat
S.aureus
Zona terang di sekitar cakram pada media agar darah yang telah ditanami
S. aureus
Penggaris Diameter zona terang(clear zone)
numerik
2. Konsentrasi ekstrak sirih hijau
Ekstrak sirih hijau dengan konsentrasi 25%, 50%, 75%, 100%
Mikro pipet Jumlah ekstrak sesuai dengan konsentrasi pada tiap tabung
Kategorik
3. Konsentrasi ekstrak sirih merah
Ekstrak sirih merah dengan konsentrasi 25%, 50%, 75%, 100%
Mikro pipet Jumlah ekstrak sesuai dengan konsentrasi pada tiap tabung
Kategorik
4. Larutan kontrol negatif
Larutan kontrol negatif berupa etanol 96%
Mikro pipet Cakram uji berisi etanol 96%
Kategorik
5. Kontrol positif
Kontrol positif berupa kertas cakram berisi antibiotik amoksilin
Tidak ada Cakram uji berisi antibiotik amoksilin
Kategorik Ekstrak daun sirih hijau dengan berbagai konsentrasi
Biakan Bakteri Staphylococcus Aureus
(25)
12 BAB III
METODOLOGI PENELITIAN
3.1 Desain Penelitian
Penelitian ini merupakan penelitian ekperimental membandingkan metode uji antibakteri disc diffusion dan metode uji antibakteri sumuran dalam melihat efek ekstrak daun sirih hijau (Piper betle L.) terhadap pertumbuhan bakteri Staphylococcus aureus.
3.2 Waktu dan Tempat Penelitian
Penelitian ini dilakukan pada bulan Januari 2013 sampai bulan Agustus 2013 di Laboratorium Mikrobiologi Fakultas Kedokteran dan Ilmu Kesehatan UIN Syarif Hidayatullah Jakarta. Proses determinasi tanaman dilakukan oleh Lembaga Ilmu Pengetahuan Indonesia (LIPI) Cibinong, sedangkan proses ekstraksi daun sirih hijau (Piper betle L.) dilakukan oleh Balai Penelitian Tanaman Rempah dan Obat
(
BALITRO) Bogor.3.3 Bahan yang Diuji
Ekstrak daun sirih hijau (Piper betle L.) yang telah dideterminasi oleh LIPI Bogor dan diekstraksi oleh Balai Penelitian Tanaman Rempah dan Obat
(
BALITRO) Bogor.3.4 Sampel Bakteri
Bakteri Staphylococcus aureus diisolasi pada media Mueller-Hinton Agar (MHA), dan diinkubasi pada suhu 37°C selama 24 jam.
3.5 Identifikasi Variabel 3.5.1 Variabel Bebas
Ekstrak daun sirih hijau (Piper betle L.) dengan konsentrasi 25%, 50%, 75%, dan 100%.
3.5.2 Variabel Terikat
1. Staphylococcus aures di media Mueller-Hinton Agar 2. Metode difusi disk
3. Metode sumuran
4. Larutan etanol 96% sebagai kontrol negative 5. Disk amoksisilin sebagai kontrol positif
(26)
13
13 3.6 Alat dan Bahan Penelitian
3.6.1 Alat Penelitian
Alat yang digunakan dalam penelitian ini yaitu : tabung reaksi
mikro pipet vortex bunsen korek api ose
spatula besi cawan petri tabung durham, penggaris rak tabung timbangan autoclave baki
swab kapas pengukur waktu inkubator
cakram uji kosong label
alat tulis kamera
laminar air flow tisu
pinset mikropipet shaker
3.6.2 Bahan Penelitian
Bahan yang digunakan dalam penelitian ini yaitu : alkohol
media Mueller-hinton Agar
ekstrak daun sirih hijau aquades steril
pelarut etanol 96% biakan Staphylococcus
aureus
cakram amoksilin cakram uji kosong spiritus
(27)
14 3.7 Alur Penelitian
Kultur bakteri Staphylococcus aureus di media Mueller Hinton
Agar
Pembuatan inoculum, 1 ose
S.aureus ke dalam larutan NaCl
Bakteri di usapkan ke media Mueller Hinton Agar dengan
swab kapas steril NaCl dan Staphylococcus aureus divortex agar homogen
Kekeruhan distandarisasi dengan menggunakan larutan
standarisasi konsentrasi 0,5
Pembuatan konsentrasi ekstrak sirih hijau konsentrasi 25%,505,75% dan 100%
Konsentrasi ekstrak diberi larutan etanol 96% kemudian divortex dengan tujuan
agar homogen.
Konsentrasi ekstrak yang telah homogen kemudian dipindahkan ke cawan petri
Rendam blank disc ke dalam konsentrasi ekstrak homogen
Pembuatan kontrol negatif Rendam blank
disc ke dalam etanol 96% di dalam cawan petri
kontrol positif disc amoksilin
Disc diletakkan di media Mueller Hinton Agar yang telah ditanami Staphylococcus aureus
Inkubasi selama 24 jam
Hitung diameter zona terang di sekeliling disc dan tentukan
potensi antibakteri
Dibuat lubang di Mueller Hinton Agar
Di setiap lubang diisi dengan konsentrasi ekstrak daun sirih hijau, kontrol positif
(28)
15
3.8 Cara Kerja Penelitian 23 3.8.1 Tahap Persiapan
3.8.1.1 Sterilisasi Alat dan Bahan
Seluruh alat dan bahan (hanya aquades) yang akan digunakan disterilisasi di dalam autoclave selama 15 menit pada suhu sebesar 121°C dengan mengatur tekanan sebesar 1,5 atm setelah sebelumnya dicuci bersih, dikeringkan dan dibungkus dengan kertas.Sterilisasi untuk alat Laminar air flow dengan cara menyalakan sinar UV selama 15 menit kemudian semprotkan dengan alkohol lalu keringkan dengan tissue.
3.8.1.2 Persiapan dan Determinasi Daun Sirih Hijau
Daun sirih hijau diperoleh dari tanaman milik warga di daerah Ciputat yang homogen sebanyak 1000 gram. Kemudian dilakukan determinasi di Lembaga Ilmu Pengetahuan Indonesia Cibinong yang bertujuan untuk memastikan kebenaran dari tanaman yang digunakan. Determinasi tanaman sirih hijau dilakukan dengan cara mencocokkan ciri-ciri morfologi yang ada pada tanaman sirih terhadap kepustakaan dan dibuktikan di bidang Botani Pusat Penelitian Biologi LIPI Bogor.
3.8.1.3 Pembuatan Ekstrak Daun Sirih Hijau
Pembuatan ekstrak dilakukan dengan metode maserasi.
Sebanyak 1000 gram daun sirih hijau dicuci bersih terlebih dahulu dikeringkan, diremas dan dihaluskan sampai menjadi serbuk.
Serbuk lalu direndam dalam etanol 96% selama 3x24 jam, melalui penyaringan filtrat sirih hijau ini didapatkan.
Kemudian semua filtrat digabung, dan diuapkan atau dipekatkan dengan rotary evaporator pada suhu 40-50°C hingga diperoleh ekstrak kental sebanyak 116,3 gram.
3.8.1.4. Pembuatan Stok Variabel Konsentrasi
Variable yang digunakan pada penelitian ini sebanyak 4 variabel, kontrol negative berupa etanol, variasi konsentrasi ekstrak sirih hijau 25%, 50%, 75%, 100% dengan menggunakan pelarut etanol, serta kontrol positif berupa
(29)
16 cakram amoksilin yang merupakan antibiotic spectrum luas sehingga tepat untuk menghambat pertumbuhan bakteri gram positif maupun negatif. 3.8.1.5. Kultur Bakteri
Pembuatan stok bakteri ini dilakukan untuk memperbanyak dan meremajakan bakteri, dengan cara menginokulasikan 1 ose biakan murni bakteri Staphylococcus aureus ke dalam Mueller-Hinton Agar, kemudian diinkubasi pada suhu 37°C selama 24 jam di dalam inkubator.
3.8.2. Tahap Pengujian
3.8.2.1 Uji Penghambatan Pertumbuhan Bakteri dengan Difusi Disk
Bakteri diencerkan dengan mencampurkan 1 ose suspensi bakteri Staphylococcus aureus ke dalam tabung reaksi yang telah berisi larutan NaCl.
dihomogenkan menggunakan vortex dan kekeruhannya distandarisasi dengan konsentrasi 0.5 Mc Farland sehingga jumlah bakteri memenuhi standarisasi untuk uji kepekaan yaitu: 105–108/ml. Kemudian larutan bakteri yang telah distandarisasi tadi, dioleskan
pada media pertumbuhan Mueller-Hinton Agar.
Cakram uji kosong yang telah direndam selama 15 menit di dalam masing-masing stok konsentrasi ekstrak daun sirih hijau tadi diletakkan di atas permukaan agar secara higienis di dalam laminar air flow.
Lalu media yang telah kita buat tadi, diinkubasi ke dalam inkubator dengan suhu 37°C selama 24 jam, keesokan harinya diukur diameter zona terang (clear zone) yang terbentuk dengan menggunakan penggaris.
3.8.2.2 Uji Penghambatan Pertumbuhan Bakteri dengan Sumuran
Bakteri yang diencerkan dengan mencampur 1 ose suspensi bakteri
Staphylococcus aureus ke dalam tabung reaksi yang telah berisi larutan NaCl dan telah di standarisasi sesuai konsentrasi 0,5 Mc Farland
(30)
17 Buat lubang di media MHA yang telah diinokulasikan bakteri menggunakan tabung yang diameter nya disesuaikan seperti cakram disk
Kemudian masukan stok konsentrasi ekstrak daun sirih hijau menggunakan mikropipet ke dalam setiap lubang di media MHA Diinkubasi ke dalam inkubator pada suhu 37°C selama 24 jam Amati dan ukur diameter zona terang (clear zone) yang terbentuk di
sekitar lubang dengan menggunakan penggaris.
3.9 Analisis Data
Data hasil penelitian efek ekstrak daun sirih pada Staphylococcus aureus dianalisis menggunakan dengan menggunakan program SPSS 16.0 untuk melihat apakah ada perbedaan efektifitas yang bermakna dari masing-masing cakram uji yang mengandung kontrol negatif, berbagai konsentrasi ekstrak daun sirih hijau dan kontrol positif dalam menghambat pertumbuhan Staphylococcus aureus. Data pada penelitian ini berupa variable numerik lebih dari 2 kelompok tidak berpasangan sehingga menggunakan uji One Way ANOVA jika distribusi normal. Jika distribusi data tidak normal maka menggunakan uji nonparametrik yakni Uji
Kruskall-Wallis. Kemudian untuk membandingkan, menggunakan Uji T untuk melihat perbandingan antara metode difusi disk dan sumuran.
(31)
18 BAB IV
HASIL DAN PEMBAHASAN
4.1 Hasil dengan metode difusi disk
Berdasarkan hasil penelitian, pertumbuhan bakteri Staphylococcus aureus untuk konsentrasi 25% memiliki nilai mean sebesar 15.000 dengan standar deviasi sebesar 0.000, konsentrasi 50% memiliki nilai mean sebesar 17.6667 dengan standar deviasi sebesar 0.57735, konsentrasi 75% memiliki nilai mean sebesar 19.6667 dengan standar deviasi sebesar 0.57735 dan konsentrasi 100% memiliki nilai mean sebesar 21.3333 dengan standar deviasi sebesar 1.15470.
Gbr 4.1 Hasil efek ekstrak sirih hijau dengan difusi disk
4.2 Hasil dengan metode sumuran
Berdasarkan hasil pada penelitian ini, dapat dilihat pertumbuhan bakteri Staphylococcus aureus untuk konsentrasi 25% memiliki nilai mean sebesar 25.3333 dengan standar deviasi
(32)
19 sebesar 1.15470, konsentrasi 50% memiliki nilai mean sebesar 26.6667 dengan standar deviasi sebesar 0.57735, konsentrasi 75% memiliki nilai mean sebesar 28.3333 dengan standar deviasi sebesar 2.30940 dan konsentrasi 100% memiliki nilai mean sebesar 31.0000 dengan standar deviasi sebesar 2.64575.
Besaran konsentrasi 100% memiliki nilai rata-rata paling tinggi dibandingkan ketiga konsentrasi lainnya, sedangkan nilai rata-rata terendah adalah pada besaran konsentrasi 25%. Nilai rata-rata dari ke empat konsentrasi tersebut cukup bervariatif. Untuk membuktikan bahwa pada keempat konsentrasi tersebut memiliki perbedaan rata-rata antara satu dengan yang lainnya, maka dilakukan pengujian hipotesis yaitu dengan menggunakan One Way ANOVA.
Berdasarkan hasil diatas dapat dilakukan Uji T, kemudian didapatkan bahwa nilai signifikansi dari uji T adalah sebesar 0.000 yang bernilai kurang dari 0.05, sehingga keputusan adalah tolak H0. Hal ini menunjukan bahwa terdapat perbedaan aktifitas bakteri yang signifikan antara metode difusi dan sumuran. Hasil di atas menunjukan bahwa rata-rata aktifitas bakteri dengan metode difusi lebih rendah dibandingkan dengan metode sumuran, yaitu untuk metode difusi sebesar 18.4167 sedangkan untuk metode sumuran sebesar 27.8333. Sehingga dapat disimpulkan bahwa dengan menggunakan metode sumuran lebih baik dibandingkan dengan metode difusi.
(33)
20
Gbr 4.2 Hasil efek ekstrak sirih hijau dengan sumuran
Diagram 4.1 rata-rata diameter zona hambat 0
5 10 15 20 25 30 35
25% 50% 75% 100% amoksisilin
difusi disk 15 17,6 19,6 21,3 33,3
sumuran 25,3 26,6 28,3 31 34
Column1
Di
ame
ter
zo
na
ha
mba
t (m
m)
Rata-rata diameter zona hambat
(34)
21 4.3 Pembahasan
Berdasarkan penelitian yang telah dilakukan ini, ada beberapa perbedaan antara metode difusi disk dan metode sumuran. Dalam penyiapan alat dan bahan,Pengerjaan, dan Hasil yang diperoleh, untuk alat pada metode sumuran lebih sulit diperoleh dibandingkan dengan metode disk yang hanya menggunakan cakram. Karena pada metode sumuran tidak menggunakan cakram melainkan pada metode sumuran, harus menggunakan suatu alat khusus untuk melubangi media agar nya. Alat untuk membuat lubang pada media agar ini bisa menggunakan tabung durham yang ukuran diameter nya sama dengan diameter cakram disk tapi pada kenyataan nya diameter dari tabung Durham banyak yang tidak sesuai dengan cakram disk,jadi untuk mengatasi hal tersebut saya berinisiatif mencari tabung yang diameter nya sama dengan diameter cakram disk. Akhirnya saya menemukan tabung yang diameter nya sama,yaitu menggunakan tabung bekas minyak wangi. Setelah itu saya cocokan diameter cakram disk dan tabung tersebut dan hasil nya sama,jadi tabung tersebut dapat saya gunakan dalam melakukan penelitian ini.
Pada pengerjaan yang saya lakukan untuk membandingkan metode disk dan sumuran saya perlakukan sama,tapi yang membedakan nya adalah kalau sumuran pada media agar MHA di buat lubang seperti sumur sedangkan pada disk tidak dibuat lubang. Pada hasil pengamatan di dapatkan berupa diameter zona hambat, dengan metode sumuran diameter zona hambat lebih besar daripada metode difusi disk. Hal ini terjadi karena banyak faktor dan teori, pada metode sumuran ekstrak langsung di masukan ke setiap lubang maka efek untuk menghambat bakteri menjadi lebih kuat. Sedangkan pada metode difusi disk, cakram disk harus direndam di dalam cawan petri yang berisi ekstrak daun sirih dan pelarut etanol,lalu cakram diletakan di atas agar MHA.
(35)
22 Hasil dalam penelitian ini sesuai dengan penelitian yang telah dilakukan Seila (2012) yang menyatakan ekstrak daun sirih hijau dapat menghambat pertumbuhan bakteri
Staphylococcus aureus. Hal ini terjadi karena pada ekstrak daun sirih hijau mempunyai komponen minyak atsiri sebagai antibakteri. Di dalam minyak atsiri terdapat senyawa fenol dan turunannya yang dapat mendenaturasi protein sel bakteri Kavikol adalah salah satu turunan dari senyawa fenol dan memiliki daya bakterisida lima kali lebih kuat dari fenol. Fenol berfungsi untuk mengganggu struktur tiga dimensi protein dan kemudian menjadi struktur acak tanpa kerusakan pada struktur keranka kovalen.13 Perbedaan dinding pada bakteri gram positif dan negatif menyebabkan bakteri gram positif lebih mudah dirusak karena dinding pada bakteri gram positif lebih tipis, sehingga hasil diameter zona hambat yang dihasilkan lebih besar.9
Hasil dalam penelitian ini sesuai dengan penelitian yang telah dilakukan Wahyu Susilowati (1997) menyatakan bahwa dengan menggunakan metode sumuran dapat menghasilkan diameter zona hambat yang besar. Dan di perkuat dalam penelitian dari novel kojong dkk. Hal ini terjadi karena pada metode sumuran terjadi proses osmolaritas dari konsentrasi ekstrak yang lebih tinggi dari metode difusi disk. Pada metode sumuran, setiap lubang diisi dengan konsentrasi ekstrak maka osmolaritas terjadi lebih menyeluruh dan lebih homogen serta konsentrasi ekstrak yang dihasilkan lebih tinggi dan lebih kuat untuk menghambat pertumbuhan bakteri.16
(36)
23 BAB V
SIMPULAN DAN SARAN
5.1 Simpulan
Berdasarkan analisis stastik dan pembahasan yang telah dilakukan pada penelian ini dapat disimpulkan bahwa :
1. Terdapat perbedaan yang bermakna antara kelompok kontrol dengan kelompok konsentrasi, yaitu pada konsentrasi ekstrak daun sirih hijau (Piper betle L.) 25%, 50%, 75%, 100% serta kontrol positif amoksilin.
2. Metode sumuran menghasilkan diameter zona hambat pada pertumbuhan bakteri
Staphylococcus aureus lebih besar daripada metode disk diffusion, konsentrasi 25% dengan rata-rata diameter 25,3 cm ; konsentrasi 50% dengan rata-rata diameter 26,6 cm; konsentrasi 75% dengan rata-rata diameter 28,3 cm; konsentrasi 100% dengan rata-rata diameter 31 cm.
5.2 Saran
Setelah dilakukan penelitian tentang Perbandingan efek ekstrak daun sirih hijau (Piper betle L.) dengan metode difusi disk dan sumuran terhadap pertumbuhan bakteri
Staphylococcus aureus, maka disarankan bila akan dilakukan penelitian selanjutnya:
1. Untuk melakukan uji perbandingan pada metode yang lain, selain metode difusi disk dan sumuran
2. Untuk melakukan uji perbandingan metode sumuran dan difusi disk dengan menggunakan ekstrak dari tumbuhan lain dan bakteri yang lain.
(37)
24 DAFTAR PUSTAKA
1. Kayser. Color atlas of medical microbiology. Thieme. 2005
2.Arthur. LB. Procedur for testing in agar media Dalam: Antibiotic in Laboratory Medicine.
Williams and Wilkins, Baltimore. 1980. hal. 1-22
3. Greenwood. Antibiotic susceptibility (sensitivity) test, antimicrobial and chemotherapy. USA: Mc Graw Hill Company. 1995
4. Arthur. LB. Procedur for testing in agar media Dalam: Antibiotic in Laboratory Medicine.
Williams and Wilkins, Baltimore. 1980. hal. 1-22
5. Brunton, L. Laurance. Lazo, John S. Parker, Keith L. Goodman & Gilman’s The
Pharmacological Basis of Therapeutic 11th edition. USA : Mc Graw –Hill. 2005.
6. Kusmayati dan Agustini, N. W. R. Uji Aktivitas Senyawa Antibakteri dari Mikroalga (Porphyridium cruentum). Biodiversitas. 2007. 8(1) : 48-53.
7. Gan Gunawan, Sulistia. Farmakologi dan terapi edisi 5. Jakarta : Departemen farmakologi dan terapeutik fakultas kedokteran universitas Indonesia. 2007.
8. Warsa, V.C. Kokus Positif Gram. Dalam Buku Ajar Mikrobiologi Kedokteran. Staf Pengajar Fakultas Kedokteran UI. Jakarta : Binarupa Aksara.1994.
9. Syamsu Hidayat, S. S. dan Hutapea, J. R. Inventaris Tanaman Obat Indonesia (1). Jakarta :Departemen Kesehatan Republik Indonesia. Badan Penelitian dan Pengembangan Kesehatan Jakarta. 1997
10. Hariana, Arief. Tumbuhan Obat dan Khasiatnya Seri 3. Jakarta : Penebar Swadaya. 2007. Hal 86-87
11. Damayanti R, Mulyono. Khasiat dan Manfaat Daun Sirih : Obat Mujarab dari Masa ke Masa. Jakarta : Agro Media Pustaka. 2005.
12. Kumar, Nikhil. Misra, Pragya. Dube, Anuradha. Piper betle Linn. a maligned Pan-Asiatic plant with an array of pharmacological activities and prospects for drug discovery. Current Science. Vol. 99, No. 7. 2010. hal. 922-932
13. Hermawan, A., Hana, W., dan Wiwiek, T. Pengaruh Ekstrak Daun Sirih (Piper betle L.) Terhadap Pertumbuhan Staphylococcus aureus dan Escherichia coli dengan Metode Difusi Disk. Skripsi : Universitas Erlangga. 2007.
(38)
25 14. Suliantari. Aktivitas Antibakteri Ekstrak Daun Sirih Hijau (Piper betle L.) terhadap
Bakteri Patogen Pangan. Tesis : Institut Pertanian Bogor. 2008
15. Hoque, Mahfuzul. Ratilla, Shemona. et al. Antibacterial Activity of Ethanol Extract of Betel Leaf (Piper betle L.) Against Some Food Borne Pathogens. Bangladesh J Microbiol. Volume 28, Number 2 : 2011. hal. 58-63.
16. Dalimarth, Setiawan. Atlas Tumbuhan Obat Indoneia, jilid 4. Jakarta : puspa swara. 2006. 17. Sastroamidjojo, S. A. Obat Asli Indonesia. Jakarta : PT. Dian Rakyat. 2001. Hal : 102. 18. Darwis S. N. Potensi Sirih (Piper betle L.) Sebagai Tanaman Obat. Bogor: Warta
Tumbuhan Obat Indonesia Balai Penelitian Tanaman Obat dan Rempah. Vol. 1 No. 1. Halaman 9-11.2005.
19. Heyne K. Tumbuhan Berguna Indonesia Edisi 2. Jakarta: Departemen Kehutanan, 2006 : 950
20. A. Duke, James. Handbook of medicinal herbs, second edition. London : CRC press. 2002. hal. 73
21. Burt, sara. Essential oils: their antibacterial properties and potential applications in foods—a review. Elsevier : International Journal of Food Microbiology 94. 2004. hal. 223-253.
22. Staf Pengajar Fakultas Kedokteran Universitas Indonesia. Buku Ajar Mikrobiologi Kedokteran Edisi Revisi. Jakarta: Binarupa Aksara. 1994.
23. Brooks GF, Butel JS, Carroll KC, Morse SA. Jawetz, Melnick, & Adelberg's Medical Microbiology. 24th Ed. USA : Mc Graw Hill. 2007 ; 224 – 7
24. Pelczar, M.J., E.S.Chan. Dasar-dasar Mikrobiologi Edisi ke-2. Jakarta : Penerbit Universitas Indonesia. 1988.
25. Bonang G. Mikrobiologi Untuk Profesi Kesehatan Edisi 16. Jakarta : Buku Kedokteran EGC. 1992.
(39)
(40)
(41)
28
Sumuran
Descriptive Statistics
N Minimum Maximum Mean Std. Deviation Variance
konsentrasi 25% 3 24.00 26.00 25.3333 1.15470 1.333
konsentrasi 50% 3 26.00 27.00 26.6667 .57735 .333
konsentrasi 75% 3 27.00 31.00 28.3333 2.30940 5.333
konsentrasi 100% 3 29.00 34.00 31.0000 2.64575 7.000
Valid N (listwise) 3
Uji Anova
a) Difusi
Test of Homogeneity of Variances Konsentrasi
Levene Statistic df1 df2 Sig.
7.111 3 8 .012
ANOVA Konsentrasi
Sum of Squares df Mean Square F Sig.
Between Groups 66.917 3 22.306 44.611 .000
Within Groups 4.000 8 .500
(42)
29
Multiple Comparisons Konsentrasi
Tamhane
(I) Kelompok (J) Kelompok
Mean Difference
(I-J) Std. Error Sig.
95% Confidence Interval
Lower Bound Upper Bound
Konsentrasi 25% Konsentrasi 50% -2.66667 .33333 .088 -6.2564 .9231
Konsentrasi 75% -4.66667* .33333 .030 -8.2564 -1.0769
Konsentrasi 100% -6.33333 .66667 .064 -13.5128 .8462
Konsentrasi 50% Konsentrasi 25% 2.66667 .33333 .088 -.9231 6.2564
Konsentrasi 75% -2.00000 .47140 .077 -4.2730 .2730
Konsentrasi 100% -3.66667 .74536 .097 -8.3735 1.0402
Konsentrasi 75% Konsentrasi 25% 4.66667* .33333 .030 1.0769 8.2564
Konsentrasi 50% 2.00000 .47140 .077 -.2730 4.2730
Konsentrasi 100% -1.66667 .74536 .513 -6.3735 3.0402
Konsentrasi 100% Konsentrasi 25% 6.33333 .66667 .064 -.8462 13.5128
Konsentrasi 50% 3.66667 .74536 .097 -1.0402 8.3735
Konsentrasi 75% 1.66667 .74536 .513 -3.0402 6.3735
*. The mean difference is significant at the 0.05 level.
a) Sumuran
Test of Homogeneity of Variances Konsentrasi
Levene Statistic df1 df2 Sig.
(43)
30
ANOVA
Konsentrasi
Sum of Squares df Mean Square F Sig.
Between Groups 53.667 3 17.889 5.111 .029
Within Groups 28.000 8 3.500
Total 81.667 11
Multiple Comparisons Konsentrasi
Tukey HSD
(I) Kelompok (J) Kelompok
Mean Difference
(I-J) Std. Error Sig.
95% Confidence Interval
Lower Bound Upper Bound
Konsentrasi 25% Konsentrasi 50% -1.33333 1.52753 .819 -6.2250 3.5583
Konsentrasi 75% -3.00000 1.52753 .277 -7.8917 1.8917
Konsentrasi 100% -5.66667* 1.52753 .025 -10.5583 -.7750
Konsentrasi 50% Konsentrasi 25% 1.33333 1.52753 .819 -3.5583 6.2250
Konsentrasi 75% -1.66667 1.52753 .704 -6.5583 3.2250
Konsentrasi 100% -4.33333 1.52753 .084 -9.2250 .5583
Konsentrasi 75% Konsentrasi 25% 3.00000 1.52753 .277 -1.8917 7.8917
Konsentrasi 50% 1.66667 1.52753 .704 -3.2250 6.5583
Konsentrasi 100% -2.66667 1.52753 .363 -7.5583 2.2250
Konsentrasi 100% Konsentrasi 25% 5.66667* 1.52753 .025 .7750 10.5583
Konsentrasi 50% 4.33333 1.52753 .084 -.5583 9.2250
Konsentrasi 75% 2.66667 1.52753 .363 -2.2250 7.5583
(44)
31
Uji Independent T-test
Group Statistics
Jenis N Mean Std. Deviation Std. Error Mean
Metode Difusi 12 18.4167 2.53909 .73297
Sumuran 12 27.8333 2.72475 .78657
Independent Samples Test Levene's Test for
Equality of Variances t-test for Equality of Means
95% Confidence Interval of the Difference
F Sig. t df
Sig. (2-tailed)
Mean Difference
Std. Error
Difference Lower Upper
Metod e
Equal variances assumed
.002 .963 -8.759 22 .000 -9.41667 1.07514 -11.64638 -7.18695
Equal variances not assumed
(45)
32
Lampiran (Alat dan Bahan)
Inkubator Laminar AirFlow
(46)
33
DAFTAR RIWAYAT HIDUP
Nama : Eko prayoga
Tempat, Tanggal Lahir : Sekayu, 16 Januari1990
Alamat : Jl. Merdeka 3 No. 410 sekayu,palembang
Email : ekoprayoga16011990@gmail.com
No.Telpon : 085692955642
Riwayat Pendidikan
1996 – 2002 : SDN 11 Pagi Jakarta Barat 2002 – 2005 : SMPN 69 Jakarta Barat 2005 – 2008 : MAN Model Sekayu
2010 – Sekarang : Program Studi Pendidikan Dokter, FKIK Universitas Islam Negeri Syarif Hidayatullah Jakarta
(1)
Sumuran
Descriptive Statistics
N Minimum Maximum Mean Std. Deviation Variance
konsentrasi 25% 3 24.00 26.00 25.3333 1.15470 1.333
konsentrasi 50% 3 26.00 27.00 26.6667 .57735 .333
konsentrasi 75% 3 27.00 31.00 28.3333 2.30940 5.333
konsentrasi 100% 3 29.00 34.00 31.0000 2.64575 7.000
Valid N (listwise) 3
Uji Anova
a)
Difusi
Test of Homogeneity of Variances Konsentrasi
Levene Statistic df1 df2 Sig.
7.111 3 8 .012
ANOVA Konsentrasi
Sum of Squares df Mean Square F Sig.
Between Groups 66.917 3 22.306 44.611 .000
Within Groups 4.000 8 .500
(2)
Multiple Comparisons Konsentrasi
Tamhane
(I) Kelompok (J) Kelompok
Mean Difference
(I-J) Std. Error Sig.
95% Confidence Interval Lower Bound Upper Bound
Konsentrasi 25% Konsentrasi 50% -2.66667 .33333 .088 -6.2564 .9231
Konsentrasi 75% -4.66667* .33333 .030 -8.2564 -1.0769
Konsentrasi 100% -6.33333 .66667 .064 -13.5128 .8462
Konsentrasi 50% Konsentrasi 25% 2.66667 .33333 .088 -.9231 6.2564
Konsentrasi 75% -2.00000 .47140 .077 -4.2730 .2730
Konsentrasi 100% -3.66667 .74536 .097 -8.3735 1.0402
Konsentrasi 75% Konsentrasi 25% 4.66667* .33333 .030 1.0769 8.2564
Konsentrasi 50% 2.00000 .47140 .077 -.2730 4.2730
Konsentrasi 100% -1.66667 .74536 .513 -6.3735 3.0402
Konsentrasi 100% Konsentrasi 25% 6.33333 .66667 .064 -.8462 13.5128
Konsentrasi 50% 3.66667 .74536 .097 -1.0402 8.3735
Konsentrasi 75% 1.66667 .74536 .513 -3.0402 6.3735
*. The mean difference is significant at the 0.05 level.
a)
Sumuran
Test of Homogeneity of Variances Konsentrasi
Levene Statistic df1 df2 Sig.
(3)
ANOVA
Konsentrasi
Sum of Squares df Mean Square F Sig.
Between Groups 53.667 3 17.889 5.111 .029
Within Groups 28.000 8 3.500
Total 81.667 11
Multiple Comparisons Konsentrasi
Tukey HSD
(I) Kelompok (J) Kelompok
Mean Difference
(I-J) Std. Error Sig.
95% Confidence Interval Lower Bound Upper Bound
Konsentrasi 25% Konsentrasi 50% -1.33333 1.52753 .819 -6.2250 3.5583
Konsentrasi 75% -3.00000 1.52753 .277 -7.8917 1.8917
Konsentrasi 100% -5.66667* 1.52753 .025 -10.5583 -.7750
Konsentrasi 50% Konsentrasi 25% 1.33333 1.52753 .819 -3.5583 6.2250
Konsentrasi 75% -1.66667 1.52753 .704 -6.5583 3.2250
Konsentrasi 100% -4.33333 1.52753 .084 -9.2250 .5583
Konsentrasi 75% Konsentrasi 25% 3.00000 1.52753 .277 -1.8917 7.8917
Konsentrasi 50% 1.66667 1.52753 .704 -3.2250 6.5583
Konsentrasi 100% -2.66667 1.52753 .363 -7.5583 2.2250
Konsentrasi 100% Konsentrasi 25% 5.66667* 1.52753 .025 .7750 10.5583
Konsentrasi 50% 4.33333 1.52753 .084 -.5583 9.2250
Konsentrasi 75% 2.66667 1.52753 .363 -2.2250 7.5583
(4)
Uji Independent T-test
Group Statistics
Jenis N Mean Std. Deviation Std. Error Mean
Metode Difusi 12 18.4167 2.53909 .73297
Sumuran 12 27.8333 2.72475 .78657
Independent Samples Test Levene's Test for
Equality of Variances t-test for Equality of Means
95% Confidence Interval of the Difference
F Sig. t df
Sig. (2-tailed)
Mean Difference
Std. Error
Difference Lower Upper Metod
e
Equal variances assumed
.002 .963 -8.759 22 .000 -9.41667 1.07514 -11.64638 -7.18695
Equal variances not assumed
(5)
Lampiran (Alat dan Bahan)
Inkubator
Laminar AirFlow
(6)