Uji Sitotoksik Fraksi Etilasetat Daun Bangun-Bangun (Plectranthus amboinicus (Lour.) terhadap Larva Artemia salina Leach dengan Metode Brine Shrimp Lethality Test (BSLT)

Lampiran 2. Tumbuhan segar, daun segar, simplisia dan serbuk simplisia daun bangun-bangun Plectranhus amboinicus (Lour.)

Tumbuhan Daun Bangun-Bangun (Plectranthus amboinicus (Lour.) Spreng)

Lampiran 2. (lanjutan)

Simplisia Daun Bangun-Bangun

Lampiran 3. Mikroskopik Serbuk Daun Bangun-Bangun (Plectranthus

amboinicus (Lour.) Spreang) Perbesaran 10x40

Keterangan:

a. Kristal kalsium oksalat berbentuk prisma b. Rambut penutup uniseluler

c. Rambut kelenjar berbentuk glandular d. Pembuluh kayu berbentuk spiral e. Stomata berbentuk diasitik

A

B

D C

Lampiran 4. Bagan Kerja Pembuatan Simplisia Daun Bangun-Bangun

Dibersihkan dari pengotor Dicuci dengan air mengalir Ditiriskan

Ditimbang

Dikeringkan didalam lemari pengering dengan suhu 40-50 0C

Ditimbang

Dihaluskan dengan menggunakan blender Daun Bangun-bangun

Berat Basah 9000 g

Berat Kering 900 g

Serbuk Simplisia Daun Bangun-Bangun

Lampiran 5. Perhitungan Hasil Karakteristik Simplisia

Perhitungan Kadar Air Simplisia Daun Bangun-Bangun (Plectranthus amboinicus

(Lour.) Spreng)

% kadar air = Volumeair (mL)

Beratsampel (g) x 100%

No. Berat sampel (g) Volume awal (mL) Volume akhir (mL)

1. 5,011 1,7 2,1

2. 5,007 2,1 2,5

3. 5,025 2,5 2,9

1. % kadar air = 2,10-1,70 (mL)

5,011 (g) x 100% = 7,98% 2. % kadar air = 2,50-2,10 (mL)

5,007 (g) x 100% = 7,98%

3. % kadar air = 2,90-2,50 (mL)

5,025 (g) x 100% = 6,96% % rata-rata kadar air = 7,98% + 7,98% + 6,96%

Lampiran 6. Bagan Ekstraksi Serbuk Simplisia Secara Maserasi

900 g serbuk simplisia daun bangun-bangun

Maserat

Ditambahkan etilasetat hingga diperoleh 100 bagian

Dibiarkan selama 2 hari terlindung dari cahaya

Dienaptuangkan dan disaring Dimaserasi dengan 75 bagian n-heksana

Dibiarkan selama 5 hari terlindungi dari cahaya sambil sesekali diaduk

Disaring Ampas

Ditambahkan n-heksana hingga diperoleh 100 bagian

Dibiarkan selama 2 hari terlindung dari cahaya Dienaptuangkan dan di saring

Maserat Ampas

Dimaserasi dengan 75 bagian etilasetat

Dibiarkan selama 5 hari terlindung dari cahaya sambil sesekali diaduk Disaring

Maserat Ampas

Maserat Ampas

Dikumpulkan maserat Dipekatkan dengan rotary evaporatory

Ekstrak etilasetat kental (26,565 g)

Lampiran 7. Bagan Pembuatan Fraksinasi Etilasetat Daun Bangun-Bangun

Plectranthus amboinicus (Lour.) Spreang Dengan Metode

Kromatografi Cair Vakum (KCV)

Ditambahkan dengan silikagel 10 g sedikit demi sedikit

Diaduk hingga homogen

Dimasukkan ke dalam kolom dan di bagian atasnya di tutup dengan kertas saring

Difraksinasi dengan KCV dengan fase diam silikagel 60H dan fase gerak dengan gradien kepolaran yang meningkat yaitu berturut-turut

n-heksana: etilasetat (100:0), (90:10), (80:20), (70:30), (60:40), (50:50), (40:60), (30:70), (20:80), (10:90), (0:100) dan etilasetat : metanol (80:20), (60:40), (40:60), (20:80) dan (0:100).

Masing-masing fraksi dimonitor komponen kimianya dengan KLT menggunakan fase diam silikagel GF254 dan fase gerak n-heksana :

etilasetat (7:3)

Fraksi yang memiliki profil KLT yang sama digabung

Keterangan : * uji BSLT

Lampiran 8. Bangan Pembuatan Air Laut Buatan

2 g ekstrak etilasetat

Dilarutkan terlebih dahulu dalam beakerglass

Dimasukkan dalam labu tentukur 1000 mL Ditambahkan air suling sampai 1000 mL

Lampiran 9. Bagan Pengujian Sitotoksik

38 gram garam non-yodium

Dilarutkan dengan Na-CMC 0,5 % Ditambah dengan air laut buatan hingga 5 mL

Dipipet 0,5 mL Dicukupkan sampai

5 mL (diulang 5 kali)

Dipipet 0,5 mL Dicukupkan sampai

5 mL (diulang 5 kali)

Dimasukkan 10 ekor larva Artemia salina Leach Ditambahkan air laut buatan sampai 5 mL Ditambahkan 1 tetes suspensi ragi

Dibiarkan dibawah sinar lampu 14 watt selama 24 jam Dihitung jumlah larva Artemia salina Leach yang mati

Lampiran 10. Perhitungan Persentase Kematian Nauplii Perhitungan LC50 fraksi etilasetat I

Tabel 1. Hasil pengujian BSLT fraksi etilasetat I

Fraksi Kons. Hidup awal Jumlah mati Rata-rata ±

50 mg fraksi etilasetat I, II, III, IV dan V

Larutan konsentrasi 10000 µg/mL

Larutan konsentrasi 1000 µg/mL Larutan konsentrasi

1000 µg/mL Larutan konsentrasi

1000 µg/mL

Larutan konsentrasi 100 µg/mL

Larutan konsentrasi 100 µg/mL

Larutan konsentrasi 100 µg/mL

Larutan konsentrasi 10 µg/mL Larutan konsentrasi

10 µg/mL Larutan konsentrasi

10 µg/mL

(µg/mL) U 1 U 2 U 3 U 4 U 5 U 1 U 2 U 3 U 4 U 5 Std.Deviation I

10 10 10 10 10 10 3 3 5 3 3 3,4 ± 0,894

100 10 10 10 10 10 6 6 6 5 5 5,6 ± 0,548

1000 10 10 10 10 10 8 8 8 8 8 8,0 ± 0,000

Kontrol 10 0

Rumus % kematian : % kematian : ��� −�������

����� x 100 %

Tes = Jumlah kematian nauplii larutan uji Kontrol = Jumlah kematian nauplii larutan kontrol Total = Jumlah nauplii yang digunakan

% kematian (10 µg/mL) =3,4−0

10 x 100 % = 34 % % kematian (100 µg/mL) =5,6−0

10 x 100 % = 56 % % kematian (1000 µg/mL) =8,0−0

10 x 100% = 80 % Tabel 2. Perhitungan persamaan garis linier.

X

(Log konsentrasi)

Y

( % kematian) XY X

2

1 34 34 1

2 56 112 4

3 80 240 9

∑X = 6 ∑Y = 170 _{∑XY = 386 ∑ X}2

= 14 X = 2 Y = 56,667

a

=

∑XY−∑X .∑Y/n

∑X²−(∑X)2/n

= 386−6 .170 /3 14−(6)²/3 =

386−340 14−12 = 23 b = y – ax

= 56,667 – 23 (2) = 10,667

Perhitungan LC50 dengan nilai Y adalah 50 Y = ax + b

50 = 23 X + 10,667 X = 1,71013

Lampiran 10. (lanjutan)

Perhitungan LC50 fraksi etilasetat II

Tabel 3. Hasil pengujian BSLT fraksi etilasetat II

Fraksi Kons. (µg/mL)

Hidup awal Jumlah mati Rata-rata ±

Std.Deviation U

1 U 2

U 3

U 4

U 5

U 1

U 2

U 3

U 4

U 5

I

10 10 10 10 10 10 3 2 2 1 1 1,8 ± 0,837

100 10 10 10 10 10 8 6 6 8 9 7,4 ± 1,342

1000 10 10 10 10 10 10 9 8 10 10 9,4 ± 0,894

Kontrol 10 0

Rumus % kematian : % kematian : ��� −�������

����� x 100 %

Tes = Jumlah kematian nauplii larutan uji Kontrol = Jumlah kematian nauplii larutan kontrol Total = Jumlah nauplii yang digunakan

% kematian (10 µg/mL) =1,8−0

10 x 100 % = 18 % % kematian (100 µg/mL) =7,4−0

10 x 100 % = 74 % % kematian (1000 µg/mL) =9,4−0

10 x 100% = 94 % Tabel 4. Perhitungan persamaan garis linier.

X

(Log konsentrasi)

Y

( % kematian) XY X

2

1 18 18 1

2 74 148 4

3 94 282 9

∑X = 6 ∑Y = 186 _{∑XY = 448 ∑ X}2

= 14 X = 2 Y = 62

a

=

∑XY−∑X .∑Y/n

∑X²−(∑X)2/n

= 448−6 .186 /3 14−(6)²/3 =

448−372 14−12 = 38 b = y – ax

= 62 – 38 (2) = ˗ 14

Maka persamaan garis regresi y = 38 X - 14 Perhitungan LC50 dengan nilai Y adalah 50 :

Y = ax + b 50 = 38 X - 14 X = 1,68421

Lampiran 10. (lanjutan)

Perhitungan LC50 fraksi etilasetat III

Tabel 5. Hasil pengujian BSLT fraksi etilasetat III

Fraksi Kons. (µg/mL)

Hidup awal Jumlah mati Rata-rata ±

Std.Deviation

1 2 3 4 5 1 2 3 4 5 I

10 10 10 10 10 10 1 2 3 3 2 2,2 ± 0,837

100 10 10 10 10 10 5 8 7 8 5 6,6 ± 1,517

1000 10 10 10 10 10 7 10 9 10 8 8,8 ± 1,304

Kontrol 10 0

Rumus % kematian : % kematian : ��� −�������

����� x 100 %

Tes = Jumlah kematian nauplii larutan uji Kontrol = Jumlah kematian nauplii larutan kontrol Total = Jumlah nauplii yang digunakan

% kematian (10 µg/mL) =2,2−0

10 x 100 % = 22 % % kematian (100 µg/mL) =6,6−0

10 x 100 % = 66 % % kematian (1000 µg/mL) =8,8−0

10 x 100% = 88 % Tabel 6. Perhitungan persamaan garis linier.

X

(Log konsentrasi)

Y

( % kematian) XY X

2

1 22 22 1

2 66 132 4

3 88 264 9

∑X = 6 ∑Y = 176 _{∑XY = 418 ∑ X}2

= 14 X = 2 Y = 58,667

a

=

∑XY−∑X .∑Y/n

∑X²−(∑X)2/n

= 418−6 .176 /3 14−(6)²/3 =

418−352 14−12 = 33 b = y – ax

= 58,667 – 33 (2) = -7,333

Perhitungan LC50 dengan nilai Y adalah 50 : Y = ax + b

50 = 33 X -7,33 X = 1,73736

Lampiran 10. (lanjutan)

Perhitungan LC50 fraksi etilasetat IV

Tabel 7. Hasil pengujian BSLT fraksi etilasetat IV

Fraksi Kons. (µg/mL)

Hidup awal Jumlah mati Rata-rata ±

Std.Deviation

1 2 3 4 5 1 2 3 4 5 I

10 10 10 10 10 10 4 2 3 2 2 2,6 ± 0,894

100 10 10 10 10 10 7 5 5 5 6 5,6 ± 0,894

1000 10 10 10 10 10 9 7 8 9 7 8,0 ± 0,707

Kontrol 10 0

Rumus % kematian : % kematian : ��� −�������

����� x 100 %

Tes = Jumlah kematian nauplii larutan uji Kontrol = Jumlah kematian nauplii larutan kontrol Total = Jumlah nauplii yang digunakan

% kematian (10 µg/mL) =2,6−0

10 x 100 % = 26 % % kematian (100 µg/mL) =5,6−0

10 x 100 % = 56 % % kematian (1000 µg/mL) =7,8−0

10 x 100% = 78 % Tabel 8. Perhitungan persamaan garis linier.

X

(Log konsentrasi)

Y

( % kematian) XY X

2

1 26 26 1

2 56 112 4

3 78 234 9

∑X = 6 ∑Y = 160 _{∑XY = 372 ∑ X}2

= 14 X = 2 Y = 53,33

a

=

∑XY−∑X .∑Y/n

∑X²−(∑X)2/n

= 372−6 .160 /3 14−(6)²/3 =

372−320 14−12 = 26 b = y – ax

= 53,33 – 26 (2) = 1,33

Perhitungan LC50 dengan nilai Y adalah 50 : Y = ax + b

50 = 26 X + 1,33 X = 1,87192

Lampiran 10. (lanjutan)

Perhitungan LC50 fraksi etilasetat V

Tabel 9. Hasil pengujian BSLT fraksi etilasetat V

(µg/mL) U 1 U 2 U 3 U 4 U 5 U 1 U 2 U 3 U 4 U 5 Std.Deviation I

10 10 10 10 10 10 0 1 1 0 1 0,6 ± 0,548

100 10 10 10 10 10 6 4 6 8 8 6,4 ± 1,673

1000 10 10 10 10 10 7 5 7 9 8 7,2 ± 1,095

Kontrol 10 0

Rumus % kematian : % kematian : ��� −�������

����� x 100 %

Tes = Jumlah kematian nauplii larutan uji Kontrol = Jumlah kematian nauplii larutan kontrol Total = Jumlah nauplii yang digunakan

% kematian (10 µg/mL) =0,6−0

10 x 100 % = 6 % % kematian (100 µg/mL) =6−0

10 x 100 % = 60 % % kematian (1000 µg/mL) =7,4−0

10 x 100% = 74 % Tabel 10. Perhitungan persamaan garis linier.

X

(Log konsentrasi)

Y

( % kematian) XY X

2

1 6 6 1

2 60 120 4

3 74 222 9

∑X = 6 ∑Y = 140 _{∑XY = 348 ∑ X}2

= 14 X = 2 Y = 46,667

a

=

∑XY−∑X .∑Y/n

∑X²−(∑X)2/n

= 348−6 .140 /3 14−(6)²/3 =

348−280 14−12 = 34 b = y – ax

= 46,667 – 34 (2) = -21,333

Perhitungan LC50 dengan nilai Y adalah 50 : Y = ax + b

50 = 34 X -21,33 X = 2,09802

Lampiran 11 Perhitungan Statistik Fraksi Etilasetat I Descriptives

JumlahKematianNauplii

N Mean

Std. Deviation

Std. Error

95% Confidence Interval for Mean

Minimum Maximum Lower

Bound

Upper Bound

10 µg/ml 5 3.40 .894 .400 2.29 4.51 3 5 100 µg/ml 5 5.60 .548 .245 4.92 6.28 5 6 1000 µg/ml 5 8.00 .000 .000 8.00 8.00 8 8 Total 15 5.67 2.024 .523 4.55 6.79 3 8

Test of Homogeneity of Variances

JumlahKematianNauplii Levene

Statistic df1 df2 Sig.

5.547 2 12 .020

ANOVA

JumlahKematianNauplii Sum of Squares df

Mean

Square F Sig. Between Groups 52.933 2 26.467 72.182 .000 Within Groups 4.400 12 .367

Post Hoc Tests Multiple Comparisons Dependent Variable:JumlahKematianNauplii (I) konsentrasi (J) konsentrasi Mean Difference (I-J) Std. Error Sig.

95% Confidence Interval Lower Bound Upper Bound Tukey HSD 10 µg/ml 100 µg/ml -2.200* .383 .000 -3.22 -1.18

1000 µg/ml -4.600* .383 .000 -5.62 -3.58 100 µg/ml 10 µg/ml 2.200* .383 .000 1.18 3.22 1000 µg/ml -2.400* .383 .000 -3.42 -1.38 1000 µg/ml 10 µg/ml 4.600* .383 .000 3.58 5.62 100 µg/ml 2.400* .383 .000 1.38 3.42 LSD 10 µg/ml 100 µg/ml -2.200* .383 .000 -3.03 -1.37 1000 µg/ml -4.600* .383 .000 -5.43 -3.77 100 µg/ml 10 µg/ml 2.200* .383 .000 1.37 3.03 1000 µg/ml -2.400* .383 .000 -3.23 -1.57 1000 µg/ml 10 µg/ml 4.600* .383 .000 3.77 5.43 100 µg/ml 2.400* .383 .000 1.57 3.23 *. The mean difference is significant at the 0.05

level.

JumlahKematianNauplii

Konsentrasi N

Subset for alpha = 0.05

1 2 3

Tukey HSDa 10 µg/ml 5 3.40

100 µg/ml 5 5.60

1000 µg/ml 5 8.00

Sig. 1.000 1.000 1.000 Tukey Ba 10 µg/ml 5 3.40

100 µg/ml 5 5.60

1000 µg/ml 5 8.00

Means for groups in homogeneous subsets are displayed. a. Uses Harmonic Mean Sample Size = 5,000.

Perhitungan Statistik Fraksi Etilasetat II

Descriptives

JumlahKematianNauplii

N Mean

Std. Deviation

Std. Error

95% Confidence Interval for Mean

Minimum Maximum Lower

Bound

Upper Bound

10 µg/ml 5 1.80 .837 .374 .76 2.84 1 3 100 µg/ml 5 7.40 1.342 .600 5.73 9.07 6 9 1000 µg/ml 5 9.40 .894 .400 8.29 10.51 8 10 Total 15 6.20 3.468 .895 4.28 8.12 1 10

Test of Homogeneity of Variances

JumlahKematianNauplii Levene

Statistic df1 df2 Sig.

1.734 2 12 .218

ANOVA

JumlahKematianNauplii Sum of

Squares Df

Mean

Square F Sig. Between Groups 155.200 2 77.600 70.545 .000 Within Groups 13.200 12 1.100

Post Hoc Tests

Multiple Comparisons

Dependent Variable: Jumlah Kematian Nauplii

(I) konsentrasi (J) konsentrasi Mean Difference (I-J) Std. Error Sig.

95% Confidence Interval Lower Bound Upper Bound Tukey HSD 10 µg/ml 100 µg/ml _-5.600*

.663 .000 -7.37 -3.83 1000 µg/ml -7.600* .663 .000 -9.37 -5.83 100 µg/ml 10 µg/ml 5.600* .663 .000 3.83 7.37 1000 µg/ml -2.000* .663 .027 -3.77 -.23 1000 µg/ml 10 µg/ml 7.600* .663 .000 5.83 9.37 100 µg/ml 2.000* .663 .027 .23 3.77 LSD 10 µg/ml 100 µg/ml _-5.600*

.663 .000 -7.05 -4.15 1000 µg/ml -7.600* .663 .000 -9.05 -6.15 100 µg/ml 10 µg/ml 5.600* .663 .000 4.15 7.05 1000 µg/ml -2.000* .663 .011 -3.45 -.55 1000 µg/ml 10 µg/ml 7.600* .663 .000 6.15 9.05 100 µg/ml 2.000* .663 .011 .55 3.45 *. The mean difference is significant at the 0.05level.

Homogeneous Subsets JumlahKematianNauplii

konsentrasi N

Subset for alpha = 0.05

1 2 3

Tukey HSDa 10 µg/ml _{5 1.80}

100 µg/ml 5 7.40

1000 µg/ml 5 9.40

Sig. 1.000 1.000 1.000 Tukey Ba 10 µg/ml _{5 1.80}

100 µg/ml 5 7.40

1000 µg/ml 5 9.40

Means for groups in homogeneous subsets are displayed.

Perhitungan Statistik Fraksi Etilasetat III Descriptives

JumlahKematianNauplii

N Mean

Std. Deviation

Std. Error

95% Confidence Interval for Mean

Minim um

Maxim um Lower

Bound

Upper Bound

10 µg/ml 5 2.20 .837 .374 1.16 3.24 1 3 100 µg/ml 5 6.60 1.517 .678 4.72 8.48 5 8 1000 µg/ml 5 9.20 1.304 .583 7.58 10.82 7 10 Total 15 6.00 3.207 .828 4.22 7.78 1 10

Test of Homogeneity of Variances

Jumlah Kematian Nauplii Levene

Statistic df1 df2 Sig.

1.555 2 12 .251

ANOVA

Jumlah Kematian Nauplii Sum of

Squares Df

Mean

Square F Sig. Between Groups 125.200 2 62.600 39.957 .000 Within Groups 18.800 12 1.567

Post Hoc Tests

Multiple Comparisons

Dependent Variable: Jumlah Kematian Nauplii

(I) konsentrasi (J) konsentrasi Mean Difference (I-J) Std. Error Sig.

95% Confidence Interval Lower Bound Upper Bound Tukey HSD 10 µg/ml 100 µg/ml -4.400* .792 .000 -6.51 -2.29

1000 µg/ml -7.000* .792 .000 -9.11 -4.89 100 µg/ml 10 µg/ml 4.400* .792 .000 2.29 6.51 1000 µg/ml -2.600* .792 .017 -4.71 -.49 1000 µg/ml 10 µg/ml 7.000* .792 .000 4.89 9.11 100 µg/ml 2.600* .792 .017 .49 4.71 LSD 10 µg/ml 100 µg/ml -4.400* .792 .000 -6.12 -2.68 1000 µg/ml -7.000* .792 .000 -8.72 -5.28 100 µg/ml 10 µg/ml 4.400* .792 .000 2.68 6.12 1000 µg/ml -2.600* .792 .007 -4.32 -.88 1000 µg/ml 10 µg/ml 7.000* .792 .000 5.28 8.72 100 µg/ml 2.600* .792 .007 .88 4.32 *. The mean difference is significant at the 0.05 level.

Homogeneous Subsets

Jumlah Kematian Nauplii

Konsentrasi N

Subset for alpha = 0.05

1 2 3

Tukey HSDa

10 µg/ml 5 2.20

100 µg/ml 5 6.60

1000 µg/ml 5 9.20

Sig. 1.000 1.000 1.000 Tukey Ba 10 µg/ml 5 2.20

100 µg/ml 5 6.60

1000 µg/ml 5 9.20

Means for groups in homogeneous subsets are displayed. a. Uses Harmonic Mean Sample Size = 5,000.

Perhitungan Statistik Fraksi Etilasetat IV Descriptives

Jumlah Kematian Nauplii

N Mean

Std. Deviation

Std. Error

95% Confidence Interval for Mean

Minimum Maximum Lower

Bound

Upper Bound

10 µg/ml 5 2.60 .894 .400 1.49 3.71 2 4 100 µg/ml 5 5.60 .894 .400 4.49 6.71 5 7 1000 µg/ml 5 8.00 .707 .316 7.12 8.88 7 9 Total 15 5.40 2.414 .623 4.06 6.74 2 9

Test of Homogeneity of Variances

Jumlah Kematian Nauplii Levene

Statistic df1 df2 Sig.

.848 2 12 .453

ANOVA

Jumlah Kematian Nauplii Sum of

Squares df Mean Square F Sig. Between Groups 73.200 2 36.600 52.286 .000 Within Groups 8.400 12 .700

Post Hoc Tests

Multiple Comparisons

Dependent Variable:Jumlah Kematian Nauplii

(I) konsentrasi (J) konsentrasi Mean Difference (I-J) Std. Error Sig.

95% Confidence Interval Lower Bound Upper Bound Tukey HSD 10 µg/ml 100 µg/ml -3.000* .529 .000 -4.41 -1.59

1000 µg/ml -5.400* .529 .000 -6.81 -3.99 100 µg/ml 10 µg/ml 3.000* .529 .000 1.59 4.41 1000 µg/ml -2.400* .529 .002 -3.81 -.99 1000 µg/ml 10 µg/ml 5.400* .529 .000 3.99 6.81 100 µg/ml 2.400* .529 .002 .99 3.81 LSD 10 µg/ml 100 µg/ml -3.000* .529 .000 -4.15 -1.85 1000 µg/ml -5.400* .529 .000 -6.55 -4.25 100 µg/ml 10 µg/ml 3.000* .529 .000 1.85 4.15 1000 µg/ml -2.400* .529 .001 -3.55 -1.25 1000 µg/ml 10 µg/ml 5.400* .529 .000 4.25 6.55 100 µg/ml 2.400* .529 .001 1.25 3.55 *. The mean difference is significant at the 0.05

level.

Homogeneous Subsets

Jumlah Kematian Nauplii

Konsentrasi N

Subset for alpha = 0.05

1 2 3

Tukey HSDa 10 µg/ml 5 2.60

100 µg/ml 5 5.60

1000 µg/ml 5 8.00

Sig. 1.000 1.000 1.000

Tukey Ba 10 µg/ml 5 2.60

100 µg/ml 5 5.60

1000 µg/ml 5 8.00

Means for groups in homogeneous subsets are displayed. a. Uses Harmonic Mean Sample Size = 5,000.

Perhitungan Statistik Fraksi Etilasetat V Descriptives

Jumlah Kematian Nauplii

N Mean

Std. Deviation

Std. Error

95% Confidence Interval for Mean

Minimum Maximum Lower

Bound

Upper Bound

10 µg/ml 5 .60 .548 .245 -.08 1.28 0 1 100 µg/ml 5 6.40 1.673 .748 4.32 8.48 4 8 1000 µg/ml 5 7.20 1.095 .490 5.84 8.56 6 9 Total 15 4.73 3.240 .836 2.94 6.53 0 9

Test of Homogeneity of Variances

Jumlah Kematian Nauplii Levene

Statistic df1 df2 Sig.

Post Hoc Tests

Multiple Comparisons

Dependent Variable:Jumlah Kematian Nauplii

(I) konsentrasi (J) konsentrasi Mean Difference (I-J) Std. Error Sig.

95% Confidence Interval Lower Bound Upper Bound Tukey HSD 10 µg/ml 100 µg/ml _-5.800*

.757 .000 -7.82 -3.78 1000 µg/ml -6.600* .757 .000 -8.62 -4.58 100 µg/ml 10 µg/ml 5.800* .757 .000 3.78 7.82 1000 µg/ml -.800 .757 .557 -2.82 1.22 1000 µg/ml 10 µg/ml 6.600* .757 .000 4.58 8.62 100 µg/ml .800 .757 .557 -1.22 2.82 LSD 10 µg/ml 100 µg/ml _-5.800*

.757 .000 -7.45 -4.15 1000 µg/ml -6.600* .757 .000 -8.25 -4.95 100 µg/ml 10 µg/ml 5.800* .757 .000 4.15 7.45 1000 µg/ml -.800 .757 .312 -2.45 .85 1000 µg/ml 10 µg/ml 6.600* .757 .000 4.95 8.25 100 µg/ml .800 .757 .312 -.85 2.45 *. The mean difference is significant at the 0.05 level.

Homogeneous Subsets

Jumlah Kematian Nauplii

konsentrasi N

Subset for alpha = 0.05

1 2

Tukey HSDa 10 µg/ml 5 .60

100 µg/ml 5 6.40

1000 µg/ml 5 7.20

Sig. 1.000 .557

Tukey Ba 10 µg/ml 5 .60

100 µg/ml 5 6.40

1000 µg/ml 5 7.20

Means for groups in homogeneous subsets are displayed. a. Uses Harmonic Mean Sample Size = 5,000.

Data Statistik

Fraksi Etilasetat Daun Bangun-Bangun I

Confidence Limits

Probabil ity

95% Confidence Limits for Konsentrasi

95% Confidence Limits for log(Konsentrasi)a Estimate

Lower Bound

Upper

Bound Estimate

Lower Bound

Upper Bound

PROBIT 0.01 _{.009 . . -2.029 . .}

0.02 .025 . . -1.593 . .

0.03 .046 . . -1.316 . .

0.04 .077 . . -1.108 . .

0.05 .115 . . -.939 . .

0.06 .160 . . -.794 . .

0.07 .214 . . -.668 . .

0.08 .278 . . -.555 . .

0.09 .353 . . -.452 . .

0.1 .439 . . -.357 . .

0.15 .922 . . .035 . .

0.2 .449 . . .347 . .

0.25 .412 . . .615 . .

0.3 .716 . . .855 . .

0.35 11.939 . . 1.077 . .

0.4 19.453 . . 1.289 . .

0.45 31.117 . . 1.493 . .

0.5 49.431 . . 1.694 . .

0.55 78.523 . . 1.895 . .

0.6 125.892 . . 2.100 . .

0.65 204.404 . . 2.311 . .

0.7 341.192 . . 2.533 . .

0.75 594.292 . . 2.774 . .

0.8 1099.005 . . 3.041 . .

0.85 2254.239 . . 3.353 . .

0.9 5559.042 . . 3.745 . .

0.91 6918.309 . . 3.840 . .

0.92 8770.008 . . 3.943 . .

0.93 11376.272 . . 4.056 . .

0.94 15240.527 . . 4.183 . .

0.95 21232.444 . . 4.327 . .

0.96 31332.857 . . 4.496 . .

0.97 50582.466 . . 4.704 . .

0.98 95719.407 . . 4.981 . .

Data Statistik

Fraksi Etilasetat Daun Bangun-Bangun II

Confidence Limits

Probabil ity

95% Confidence Limits for konsentrasi

95% Confidence Limits for log(konsentrasi)a Estimate

Lower Bound

Upper

Bound Estimate

Lower Bound

Upper Bound

PROBIT 0.01 .674 . . -.171 . .

0.02 1.096 . . .040 . .

0.03 1.492 . . .174 . .

0.04 1.883 . . .275 . .

0.05 2.275 . . .357 . .

0.06 2.673 . .427 . .

0.07 3.076 . . .488 . .

0.08 3.491 . . .543 . .

0.09 3.917 . . .593 . .

0.1 4.355 . . .639 . .

0.15 6.745 . . .829 . .

0.2 9.549 . . .980 . .

0.25 12.882 . . 1.110 . .

0.3 16.826 . . 1.226 . .

0.35 21.577 . . 1.334 . .

0.4 27.289 . . 1.436 . .

0.45 34.276 . . 1.535 . .

0.5 42.955 . . 1.633 . .

0.55 53.703 . . 1.730 . .

0.6 67.452 . . 1.829 . .

0.65 985.310 . . 1.931 . .

0.7 109.395 . . 2.039 . .

0.75 143.218 . . 2.156 . .

0.8 192.752 . . 2.285 . .

0.85 272.897 . . 2.436 . .

0.9 422.668 . . 2.626 . .

0.91 469.894 . . 2.672 . .

0.92 527.229 . . 2.722 . .

0.93 598.411 . . 2.777 . .

0.94 688.652 . . 2.838 . .

0.95 809.095 . . 2.908 . .

0.96 977.237 . . 2.990 . .

0.97 1233.104 . . 3.091 . .

0.98 1678.804 . . 3.225 . .

Data Statistik

Fraksi Etilasetat Daun Bangun-Bangun III

Confidence Limits

Probabil ity

95% Confidence Limits for konsentrasi

95% Confidence Limits for log(konsentrasi)a Estimate

Lower Bound

Upper

Bound Estimate

Lower Bound

Upper Bound

PROBIT 0.01 .226 . . -.645 . .

0.02 .426 . . -.370 . .

0.03 .638 . . -.195 . .

0.04 .864 . . -.063 . .

0.05 1.106 . . .044 . .

0.06 1.364 . . .135 . .

0.07 1.640 . . .215 . .

0.08 1.936 . . .287 . .

0.09 2.249 . . .352 . .

0.1 2.582 . . .412 . .

0.15 4.570 . . .660 . .

0.2 7.194 . . .857 . .

0.25 10.616 . . 1.026 . .

0.3 15.066 . . 1.178 . .

0.35 20.796 . . 1.318 . .

0.4 28.313 . . 1.452 . .

0.45 38.106 . . 1.581 . .

0.5 51.050 . 1.708 . .

0.55 68.391 . . 1.835 . .

0.6 92.044 . . 1.964 . .

0.65 125.314 . . 2.098 . .

0.7 174.981 . 2.238 . .

0.75 245.470 . . 2.390 . .

0.8 362.242 . . 2.559 . .

0.85 570.164 . . 2.756 . .

0.9 1009.252 . 3.004 . .

0.91 1158.777 . . 3.064 . .

0.92 1345.860 . . 3.129 . .

0.93 1588.546 . 3.201 . .

0.94 1909.853 . . 3.281 . .

0.95 2355.049 . . 3.372 . .

0.96 3013.006 . 3.479 . .

0.97 4083.193 . . 3.611 . .

0.98 6109.420 . . 3.786 . .

Data Statistik

Fraksi Etilasetat Daun Bangun-Bangun IV

Confidence Limits

Proba bility

95% Confidence Limits for konsentrasi

95% Confidence Limits for log(konsentrasi)a

Estimate

Lower Bound

Upper

Bound Estimate

Lower Bound

Upper Bound

PROBIT 0.01 .038 . . -1.418 . .

0.02 .092 . . -1.033 . .

0.03 .162 . . -.789 . .

0.04 .247 . . -.606 . .

0.05 .349 . . -.456 . .

0.06 .468 . . -.329 . .

0.07 .605 . . -.218 . .

0.08 .762 . . -.118 . .

0.09 .937 . . -.028 . .

0.1 .879 . . .056 . .

0.15 2.523 . . .402 . .

0.2 4.742 . . .676 . .

0.25 8.165 . . .912 . .

0.3 13.304 . . 1.124 . .

0.35 20.892 . . 1.320 . .

0.4 32.062 . . 1.506 . .

0.45 48.528 . . 1.686 . .

0.5 72.945 . . 1.863 . .

0.55 109.900 . . 2.041 . .

0.6 166.341 . . 2.221 . .

0.65 255.270 . . 2.407 . .

0.7 400.866 . . 2.603 . .

0.75 653.130 . . 2.815 . .

0.8 1122.018 . . 3.050 . .

0.85 2113.489 . . 3.325 . .

0.9 4688.133 . . 3.671 . .

0.91 5675.446 . . 3.754 . .

0.92 6998.419 . 3.845 . .

0.93 8810.488 . . 3.945 . .

0.94 11376.272 . . 4.056 . .

0.95 15240.527 . . 4.183 . .

0.96 21478.304 . . 4.332 . .

0.97 32809.529 . . 4.516 . .

0.98 57543.993 . . 4.760 . .

Data Statistik

Fraksi Etilasetat Daun Bangun-Bangun V

Confidence Limits

Proba bility

95% Confidence Limits for konsentrasi

95% Confidence Limits for log(konsentrasi)a Estimate

Lower Bound

Upper

Bound Estimate

Lower Bound

Upper Bound

PROBIT 0.01 .5176 . . -.286 . .

0.02 .990 . . -.004 . .

0.03 1.492 . . .174 . .

0.04 2.037 . . .309 . .

0.05 2.618 . . .418 . .

0.06 3.243 . . .511 . .

0.07 3.908 . . .592 . .

0.08 4.623 . . .665 . .

0.09 5.395 . . .732 . .

0.1 6.208 . . .793 . .

0.15 11.117 . . 1.046 . .

0.2 17.660 . . 1.247 . .

0.25 26.302 . . 1.420 . .

0.3 37.583 . . 1.575 . .

0.35 52.239 . . 1.718 . .

0.4 71.449 . . 1.854 . .

0.45 96.827 . . 1.986 . .

0.5 130.617 . . 2.116 . .

0.55 176.197 . . 2.246 . .

0.6 238.231 . . 2.377 . .

0.65 326.587 . . 2.514 . .

0.7 453.941 . . 2.657 . .

0.75 648.634 . . 2.812 . .

0.8 966.050 . . 2.985 . .

0.85 15346.616 . . 3.186 . .

0.9 2747.894 . . 3.439 . .

0.91 3162.277 . . 3.500 . .

0.92 3681.289 . 3.566 . .

0.93 4355.118 . . 3.639 . .

0.94 5260.172 . . 3.721 . .

0.95 6516.283 . . 3.814 . .

0.96 8375.292 . . 3.923 . .

0.97 11402.497 . . 4.057 . .

0.98 17218.685 . . 4.236 . .

DAFTAR PUSTAKA

Anderson. J. E. (1991). A Blind Comparison of Simple Bench-Top Bioassays and Human Tumour Cell Cytotoxities as Antitumor Prescreens. Phytochem. J Anal. Vol. 2: 107-111.

Arbiastuti, Y., dan Muflihati. (2008). Isolasi dan Uji Aktivitas Kandungan Kimia Bioaktif dari Biji Duku (Lasium domesticum Corr). Jurnal Penelitian Universitas Tanjung Pura. 10(2): 74.

Bactiar, Y. (2003). Menghasilkan Pakan Alami Untuk Ikan Hias. Depok: Agromedia Pustaka. Halaman 17-18.

Bhattacharjee, P. (2010). Phytochemical and Pharmacologycal Investigation of Different Parts of Coleus amboinicus (Lour). Disertasi. National College of Pharmacy. Balaraj Urs Road, Shimoga. Halaman 65.

Cahyadi, R. (2009). Uji Toksisitas Akut Ekstrak Etanol Buah Pare (Momordica charantia L,) terhadap Larva Artemia salina Leach dengan Metode Brine Shrimp Lethality Test. Skripsi. Semarang: Fakultas Kedokteran Universitas Diponegoro. Halaman 33.

Carballo, JH., Hernandez-Inda, ZL., Perez, P., dan Garcia-Gravalos, MD. (2002).

A Comparison Between Two Brine Shrime Assays to Detect IN Vitro Cytotoxicity in Marine Natural Products. BMC Biotechnol 2 : 17.

Depkes, RI. (1979). Materia Medika Indonesia.Jilid III. Jakarta: Direktorat Jenderal Pengawas Obat dan Makanan. Halaman 159, 167-171.

Depkes, RI. (1989). Materia Medika Indonesia. Jilid V. Jakarta: Direktorat Jendral Pengawasan Obat dan Makanan. Halaman 151-154.

Depkes, RI. (1995). Materia Medika Indonesia. Jilid VI. Jakarta: Departemen Kesehatan RI. Halaman 300-304, 306.

Depkes, RI. (2000). Parameter Standar Umum Ekstrak Tumbuhan Obat. Jakarta: Departemen Kesehatan RI. Halaman 1-11.

Fanani, R. (2009). Uji Toksisitas Akut Ekstrak Etanol Daun Dewandaru (Eugenia uniflora L,) Per Oral Pada Tikus Sprague Dawley. Skripsi. Surakarta: Fakultas Farmasi Universitas Muhammadiyah Surakarta. Halaman 93. Gritter, R.J., Bobbitt, J., dan Schwarting, A.E. (1991). Pengantar Kromatografi.

Penerjemah: Kosasih Padmawinata. Edisi II. Bandung: ITB. Halaman 107-146.

Harbone, J. B. (1987). Metode Fitokimia Penuntun Cara Modern Menganalisis Tumbuhan. Penerjemah: Kosasih Padmawinata dan Iwang Soediro. Edisi II. Bandung: ITB. Halaman 102-103, 147-149, 234.

Hariana, H. A. (2008). Tumbuhan Obat dan Khasiatnya. Jakarta: Penebar Swadaya. Halaman 96.

Hasibuan, P. (2012). Aktivitas Antioksidan dan Antikanker Ekstrak Daun Bangun-Bangun (Plectranthus amboinicus (Lour.) Spreng) Terhadap Kanker Payudara Secara In vitro dan In vivo Test. Disertasi.Medan: Fakultas Farmasi Sumatera Utara Medan. Halaman 50.

Hostettmann, K., Hostettmann, M., dan Marston, A. (1995). Cara Kromatografi Preperatif: Penggunaan pada Isolasi Senyawa Alam. Penerjemah: Kosasih Padmawinata. Bandung: ITB. Halaman 9-12, 33-34.

Hodgson, E. (2004). A Text Of Modern Toxicology. Third Edition. United States of America: A John Willey & Sons, Inc., Publication. Halaman 4.

Inayah, Ningsih dan Kustono. (2012). Uji Toksisitas dan Identifikasi Awal Golongan Senyawa Aktif Ekstrak Etanol dan N- Heksana Teripang Pasir (Holothuria scabra) Kering Pantai Kenjeran Surabaya. Alchemy. Vol. 2 No. 1. Halaman 92- 100.

Kaliappan, N.D., dan Viswanathan, P.K. (2008). Pharmacognostical Studies on The Leaves of Plectranthus amboinicus (Lour) Spreng. Journal of Medical Research. 2(3): 182-184.

Kemala, S. (2012). Efek Toksisitas Akut Ekstrak Etanol dan Fraksi Daun Bangun-Bangun (Plectranthus amboinicus (Lour.) Spreng) Terhadap Larva Artemia salina Leach dengan Metode Brine Shrimp Lethality Test (BSLT). Skripsi. Medan: Fakultas Farmasi Sumatera Utara Medan. Halaman 45-53.

Kurniawan, H. (2012). Uji Toksisitas Akut Ekstrak Metanol Daun Kesum (Polygonum minus Huds)Terhadap LarvaArtemia salina Leachdengan MetodeBrine Shrimp Lethality Test (BSLT). Skripsi. Program Studi FarmasiFakultas Kedokteran dan Ilmu Kesehatan. Pontianak : Universitas Tanjungpura. Halaman 38-42.

Lenny dan Fitrya. (2006). Uji Aktivitas Antikanker Secara In Vitro dengan Sel Murine P-388 Senyawa Flavonoid dari Etilasetat Akar Tumbuhan Tunjuk Langit (Helmynthostachi zeylanica (Linn) Hook). Jurnal Penelitian Sains Volume 12 Nomor I (C) 12106.Palembang : Universitas Sriwijaya. Halaman 33.

Ma’at, S. (1999). Pengujian Bioaktivitas Tanaman Obat Sebagai Antikanker.

Disertasi. Program Pasca Sarjana. Surabaya: Universitas Indonesia Airlangga. Halaman 45-46.

McLaughlin, J.L., and Lingling L., R. (1998). The Use Of Biological Assays To Evaluate Botanicals. Drug Information Journal.Volume 32. Pages 514. Meyer, B.N., Ferrigni, N.R., Putnam, J.E., Jacobsen, L.B., Nichols, D.E., dan

McLaughlin, J.L. (1982). Brine Shrimp, A Convenient General Bioassay for Active Plant Constituens. Journal of Plant Medical Research. 45(5) 31-35.

Mutia, D. (2010). Uji Toksisitas Akut Ekstrak Etanol Buah Anggur (Vitis Vinifera)

Terhadap Larva Artemia salina Leach Dengan Metode Brine Shrimp Lethality Test (BSLT). Karya Tulis Ilmiah. Program Pendidikan Sarjana Kedokteran, Fakultas Kedokteran Diponegoro, Semarang. Halaman 13. Noerdin, D. (1985). Elusidasi Struktur Organik Dengan Cara Spektroskopi Ultra

Lembayung dan Inframerah. Bandung: Penerbit Angkasa. Halaman 88. Pandey, B. P. (2003). A Text Book of Botany Angiosperms Taxonomy, Anatomy,

Embryology (Including Tissue Culture And Economic Botany). New Delhi: S. Chand & Company LTD. Halaman 349.

Rohman, dan Gandjar. (2007). Kimia Farmasi Analisis. Yogyakarta: Pustaka Pelajar. Halaman 46-47.

Runia, Y. A. (2008). Faktor-Faktor Yang Berhubungan Dengan Keracunan Pestisida Organofosfat, Karbamat dan Kejadian Anemia Pada Petani Hortikultura di Desa Tejosari Kecamatan Ngablak Kabupaten Magelang.

Tesis. Semarang: Universitas Diponegoro. Halaman 46.

Rout, O.P., Rout, K.K., Acharya, R., dan Mishra, S.K. (2010). Preliminary Pharmacognostical and Phytochemical evaluation of Coleus aromaticus

Benth. Leaf. International Jurnal of Pharma World Research. 1(4):2-4. Sahgal G., Ramanathan, S., Sasidharan S., Mordin M.N., Ismail S., dan Mansor

S.M. (2010). Brine Shrimp Lethality and Acute Oral Toxicity Studies on Swietenia mahagoni (Linn.) Jacq. Seed Methanolic Extract. Diakses 21 Mei 2012. An International Quarterly Published Online Research Journal. Santosa, C.M., dan Hertiani, T. (2005). Kandungan Senyawa kimia dan Efek

Ekstrak Air Daun Bangun-Bangun (Coleus amboinicus, L.) pada Aktivitas Fagositosis Netrofil Tikus Putih (Rattus norvegicus). Majalah Farmasi Indonesia. 16(3): 141-148.

Sastrohamidjojo, H. (1991). Kromatografi. Yogyakarta: Penerbit Liberty. Halaman 22-36.

Supratman, U. (2010). Elusidasi Struktur Senyawa Organik. Bandung: Widya Padjadjaran. Halaman 66-105.

WHO. (1998). Quality Control Methods for Medicinal Plant Material. Switzerland: WHO. Halaman 19-25.

BAB III

METODE PENELITIAN

Penelitian ini dilakukan dengan menggunakan metode eksperimental. Uji sitotoksik fraksi etilasetat dilakukan dengan metode Brine Shrimp Lethality Test

denganmenggunakan larva Artemia salina Leach. Parameter yang diukur adalah nilai LC50 (Lethal Concentration 50). Tahapan penelitian meliputi penyiapan bahan

tumbuhan, pemeriksaan karakteristik daun bangun-bangun, pembuatan simplisia, pembuatan ekstrak, analisis KLT, pembuatan fraksinasi dengan metode KCV pengujian efek sitotoksik fraksi etilasetat daun bangun-bangun (Plectranthus amboinicus (Lour.) mengggunakan larva udang Artemia salina Leach. Penelitian ini dilakukan di Laboratorium Farmakognosi Fakultas Farmasi Universitas Sumatera Utara.

3.1 Alat

Alat – alat yang digunakan pada penelitian ini meliputi alat-alat gelas laboratorium, bejana maserasi, blender (Philip), bola karet, desikator, kromatografi lapis tipis (bejana pengembang, lampu UV 254 dan 366 (szimathsu), lampu 5 watt (Hannochs), lampu bunsen, lemari pengering, mikroskop (Boeco), mortir dan stamfer, neraca listrik (Mettler Toledo), oven (Memmert), penangas air, rotary evaporator (Boeco), seperangkat alat penetapan kadar air (Stuart), seperangkat alat destilasi, spatula, statif, Vacumm Liquid Chromatography (gelas sinter dan vakum),wadah penetasan telur Artemia salina Leach.

3.2 Bahan

Bahan-bahan yang digunakan dalam penelitian ini adalah daun bangun-bangun (Plectranthus amboinicus (Lour.), telur Artemia salina Leach, garam tidak beriodium, Na-CMC (Natrium-Carboxy Methyl Cellulose) dan air suling. Bahan kimia yang digunakan kecuali dinyatakan lain berkualitas pro analisa yaitu etilasetat (destilasi), n-heksana (destilasi),etilasetat, n-heksana, kloralhidrat dan toluen.

3.3 Penyiapan Bahan Tanaman

Penyiapan bahan tanaman meliputi pengambilan bahan dan identifikasi daun bangun-bangun (Plectranthus amboinicus (Lour) Spreng.

3.3.1 Pengambilan Bahan Tanaman

Pengambilan bahan tanaman dilakukan secara purposif yaitu tanpa membandingkan dengan tanaman yang sama dari daerah lain. Bahan tanaman yang digunakan adalah daun bangun-bangun yang berwarna hijau dan masih segar, yang diperoleh dari Kecamatan Beringin, Pematang Siantar, Provinsi Sumatera Utara.

3.3.2 Identifikasi Tanaman

Identifikasi tanaman dilakukan di Pusat Penelitian Biologi, Lembaga Ilmu Pengetahuan Indonesia (LIPI) Bogor.

3.4 Hewan Percobaan

Hewan percobaan yang digunakan pada penelitian ini adalah larva udang

salina Leach (nauplii). Telur Artemia salina Leach diperoleh dari penjual ikan-ikan hias yang berada di Jl. M. H. Thamrin. No. 71 B Medan Sumatera Utara.

3.5 Pembuatan Pereaksi

Larutan Kloralhidrat: Sebanyak 50 g kloralhidrat ditimbang, dilarutkan dalam 20 ml air suling (Depkes RI., 1995).

3.6 Pemeriksaan Karakteristik Daun Bangun-Bangun

Pemeriksaan karakteristik daun bangun-bangun meliputi pemeriksaan makroskopik dan mikroskopik, penetapan kadar air.

3.6.1 Pemeriksaan Makroskopik

Pemeriksaan makroskopik dilakukan terhadap daun bangun-bangun dengan cara mengamati warna, bentuk, ukuran dan tekstur dari simplisia.

3.6.2 Pemeriksaan Mikroskopik

Pemeriksaan mikroskopik dilakukan terhadap serbuk simplisia daun bangun-bangun. Serbuk simplisia ditaburkan di atas objek glass yang telah ditetesi dengan larutan kloralhidrat dan ditutup dengan kaca penutup, kemudian diamati di bawah mikroskop.

3.6.3 Penetapan Kadar Air

Penetapan kadar air dilakukan dengan metode Azeotropi (destilasi toluen) (WHO,1998).

Cara kerja : 1. Penjenuhan Toluen

Sebanyak 200 mL toluen dan 2 mL air suling dimasukkan ke dalam labu alas bulat, didestilasi selama 2 jam. Kemudian toluen didinginkan selama 30 menit dan volume air pada tabung penerima dibaca dengan 0,05 mL.

2. Penetapan Kadar Air Simplisia

labu yang berisi toluen tersebut, lalu dipanaskan hati-hati selama 15 menit. Setelah toluen mendidih, kecepatan tetesan diatur lebih kurang 2 tetesan perdetik, sampai sebagian air terdestilasi, kemudian kecepatan destilasi dinaikkan hingga 4 tetes perdetik. Setelah semua air terdestilasi, bagian dalam pendingin dibilas dengan toluen. Destilasi dilanjutkan selama 5 menit, kemudian tabung penerima dibiarkan dingin sampai suhu kamar. Setelah air dan toluen memisah sempurna, volume air dibaca dengan ketelitian 0,05 mL. Selisih kedua volume air dibaca sesuai dengan kandungan air yang terdapat dalam bahan yang diperiksa.

3.7 Pembuatan Simplisia

Pembuatan simplisia dilakukan dengan cara daun daun bangun-bangun (Plectranthus amboinicus (Lour.) Spreng) yang telah dikumpulkan, dibersihkan dari pengotor yang melekat, lalu dicuci bersih dengan air sampai bersih dan ditiriskan. Bahan tanaman dikeringkan dengan cara diangin-anginkan terlebih dahulu, kemudian dikeringkan didalam lemari pengering sampai simplisia rapuh ketika diremas. Kemudian diblender sampai menjadi serbuk dan disimpan dalam wadah plastik yang tertutup rapat. Serbuk ditimbang diperoleh berat kering 900 g.

3.8 Pembuatan Ekstrak Daun Bangun-Bangun

Pembuatan ekstrak dilakukan secara maserasi bertingkat dengan menggunakan pelarut n-heksnana dan etilasetat. Sebanyak 10 bagian simplisia dengan derajat halus yang cocok dimasukkan kedalam sebuah bejana, kemudian dituangi dengan 75 bagian cairan penyari (n-heksana), ditutup dan dibiarkan selama 5 hari terlindung dari cahaya, sambil sering diaduk. Setelah 5 hari sari

diserkai, ampas diperas dan dicuci dengan cairan penyari secukupnya hingga diperoleh 100 bagian. Sari dipindahkan kedalam bejana tertutup, dibiarkan ditempat sejuk dan terlindung dari cahaya selama 2 hari. Dienaptuangkan dan disaring. Ampas kemudian diangin-anginkan dimasukkan kembali kedalam sebuah bejana dituangi dengan 75 bagian cairan penyari (etilasetat), ditutup dan dibiarkan selama 5 hari terlindungi dari cahaya, sambil sering diaduk. Selama 5 hari diserkai, ampas diperas dan dicuci dengan cairan penyari secukupnya hingga diperoleh 100 bagian. Sari dipindahkan kedalam bejana tertutup, dibiarkan ditempat sejuk dan terlindung dari cahaya selama 2 hari. Dienaptuangkan dan disaring. Maserat kemudian disuling dan diuapkan dengan tekanan rendah pada suhu tidak lebih dari 500C menggunakan rotary evaporator sehingga diperoleh ekstrak kental etilasetat (Depkes RI., 1995).

3.9 Kromatografi Lapis Tipis

Fase gerak terbaik adalah fase gerak yang dapat menghasilkan bercak paling banyak yang digunakan untuk fase gerak pada kromatografi kolom. Hasil ekstrak etilasetat dilakukan analisis secara KLT menggunakan fase diam silika gel GF254 dan fase gerak campuran n-heksana-etilasetat dengan perbandingan (100:0),

(90:10), (80:20), (70:30), (60:40), (50:50), (40:60), (30:70), sebagai penampak bercak digunakan sinar UV dengan panjang gelombang 366 nm dan 254 nm dan diamati bercak flouresensi yang timbul.

Cara Kerja :

Ekstrak dilarutkan dalam metanol, kemudian ditotolkan dengan penotol pada plat pra lapis sampai plat jenuh, kemudian dimasukkan kedalam chamber yang telah jenuh dengan uap fase gerak, ketika mencapai batas pengembang plat

dikeluarkan dan dikeringkan, plat diamati dibawah sinar UV dengan panjang gelombang 366 nm.

3.10 Pembuatan Fraksi Ekstrak Etilasetat

Ekstrak etilasetat difraksinasi menggunakan KCV dengan fase diam silikagel 60H fase gerak dengan gradien kepolaran yang meningkat yaitu n -heksana : etilasetat dengan perbandingan (100:0), (90:10), (80:20), (70:30), (60:40), (50:50), (40:60), (30:70), (20:80), (10:100), (0:100) dan etilasetat : metanol (80:20), (60:40), (40:60), (20:80), (0:100).

Cara kerja :

Kolom yang digunakan adalah corong Buchner kaca masir, kedalam corong Buchner kaca masir dimasukkan silikagel 60 H yang dikemas dalam keadaan kering. Lalu diatasnya ditutup kembali dengan kertas saring. Alat vakum dihidupkan untuk memperoleh kerapatan yang maksimum. Kemudian cuplikan yang telah dicampur dengan silika gel 60H diletakkan pada bagian atas kolom yang disebar secara merata, lalu diatasnya diletakkan kertas saring. Alat vakum dihidupkan kembali. Sampel dielusi dengan pelarut mulai dari kepolaran rendah lalu kepolaran ditingkatkan perlahan-lahan dan dihisap sampai kering pada setiap pengumpulan fraksi. Fraksi etilasetat yang diperoleh dari 16 landaian fase gerak dan dikelompokkan menjadi 5 fraksi etilaseat berdasarkan bercak noda yang sama.

3.11 Uji Sitotoksik

Uji sitotoksik dilakukan terhadap fraksi etilasetat menggunakan larva Artemia

Air laut buatan disiapkan dengan melarutkan 38 g garam tidak beriodium dengan air suling dicukupkan hingga 1 L kemudian disaring (Meyer, et al., 1982). Bejana penetasan disekat menjadi dua bagian, yaitu bagian yang besar dan bagian yang kecil, lalu diberi lubang pada sekatnya. Air laut buatan dimasukkan ke dalam bejana, telur Artemia salina Leach ditaburkan ke dalam bagian yang kecil kemudian bagian atasnya ditutup dengan aluminium foil sedangkan bagian yang besar dibiarkan terbuka menghadap lampu selama 48 jam, telur akan menetas menjadi larva dan siap digunakan untuk hewan uji.

Sebanyak 0,5 g Na-CMC ditaburkan dalam lumpang yang berisi ±20 mL air suling panas, didiamkan selama 15 menit lalu digerus hingga diperoleh massa yang transparan, lalu digerus sampai homogen, diencerkan dengan air suling, dihomogenkan dan dimasukkan ke labu tentukur 100 mL, dicukupkan volumenya dengan air suling hingga 100 mL.

Larutan uji yang terdiri dari fraksi etilasetat I, II, III, IV, V dengan konsentrasi 1000, 100, 10 µg/mL, disiapkan 5 vial untuk masing-masing konsentrasi larutan uji sehingga semuanya menjadi 75 vial dan vial untuk kontrol. Masing-masing ekstrak ditimbang sebanyak 50 mg didalam vial, lalu dilarutkan dengan menggunakan Na-CMC 0,5% sebanyak 0,1 mL dan dicukupkan dengan air laut buatan sampai garis tanda kalibrasi (5 mL) pada vial. Larutan ini sebagai larutan induk baku I (LIB I) dengan konsentrasi 10.000 µg/mL. Larutan induk I masing-masing fraksi dipipet 0,5 mL lalu diencerkan sampai 5 mL sehingga diperoleh larutan induk II dengan konsentrasi 1.000 µg/mL. Larutan induk II masing-masing fraksi dipipet 0,5 mL lalu diencerkan sampai 5 mL sehingga diperoleh konsentrasi 100 µg/mL. Konsentrasi 100 µg/mL masing-masing fraksi dipipet 0,5 mL lalu diencerkan sampai 5 mL sehingga diperoleh konsentrasi 10

µg/mL. Kontrol dibuat dengan menambahkan Na-CMC 0,5% ke dalam vial sesuai jumlah yang digunakan untuk melarutkan fraksi, kemudian cukupkan dengan air laut buatan sampai 5 mL. Lalu ditambahkan 10 ekor larva Artemia salina Leach ke dalam masing-masing vial yang telah berisi larutan uji dan kontrol. Tambahkan 1 tetes suspensi ragi (3 mg dalam 5 mL air laut buatan) sebagai makanannya kemudian semua vial diletakkan dibawah cahaya lampu. Pengamatan dilakukan setelah 24 jam dan dihitung jumlah persentase kematian larva tiap dosis dan kontrol. Data dihitung menggunakan rumus Abbott :

Kematian = tes−kontro l

kontrol x 100 %.

(Meyer, et al., 1982)

Data dianalisis dengan analisis variansi ANOVA menggunakan program SPSS versi 17 untuk melihat ada tidaknya perbedaan dari setiap konsentrasi pada tiap larutan uji terhadap jumlah kematian nauplii, untuk mengetahui konsentrasi mana yang memiliki efek yang sama atau berbeda antara satu konsentrasi dengan konsentrasi yang lain dalam satu larutan dilakukan uji Post Hoc Tuckey dan untuk menentukan LC50 digunakananalisis Probit. Perhitungan LC50 fraksi etilasetat I, II,

BAB IV

HASIL DAN PEMBAHASAN

4.1 Identifikasi Tanaman

Identifikasi sampel dilakukan di Pusat Penelitian Biologi, Lembaga Ilmu Pengetahuan Indonesia (LIPI) Bogor. Hasil identifikasi menunjukkan bahwa sampel termasuk suku Lamiaceae, spesies Plectranthus amboinicus, (Lour) Spreng. Hasil dapat dilihat padaLampiran 1, halaman 41.

4.2 Karakteristik Simplisia

Hasil pemerikasan makroskopik (Lampiran 2, halaman 42 dan 43) daun bangun-bangun segar menunjukkan daun berwarna hijau, helaian daun berbentuk bundar telur, kadang-kadang agak membundar, panjang helaian daun 3,5 cm sampai 7 cm, lebar 4 cm sampai 7 cm, pinggir daun agak bergerigi atau berombak tangkai daun panjang 1,5 cm sampai 3 cm. Pada keadaan segar helaian daun tebal, sangat berdaging dan berair, tulang daun bercabang-cabang dan menonjol sehingga membentuk bangunan seperti jala, permukaan atas dan bawah berambut halus berwarna putih. Pada keadaan kering helaian daun tipis dan sangat berkerut, permukaan atas kasar, warna coklat sampai coklat tua, permukaan bawah berwarna lebih muda dari permukaan atas, tulang daun kurang menonjol, pada kedua permukaan terdapat rambut halus berwarna putih. Hasil pemeriksaan mikroskopik (Lampiran 3, halaman 44) serbuk simplisia daun bangun-bangun terlihat fragmen rambut penutup berbentuk uniseluler, rambut kelenjar berbentuk glandular, pembuluh kayu tipe spiral, kristal kalsium oksalat berbentuk prisma, serta stomata tipe diasitik.

Hasil pemeriksaan karakterisasi simplisia daun bangun-bangun diperoleh kadar air 7,64%, kadar ini memenuhi syarat menurut Materia Medika Indonesia Edisi V secara umum yaitu kadar air daun jika tidak dinyatakan lain adalah kurang dari 10%. Kadar air yang berlebihan dapat mempercepat pertumbuhan mikroorganisme dan hidrolisis senyawa kimia. Hasil perhitungan kadar air dapat di lihat pada Lampiran 5, halaman 46. Senyawa-senyawa yang terkandung di dalam daun bangun-bangun adalah flavonoid, glikosida, triterpenoid/steroid (Hasibuan, 2012).

4.3 Ekstraksi

Ekstraksi serbuk simplisia dilakukan secara maserasi dengan menggunakan pelarut n-heksan dan kemudian dilanjutkan dengan menggunakan pelarut etilasetat diperoleh ekstrak kental etilasetat 26,565 g.

4.4 Hasil Analisis Ekstrak Etilasetat Dengan Cara KLT

Hasil KLT ekstrak etilasetat Plectranthus amboinicus (Lour.) Spreng menggunakan fase diam silika gel GF254 diperoleh fase gerak yang memisahkan

noda dan yang paling baik adalah n-heksana-etilasetat (70:30). Hasil pencarian fase gerak ditunjukkan pada Gambar 4.1 berikut ini:

bp

tp

Gambar 4.1 Kromatogram dari EEDBB Dengan Fase Gerak n-heksana-

etilasetat Penampak Bercak UV 366 nm.

Keterangan: Fase diam silika gel GF 256 dan fase gerak n-heksana-etilasetat, tp=titik penotolan, bp= batas pengembangan.

Tabel 4.1 Nilai Noda Kromatogram Lapis Tipis Ekstrak Etilasetat dari Daun Bangun-Bangun Dengan Fase Gerak yang Berbeda.

Kromatografi Fase gerak (n-heksana-etilasetat) Harga Rf

I 8:2 0,1466; 0,2133; 0,2933;

0,36; 0,5066

II 7:3 0,4933; 0,5733; 0,6667;

0,7733; 0,84; 0,8667

III 6:4 0,44; 0,72; 0,8; 0,84

IV 5:5 0,6; 0,8667; 0,9733

V 4:6 0,7467; 0,9066

VI 3:7 0,84; 0,9066

4.5 Hasil FEDBB Secara Kromatografi Cair Vakum (KCV)

Pada kromatografi cair vakum, pemisahan senyawa-senyawa yang terdapat dalam ekstrak etilasetat dengan cara elusi landaian (gradient elution) dimulai dengan eluen yang bersifat non polar sampai eluen yang lebih polar. Perlakuan ini merupakan pemisahan tahap awal untuk mempermudah proses pemisahan selanjutnya. Sejumlah 2 g ekstrak etilasetat dicampur dengan silika gel 60H dan dilakukan elusi ladaian. Banyak pelarut yang digunakan sebanyak

200 ml. Hasil fraksinasi diperoleh 16 fraksi. Masing-masing fraksi dimonitor komponen kimianya dengan menggunakan fase gerak n-heksana : etilasetat 7 : 3. Fraksi yang memiliki profil yang sama digabungkan hingga diperoleh 5 fraksi yaitu fraksi I (vial 1), fraksi II (vial 2-3), fraksi III (vial 4-7), fraksi IV (vial 8-13), fraksi V (vial 14-16). Hasil fraksi etilasetat I = 1, 246 g, fraksi etilasetat II = 1,925 g, fraksi etilasetat III = 2,746 g, fraksi etilasetat IV = 5,351, fraksi etilasetat V = 1,366 g. Masing-masing fraksi yang diperoleh diuji sitotoksiknya dengan menggunakan metode BSLT. Hasil kromatogram fraksi KCV ekstrak etilasetat ditunjukkan pada Gambar 4.2 berikut ini:

bp

tp

Gambar 4.2 Kromatogram dari FEDBB dengan Fase Gerak n

-heksana-etilasetat Penampak Bercak UV 366 nm.

Keterangan: Fase diam silika gel GF 256 fase gerak n-heksana-etilasetat 7:3, tp= titik penotolan, bp= batas pengembangan

FEDBB I = n-heksana-etilasetat (100:0)

FEDBB II = n-heksana-etilasetat (90:10 dan 80:20)

FEDBB III = n-heksana-etilasetat (70:30; 60:40; 50:50; 40:60) FEDBB IV = n-heksana-etilasetat (30:70; 20:80; 10:90; 0:100)

etilasetat-metanol (80:20 dan 60:40) FEDBB V = etilasetat-metanol (40:60; 20:80 dan 0:100)

Tabel 4.2 Nilai Noda Kromatografi Lapis Tipis Fraksi Etilasetat dari Daun Bangun-Bangun Dengan Fase Gerak n-heksana-etilasetat 70:30 Penampak Bercak UV 366 nm.

Kromatografi Fase Gerak (n-heksana-etilasetat) Harga Rf

I 100:0 0,8571

II 90:10; 80:20 0,8714; 0,8714

III 70:30; 60:40; 50:50; 40:60 0,8857; 0,8857; 0,8857; 0,8857

IV 30:70; 20:80; 10:90; 0:100 etilasetat-metanol 80:20; 60:40

0,9142; 0,9142; 0,9142; 0,9142; 0,9142; 0,9142 V etilasetat-metanol 40:60; 20:80;

0:100

0,9285; 0,9285; 0,9285

4.6Hasil Uji Efek SitotoksikFraksi Etilasetat

Brine Shrimp Lethalty Test (BSLT ) adalah salah satu metode uji toksisitas untuk menguji bahan-bahan yang bersifat sitotoksik. Uji toksisitas dengan metode BSLT ini merupakan uji toksisitas akut, yaitu efek toksik dari suatu senyawa ditentukan dalam waktu singkat setelah pemberian dosis uji. Pengujian menggunakan Brine Shrimp Lethalty Test (BSLT) diterapkan dengan menentukan nilai Lethal Concentration 50% (LC50) setelah perlakuan 24 jam. Nilai LC50

merupakan angka yang menunjukkan konsentrasi suatu bahan penyebab kematian sebesar 50% dari jumlah hewan uji (Wibowo, 2013). Prosedurnya dengan menentukan nilai LC50 dari aktivitas komponen aktif tanaman terhadap larva Artemia salina Leach. Suatu ekstrak dikatakan toksik berdasarkan metode BSLT jika nilai LC50< 1000 µg/mL (Meyer, et al., 1982). Larva yang digunakan untuk

uji toksisitas berumur 48 jam, karena pada umur ini anggota tubuh larva sudah lengkap pada saat larva itu menetas (Muaja, dkk, 2013). Pendapat lain menyatakan bahwa pada saat umur 48 jam,Artemia berada pada fase yang paling aktif membelah secara mitosis yang identik dengan sel kanker yang juga membelah secara mitosis (Kurniawan, 2012).

Apabila suatu ekstrak tanaman bersifat toksik menurut nilai LC50 dengan

metode BSLT, maka tanaman tersebut dapat dikembangkan sebagai obat anti kanker (Cahyadi, 2009; Kurniawan, 2011). Namun, bila tidak bersifat toksik maka tanaman tersebut dapat diteliti kembali untuk mengetahui khasiat lainnya dengan menggunakan hewan coba lain yang lebih besar dari larva udang Artemia salina

seperti mencit dan tikus secara in vivo (Cahyadi, 2009; Mutia, 2010). Kematian larva Artemia salina Leach berhubungan dengan konsentrasi dan senyawa-senyawa yang terkandung didalam larutan uji (Cahyadi, 2009; Mutia, 2010). Adapun hasil perhitungan jumlah kematian nauplii dalam penelitian ini dapat dilihat pada Tabel 4.3 berikut:

Tabel 4.3 Hasil Uji Sitotoksik Fraksi Etilasetat Daun Bangun-Bangun (FEDBB) Sampel Kons (µg/mL) Log.

Kons

Rata- rata

kematian % kematian Fraksi etil

asetat I

10 1 3,4 34

100 2 5,6 56

1000 3 8,0 80

Fraksietil asetat II

10 1 1,8 18

100 2 7,4 74

1000 3 9,4 94

Fraksi etil asetat III

10 1 2,2 22

100 2 6,6 66

1000 3 8,8 88

Fraksi etil asetat IV

10 1 2,6 26

100 2 5,6 56

1000 3 7,8 78

Fraksi etil asetat V

10 1 2,2 22

100 2 6,6 66

1000 3 8,8 88

Uji sitotoksik terhadap Artemia salina Leach dengan fraksi etilasetat dilakukan sebanyak 5 kali pengulangan pada masing-masing konsentrasi yaitu 10 µg/mL, 100 µg/mL dan 1000 µg/mL.

Melihat ada tidaknya perbedaan dari setiap kosentrasi pada tiap larutan uji, dilakukan analisis (ANOVA) menggunakan program SPSS versi 17 terhadap

jumlah kematian nauplii. Hasil analisis dapat dilihat pada Lampiran 11, halaman 61. Mengetahui konsentrasi mana yang memiliki efek yang sama atau berbeda antara satu konsentrasi dengan konsentrasi yang lain dalam satu larutan uji dilakukan uji Post Hoc Tuckey untuk semua larutan uji. Hasil uji Post Hoc Tuckey pada fraksi etilasetat I menunjukkan bahwa jumlah kematian nauplii pada konsentrasi 10 µg/mL dan 100 µg/mL tidak signifikan. Sedangkan pada konsentrasi 1000 µg/mL jumlah kematian nauplii memiliki nilai yang signfikan (p < 005) artinya pada konsentrasi 1000 µg/mL fraksi etilasetat daun bangun-bangun dapat memberikan efek sitotoksik terhadap larva Artemia salina Leach yang lebih tinggi dibandingkan pada konsentrasi 10 µg/mL dan 100 µg/mL.

Berdasarkan hasil analisis probit hasil pengujian sitotoksik larutan uji terhadap nauplii Artemia salina Leach dapat dilihat pada Tabel 4.4 berikut:

Tabel 4.4. Hasil Pengukuran LC50 dengan Metode BSLT

No Ekstrak LC50 (µg/mL)

1. 2. 3. 4. 5.

Fraksi Etilasetat I Fraksi Etilasetat II Fraksi Etilasetat III Fraksi Etilasetat IV Fraksi Etilasetat V

49,431 42,955 51,050 72,945 130,617

Berdasarkan hasil uji sitotoksik kelima fraksi etilasetat tersebut mempunyai aktivitas toksisitas yang signifikan terdapat pada fraksi II. Hasil ini menunjukkan bahwa pada konsentrasi tersebut fraksi sudah dapat mematikan 50% larva

Artemia salina Leach. Dari masing-masing fraksi sampel yang memiliki aktivitas yang terbaik pada fraksi II dengan nilai LC50 42,955 µg/mL dengan eluen H:E (9

: 1) dan (8:2) yang diasumsikan mengandung senyawa bioaktif polar flavonoid. Berdasarkan uji fitokimia dan literatur terdahulu (Hasibuan, 2012) terhadap tanaman daun bangun-bangun (Plectranthus amboinicus (Lour.) Spreng), kandungan senyawa aktifnya adalah flavonoid yang kemungkinan merusak sel

Artemia salina Leach sehingga bersifat toksik. Mekanisme kerja senyawa flavonoid yaitu menghambat reseptor perasa pada daerah mulut larva. Hal ini mengakibatkan larva gagal mendapatkan stimulasi rasa sehingga tidak mampu mengenali makanannya. Akibatnya larva mati kelaparan. Selain itu senyawa flavonoid dapat bertindak sebagai racun dalam perut yang menyerang organ-organ pencernaan Artemia salina Leach, sehingga alat pencernaanya akan terganggu (Carballo, 2002).

BAB V

KESIMPULAN DAN SARAN

5.1 Kesimpulan

a. fraksi etilasetat daun bangun-bangun memiliki efek toksik terhadap larva

Artemia salina Leach yang ditunjukkan dengan nilai LC50 49,431 µg/mL

fraksi etilasetat daun bangun-bangun I, nilai LC50 42,955 µg/mL fraksi

etilasetat daun bangun-bangun II, nilai LC50 51,050 µg/mL fraksi etilasetat

daun bangun-bangun III, nilai LC50 72,945 µg/mL fraksi etilasetat daun

bangun-bangun IV, nilai LC50 130,617 µg/mL fraksi etilasetat daun

bangun-bangun V.

b. fraksi etilasetat daun bangun-banguun II merupakan fraksi yang paling toksik terhadap larva Artemia salina Leach karena mempunyai nilai LC50

yang paling rendah diantara fraksi yang lain yaitu 42,955 µg/mL.

5.2 Saran

Disarankan untuk penelitian selanjutnya untuk melakukan isolasi senyawa murni terhadap fraksi II ekstrak etilasetat, untuk mengetahui struktur kimia pasti yang dikandung oleh fraksi tersebut.

BAB II

TINJAUAN PUSTAKA

2.1 Uraian Daun Bangun-Bangun

Daun bangun-bangun merupakan tanaman daerah tropis yang daunnya memiliki aroma tertentu sehingga dikenal sebagai tanaman aromatik. Tanaman ini banyak ditemukan di India, Ceylon dan Afrika Selatan, memiliki bunga yang bentuknya tajam dan mengandung minyak atsiri sehingga disebut juga Coleus aromaticus (Kaliappan, et al., 2008).

2.1.1 Sistematika Tanaman

Menurut Pandey (2003), sistematika tanaman bangun-bangun adalah sebagai berikut:

Kingdom : Plantae

Divisi : Spermatophyta Kelas : Dicotyledoneae Ordo : Solanales Famili : Lamiaceae Genus : Plectranthus

Spesies : Plectranthus amboinicus (Lour.) Spreng

2.1.2 Nama Lokal

Di beberapa daerah di Indonesia, tanaman ini dikenal dengan nama yang berbeda-beda. Masyarakat Sumatera Utara menyebutkannya bangun-bangun atau torbangun: daun jinten, daun hati-hati, daun sukan. Jawa: daun ajeran (Sunda).Nusatenggara: iwak, kumu etu, bumbu jo (Depkes RI., 1989).

2.1.3 Nama Asing

Inggris: Caraway seed atau cemin. Cina: Panling moung (Hariana, 2008).

2.1.4 Morfologi Tanaman

Daun bangun-bangun memiliki ciri-ciri dauntunggal, berwarna hijau, helaian daun berbentuk bundar telur, kadang-kadang agak membundar, panjang helaian daun 3,5 cm sampai 6 cm, lebar 2,5 cm, pinggir daun beringgit atau agak berombak, tangkai daun panjang 1,5 cm sampai 3 cm,tulang daun menyirip. Pada keadaan segar helaian daun tebal, sangat berdaging dan berair, tulang daun bercabang-cabang dan menonjol sehingga membentuk bangunan menyerupai jala, permukaan atas berbingkul-bingkul, berwarna hijau muda, permukaan bawah berambut halus berwarna putih. Pada keadaan kering helaian daun tipis dan sangat berkerut, permukaan atas kasar, warna coklat sampai coklat tua, permukaan bawah berwarna lebih muda dari permukaan atas, tulang daun kurang menonjol, pada kedua permukaan terdapat rambut halus berwarna putih (Depkes RI., 1989).

2.1.5 Khasiat Tanaman

Daun bangun-bangun berkhasiat sebagai antioksidan, antitumor, antimutagenik, mengobati brokitis, asma, diare, epilepsi, demam, batuk, sakit kepala, dispepsia, batu ginjal, disentri (Rout, et al., 2010), malaria, obat cacing (Kaliappan, et al., 2008), obat luka, sariawan (Depkes RI., 1989), mencegah kanker, antivertigo, meningkatkan total volume ASI (Santosa dan Hertiani, 2005).

2.1.6 Kandungan Kimia

Daun bangun-bangun mengandungglikosida, flavonoid dan steroid/triterpenoid (Rout, et al., 2010) minyak atsiri, vitamin C, vitamin B12,

beta karotin, niasin, karvakrol, kalsium, asam-asam lemak, asam oksalat dan serat (Santosa dan Hertiani, 2005).

2.2 Ekstraksi

Ekstraksi adalah kegiatan penarikan kandungan kimia yang dapat larut sehingga terpisah dari bahan yang tidak dapat larut dengan pelarut cair. Senyawa aktif yang terdapat dalam berbagai simplisia dapat digolongkan ke dalam golongan minyak atsiri, alkohol, flavonoid dan lain-lain. Setelah diketahui senyawa aktif yang terkandung oleh simplisia, akan mempermudah pemilihan pelarut dan cara ekstraksi yang tepat. (Depkes RI., 2000).

2.3 Metode-Metode Ekstraksi

Ekstraksi dengan menggunakan pelarut terdiri dari 2 cara, yaitu: 1. Cara Dingin

Ekstraksi menggunakan pelarut dengan cara dingin terdiri dari:

i. Maserasi adalah proses penyarian simplisia dengan menggunakan pelarut dengan beberapa kali pengocokan atau pengadukan pada temperatur ruangan.

ii. Perkolasi adalah ekstraksi dengan pelarut yang selalu baru sampai sempurna yang umumnya dilakukan pada temperatur ruangan.Proses perkolasi terdiri dari tahapan pengembangan bahan, tahap maserasi antara, tahap perkolasi sebenarnya (penetesan/penampungan ekstrak), terus menerus sampai diperoleh ekstrak.

2. Cara Panas

Ekstraksi dengan menggunakan pelarut dengan cara panas terdiri dari:

i. Refluks adalah ekstraksi dengan pelarut pada temperatur titik didihnya, selama waktu tertentu dan jumlah pelarut terbatas yang relatif konstan dengan adanya pendingin balik.

ii. Sokletasi adalah ekstraksi menggunakan pelarut yang selalu baru yang umumnya dilakukan dengan alat khusus sehingga terjadi ekstraksi kontinu dengan jumlah pelarut relatif konstan dengan adanya pendingin balik. iii. Digesti adalah proses penyarian dengan pengadukan kontinu pada

temperatur yang lebih tinggi dari temperatur ruangan, yaitu secara umum dilakukan pada temperatur 40-500C.

iv. Infundasi adalah proses penyarian dengan menggunakan pelarut air pada temperatur 900C selama 15 menit.

v. Dekoktasi adalah proses penyarian dengan menggunakan pelarut air pada temperatur 900C selama 30 menit.

2.4 Kromatografi

Kromatogafi adalah suatu metode pemisahan berdasarkan perbedaan perpindahan dari komponen-komponen senyawa diantara dua fase yaitu fase diam (dapat berupa zat cair atau zat padat) dan fase gerak (dapat berupagas atau zat cair) (Depkes RI., 1995). Jika fase diam berupa zat padat maka cara tertentu dikenal sebagai kromatografi serapan, jika zat cair dikenal sebagai kromatografi partisi. Fase gerak dapat berupa zat cair dan gas maka ada empat macam sistem kromatografi (Sastrohamidjojo, 1985):

1. Fase gerak zat cair-fase diam padat: -Kromatografi lapis tipis

-Kromatografi penukar ion 2. Fase gerak gas-fase diam padat:

-Kromatografi gas padat

3. Fase gerak zat cair-fase diam zat cair: -Kromatografi cair kinerja tinggi 4. Fase gerak gas-fase diam zat cair:

-Kromatografi gas cair -Kromatografi kolom kapiler

Pemisahan dan pemurnian kandungan tumbuhan dilakukan dengan menggunakan salah satu atau gabungan dari beberapa teknik tersebut dan dapat digunakan pada skala mikro maupun makro (Harbone, 1987).

Kromatografi Lapis Tipis

Kromatografi lapis tipis ialah metode pemisahan fisikokimia. Lapisan pemisahan terdiri atas bahan berbutir-butir (fase diam), ditempatkan pada penyangga berupa plat gelas, logam atau lapisan yang cocok. Campuran yang akan dipisahkan berupa larutan yang akan ditotolkan baik berupa bercak maupun pita. Plat atau lapisan dimasukkan ke dalam bejana tertutup rapat yang berisi larutan pengembang yang cocok (fase gerak), pemisahan terjadi selama perambatan kapiler (pengembangan) (Stahl, 1985). Fase gerak akan bergerak sepanjang fase diam karena pengaruh kapiler pada pengembangan secara menaik (ascending) atau karena pengaruh gravitasi pada pengembangan secara menurun (descending) (Gandjar dan Rohman, 2007).

Cara yang paling sederhana untuk mendeteksi bercak hasil pemisahan untuk senyawa yang tak berwarna dilakukan pengamatan dengan sinar ultraviolet. Beberapa senyawa organik bersinar atau berflourosensi jika disinari sinar ultarviolet gelombang pendek (254 nm) atau gelombang panjang (366 nm). Jika dengan cara itu senyawa tidak dapat dideteksi maka harus dicoba disemprot dengan pereaksi yang membuat bercak tersebut tampak yaitu pertama tanpa pemanasan kemudian bila perlu dengan pemanasan (Gritter, et al., 1991; Stahl, 1985; Gandjar dan Rohman, 2007).

a. Fase diam (lapisan penyerap)

Pada kromatografi lapis tipis, fase diam berupa lapisan tipis yang terdiri atas bahan padat yang dilapiskan pada permukaan penyangga datar yang biasanya terbuat dari kaca, dapat pula terbuat dari plat polimer atau logam. Lapisan melekat pada permukaan dengan bantuan bahan pengikat, biasanya kalsium sulfat atau amilum (pati). Penyerap yang umum dipakai untuk kromatografi lapis tipis adalah silika gel, alumina, kieselgur dan selulosa (Gritter, et al., 1991).

Dua sifat yang penting dari fase diam adalah ukuran partikel dan homogenitasnya, karena adhesi terhadap penyokong sangat tergantungpada kedua sifat tersebut. Ukuran partikel yang biasa digunakan adalah 1-25 mikron. Partikel yang butirannya sangat kasar tidak akan memberikan hasil yang memuaskan dan salah satu cara untuk memperbaiki hasil pemisahan adalah dengan menggunakan fase diam yang butirannya lebih halus. Butiran yang halus memberikan butiran pelarut yang lebih lambat dan resolusi yang lebih baik, semakin kecil ukuran rata-rata parikel fase diam, maka semakin baik kinerja

KLT dalam hal efisiensi dan resolusinya (Sastrohamidjojo, 1985; Gandjar dan Rohman 2007).

b. Fase Gerak (Pelarut Pengembang)

Fase gerak ialah medium angkut yang terdiri atas satu atau beberapa pelarut. Jika diperlukan sistem pelarut multi komponen, harus berupa suatu campuran sesederhana mungkin yang terdiri atas maksimum tiga komponen (Stahl, 1985). Sistem yang paling sederhana ialah campuran 2 pelarut organik karena daya elusi campuran kedua pelarut mudah diatur sedemikian rupa sehingga pemisahan dapat terjadi secara optimal (Gandjar dan Rohman, 2007).

Pemisahan senyawa organik selalu menggunakan pelarut campur. Tujuan menggunakan pelarut campur adalah untuk memperoleh pemisahan senyawa yang baik. Kombinasi pelarut adalah berdasarkan atas polaritas masing-masig pelarut, sehingga dengan demikian diperoleh pengembang yang cocok. Pelarut pengembang yang akan digunakan dalam kromatografi lapis tipis antara lain: n-heksana, karbontetraklorida, benzene, kloroform, eter, etilasetat, piridian, aseton, etanol, methanol dan air (Gritter, et al., 1991).

c. Harga Rf (Retordation Factor)

Mengidentifikasi noda-noda dalam kromatografi sangat lazim menggunakan harga Rf (Retordation Factor) yang didefinisikan sebagai:

Rf=

Jarak titik pusat bercak dari titik awal

jarak garis depan pelarut dari titik awal

Harga Rf beragam mulai dari 0 sampai 1. Faktor-faktor yang mempengaruhi harga Rf (Sastrohamidjojo, 1985):

a. Struktur kimia dari senyawa yang sedang dipisahkan b. Sifat penjerap

d. Pelarut dan derajat kemurniannya

e. Derajat kejenuhan uap pengembang dalam bejana f. Teknik percobaan

g. Jumlah cuplikan yang digunakan h. Suhu

i. Kesetimbangan

2.5 Kromatografi Cair Vakum

Cara ini pertama kali dipublikasikan oleh Coll, dkk pada tahun 1977 dengan menggunakan corong Buchner kaca masir atau kolom pendek untuk mengisolasi diterpena sembrenoida dari terumbu karang Australia. Kolom kromatografi dikemas kering dalam keadaan vakum agar diperoleh kerapatan kemasan maksimum. Vakum dihentikan, pelarut yang kepolarannya rendah dituangkan ke permukaan penjerap lalu divakumkan lagi. Kolom dihisap sampai kering dan sekarang siap dipakai (Hostettmann, et al., 1995).

Sampel dilarutkan dalam pelarut yang cocok, dimasukkan langsung pada bagian atas kolom atau pada lapisan penjerap dan dihisap perlahan-lahan kedalam kemasan dengan menvakumkannya. Kolom dielusi dengan campuran pelarut yang cocok, mulai dari pelarut yang kepolarannya ditingkatkan perlahan-lahan, kolom dihisap sampai kering pada setiap pengumpulan fraksi. Oleh karena itu kromatografi cair vakum menggunakan tekanan rendah untuk meningkatkan laju aliran fase gerak (Hostettmann, et al., 1995).

2.6Spektrofotometri

(elektromagnetik) untuk mengukur konsentrasi analit yang tidak diketahui (Supratman, 2010).

Spektrofotometri Ultraviolet

Spektrum ultraviolet adalah suatu gambaran yang menyatakan hubungan antara panjang gelombang atau frekuensi serapan terhadap intensitas serapan (transmitasi atau adsorbansi) (Sastrohamidjojo, 1985). Apabila suatu molekul menyerap radiasi ultraviolet, di dalam molekul tersebut terjadi perpindahan tingkat energi elektron-elektron ikatan pada orbital molekul yang paling luar dari tingkat energi yang lebih rendah ke tingkat energi yang paling tinggi (Noerdin, 1985). Kenyataannya, spektrum UV-Vis yang merupakan korelasi antara absorbansi dan panjang gelombang bukan merupakan suatu pita spektrum. Terbentuknya pita spektrum tersebut disebabkan oleh terjadinya eksitasi elektronik lebih dari satu macam pada gugus molekul yang sangat kompleks (Gandjar dan Rohman, 2007).

2.7 Artemia salina Leach

2.7.1 Klasifikasi Artemia salina Leach

Artemia termasuk kelas Crustaceae dari family Artemidae. Organisme sejenis udang-udangan berukuran kecil (renik) ini dikenal dengan nama brine shrimp. Artemia salina Leach digunakan sebagai hewan uji dalam menentukan ketoksikan suatu ekstrak/senyawa. Artemia salina Leach telah digunakan untuk berbagai macam uji hayati, seperti uji pestisida, polutan mikotoksin, anestesi dan ketoksikan dalam air laut (Meyer, et al., 1982).

Menurut Arbiastutie dan Muflihati (2008) klasifikasi dari Artemia salina Leach adalah sebagai berikut:

Filum : Arthropoda Kelas : Crustacea Subkelas : Branchiopoda Ordo : Anostraca Famili : Artemidae Genus : Artemia

Spesies : Artemia salina Leach.

2.7.2 Siklus Pertumbuhan Artemia salina Leach

Gambar 2.1 Siklus Pertumbuhan Artemia salina Leach

Artemia berkembangbiak dengan dua cara, yakni secara partenogenesis dan biseksual. Seluruh populasi artemia pada perkembangbiakan secara parthenogenesis adalah betina. Artemia betina ini kemudian bertelur, menetas dan menghasilkan individu baru berupa embrio tanpa dibuahi oleh sperma artemia jantan. Sementara itu, populasi artemia yang berkembangbiak secara

biseksual terdiri atas jenis jantan dan betina yang melakukan perkawinan, yang kemudian menghasilkan embrio (Bachtiar, 2003).

Daur hidup artemia mengalami beberapa fase sebagai berikut:

- Fase kista (telur) adalah suatu kondisi istirahat pada hewan crustacea tingkat rendah seperti artemia. Ketika diredam ke dalam air laut, kista atau telur akan menyerap air (hidrasi). Akibatnya, di dalam kista terjadi proses metabolisme embrio yang aktif. Berselang 24-48 jam kemudian cangkang kista akan pecah dan muncul embrio yang masih terbungkus oleh selaput penetasan.

- Fase nauplius adalah larva stadium tingkat pertama dari artemia. Embrio yang masih terbungkus selaput penetasan akan berkembang menjadi organisme baru yang dapat berenang bebas di perairan. Fase ini diawali oleh pecahnya selaput penetasan yang masih membungkus embrio (nauplius). Larva ini berwarna jingga kecoklatan karena membawa kuning telur yang melekat pada tubuhnya. Panjang tubuh nauplius 0,4-0,7 mm dengan berat 15-20 µg.

- Fase dewasa adalah kondisi nauplius yang telah berkembang menjadi artemia dewasa. Ciri artemia dewasa adalah terdapat sepasang mata majemuk dan antena sensor pada kepala serta memiliki saluran pencernaan. Tubuh artemia dewasa dapat mencapai 1-2 cm dan beratnya sekitar 10 mg (Bachtiar, 2003).

2.8 Uji Sitotoksik

Dewasa ini penelitian terhadap senyawa aktif dari bahan alam sangat digalakkan, tetapi banyak bahan-bahan obat alami yang telah diisolasi, dikarakterisasi dan dipublikasikan tanpa dilanjutkan dengan uji aktivitas biologi. Aktivitas biologi tumbuhan tersebut tidak diketahui hingga bertahun-tahun. Hal ini disebabkan karena pencarian untuk senyawa yang memiliki aktivitas

farmakologi sering menggunakan uji aktivitas dengan biaya yang mahal. Hambatan biaya ini mempengaruhi kegiatan farmakologis. Oleh karena itu dibutuhkan suatu uji aktivitas secara umum sederhana, mudah dan murah namun dapat dipercaya dan dapat mendeteksi adanya senyawa yang mempunyai aktivitas biologi secara luas yang terdapat pada ekstrak, fraksi dan isolat.

Mengetahui suatu senyawa memilik potensi sebagai senyawa bioaktif hasil dari uji hayati tersebut dihitung menggunakan LC50 (Lethal Concentration 50). LC50 adalah konsentrasi zat kimia yang terdapat di udara atau air yang dapat

membunuh 50% hewan/organisme uji dalam satuan ppm (part per million). Tujuan penggunaan LC50 adalah untuk mengetahui apakah kandungan kimia

tersebut dapat membahayakan manusia (Arbiastuti dan Muflihati, 2008).

Menurut Meyer, et al., (1982), jika ekstrak mempunyai nilai LC50< 1000

µg/mL maka ekstrak tersebut bersifat toksik pada Artemia salina Leach.

Menurut Anderson (1991) tingkat nilai toksisitas LC50 berdasarkan sifat

ketoksikannya adalah sebagai berikut:

a. Nilai LC50≤ 250 µg/mL bersifat sangat toksik.

b. Nilai LC50 250-500 µg/mL bersifat toksik.

c. Nilai LC50 500-750 µg/mL bersifat sedang.

d. Nilai LC50 750-1000 µg/mL bersifat tidak toksik.

Menurut Arbiastuti dan Muflihati (2008), menyatakan pembagian nilai LC50 untuk ekstrak dan senyawa murni yang berpotensi sebagai senyawa bioaktif

adalah sebagai berikut:

a. Nilai LC50 ≤ 30 µg/mL memiliki potensi aktivitas sebagai anti tumor atau

kanker yang bersifat sitotoksik.

c. Nilai LC50 antara 200-1000 µg/mL memiliki potensi sebagai pestisida.

Semakin kecil nilai LC50 yang dimiliki ekstrak tanaman maka akan semakin

berpotensi untuk memiliki aktivitas biologi atau efek farmakologi.

Toksisitas dibedakan menjadi toksisitas akut, kronik dan sub kronik (Runia, 2008; Fanani, 2009). Suatu senyawa kimia dikatakan bersifat “racun akut’’ jika dapat menimbulkan efek racun dalam jangka waktu singkat. Suatu senyawa kimia disebut bersifat “racun kronik” jika menimbulkan efek racun dalam jangka waktu panjang (kontak yang berulang-ulang dalam jumlah yang sedikit). Ada tiga cara utama bagi senyawa kimia untuk dapat memasuki tubuh, yaitu melalui paru-paru (pernafasan), mulut dan kulit. Melalui ketiga rute tersebut, senyawa yang bersifat racun dapat masuk ke aliran darah dan kemudian terbawa ke jaringan tubuh lainnya. Perhatian utama dalam toksisitas adalah kuantitas/ dosis senyawa tersebut. Sebagian besar senyawa yang berada dalam bentuk murninya memiliki sifat racun (toksik) (Hudgson, 2004; Tridiyani, 2011). Manfaat dari pengukuran toksisitas adalah dapat digunakan sebagai skrining ekstrak tumbuhan untuk kepentingan pengobatan, menilai potensi dan efek bahaya dari pestisida baru dan menilai toksisitas yang mungkin ditimbulkan oleh sumber polusi (Hendrawati, 2009).

Beberapa uji pendahuluan untuk pencarian obat kanker yang memenuhi syarat-syarat di atas antara lain: Brine Shrimp Lethality Test (BSLT), Metode Potato Disk, Uji terhadap Lemna minor L. dan Uji terhadap cell line (McLaughlin, 1998).

2.8.1 Metode Potato Disk (menghambat tumor crown gall)

Crown gall adalah penyakit tumor pada tumbuhan yang ditimbulkan oleh strain yang spesifik dari bakteri gram negatif Agrobacterium tumefaciens.

Terdapat kesamaan antara mekanisme terjadinya tumor pada tumbuhan dan pada hewan, senyawa yang dapat menghambat pertumbuhan tumor pada tumbuhan juga dapat berfungsi sebagai antitumor pada hewan. Uji ini merupakan uji pendahuluan yang sederhana untuk menentukan senyawa antikanker dari bahan alami. Penghambatan pertumbuhan crown gall tumor pada potato disk oleh ekstrak bahan alami tersebut aktif (McLaughlin, 1998).

2.8.2 Brine Shrimp Lethality Test

Senyawa bioaktif hampir selalu toksik pada dosis tinggi. Oleh karena itu daya bunuh in vivo dari senyawa terhadap organisme hewan dapat digunakan untuk menapis ekstrak tumbuhan yang mempunyai bioaktivitas dan juga untuk memonitor fraksi bioaktif selama fraksinasi dan pemurniaan. Salah satu organisme yang sangat sesuai untuk hewan uji tersebut adalah udang laut. Brine shrimp lethality test atau yang dikenal dengan istilah BSLT sudah digunakan untuk berbagai sistem bioassay yaitu untuk menganalisa residu pestisida, mikotoksin, polutan pada air sungai, anastetik dan toksin dinoflagelata senyawa yang berupa morfin. Dalam fraksinasi yang diarahkan dengan bioassay, metode brine shrimp test telah digunakan untuk memonitor fraksi aktif mikotoksin dan antibiotik pada ekstrak jamur (Meyer, et al., 1982).

Artemia salina Leachadalah sejenis udang air asin. Telurnya merupakan makanan ikan tropis dan telur tersebut dapat dijumpai di toko-toko yang menjual ikan hias tropis dengan nama brine shrimp eggs. Telur ini dapat bertahan selama bertahun-tahun dalam kondisi kering. Setelah ditempatkan dalam larutan air laut, telur-telur akan menetas dalam waktu 48 jam dan menghasilkan sejumlah nauplii. Nauplii Artemia salina Leach ini dapat dipakai sebagai alat yang baik

untuk mendeteksi senyawa-senyawa yang memiliki aktivitas biologi (McLaughlin, 1998).

2.8.3 Uji Terhadap Lemman minor L.

Lemman minor L. adalah tumbuhan monokotilyang hidup di daerah perairan. Pada kondisi normal, kondisi ini secara langsung menghasilkan anak daun. Jika ekstrak bahan alami dapat menghambat pertumbuhan dari anak daun tumbuhan Lemman minor L., maka ekstrak bahan alami tersebut dikatakan aktif (McLaughlin, 1998).

2.8.4 Uji Terhadap Cell line

Bahan alami yang telah dinyatakan aktif pada uji pendahuluan, selanjutnya dilakukan uji pada tahap berikutnya yaitu uji terhadap cell line. Uji ini menggunakan sel-sel kanker secara in vitro, zat-zat antikanker diuji langsung terhadap sel kanker. Contoh cell line yang banyak digunakan dalam pengujian zat-zat antikanker antara lain L-1210 (leukemia pada tikus), S-256 (sarcoma pada manusia), T47D dan MCF7 (payudara), CaCo (kolon) dan Hela (serviks) (McLaughlin, 1998).

DAFTAR ISI

Halaman

JUDUL ... i

HALAMAN PENGESAHAN ... ii

KATA PENGANTAR ... iv

SURAT PERNYATAAN TIDAK PLAGIAT ... vi

ABSTRAK ... vii

ABSTRACT ... viii

DAFTAR ISI ... ix

DAFTAR TABEL ... xii

DAFTAR GAMBAR ... xiii

DAFTAR LAMPIRAN ... xiv

BAB I PENDAHULUAN ... 1

1.1 Latar Belakang ... 1

1.2 Perumusan Masalah ... 3

1.3 Hipotesis ... 3

1.4 Tujuan Penelitian ... 4

1.5 Manfaat Penelitian ... 4

1.6 Kerangka Pikir Penelitian ... 4

BAB II TINJAUAN PUSTAKA ... 5

2.1 Uraian Tumbuhan ... 5

2.1.1 Sistematika Tumbuhan... 5

2.1.2 Nama Lokal ... 5

2.1.3 Nama Asing ... 6

2.1.5 Khasiat Tanaman ... 6

2.1.6 Kandungan Kimia ... 6

2.2 Ekstraksi ... 7

2.3Metode-Metode Ekstraksi ... 7

2.4Kromatografi ... 8

2.5 Kromatografi Cair Vakum ... 12

2.6Spektrofotometri ... 12

2.7Artemia salina Leach ... 13

2.7.1 Klasifikasi Artemia salina Leach ... 13

2.7.2 Siklus Pertumbuhan Artemia salina Leach ... 14

2.8Uji Sitotoksik ... 15

2.8.1Metode Potato Disk (menghambat tumor crown gall) ... 17

2.8.2Brine Shrimp Lethality Test ... 18

2.8.3Uji Terhadap Lemman minor L... 19

2.8.4Uji Terhadap Cell line ... 19

BAB III METODE PENELITIAN ... 20

3.1 Alat ... 20

3.2 Bahan ... 21

3.3 Penyiapan Bahan Tanaman ... 21

3.6 Pemeriksaaan Karakteristik Simplisia ... 22

3.6.1 Pemeriksaan Makroskopik ... 22

3.6.2 Pemeriksaan Mikroskopik ... 22

3.6.3 Penetapan Kadar Air ... 22

3.7 Pembuatan Simplisia ... 23

3.8 Pembuatan Ekstrak Daun Bangun-Bangun ... 23

3.9 Kromatografi Lapis Tipis ... 24

3.10 Pembuatan Fraksi Ekstrak Etilasetat ... 25

3.11 Uji Sitotoksik ... 25

BAB IV HASIL DAN PEMBAHASAN ... 28

4.1 Identifikasi Tanaman ... 28

4.2 Karakteristik Simplisia ... 28

4.3 Ekstraksi ... 29

4.4 Hasil Analisis KLT ... 29

4.5 Hasil Analisis KCV ... 30

4.6 Hasil Uji Efek Sitotoksik ... 32

BAB V KESIMPULAN DAN SARAN ... 36

5.1 Kesimpulan ... 36

5.2 Saran ... ... 36

DAFTAR TABEL

Tabel Halaman

4.1 Nilai Noda Kromatogram Lapis Tipis Ekstrak ... 30 4.2 Nilai Noda Kromatogram Lapis TipisFraksi ... 32 4.3 Hasil Uji Sitotoksik Fraksi Etilasetat Daun Bangun-Bangun ... 33 4.4 Hasil Pengukuran LC50 Dengan Metode BSLT ... 34

DAFTAR GAMBAR

Gambar Halaman

1.1 Skema Kerangka Pikir Penelitian ... 4

2.1 Siklus Pertumbuhan Artemia salina Leach ... 15

4.1 Kromatogram EEDBB Sinar UV 366 nm ... 30

DAFTAR LAMPIRAN

Lampiran Halaman

1 Surat Hasil Identifikasi Tanaman ... 41

2 Tumbuhan Segar, Daun Segar, Simplisia dan Serbuk Simplisia Daun Bangun-Bangun Plectranthus amboinicus (Lour.) ... 42

3 Mikroskopik serbuk Daun Bangun-Bangun Plectranthus amboinicus (Lour.) ... 44

4 Bagan Kerja Pembuatan Simplisia ... 45

5 Perhitungan Hasil KarakteristikSimplisia ... 46

6 Bagan Ekstraksi Serbuk Simplisia secara Maserasi ... 47

7 Bagan Pembuatan Fraksinasi Etilasetat dengan Metode Kromatografi Cair Vakum (KCV) ... 48

8 Bagan Pembuatan Air Laut Buatan ... 49

9 Bagan Pengujian Sitotoksik ... 50

10 Perhitungan Persentase Kematian Nauplii ... 51