Pemanfaatan Fungi Mikoriza Arbuskula dan Fungi Pelarut Fosfat untuk Meningkatkan Pertumbuhan Bibit Glodokan (Polyalthia longifolia) pada Tanah Marginal
Lampiran 1. Rataan pertambahan tinggi dan analisis sidik ragam bibit 13 mst- 16 mst
Jenis Fungi Dosis Mikoriza Ulangan
I II III
13 mst
Kontrol 0 gr 13,5 12,9 15,6
5 gr 18,9 23,4 14,3
10 gr 18,4 21,6 12,4
15 gr 21,6 22,2 15,4
Aspergillus 0 gr 11,4 13,6 17,1
5 gr 28,4 21,3 24,2
10 gr 15,8 23,6 16
15 gr 17,2 23,8 16,8
Penicillium 0 gr 9,2 13,9 18
5 gr 20,6 16,1 20,1
10 gr 19,9 18,5 15,4
15 gr 16,1 12 16,3
Asp + Pen 0 gr 15,4 20 20,9
5 gr 8,5 18,8 15
10 gr 19,7 15,6 23,4
15 gr 12,9 22,4 23,4
14 mst
Kontrol 0 gr 15,5 13,2 16,1
5 gr 19,4 24,3 14,6
10 gr 18,9 22 14,4
15 gr 22,1 22,8 16
Aspergillus 0 gr 12,1 14,4 17,7
5 gr 29,2 20,2 25
10 gr 17,3 24,4 16,9
15 gr 17,7 24,4 17,5
Penicillium 0 gr 9,4 14,8 18,4
5 gr 21,2 16,8 20,5
10 gr 20,7 19,7 16
15 gr 16,7 13,2 17,6
Asp + Pen 0 gr 16 20 21,5
5 gr 9,3 19,3 15,7
10 gr 21 16,5 26,9
15 gr 13,5 23,1 24
15 mst
Kontrol 0 gr 16,1 13,8 16,7
(2)
15 gr 22,5 23,5 16,5 Lampiran 1 Lanjutan
Aspergillus 0 gr 12,4 12,9 18,1
5 gr 28,9 21,3 25,2
10 gr 17,7 24,8 17,4
15 gr 18,2 25,1 18,1
Penicillium 0 gr 10,6 15,2 20,2
5 gr 21,5 17,2 20,9
10 gr 21,3 20,1 16,4
15 gr 17 13,5 18
Asp + Pen 0 gr 16,4 20,7 22
5 gr 11,4 20 17,6
10 gr 22 16,8 27,9
15 gr 13,8 23,6 24,3
16 mst
Kontrol 0 gr 17,7 14,4 17,5
5 gr 20,7 25,7 19,7
10 gr 20,5 23,3 15,6
15 gr 23,1 24,1 17,2
Aspergillus 0 gr 13 13,4 18,7
5 gr 29,5 22 25,6
10 gr 18,2 25,3 18,1
15 gr 18,7 25,8 18,6
Penicillium 0 gr 11,4 15,5 22,8
5 gr 21,7 17,7 21,5
10 gr 21,7 20,5 16,9
15 gr 17,3 13,9 18,5
Asp + Pen 0 gr 16,9 22,5 22,4
5 gr 12,3 20,3 20,6
10 gr 23,5 17,2 28,4
15 gr 14,1 24,1 24,7
Analisis Sidik Ragam Tinggi 13 mst Sumber Keragaman Derajat Bebas Jumlah kuadrat Kuadrat
tengah F. Hitung F. Tabel
Perlakuan 15 392,475 26,165 1,772tn 1,99
FPF 3 47,069 15,56 1,063tn 2,9
FMA 3 114,287 38,096 2,58tn 2,9
FPF*FMA 9 231,119 25,68 1,739tn 2,19
Galat 32 472,48 14,765
Total 47 864,955
(3)
Lampiran 1 Lanjutan
Analisis Sidik Ragam Tinggi 14 mst
Sumber Keragaman Derajat Bebas Jumlah kuadrat Kuadrat
tengah F. Hitung F. Tabel
Perlakuan 15 379,243 25,283 1,629tn 1,99
FPF 3 44,864 14,955 0,963tn 2,9
FMA 3 122,459 40,82 2,63tn 2,9
FPF*FMA 9 211,92 23,547 1,517tn 2,19
Galat 32 496,687 15,521
Total 47 875,93
Keterangan : *= Berpengaruh nyata ; tn = tidak berpengaruh nyata Analisis Sidik Ragam Tinggi 15 mst
Sumber Keragaman Derajat Bebas Jumlah kuadrat Kuadrat
tengah F. Hitung F. Tabel
Perlakuan 15 366,203 24,414 1,62tn 1,99
FPF 3 39,3 13,1 0,869tn 2,9
FMA 3 136,072 45,357 3,01tn 2,9
FPF*FMA 9 190,832 21,204 1,407tn 2,19
Galat 32 482,153 15,067
Total 47 848,357
Keterangan : *= Berpengaruh nyata ; tn = tidak berpengaruh nyata Analisis Sidik Ragam Tinggi 16
mst Sumber Keragaman Derajat Bebas Jumlah kuadrat Kuadrat
tengah F. Hitung F. Tabel
Perlakuan 15 347,647 23,176 1,478tn 1,99
FPF 3 42,355 14,118 0,9tn 2,9
FMA 3 126,118 42,039 2,681tn 2,9
FPF*FMA 9 179,173 19,908 1,27tn 2,19
Galat 32 501,793 15,681
Total 47 849,44
(4)
Lampiran 2. Rataan pertambahan diameter dan analisis sidik ragam bibit 13 mst-16 mst
Jenis Fungi Dosis Mikoriza Ulangan
I II III
13 mst
Kontrol 0 gr 3,1 3,85 2,55
5 gr 2,5 3,1 3,35
10 gr 2,05 3,8 2,35
15 gr 3,15 3,15 3,05
Aspergillus 0 gr 3,1 2,3 4,1
5 gr 3,15 3,6 3
10 gr 2,7 2,65 2,8
15 gr 3,2 3,55 3,1
Penicillium 0 gr 2,6 2,55 2,65
5 gr 3,65 3,1 2,9
10 gr 2,7 3,25 2,65
15 gr 2,4 2,85 3,35
Asp + Pen 0 gr 3 3,05 3,1
5 gr 3,45 2,1 2,65
10 gr 2,65 3,15 3,15
15 gr 2,2 3,6 2,65
14 mst
Kontrol 0 gr 3,4 4,4 3,45
5 gr 3,5 3,6 4,7
10 gr 3,15 3,8 2,6
15 gr 4,1 3,45 3,35
Aspergillus 0 gr 3,8 3 4,5
5 gr 3,55 3,85 4
10 gr 4,1 3,85 3,55
15 gr 3,85 3,9 3,6
Penicillium 0 gr 3,05 2,8 3,55
5 gr 3,65 3,3 4,2
10 gr 3,25 3,85 3,35
15 gr 3,8 4,1 4,15
Asp + Pen 0 gr 3,15 3,65 3,7
5 gr 3,85 3,2 3,3
10 gr 2,65 3,85 3,7
(5)
15 mst
Kontrol 0 gr 3,85 4,75 4,3
5 gr 3,5 3,6 5,1
Lampiran 2 Lanjutan
10 gr 3,25 3,95 4,55
15 gr 4,35 3,65 3,45
Aspergillus 0 gr 4 3,3 4,8
5 gr 3,85 4,25 4,3
10 gr 4,1 3,85 3,75
15 gr 3,95 4,5 3,75
Penicillium 0 gr 3,25 3,05 4
5 gr 4,15 3,5 4,35
10 gr 3,7 4,15 3,55
15 gr 4,05 4,6 4,2
Asp + Pen 0 gr 3,25 4 4,15
5 gr 3,95 3,45 3,65
10 gr 3,25 4,4 4
15 gr 3,1 4 3,75
16 mst
Kontrol 0 gr 4,1 5,55 5,05
5 gr 3,95 4,35 5,6
10 gr 3,35 4,8 4,75
15 gr 4,55 3,85 3,75
Aspergillus 0 gr 4,05 4,55 5,7
5 gr 4,55 4,5 4,8
10 gr 4,85 2,85 4,3
15 gr 4,8 4,75 5,15
Penicillium 0 gr 3,4 3,25 4,3
5 gr 5 3,8 4,75
10 gr 3,8 4,3 4,15
15 gr 4,45 4,8 4,45
Asp + Pen 0 gr 3,55 4,3 4,8
5 gr 4,05 3,65 4,2
10 gr 4,1 4,95 5,1
15 gr 3,4 4,35 4,3
Analisis Sidik Ragam Diameter 13 mst Sumber Keragaman Derajat Bebas Jumlah kuadrat Kuadrat
tengah F. Hitung F. Tabel
Perlakuan 15 2,103 0,14 0,559tn 1,99
(6)
FPF*FMA 9 1,368 0,152 0,606tn 2,19
Galat 32 8,032 0,251
Total 47 10,135
Keterangan : *= Berpengaruh nyata ; tn = tidak berpengaruh nyata Lampiran 2 Lanjutan
Analisis Sidik Ragam Diameter 14 mst Sumber Keragaman Derajat Bebas Jumlah kuadrat Kuadrat
tengah F. Hitung F. Tabel
Perlakuan 15 3,025 0,202 0,913tn 1,99
FPF 3 0,816 0,272 1,231tn 2,9
FMA 3 0,538 0,179 0,811tn 2,9
FPF*FMA 9 1,672 0,186 0,841tn 2,19
Galat 32 7,068 0,221
Total 47 10,093
Keterangan : *= Berpengaruh nyata ; tn = tidak berpengaruh nyata Analisis Sidik Ragam Diameter 15 mst
Sumber Keragaman Derajat Bebas Jumlah kuadrat Kuadrat
tengah F. Hitung F. Tabel
Perlakuan 15 2,431 0,162 0,658tn 1,99
FPF 3 0,67 0,223 0,908tn 2,9
FMA 3 0,073 0,024 0,099tn 2,9
FPF*FMA 9 1,688 0,188 0,762tn 2,19
Galat 32 7,878 0,246
Total 47 10,309
Keterangan : *= Berpengaruh nyata ; tn = tidak berpengaruh nyata Analisis Sidik Ragam Diameter 16 mst
Sumber Keragaman Derajat Bebas Jumlah kuadrat Kuadrat
tengah F. Hitung F. Tabel
Perlakuan 15 6,556 0,437 1,187tn 1,99
FPF 3 1,174 0,391 1,063tn 2,9
FMA 3 0,161 0,054 0,145tn 2,9
FPF*FMA 9 5,222 0,58 1,576tn 2,19
Galat 32 11,782 0,368
Total 47 18,338
(7)
Lampiran 3. Rataan pertambahan jumlah daun dan analisis sidik ragam bibit 13 mst-16 mst
Jenis Fungi Dosis Mikoriza Ulangan
I II III
13 mst
Kontrol 0 gr 18 27 32
5 gr 33 26 35
10 gr 19 38 19
15 gr 30 37 27
Aspergillus 0 gr 20 22 16
5 gr 20 34 29
10 gr 22 26 31
15 gr 20 30 25
Penicillium 0 gr 19 26 19
5 gr 34 31 27
10 gr 42 27 28
15 gr 43 14 25
Asp + Pen 0 gr 22 39 31
5 gr 18 42 17
10 gr 33 24 33
15 gr 28 23 30
14 mst
Kontrol 0 gr 22 26 32
5 gr 38 26 34
10 gr 18 38 22
15 gr 32 37 28
Aspergillus 0 gr 21 21 16
5 gr 19 37 31
10 gr 23 26 31
15 gr 21 30 27
Penicillium 0 gr 21 26 14
5 gr 32 30 29
10 gr 45 27 30
15 gr 43 14 26
(8)
15 gr 28 23 30 15 mst
Kontrol 0 gr 26 26 32
5 gr 38 28 37
10 gr 18 38 23
Lampiran 3 Lanjutan
15 gr 35 37 29
Aspergillus 0 gr 20 21 16
5 gr 21 36 33
10 gr 21 26 31
15 gr 22 30 27
Penicillium 0 gr 21 26 19
5 gr 33 31 30
10 gr 46 28 31
15 gr 43 14 26
Asp + Pen 0 gr 17 40 31
5 gr 26 42 19
10 gr 36 23 34
15 gr 28 23 30
16 mst
Kontrol 0 gr 26 26 32
5 gr 41 29 42
10 gr 18 38 24
15 gr 39 38 29
Aspergillus 0 gr 21 21 16
5 gr 22 41 33
10 gr 19 29 31
15 gr 23 28 29
Penicillium 0 gr 21 31 27
5 gr 35 34 35
10 gr 53 31 31
15 gr 43 14 26
Asp + Pen 0 gr 17 41 34
5 gr 28 44 27
10 gr 39 24 39
15 gr 29 23 32
Analisis Sidik Ragam Jumlah Daun 13 mst Sumber Keragaman Derajat Bebas Jumlah kuadrat Kuadrat
tengah F. Hitung F. Tabel
Perlakuan 15 607,646 40,51 0,682tn 1,99
FPF 3 120,896 40,299 0,678tn 2,9
(9)
FPF*FMA 9 328,021 36,447 0,614tn 2,19
Galat 32 1900,667 59,396
Total 47 2508,313
Keterangan : *= Berpengaruh nyata ; tn = tidak berpengaruh nyata
Lampiran 3 Lanjutan
Analisis Sidik Ragam Jumlah Daun 14 mst Sumber Keragaman Derajat Bebas Jumlah kuadrat Kuadrat
tengah F. Hitung F. Tabel
Perlakuan 15 744,979 49,665 0,774tn 1,99
FPF 3 131,229 43,743 0,681tn 2,9
FMA 3 274,062 91,354 1,423tn 2,9
FPF*FMA 9 339,688 37,743 0,588tn 2,19
Galat 32 2054 64,188
Total 47 2798,979
Keterangan : *= Berpengaruh nyata ; tn = tidak berpengaruh nyata Analisis Sidik Ragam Jumlah Daun 15 mst
Sumber Keragaman Derajat Bebas Jumlah kuadrat Kuadrat
tengah F. Hitung F. Tabel Perlakuan 15 815,333 54,356 0,93tn 1,99
FPF 3 179,5 59,833 1,024tn 2,9
FMA 3 283,833 94,611 1,618tn 2,9
FPF*FMA 9 352 39,111 0,669tn 2,19
Galat 32 1870,667 58,458
Total 47 2686
Keterangan : *= Berpengaruh nyata ; tn = tidak berpengaruh nyata Analisis Sidik Ragam Jumlah Daun 16 mst
Sumber Keragaman Derajat Bebas Jumlah kuadrat Kuadrat
tengah F. Hitung F. Tabel
Perlakuan 15 1134,146 75,61 1,11tn 1,99
FPF 3 281,729 93,91 1,379tn 2,9
FMA 3 422,729 140,91 2,069tn 2,9
FPF*FMA 9 429,688 47,743 0,701tn 2,19
Galat 32 2179,333 68,104
Total 47 3313,479
(10)
Lampiran 4. Rataan bobot kering tanaman dan analisis sidik ragam bibit
Jenis Fungi Dosis Mikoriza Ulangan
I II III
Kontrol 0 gr 23,15 37,35 43,19
5 gr 25,25 28,77 34,10
10 gr 14,69 43,32 25,61
15 gr 27,90 32,46 23,52
Aspergillus 0 gr 23,16 20,97 21,43
5 gr 30,31 37,95 24,31
10 gr 25,87 22,83 22,64
15 gr 31,67 40,40 31,61
Penicillium 0 gr 20,53 22,42 25,44
5 gr 40,74 26,74 27,31
10 gr 43,62 25,36 26,46
15 gr 36,27 15,17 30,89
Asp + Pen 0 gr 28,36 28,40 28,07
5 gr 17,27 24,94 22,60
10 gr 36,92 33,56 24,36
15 gr 38,23 35,82 37,07
Analisis Sidik Ragam Bobot Kering Tanaman Sumber Keragaman Derajat Bebas Jumlah kuadrat Kuadrat
tengah F. Hitung F. Tabel
Perlakuan 15 985,134 65,676 1,338tn 1,99
FPF 3 37,817 12,606 0,257tn 2,9
FMA 3 150,501 50,167 1,022tn 2,9
FPF*FMA 9 796,816 88,535 1,804tn 2,19
Galat 32 1570,171 49,068
Total 47 2555,305
(11)
Lampiran 5. Rataan rasio tajuk akar dan analisis sidik ragam bibit
Jenis Fungi Dosis Mikoriza Ulangan
I II III
Kontrol 0 gr 2,50 1,73 3,19
5 gr 2,42 2,12 2,11
10 gr 2,36 2,43 2,03
15 gr 1,96 2,11 1,85
Aspergillus 0 gr 1,57 1,92 1,89
5 gr 1,71 2,79 3,03
10 gr 2,19 1,83 2,63
15 gr 2,84 3,62 2,60
Penicillium 0 gr 2,06 2,10 1,87
5 gr 1,82 2,46 2,04
10 gr 2,38 2,38 2,18
15 gr 2,19 1,45 1,73
Asp + Pen 0 gr 1,91 2,33 2,05
5 gr 1,81 2,38 2,62
10 gr 2,98 3,02 1,86
15 gr 3,28 1,78 2,96
Analisis Sidik Ragam Rasio Tajuk Akar Sumber Keragaman Derajat Bebas Jumlah kuadrat Kuadrat
tengah F. Hitung F. Tabel
Perlakuan 15 4,885 0,326 1,659tn 1,99
FPF 3 0,981 0,327 1,666tn 2,9
FMA 3 0,578 0,193 0,982tn 2,9
FPF*FMA 9 3,325 0,369 1,882tn 2,19
Galat 32 6,283 0,196
Total 47 11,168
(12)
Lampiran 6. Rataan serapan P dan analisis sidik ragam bibit
Jenis Fungi Dosis Mikoriza Ulangan
I II III
Kontrol 0 gr 4,72 7,84 8,68
5 gr 5,73 6,45 7,26
10 gr 4,17 11,39 6,63
15 gr 7,98 8,86 6,11
Aspergillus 0 gr 6,53 5,81 5,83
5 gr 8,37 9,71 6,42
10 gr 6,08 5,23 5,00
15 gr 7,60 9,33 7,18
Penicillium 0 gr 4,15 4,55 5,34
5 gr 9,61 6,10 6,09
10 gr 9,29 5,45 5,43
15 gr 8,31 3,43 6,83
Asp + Pen 0 gr 5,90 5,37 5,92
5 gr 3,64 5,21 4,79
10 gr 8,56 7,89 5,46
15 gr 8,56 8,13 7,93
Analisis Sidik Ragam Serapan P Sumber Keragaman Derajat Bebas Jumlah kuadrat Kuadrat
tengah F. Hitung F. Tabel
Perlakuan 15 61,195 4,080 1,479tn 1,99
FPF 3 6,632 2,211 0,802tn 2,9
FMA 3 16,101 5,367 1,946tn 2,9
FPF*FMA 9 38,462 4,274 1,550tn 2,19
Galat 32 88,242 2,758
Total 47 149,438
(13)
Lampiran 7. Jumlah mikroba pelarut fosfat pada 16 mst
Jenis Fungi Dosis Mikoriza Ulangan
103 104 105
Kontrol 0 gr 6 6 12
5 gr 9 24 13
10 gr 10 13 7
15 gr 15 10 15
Aspergillus 0 gr 9 7 8
5 gr 17 25 17
10 gr 10 12 9
15 gr 12 24 13
Penicillium 0 gr 17 21 25
5 gr 10 15 17
10 gr 7 10 12
15 gr 11 5 7
Asp + Pen 0 gr 8 6 7
5 gr 10 7 5
10 gr 9 6 5
15 gr 15 13 11
Lampiran 8. Rataan jumlah mikroba pelarut fosfat pada 16 mst Dosis Pupuk
FMA
Jenis Jamur
Rata-rata Kontrol Aspergillus penicillium Asp+Pen
0 gr 42,20 x 104 29,30 x 104 90,90 x 104 25,60 x 104 47,00 x 104 5 gr 51,63 x 104 65,57 x 104 62,00 x 104 19,33 x 104 49,63 x 104 10 gr 28,00 x 104 34,33 x 104 43,57 x 104 18,97 x 104 31,22 x 104 15 gr 161,0 x 104 51,73 x 104 25,37 x 104 41,50 x 104 69,90 x 104 Rata-rata 70,70 x 104 45,23 x 104 55,46 x 104 26,35x 104
(14)
Lampiran 9. Perbedaan tinggi dan diameter dengan pemberian fungi pelarut fosfat yang berbeda pada tanaman glodokan
a. Perlakuan tanpa pemberian fungi pelarut fosfat dengan beberapa tingkat dosis mikoriza pada tanaman glodokan (M0 = 0 gr ; M1 = 5 gr ;
M2 = 10 gr ; M3 = 15 gr )
b. Perlakuan dengan pemberian fungi pelarut fosfat jenis Aspergillus dengan beberapa tingkat dosis mikoriza pada tanaman glodokan (M0 = 0 gr ; M1 = 5 gr ; M2 = 10 gr ; M3 = 15 gr )
(15)
Lampiran 9. Lanjutan
c. Perlakuan dengan pemberian fungi pelarut fosfat jenis Penicillium dengan beberapa tingkat dosis mikoriza pada tanaman glodokan (M0 = 0 gr ; M1 = 5 gr ; M2 = 10 gr ; M3 = 15 gr )
d. Perlakuan dengan pemberian fungi pelarut fosfat jenis Aspergillus + Penicillium dengan beberapa tingkat dosis mikoriza pada tanaman glodokan (M0 = 0 gr ; M1 = 5 gr ; M2 = 10 gr ; M3 = 15 gr )
(16)
Lampiran 10. Perbedaan tinggi dan diameter dengan pemberian dosis mikoriza yang berbeda pada tanaman glodokan
a. Perlakuan tanpa pemberian mikoriza dengan pemberian fungi pelarut fosfat yang berbeda (H0 = tanpa fungi ; H1 = Aspergillus ; H2 = Penicillium ; H3 = Aspergillus + Penicillium) pada tanaman glodokan
b. Perlakuan pemberian mikoriza 5 gram dengan pemberian fungi pelarut fosfat yang berbeda (H0 = tanpa fungi ; H1 = Aspergillus ; H2 = Penicillium ; H3 = Aspergillus + Penicillium) pada tanaman glodokan
(17)
Lampiran 10. Lanjutan
c. Perlakuan pemberian mikoriza 10 gram dengan pemberian fungi pelarut fosfat yang berbeda (H0 = tanpa fungi ; H1 = Aspergillus ; H2 = Penicillium ; H3 = Aspergillus + Penicillium) pada tanaman glodokan
d. Perlakuan pemberian mikoriza 15 gram dengan pemberian fungi pelarut fosfat yang berbeda (H0 = tanpa fungi ; H1 = Aspergillus ; H2 = Penicillium ; H3 = Aspergillus + Penicillium) pada tanaman glodokan
(18)
Lampiran 11. Dokumentasi Penelitian
\
Menimbang mikoriza Menimbang pupuk NPK
(19)
Lampiran 11. Lanjutan
Persiapan Inokulan fungi pelarut fosfat
Persiapan media dengan fungi pelarut fosfat
(20)
DAFTAR PUSTAKA
Alkareji.2008. Pemanfaatan Mycorrhizal Helper Bacteria (MHBs) dan Fungi Mikoriza Arbuskula (FMA) untuk Meningkatkan Pertumbuhan Sengon (Paraserianthes falcataria (L.) Nielsen) di Persemaian.Skripsi. Institut Pertanian Bogor. Bogor.49 hlm.
Budi, S.W., Purwanti, S.I., Turjaman, M. 2015. Fungi Mikoriza Arbuskula dan Arang Tempurung Kelapa Mempercepat Pertumbuhan Awal Bibit Calliandra calothyrsus Meissn di Media Tanah Marginal. Jurnal Silvikultur Tropika. Hal 114 – 118.
Delvian. 2003. Keanekaragaman dan Potensi Pemanfaatan Fungi Mikoriza Arbuskula di Hutan Pantai. Disertasi Doktor.IPB. Bogor.
Elfiati, D. 2005. Peranan Mikroba Pelarut Fosfat Terhadap Pertumbuhan Tanaman. Universitas Sumatera Utara. USU Repository. Medan.
Fitriatin, B.N., Yuniarti, A., Mulyani, O., Fauziah, F.S., Tiara, M.D. 2009. Pengaruh Mikroba Pelarut Fosfat dan Pupuk Terhadap P Tersedia, Aktivitas Fosfatase, P Tanaman dan Hasil Padi Gogo (Oryza sativa. L.) Pada Ultisol. Jurnal Agrikultura 20(3) : 210-215.
Hanafiah, A.S. 1994. Mikroorganisme Pelarut P sebagai suatu alternative pengganti fungsi pupuk TSP dan Kapur dalam upaya mengatasi ketersediaan fosfat bagi tanaman. BKS-PTN Barat Bandar Lampung. Handayani, D. 2011. Potensi Aspergillus dan Penicillium Asal Serasah
Dipterocarp Sebagai Endosimbion Akar Pelarut Fosfat. Sekolah Pascasarjana Institut Pertanian Bogor. Bogor.
Hardjowigeno, S. 1993. Klasiifikasi Tanah dan Pedogenesis. Edisi Pertama Akademi Presindo. Jakarta. 130 hlm.
Haryantini, B. A dan M. Santoso. 2001. Pertumbuhan dan Hasil Cabai Merah pada Andisol yang Diberi Mikoriza, Pupuk Posfor dan Zat Pengatur Tumbuh. Biosain 1 (30): 50 – 57.
Hendra, Y. 2009. Pemanfaatan Berbagai Jenis Fungi untuk Mendekomposisi Bahan Organik Tanah Gambut dan Pertumbuhan Meranti Batu. Skripsi. Universitas Sumatera Utara. Medan. 54 hlm.
Husna, Budi R.S.W., Mansur, I., Kusmana, C., Kramadibrata, K. 2014. Fungi Mikoriza Arbuskula pada Rizosfer Pericopsis mooniana di Sulawesi Tenggara. Berita Biologi 13(3): 263-273.
(21)
Illmer, P. And F. Shinner. 1995. Solubilization of calcium phosphates solubilization mechanism. Soil biol. Biochem. 27 : 257-263.
Kormanic, P.P., Mc Graw A.C. 1982. Quantification of vesicular-arbuscular mycorrhizae in plant roots. In: Schenk NC (ed). Methods and Principles of Mycorrhizal Research. The American Phytopathological Society, St. Paul. Pp. 37-45.
Linderman, R.G. 1996. Role of VAM Fungi in Biocontrol. In Pfeleger, F.L. and R.G. Linderman (Eds.). Mycorrhizae and Plant Health. APS Press, St. Paul. P. 1-25.
Marbun, S. 2015. Aplikasi Mikroba Pelarut Fosfat dan Sumber Bahan Organik Untuk Meningkatkan Serapan P dan Pertumbuhan Tanaman Kentang (Solanum tuberosum L.) Pada Tanah Andisol Terdampak Erupsi Gunung Sinabung. Skripsi. Universitas Sumatera Utara. Medan. 48 hlm.
Medina, A., Jacobsen I., Vassilev N., Azcon R., Larsen J., 2006. Fermentation of Sugar Beet Waste by Apergillus niger Facilitates Growth and P Uptake of External Mycelium of Mixed Populations of Asbucular Mycorrhizal Fungi. Soil Biology and Chemistry 39 (2007): 485-492.
Munir, M. 1996. Tanah – Tanah Utama Indonesia. Pustaka Jaya. Jakarta.
Musfal. 2010. Potensi Cendawan Mikoriza Arbuskula Untuk Meningkatkan Hasil Tanaman Jagung. Jurnal Litbang Pertanian 29(4):154-158.
Nasution, R.M. 2014. Pemanfaatan Jamur Pelarut Fosfat dan Mikoriza untuk Meningkatkan Ketersediaan dan Serapan P Tanaman Jagung Pada Tanah Inceptisol. Skripsi. Universitas Sumatera Utara. Medan. 52 hlm.
Nyakpa, M.Y, A.M. Lubis, M.A Pulung, A.G. Amrah, Ali Munawar, Go Ban Hong. Nurhayati Hakim. 1988. Kesuburan Tanah. Universitas Lampung. Lampung.
Parhusip, S.R. 2009. Uji Efektivitas Mikoriza Arbuskula Terhadap Pertumbuhan Bibit Sengon, Akasia, dan Suren pada Tanah Marginal. Skripsi. Universitas Sumatera Utara. Medan. 58 hlm.
Pattimahu, D.V. 2004. Restorasi Lahan Kritis Pasca Tambang sesuai Kaidah Ekologi. Makalah Mata Kuliah Falsafah Sains. Sekolah Pasca Sarjana IPB. Bogor.
Pitriana, A. 1999. Pengaruh Azotobacter, Azospirillum, dan Mikroba Pelarut Fosfat Terhadap Pertumbuhan Padi IR 64 Pada Dua Tingkat Pemupukan Urea dan SP-36. Skripsi. Institut Pertanian Bogor. Bogor. 51 hlm.
(22)
Prasetyo, B.H., Suriadikarta D.A. 2006. Karateristik, Potensi, Dan Teknologi Pengelolaan Tanah Ultisol Untuk Pengembangan Pertanian Lahan Kering di Indonesia. Jurnal Litbang Pertanian 25(2): 39-47.
Prayudyaningsih, R., Sari R. 2016. Aplikasi Fungi Mikoriza Arbuskula (FMA) dan Kompos Untuk Meningkatkan Pertumbuhan Semai Jati (Tectona grandis Linn f) Pada Media Tanah Bekas Tambang Kapur. Balai Penelitian Kehutanan Makassar. Jurnal Penelitian Kehutanan Wallacea Vol. 5: 37- 46.
Puspitawati, M.D. 2013. Studi Mikroba Pelarut Fosfat Untuk Mengurangi Dosis Pupuk P Anorganik Pada Sistem Budidaya Padi Pengelolaan Tanaman Terpadu (PTT) dan System Of Rice Intensification (SRI). Tesis. Sekolah Pascasarjana IPB. Bogor.
Rasti dan Sumarno. 2008. Pemanfaatan Mikroba Penyubur Tanah sebagai Komponen Teknologi Pertanian. Iptek Tanaman Pangan.Vol 3 No.1: 41-58.
Read, D.J and J. Perez-Moreno. 2003. Mycorrhizas and nutrient cycling in ecosystems: A journey towards relevance. New Phytol. 157: 475-492. Salisbury F.B., Ross C.W. 1995. Fisiologi Tumbuhan Jilid 3. Bandung (ID):
Institut Teknologi Bandung.
Sangadji, R. 2004. Perbaikan Kualitas Inokulum Mikoriza dengan Penambahan Bahan Organik dan Pengaruhnya Terhadap Pertumbuhan Semai Jati (Tectona grandis L. f). Skripsi. Fakultas Kehutanan IPB. Bogor
Sastrahidayat IR. 2011. Rekayasa Pupuk Hayati Mikoriza dalam Meningkatkan Produksi Pertanian. Malang (ID) : UB Press.
Setiadi, Y. 2001. Peran Mikoriza Arbuskula dalam Rehabilitasi Lahan Kritis Di Indonesia. Makalah Disampaikan dalam Seminar penggunaan CMA dalam Sistem Pertanian Organik dan Rehabilitasi Lahan Kritis. 23 April 2001. Bandung.
Setiadi, Y., Karti, P.D.M.H. 2011. Respon Pertumbuhan, Produksi dan Kualitas Rumput terhadap Fungi Mikoriza Arbuskula dan Asam Humat pada Tanah Masam dengan Aluminium Tinggi. JITV Vol. 16 No.2: 105-112. Simanungkalit, R.D.M. 2001. Aplikasi Pupuk Hayati danPupuk Kimia : Suatu
Pendekatan Terpadu. Balai Penelitian Tanaman Pangan. Bogor.
Simanungkalit, R.D.M., Suriadikarta D.A., Saraswati R., Setyorini D., dan Hartatik W. 2006. Pupuk Organik Dan Pupuk Hayati. Balai Besar
(23)
Penelitian dan Pengembangan Sumber Daya Lahan Pertanian. Jawa Barat.
Simanullang, R.H. 2014. Pemanfaatan Jamur Pelarut Fosfat untuk Meningkatkan Pertumbuhan Bibit Suren (Toona sureni) Pada Tanah Ultisol. Skripsi. Universitas Sumatera Utara. Medan. 42 hlm.
Solihin, A. 2014. Morfologi Daun, Kadar Klorofil dan Stomata Glodokan (Polyalthia longifolia) Pada Daerah Dengan Tingkat Paparan Emisi Kendaraan Yang Berbeda di Yogyakarta. Skripsi. UIN Sunan Kalijaga. Yogyakarta. 43 hlm.
Smith S.E., Read D. 2008. Mycorrhizal Symbiosis. Third Edition. Academic Press, Elsevier, New York.
Strijke, D., 2005. Marginal lands in Europe - causes of decline. Basic and Applied Ecology 6: 99-106.
Sudaryono.2009. Tingkat Kesuburan Tanah Ultisol Pada Lahan Pertambangan Batubara Sangatta. Kalimantan Timur. Badan Pengkajian dan Penerapan Teknologi, Jakarta.
Suharta, N. 2010. Karateristik dan Permasalahan Tanah Marginal dari Batuan Sedimen Masam di Kalimantan. Jurnal Litbang Pertanian. Bogor.
Suwandi, Surtinah, Kamindar R. 2006. Perlakuan Mikoriza dan NPK pada Pertumbuhan Stump Jati (Tectona grandis L.f.). Info Hutan Vol. III No. 2 : 139-145.
Talanca, H. 2010. Status Cendawan Mikoriza Vesikular-Arbuskular (MVA) pada Tanaman. Balai Penelitian Serealia. Prosiding Pekan Serealia Nasional : 353- 357.
Tjitrosoepomo, G. 1993. Taksonomi Tumbuhan Spermatophyta. Gadjah Mada University Press. Yogyakarta.
Tufaila, M., Leomo, S., Alam, S. 2014. Strategi Pengelolaan Lahan Marginal : Ikhtiar Mewujudkan Pertanian yang Berkelanjutan. Unhalu Press. Kendari.
Widyastuti, S.M., Harjono, I Riastiwi. 2013. Toleransi Tanaman Peneduh Polyalthia longifolia dan Pterocarpus indicus terhadap Ganoderma sp.J. HPT Tropika. Vol 13, No 1: 19-23.
Waksman, S.A., Starkey, R.L. 1981. The Soil and The Microbe. John Wiley dan Spns, Inc. New York.
(24)
Yunisari, E. 2015. Pengaruh Inokulasi Fungi Mikoriza Arbuskula dari Lokasi Berbeda Terhadap Pertumbuhan Bibit Jabon (Anthocephalus cadamba Roxb Miq.) Hasil Kultur Jaringan. Skripsi. Institut Pertanian Bogor. Bogor. 33 hlm.
Yuwono, N.W. 2009. Membangun Kesuburan Tanah di Lahan Marginal. Jurnal Ilmu Tanah dan Lingkungan. Fakultas Pertanian UGM.Vol. 9 No 2 : 137-141.
(25)
III. BAHAN DAN METODE
3.1 Tempat dan Waktu Penelitian
Penelitian ini dilaksanakan di rumah kaca Fakultas Pertanian, Laboratorium Biologi Tanah, Fakultas Pertanian, Universitas Sumatera Utara. Penelitian ini dilakukan mulai bulan November 2015- Maret 2016.
3.2 Bahan dan Alat Penelitian A. Bahan
Bahan yang digunakan dalam penelitian ini adalah tanah ultisol yang berasal dari Arboretum USU, bibit yang digunakan adalah bibit tanaman glodokan (Polyalthia longifolia) berumur rata-rata 5 bulan yang berasal dari UD. Tani Ras . Fungi mikoriza arbuskula (FMA) yang diperoleh dari CV. Wahana Sukses Malang dengan merek dagang Mikoriza Plus, Pupuk NPK 16-16-16 sebagai pupuk dasar bibit, fungi pelarut fosfat Aspergillus sp dan Penicillium sp yang diperoleh dari Laboratorium Biologi Tanah, Fakultas Pertanian, Universitas Sumatera Utara. Bahan yang digunakan untuk pengamatan kolonisasi FMA adalah akar tanaman inang, larutan KOH 10 %, Larutan HCl 2 %, Larutan staining (trypan blue 0,05 %, asam laktat, aquadest), larutan destaining (glycerol). B. Alat
Jangka sorong digunakan untuk mengukur diameter bibit, penggaris untuk mengukur tinggi bibit, oven yang digunakan untuk mengeringkan bibit tanaman, sprayer untuk menyiram bibit, tally sheet sebagai tempat untuk mencatat data-data hasil pengamatan, spektrofotometer untuk mengukur P, mikroskop binokuler
(26)
sampel pada saat pengamatan, pinset untuk menjepit, cover glass untuk menutup kaca preparat, cangkul, ember, timbangan dan alat tulis untuk mencatat data. 3.3 Metode Penelitian
Penelitian ini menggunakan Rancangan Acak Lengkap (RAL) faktorial dengan 2 faktor dan ulangan sebanyak 3 kali, dimana faktornya adalah :
1. Faktor I adalah pemberian jamur pelarut fosfat (H), terdiri dari : H0 = tanpa pemberian jamur pelarut fosfat (kontrol)
H1 = Aspergillus H2 = Penicillium
H3 = Apergillus + Penicillium
2. Faktor II adalah pemberian dosis Mikoriza (M) yang berbeda, terdiri dari : M0 = Tanpa pemberian mikoriza (kontrol)
M1 = Penambahan mikoriza 5 gr/tanaman M2 = Penambahan mikoriza 10 gr/tanaman M3 = Penambahan mikoriza 15 gr/tanaman
Jumlah kombinasi perlakuan adalah : 4 x 4 = 16 perlakuan
Jumlah Ulangan : 3 ulangan
Jumlah tanaman seluruhnya : 48 tanaman
Percobaan dianalisis dengan sidik ragam dengan model linier sebagai berikut :
Yijk = µ + αi + βj+ αβ(ij)+ εijk Dengan :
Yijk = Pengaruh pemberian jamur pelarut fosfat (α) ke-i dan pemberian mikoriza (β) dengan dosis yang berbeda ke-j pada ulangan ke-k
(27)
µ = Nilai Tengah umum
αi = Pengaruh inokulasi jamur pelarut fosfat yng berbeda ke-i
βj = Pengaruh pemberian mikoriza dengan dosis yang berbeda ke-j
αβ(ij) = Pengaruh interaksi antara pemberian mikoriza dengan dosis yang berbeda ke-i dan pemberian jenis jamur pelarut fosfat yang berbeda ke-j
εijk = Galat pengaruh jenis pemberian jamur pelarut fosfat yang berbeda ke-i dan pemberian mikoriza dengan dosis yang berbeda ke-j pada ulangan ke-k.
Analisis statistik didasarkan pada analisis variansi pada setiap parameter dan uji lanjutannya menggunakan uji jarak berganda Duncan (DMRT) pada taraf 5 %.
3.4 Prosedur Penelitian
A. Analisis Contoh Tanah
Sebelum melakukan penelitian, terlebih dahulu dilakukan analisa awal yaitu pH, C-organik, P-tersedia tanah untuk mengetahui sifat tanah.
B. Persiapan Media Tumbuh
Tanah yang dipakai adalah tanah Ultisol yang berasal dari Arboretum USU. Tanah yang telah diambil terlebih dahulu dikering-anginkan lalu diayak dengan ayakan berukuran 2 mm. Tanah ditabur dengan pupuk NPK sebagai pupuk dasar dengan dosis 4 gram pada bagian dasar polybag. Tanah dimasukkan ke
(28)
dalam polybag yang telah disediakan dengan bobot tanah sebanyak 3 kg/polybag sesuai perlakuan.
C. Persiapan Inokulum
Isolat fungi pelarut fosfat jenis Aspergillus sp dan Penicilium sp yang telah dimurnikan, ditumbuhkan pada media Pikovskaya selama 3-5 hari. Isolat diperbanyak dengan mengambil satu ose dari media agar miring, kemudian dikulturkan ke dalam erlenmeyer 250 ml yang berisi 100 ml media cair Pikovskaya.
D. Inokulasi FMA
Inokulasi FMA dilakukan pada saat penanaman bibit ke polybag dengan meletakkan inokulum sebanyak 5 gr, 10 gr, dan 15 gr/tanaman. Teknik inokulasi yang dilakukan dengan sistem “layering technique” yaitu dengan cara meletakkan mikoriza ke dalam lubang tanam . Bibit kemudian ditanam ke media yang telah diberi mikoriza. Akar tanaman diusahakan dekat dengan FMA yang ditabur. Kemudian lubang tanam yagn telah berisi bibit ditutup dengan tanah.
E. Pemberian Fungi Pelarut Fosfat
Bibit glodokan (polyalthia longifolia) ditanam dalam polybag. Kemudian setiap bibit disiram dengan Fungi pelarut fosfat yaitu Aspergillus sp atau Penicilium sp sesuai perlakuan sebanyak 5 ml per polybag.
(29)
F. Pemeliharaan Tanaman
Pemeliharaan bibit tanaman glodokan (Polyalthia longifolia) dilakukan mulai dari penanaman bibit keadaan polybag sampai umur 16 mst. Kegiatan pemeliharaan yang dilakukan dalam mengamati bibit tanaman glodokan adalah :
a. Penyiraman
Penyiraman bibit dilakukan pada pagi dan sore hari dengan menggunakan gembor, tetapi disesuaikan dengan kondisi lapangan. Jika media masih lembab, maka tidak perlu disiram karena akan meyebabkan busuk akar. b. Penyiangan
Penyiangan dilakukan untuk menghindari persaingan antara gulma dan tanaman, maka dilakukan penyiangan. Penyiangan dilkukan secara manual dengan mencabut gulma yang berada di polybag.
G. Pengamatan Parameter
Sebelum dilakukan pengamatan parameter, dilakukan terlebih dahulu pengambilan data awal tiap parameter. Jadi data yang diperoleh pada saat pengukuran parameter dikurangi terhadap data awal. Pengamatan mulai dilakukan 2 minggu setelah tanam (2 MST), selama 16 minggu dan parameter yang diamati adalah :
1. Tinggi bibit (cm)
Tinggi bibit diukur mulai dari pangkal batang di permukaan tanah yang ditandai dengan cat putih sampai titik tumbuh terakhir. Pengukuran tinggi digunakan dengan menggunakan penggaris. Pengukuran dimulai dari dua minggu setelah penanaman dengan selang pengukuran satu minggu sekali
(30)
2. Diameter bibit (mm)
Pengukuran dilakukan dengan menggunakan jangka sorong dengan dua arah yang berlawanan dan saling tegak lurus terhadap batang kemudian diambil rata-ratanya. Pengukuran dimulai dari dua minggu setelah penanaman dengan selang pengukuran satu minggu sekali sampai akhir penelitian.
3. Bobot kering tanaman
Pengamatan bobot kering tanaman dilakukan pada akhir penelitian dengan memotong tanaman dari bagian pangkal kemudian dicuci lalu ditimbang dan dimasukkan dalam kantong kertas lalu dioven pada suhu 70 °C selama 48 jam. Pengamatan bobot kering akar tanaman juga dilakukan dengan cara yang sama yaitu bagian akar tanaman dicuci bersih lalu ditimbang dan dimasukkan dalam kantong kertas lalu dioven.
4. Rasio tajuk akar
Rasio tajuk akar diperoleh dengan cara membandingkan antara bobot kering tajuk dan bobot kering akar.
5. Serapan P
Perhitungan serapan P tanaman didapatkan dengan mengalikan jumlah berat kering total dengan kadar P tanaman. Pada serapan P ini, tanaman yang diambil pada umur 16 minggu.
6. Persentase kolonisasi akar
Persentase infeksi mikoriza dilakukan pada minggu ke 10 setelah masa tanam dan dilakukan di laboratorium biologi tanah. Pengamatan persentase akar yang terinfeksi berdasarkan bidang pandang (field of view)
(31)
mikroskop. Adanya infeksi pada akar diberi simbol (+) dan tidak adanya infeksi diberi simbol (-). Pengamatan persentase akar yang terinfeksi oleh fungi mikoriza arbuskula dilakukan dengan teknik pewarnaan akar Kormanic dan McGraw (1982) dalam Delvian (2003).
1. Contoh akar dicuci dengan air biasa untuk melepaskan semua miseium luar.
2. Bagian akar yang muda (serabut) dipotong-potong sepanjang 1 cm dan dimasukkan ke dalam botol film lalu direndam dalam larutan KOH 10 % kemudian tutup tabung tersebut dan biarkan selama 12 jam.
3. Setelah akar berwarna kuning bersih, larutan KOH 10 % dibuang dan akar dibilas dengan air selama 5-10 menit.
4. Akar diasamkan dalam HCl 2% selama 24 jam. Pada proses ini akar akan berwarna pucat atau putih. HCl 2% dibuang dan diganti dengan larutan staining (gliserol, asam laktat, dan aquades) dengan perbandingan 2:2:1 dan ditambah trypan blue sebanyak 0,05 % lalu dibiarkan 24 jam.
5. Jika terlalu pekat dapat ditambahkan larutan destaining (larutan staining tanpa trypan blue, dengan perbandinga gliserol, asam laktat, dan aquades sebesar 2:2:1) dan dibiarkan semalam.
6. Akar yang telah diberikan larutan staining kemudian disusun padagelas objek (1 gelas objek untuk 10 potong akar) kemudian diamati dengan mikroskop.
7. Jumlah akar yang terinfeksi FMA dari 10 potong akar tersebut dicatat. 8. Persentase Akar yang terinfeksi oleh FMA dihitung berdasarkan
(32)
(33)
IV. HASIL DAN PEMBAHASAN
4.1 Hasil
A. Sifat Kimia Tanah
Berdasarkan sifat kimia tanah Tanah ultisol yang berasal dari Arboretum USU menunjukkan bahwa tanah yang digunakan sebagai media tanam bibit glodokan termasuk kriteria tanah kurang subur. Hasil analisis sifat kimia tanah Ultisol disajikan pada Tabel 1.
Tabel 1. Analisis sifat kimia tanah Ultisol Arboretum USU
Parameter Satuan Kisaran Nilai Keterangan
pH (H2O) - 5,49 Masam
C-Organik % 0,61 Sangat Rendah
P-Bray II Ppm 9,49 Rendah
Keterangan : Penilaian sifat-sifat tanah didasarkan pada Kriteria Penilaian Sifat – Sifat Tanah (Mukhlis, 2007).
B. Pertambahan Tinggi Tanaman
Hasil uji sidik ragam untuk pertambahan tinggi tanaman glodokan pada 16 mst memperlihatkan bahwa interaksi antara fungi mikoriza arbuskula dan fungi pelarut fosfat berpengaruh tidak nyata terhadap pertambahan tinggi tanaman glodokan. Inokulasi fungi pelarut fosfat dan fungi mikoriza arbuskula juga berpengaruh tidak nyata terhadap pertambahan tinggi tanaman glodokan.
Tabel 2 menunjukkan bahwa rataan pertambahan tinggi tertinggi pada 16 mst terdapat pada pemberian jamur Aspergillus + Penicilium. Rataan pertambahan tinggi terendah pada 16 mst dengan pemberian jamur Penicilium.
(34)
Tabel 2. Rataan pertambahan tinggi bibit (cm) pada 16 mst
Dosis Pupuk FMA Jenis Jamur Rata-rata
Kontrol Aspergillus penicillium Asp+Pen
0 gr 16,53 15,03 16,57 20,60 17,18
5 gr 22,03 25,70 20,30 17,73 21,44
10 gr 19,80 20,53 19,70 23,03 20,77
15 gr 21,47 21,03 16,57 20,97 20,01
Rata-rata 19,96 20,57 18,29 20,58
Pada Tabel 2 menunjukkan bahwa pemberian dosis pupuk 5 gram memberikan pertambahan tinggi tertinggi pada 16 mst. Sedangkan rataan pertambahan tinggi terendah terdapat pada pemberian dosis pupuk 0 gram untuk 16 mst.
Rataan pertambahan tinggi tanaman glodokan setiap minggu dengan pemberian perlakuan jenis jamur yang berbeda disajikan pada Gambar 1. Pada Gambar 1 menunjukkan bahwa pertambahan tinggi tanaman mengalami kenaikan setiap minggunya, dimana pemberian perlakuan jamur Aspergillus + Penicilium memberikan pertumbuhan yang lebih baik dibandingkan dengan pemberian perlakuan jenis jamur lainnya.
(35)
Rataan pertambahan tinggi pada berbagai dosis pupuk mikoriza yang berbeda disajikan pada Gambar 2. Pada Gambar 2 menunjukkan bahwa rataan pertambahan tinggi pada berbagai dosis mengalami kenaikan setiap minggunya, dimana tanaman dengan pemberian pupuk 5 gram memberikan pertambahan yang lebih baik dengan dosis pupuk lainnya.
Gambar 2. Rataan pertambahan tinggi tanaman pada berbagai dosis pupuk mikoriza
C. Pertambahan Diameter Tanaman
Hasil uji sidik ragam untuk pertambahan diameter tanaman glodokan menunjukkan bahwa interaksi antara jamur pelarut fosfat dan fungi mikoriza arbuskula berpengaruh tidak nyata terhadap rataan pertambahan diameter bibit. Inokulasi fungi pelarut fosfat dan fungi mikoriza arbuskula juga berpengaruh tidak nyata terhadap pertambahan diameter tanaman glodokan.
Pada Tabel 3 menunjukkan bahwa jenis jamur Aspergillus memberikan pertambahan diameter tertinggi pada 16 mst. Rataan pertambahan diameter
(36)
terendah pada 16 mst terdapat pada pemberian perlakuan jenis jamur Penicilium. Pada Tabel 3 memperlihatkan bahwa rataan pertambahan diameter tanaman tertinggi terdapat pada pemberian dosis pupuk 5 gram pada 16 mst. Sedangkan rataan pertambahan diameter terendah pada 16 mst terdapat pada pemberian dosis pupuk 10 gram.
Tabel 3. Rataan pertambahan diameter bibit (mm) pada 16 mst
Dosis Pupuk FMA Jenis Jamur Rata-rata
Kontrol Aspergillus penicillium Asp+Pen
0 gr 4,90 4,77 3,65 4,22 4,39
5 gr 4,63 4,62 4,52 3,97 4,44
10 gr 4,30 4,00 4,08 4,72 4,28
15 gr 4,05 4,90 4,57 4,02 4,39
Rata-rata 4,47 4,57 4,21 4,23
Rataaan pertambahan diameter tanaman pada berbagai jenis jamur yang berbeda disajikan pada Gambar 3. Pada Gambar 3 menunjukkan rataan pertambahan diameter mengalami kenaikan setiap minggunya, dimana pemberian perlakuan jenis Aspergillus mengalami pertambahan diameter yang lebih tinggi dibandingkan perlakuan lainnya.
(37)
Rataaan pertambahan diameter tanaman pada berbagai dosis pupuk yang berbeda disajikan pada Gambar 4. Pada Gambar 4, menunjukkan rataan pertambahan diameter mengalami kenaikan setiap minggunya, dimana tanaman dengan pemberian perlakuan kontrol mengalami pertambahan diameter yang lebih tinggi dibandingkan perlakuan lainnya.
Gambar 4. Rataan pertambahan diameter pada berbagai dosis pupuk mikoriza D. Bobot Kering Tanaman
Hasil uji sidik ragam untuk bobot kering tanaman glodokan memperlihatkan bahwa interaksi antar jamur pelarut fosfat dan fungi mikoriza arbuskula berpengaruh tidak nyata terhadap bobot kering tanaman glodokan. Inokulasi jamur pelarut fosfat dan fungi mikoriza arbuskula berpengaruh tidak nyata terhadap bobot kering tanaman glodokan.
Pada Tabel 4 dapat dilihat, rataan bobot kering tanaman tertinggi terdapat pada tanaman dengan perlakuan kontrol yaitu sebesar 29,94 gram. Rataan bobot kering tanaman terendah terdapat pada Aspergillus yaitu sebesar 27,76 gram.
(38)
Rataan bobot kering tanaman dengan pemberian perlakuan jamur yang berbeda dapat dilihat pada Gambar 5.
Tabel 4. Rataan Bobot Kering Tanaman pada 16 mst (gram)
Dosis Pupuk FMA Jenis Jamur Rata-rata
Kontrol Aspergillus penicillium Asp+Pen
0 gr 34,56 21,85 22,80 28,28 26,87
5 gr 29,37 30,85 31,59 21,60 28,36
10 gr 27,87 23,78 31,81 31,61 28,77
15 gr 27,96 34,56 27,44 37,04 31,75
Rata-rata 29,94 27,76 28,41 29,63
Tabel 4 menunjukkan bahwa bobot kering tanaman dengan perlakuan dosis pupuk mikoriza 15 gram merupakan yang tertinggi yaitu sebesar 31,75 gram. Sedangkan bobot kering tanaman terendah dengan perlakuan dosis pupuk mikoriza 0 gram yaitu sebesar 26,87 gram. Rataan bobot kering tanaman pada berbagai dosis pupuk mikoriza dapat dilihat pada Gambar 6.
(39)
Gambar 6. Rataan bobot kering tanaman pada berbagai dosis pupuk mikoriza E. Rasio Tajuk Akar
Hasil uji sidik ragam pada rasio tajuk akar tanaman glodokan menunjukkan bahwa interaksi antara fungi pelarut fosfat dan fungi mikoriza arbuskula berpengaruh tidak nyata terhadap rasio tajuk akar. Sedangkan, inokulasi fungi pelarut fosfat dan fungi mikoriza arbuskula juga berpengaruh tidak nyata terhadap rasio tajuk akar tanaman.
Tabel 5. Rataan Rasio tajuk akar tanaman pada 16 mst Dosis Pupuk
FMA
Jenis Jamur
Rata-rata Kontrol Aspergillus penicillium Asp+Pen
0 gr 2,47 1,79 2,01 2,09 2,09
5 gr 2,21 2,51 2,11 2,27 2,28
10 gr 2,28 2,22 2,31 2,62 2,36
15 gr 1,97 3,02 1,79 2,68 2,36
(40)
Tabel 5 memperlihatkan bahwa pemberian perlakuan dengan jamur Aspergillus + Penicillium memberikan rataan rasio tajuk akar tertinggi yaitu sebesar 2,41. Rataan rasio tajuk akar terendah terdapat pada pemberian perlakuan dengan jamur Penicillium yaitu sebesar 2,05. Rataan rasio tajuk akar dengan pemberian jamur yang berbeda dapat ditunjukkan pada Gambar 7.
Pada Tabel 5, dapat dilihat bahwa pemberian perlakuan dosis pupuk mikoriza 0 gram memberikan rataan rasio tajuk akar terendah yaitu sebesar 2,09. Adapun rasio tajuk tertinggi terdapat pada pemberian perlakuan dengan dosis pupuk mikoriza 10 gram dan 15 gram yaitu sama-sama sebesar 2,36. Rataan rasio tajuk akar dengan pemberian dosis pupuk mikoriza yang berbeda dapat ditunjukkan pada Gambar 8.
(41)
Gambar 8. Rataan Rasio Tajuk Akar pada berbagai dosis pupuk mikoriza
F. Serapan P Tanaman
Hasil uji sidik ragam untuk serapan P tanaman glodokan menunjukkan bahwa interaksi antara fungi pelarut fosfat dan fungi mikoriza arbuskula serta faktor tunggal fungi pelarut fosfat dan fungi mikoriza arbuskula berpengaruh tidak nyata terhadap serapan P tanaman glodokan.
Tabel 6. Rataan Serapan P tanaman pada 16 mst (mg/polybag) Dosis Pupuk
FMA
Jenis Jamur
Rata-rata Kontrol Aspergillus penicillium Asp+Pen
0 gr 7,08 6,06 4,68 5,73 5,89
5 gr 6,48 8,17 7,27 4,55 6,62
10 gr 7,40 5,44 6,72 7,30 6,72
15 gr 7,65 8,04 6,19 8,21 7,52
Rata-rata 7,15 6,92 6,21 6,45
Hasil yang diperoleh memperlihatkan bahwa perlakuan kontrol merupakan rataan serapan P tertinggi yaitu sebesar 7,15 mg/polybag. Rataan serapan P
(42)
(Tabel 6). Rataan serapan P dengan pemberian jamur yang berbeda dapat ditunjukkan pada Gambar 9.
Gambar 9. Rataan serapan P tanaman pada berbagai jenis fungi
Pada Tabel 6 dapat dilihat, rataan serapan P dengan pemberian perlakuan dosis pupuk mikoriza 15 gram merupakan yang tertinggi yaitu sebesar 7,52 mg/polybag.Sedangkan, rataan serapan dengan pemberian perlakuan dosis terendah adalah 0 gram yaitu sebesar 5,89 mg/ polybag. Rataan serapan P pada berbagai dosis pupuk dapat dilihat pada Gambar 12.
Gambar 10. Rataan serapan P pada berbagai dosis pupuk mikoriza
(43)
G. Persentase Kolonisasi Akar
Pada Tabel 7 dapat dilihat bahwa hasil pengamatan pada akar hanya ada dua perlakuan yang ditemukan adanya asosiasi antara akar dengan fungi mikoriza arbuskula yang membentuk kolonisasi akar yaitu kombinasi perlakuan tanpa jamur pelarut fosfat dengan 5 gram pupuk mikoriza (H0/M1) dan kombinasi perlakuan jenis jamur Penicillium dengan 5 gram pupuk mikoriza (H2/M1). Tabel 7. Persentase kolonisasi fungi mikoriza arbuskula pada akar bibit Glodokan pada
16 mst
Perlakuan Persentase Kolonisasi Akar Kriteria
H0/M0 0,7 % Rendah
H0/M1 4,52 % Rendah
H0/M2 0,7 % Rendah
H0/M3 0,7 % Rendah
H1/M0 0,7 % Rendah
H1/M1 0,7 % Rendah
H1/M2 0,7 % Rendah
H1/M3 0,7 % Rendah
H2/M0 0,7 % Rendah
H2/M1 3,24 % Rendah
H2/M2 0,7 % Rendah
H2/M3 0,7 % Rendah
H3/M0 0,7 % Rendah
H3/M1 0,7 % Rendah
H3/M2 0,7 % Rendah
H3/M3 0,7 % Rendah
Keterangan : Kriteria persentase kolonisasi akar menurut Setiadi et al. (1992) Persentase kolonisasi yang paling tinggi adalah kombinasi perlakuan H0/M1 yaitu sebesar 4,52 % dan yang paling rendah yaitu sebesar 0,7 % dengan kombinasi perlakuan H0/M0, H0/M2, H0M3, H1/M0, H1/M1, H1/M2, H1/M3, H2/M0, H2/M2, H2/M3, H3/M0, H3/M1, H3/M2, H3/M3. Struktur hifa dan vesikula merupakan yang diamati sebagai hasil dari asosiasi akar dan fungi
(44)
mikoriza arbuskula yang didapati pada pengamatan menggunakan mikroskop adalah hifa, sementara vesikula tidak ada terlihat pada saat pengamatan akar. 4.2 Pembahasan
A. Sifat Kimia Tanah
Hasil analisis tanah pada Tabel 1 memperlihatkan bahwa pH tanah tergolong masam (5,49), C-organik termasuk kriteria sangat rendah (0,61 %), dan P-Bray II termasuk rendah (9,49 ppm). Berdasarkan hasil analisis sifat kimia tanah tersebut Hardjowigeno (1995) dalam Budi (2015) menyatakan bahwa tanah yang digunakan sebagai media tanam termasuk ke dalam kriteria tanah dengan status kesuburan rendah. Tanah tersebut tergolong marginal dengan ciri-ciri mempunyai pH masam hingga sangat masam, kadar C-organik sangat rendah, kandungan P rendah. Hal ini diperkuat oleh Prasetyo, et al (2006) yang menyatakan bahwa ultisol dicirikan oleh adanya akumulasi liat pada horizon bawah permukaan sehingga mengurangi daya serap air dan meningkatkan aliran permukaan dan erosi tanah. Erosi merupakan salah satu kendala fisik pada tanah ultisol dan sangat merugikan karena dapat mengurangi kesuburan tanah. Kandungan hara pada tanah ultisol umumnya rendah karena pencucian basa berlangsung intensif, sedangkan kandungan bahan organik rendah karena proses dekomposisi berjalan cepat dan sebagian terbawa erosi.
B. Pengaruh Interaksi Jamur Pelarut Fosfat dan Fungi Mikoriza Arbuskula Terhadap Pertumbuhan Tanaman
Hasil uji sidik ragam menunjukkan bahwa interaksi antara inokulasi jamur pelarut fosfat dan dosis mikoriza berpengaruh tidak nyata terhadap rataan pertambahan tinggi, rataan pertambahan diameter, bobot kering tanaman, rasio
(45)
tajuk akar, serapan P tanaman dan persentase kolonisasi akar. Hal ini terjadi diduga karena daya tahan hidupnya tergolong rendah sehingga kalah bersaing dengan mikroorganisme indegenous pada tanah yang dipakai dalam penelitian ini. Selain itu, diduga aktivitas fungi pelarut fosfat dan fungi mikoriza arbuskula tidak optimal diakibatkan oleh tidak adanya penambahan bahan organik sebagai sumber karbon untuk metabolisme mikroorganisme tersebut, sehingga diduga terjadi persaingan antara fungi pelarut fosfat dan fungi mikoriza arbuskula akan sumber karbon yang ada. Hal ini didukung oleh literatur Medina, dkk (2006) yang menyatakan bahwa interaksi antara mikoriza dan jamur tergantung pada faktor yang menguntungkan dan merugikan di sekitarnya. Aktivitas mikroba dapat memproduksi zat yang menguntungkan bagi arbuskula mikoriza namun persaingan untuk metabolit antara mikroba dengan mikoriza dapat menurunkan efektivitas keduanya.
C. Pengaruh Jenis Fungi Pelarut Fosfat Terhadap Pertumbuhan Tanaman Hasil uji sidik ragam memperlihatkan bahwa pemberian inokulasi jamur perlarut fosfat berpengaruh tidak nyata terhadap pertambahan tinggi, pertambahan diameter, bobot kering tanaman, rasio tajuk akar, dan serapan P tanaman. Namun pemberian jamur pelarut fosfat dapat meningkatkan rataan pertambahan tinggi, rataan pertambahan diameter, dan rasio tajuk akar dibandingkan tanpa pemberian jamur pelarut fosfat. Peningkatan pertumbuhan tanaman tersebut menunjukkan bahwa aktivitas fungi pelarut fosfat menghasilkan asam-asam organik yang diikuti dengan turunnya pH, sehingga terjadinya pelarutan P dan meningkatkan
(46)
sangat penting artinya dalam mengurangi pengikatan P oleh unsur penjerapnya. Hal ini didukung oleh literatur (Elfiati, 2005) yang menyatakan alternatif untuk meningkatkan efisiensi pemupukan P dan untuk mengatasi rendahnya P tersedia atau kejenuhan P dalam tanah adalah dengan memanfaatkan kelompok mikroorganisme pelarut P sebagai pupuk hayati. Mikroorganisme yang dapat melarutkan P sukar larut menjadi larut, baik dari dalam tanah maupun dari pupuk, sehingga dapat diserap tanaman.
Tanah yang digunakan sebagai media tanam bibit glodokan pada penelitian termasuk kriteria tanah yang kurang subur. Hal ini dapat dilihat dari pH tanah dengan nilai 5,49 yang termasuk kriteria masam, kandungan C-organik dengan nilai 0,61 % yang termasuk kriteria sangat rendah dan P-tersedia dengan nilai 9,49 ppm yang termasuk kriteria rendah. Waksman dan Starkey (1981) dalam Simanullang (2014) menyatakan bahwa pertumbuhan mikroorganisme pelarut fosfat sangat dipengaruhi oleh kemasaman tanah. Pada tanah masam, aktivitas mikroorganisme didominasi oleh kelompok fungi sebab pertumbuhan fungi optimum pada pH 5-5,5. Pada tanah masam, P bersenyawa dalam bentuk-bentuk Al-P, Fe-P dan Occluded-P dan mengurangi toksisitas Al3+, Fe3+, dan Mn2+ terhadap tanaman(Elfiati, 2005).
Hasil pengamatan menunjukkan bahwa pertambahan tinggi bibit glodokan (Polyalthia longifolia) dengan pemberian perlakuan dengan jamur jenis Aspergillus + Penicillium memberikan pertambahan tinggi bibit paling tinggi pada 16 mst. Sedangkan pemberian perlakuan dengan jamur jenis Aspergillus memberikan pertambahan diameter bibit paling tinggi pada 16 mst. Ini sesuai dengan hasil penelitian Mehana dan Wahid (2002) dalam Simanullang (2014)
(47)
mengemukakan bahwa kultur campuran mikroba pelarut fosfat dapat meningkatkan efektifitas pelarutan fosfat anorganik dalam tanah sehingga dapat dimanfaatkan oleh tanaman.
Hasil penelitian menunjukkan bahwa pemberian perlakuan jenis fungi yang berbeda tidak dapat meningkatkan rataan bobot kering tanaman. Hal ini diduga rendahnya daya tahan hidup inokulan fungi pelarut fosfat yang digunakan dalam penelitian ini, hal tersebut diakibatkan oleh faktor lingkungan yang tidak mendukung kemampuan hidup inokulan tersebut. Hal ini diperkuat oleh hasil penghitungan jumlah mikroba pelarut fosfat pada tanah yang dipakai setelah selesai penelitian, yaitu, didapati jumlah rata-rata mikroba pelarut fosfat 104 pada perlakuan kontrol. Di tambah lagi karena sangat rendahnya kandungan C-organik pada tanah ultisol yang digunakan dengan dibuktikan oleh hasil analisis sifat kimia tanah (Tabel 1) dan tidak adanya penambahan bahan organik sebagai sumber karbon untuk metabolisme fungi pelarut fosfat. Hal ini didukung oleh pernyataan Hanafiah (1994) yang menyatakan tanah dengan kandungan bahan organik rendah tidak dapat memberikan kondisi lingkungan yang sesuai untuk aktivitas organisme pelarut fosfat.
Hasil uji sidik ragam memperlihatkan bahwa pemberian jamur pelarut fosfat berpengaruh tidak nyata terhadap rasio tajuk akar dan serapan P pada tanaman. Namun, pemberian jamur pelarut fosfat dapat meningkatkan rasio tajuk akar tanaman. Hasil penelitian menunjukkan bahwa pemberian perlakuan dengan inokulan Aspergillus + penicillium pada bibit glodokan mengalami peningkatan paling tinggi pada rasio tajuk akar tanaman. Tinggi rendahnya serapan P tanaman
(48)
konsentrasi P dalam larutan tanah dan kemampuan tanah menyerap P. Hasil yang didapat pada penelitian ini sesuai dengan penelitian Puspitawati (2013) yang mengemukakan penambahan mikroba pelarut P mampu meningkatkan serapan hara P Gabah. Hal ini terlihat pada 50 % dosis pupuk P anorganik + mikroba pelarut P (bakteri + fungi) menghasilkan serapan hara P gabah yang lebih tinggi dibandingkan pemberian 50 % dosis pupuk P anorganik pada sistem budidaya SRI. Penggunaan mikroba pelarut P membantu meningkatkan ketersediaan P dalam tanah sehingga meningkatkan penyerapan P oleh tanaman.
D. Pengaruh Jenis Fungi Mikoriza Arbuskula Terhadap Pertumbuhan Tanaman
Hasil uji sidik ragam menunjukkan bahwa pemberian fungi mikoriza arbuskula pada berbagai dosis berpengaruh tidak nyata pada semua parameter yang diamati, yaitu : pertambahan tinggi, pertambahan diameter, bobot kering tanaman, rasio tajuk akar, serapan P tanaman, dan persentase kolonisasi akar. Menurut Sastrahidayat (2011) dalam Yunisari (2015) mengemukakan bahwa tanaman yang diberi mikoriza dapat menyerap unsur hara P lebih baik dibanding dengan tanaman yang diberi mikoriza dimana unsur P itu digunakan untuk pembelahan dan perpanjangan sel. Tetapi, hasil penelitian menunjukkan sebaliknya dimana serapan P tanaman glodokan tanpa inokulasi mikoriza lebih tinggi nilainya dibandingkan dengan bibit glodokan dengan inokulasi mikoriza. Hal ini dapat terjadi diduga karena inokulum yang diberikan kalah bersaing dengan dengan mikoriza lokal yang diakibatkan oleh proses adaptasi inokulum
(49)
yang diberikan lebih lama dibandingkan mikoriza lokalnya. Hal ini didukung oleh hasil penelitian Suwandi, dkk (2006) yang mengemukakan perlakuan dosis mikoriza terhadap pertumbuhan stump jati tidak memperlihatkan respon yang nyata, hal ini diduga bahwa mikoriza belum bersimbiosis dengan akar tanaman. Read dan Perez (2003) dalam Setiadi dan Karti (2011) menyatakan bahwa akar tanaman yang belum terinfeksi mikoriza pertumbuhannya akan lambat. Fungi mikoriza arbuskula merupakan fungi yang dapat berfungsi hanya jika telah menginfeksi akar tanaman inangnya.
Hasil parameter yang diamati menunjukkan dosis FMA 5 gram memberikan respon yang paling baik untuk pertambahan tinggi dan diameter. Adapun pada bobot kering tanaman dan rasio tajuk akar dosis FMA 15 gram memberikan respon yang paling baik dibandingkan dengan dosis yang lainnya dan kontrol. Hal ini diduga mikoriza lebih efektif meningkatkan bobot kering tanaman dan rasio tajuk akar dengan dosis 15 gram dimana semakin banyak jumlah mikoriza yang bekerja dan membantu akar tanaman dalam menyerap unsur hara di dalam tanah. Hal ini didukung oleh pernyataan Budi et al (2015) bahwa FMA berperan dalam penyediaan unsur hara bagi tanaman, kolonisasi FMA akan menyebabkan perubahan morfologi dan fisiologi akar yaitu perubahan konsentrasi hormon tumbuh, naiknya laju fotosintat dari daun ke akar sehingga terjadi peningkatan pertumbuhan tanaman secara kesuluruhan. Tanaman yang memiliki berat kering lebih besar berarti produktivitas dan perkembangan sel-sel jaringannya tinggi dan cepat. Kecenderungan meningkatnya berat kering tanaman berkaitan dengan metabolisme tanaman atau karena adanya kondisi pertumbuhan
(50)
yang lebih baik untuk berlangsungnya aktivitas metabolisme tanaman (Salisbury dan Ross, 1995 dalam Budi et al, 2015).
Hasil penelitian menunjukkan infeksi inokulum FMA pada berbagai dosis di sebagian besar tanaman glodokan tergolong pada kriteria rendah. Hasil pengamatan pada 16 kombinasi perlakuan menunjukkan infeksi akar paling tinggi dalam bentuk hifa terlihat pada kombinasi perlakuan H0/M1 (4,52 %). Hal ini dapat terjadi diduga karena daya adaptasi inokulan FMA yang dipakai tergolong rendah dan adanya persaingan untuk mendapatkan bahan organik dengan FMA lokal dan fungi pelarut fosfat yang digunakan dalam penelitian ini. Hal ini didukung dengan hasil penelitian Musfal (2010) yang menyatakan bahwa penurunan serapan P pada pemberian FMA dosis tinggi diduga berkaitan dengan kompetisi FMA itu sendiri dalam menginfeksi akar dan kemampuan akar untuk menyerap P yang ada dalam larutan tanah.
(51)
Gambar 14. Hifa fungi mikoriza arbuskula pada akar
Efektivitas mikoriza tidak sama pada setiap tanaman yang diinfeksi bahkan pada tiap parameter pertumbuhan dapat menghasilkan respon yang berbeda (Alkareji, 2008). Sangadji (2004) menyatakan bahwa karateristik pengaruh FMA dalam pengambilan dan transport nutrisi untuk pertumbuhan tanaman berbeda untuk setiap parameter, hal ini tergantung pada distribusi hifa eksternal dalam tanah, kemampuan FMA untuk membentuk infeksi diluar perkembangan sistem akar, kemampuan hifa dalam mengabsorpsi dari tanah dalam jangka waktu mekanisme transport nutrisi disepanjang hifa ke dalam akar.
(52)
V. KESIMPULAN DAN SARAN
5.1 Kesimpulan
1. Interaksi antar fungi mikoriza arbuskula dan fungi pelarut fosfat tidak berpengaruh nyata terhadap rataan pertambahan tinggi, rataan pertambahan diameter, bobot kering tanaman, rasio tajuk akar, serapan P, dan persentase kolonisasi akar.
2. Pemberian jenis fungi Aspergillus + Penicillium merupakan isolat terbaik dalam meningkatkan rataan pertambahan tinggi dan rasio tajuk akar. 3. Pemberian FMA dengan dosis 15 gram merupakan yang terbaik untuk
meningkatkan bobot kering tanaman, rasio tajuk akar, dan serapan P.
5.2 Saran
Untuk mendapatkan pertumbuhan tanaman glodokan yang lebih baik dapat dilakukan dengan pemberian fungi pelarut fosfat jenis Aspergillus + Penicillium atau dengan pemberian dosis mikoriza 15 gram.
(53)
II. TINJAUAN PUSTAKA
2.1 Morfologi Glodokan (Polyalthia longifolia)
Tanaman Polyalthia longifolia pada awalnya merupakan tanaman yang dimanfaatkan sebagai tanaman obat (Solihin, 2014). Menurut penelitian Widyastuti et al, (2013) P. longifolia lebih tahan terhadap serangan patogen busuk akar merah daripada P. indicus, maka P. longifolia merupakan salah satu jenis pohon peneduh yang dapat direkomendasikan untuk ditanam dihutan kota.
Adapun klasifikasi tanaman glodokan (Polyalthia longifolia) adalah sebagai berikut :
Kingdom : Plantae
Divisi : Spermatophyta Kelas : Dicotyledonane Ordo : Polycarpicae Famili : Annonaceae Genus : Polyalthia
Spesies : Polyalthia longifolia (Tjitrosoepomo, 1993)
2.2 Sifat Tanah Ultisol
Lahan marginal adalah lahan yang mempunyai potensi rendah sampai dengan sangat rendah untuk menghasilkan tanaman pertanian atau dapat disebut sebagai lahan yang mempunyai mutu rendah karena memiliki beberapa faktor pembatas (Tufaila et al, 2014) . Menurut Strijke (2005) menyebutkan bahwa lahan marginal dicirikan oleh penggunaan lahan yang mempunyai kelayakan ekonomi
(54)
sistem pengelolaan yang tepat guna, potensi lahan tersebut dapat ditingkatkan menjadi lebih produktif.
Ultisol dicirikan oleh adanya akumulasi liat pada horizon bawah permukaan sehingga mengurangi daya resap air dan meningkatkan aliran permukaan dan erosi tanah. Erosi merupakan salah satu kendala fisik pada tanah utisol dan sangat merugikan karena dapat mengurangi kesuburan tanah. Hal ini karena kesuburan tanah ultisol sering kali hanya ditentukan oleh kandungan bahan organik pada lapisan ini tererosi maka tanah menjadi miskin bahan organik dan hara (Prasetyo et al, 2006).
Pada umumnya tanah ultisol mempunyai potensi keracunan Al dan miskin kandungan bahan organik. Tanah ini juga miskin kandungan hara lainnya terutama P dan katio-kation dapat tertukar lainnya, Ca, Mg, Na, dan K, kadar Al tinggi, kapasitas tukar kation (KTK) rendah, dan peka terhadap erosi. Pada umumnya tanah Ultisol belum ditangani dengan baik. Dalam skala besar tanah ini dimanfaatkan untuk perkebunan kelapa sawit, karet dan hutan tanaman industri. Tetapi pada tingkat petani dengan alasan faktor ekonomi menjadikan salah satu penyebab tidak terkelolanya tanah ultisol dengan baik. Oleh karena itu harus dapat diberikan solusi berupa inovasi teknologi yang dapat meningkatkan produktivitas tanah ultisol (Sudaryono, 2009).
2.3 Fungi Mikoriza Arbuskula
Fungi mikoriza arbuskula merupakan mikroba tanah yang bersimbiosis dengan akar tanaman. Melalui simbiosis tersebut tanaman akan mempunyai daerah penyerapan akar yang lebih luas sehingga proses penyerapan unsur hara menjadi lebih efisien. Selain itu keberadaan fungi mikoriza arbuskula juga dapat
(55)
meningkatkan ketersediaan unsur hara terutama Fosfat (P) yang ketersediaannya sangat rendah pada tanah kapur, memperbaiki struktur tanah, meningkatkan serapan air serta melindungi tanaman dari patogen akar dan unsur toksik. Simbiosis antara mikoriza dengan tanaman dapat diketahui dengan adanya tingkat infeksi fungi mikoriza arbuskula pada akar tanaman. Walaupun, tingginya tingkat infeksi fungi mikoriza arbuskula tidak berhubungan dengan peningkatan pertumbuhan tanaman (Prayudyaningsih dan Sari, 2016).
Mikoriza berperan meningkatkan serapan P oleh akar tanaman. Mikoriza memiliki struktur hifa yang menjalar luas ke dalam tanah, melampaui jauh jarak yang dapat dicapai oleh rambut akar. Pada saat P berada di sekitar rambut akar, maka hifa membantu menyerap P di tempat-tempat yang tidak dapat lagi dijangkau rambut akar. Daerah akar bermikoriza tetap aktif dalam mengabsorpsi hara untuk jangka waktu yang lebih dibandingkan dengan akar yang tidak bermikoriza (Simanungkalit et al, 2006).
Vesikel merupakan struktur FMA yang berasal dari pembekakan hifa internal secara terminal dan interkalar, kebanyakan berbentuk bulat telur, dan berisi banyak senyawa lemak sehingga merupakan organ penyimpanan cadangan makanan dan pada kondisi tertentu dapat berperan sebagai spora atau alat untuk mempertahankan kehidupan cendawan. Tipe FMA vesikel memiliki fungsi yang paling menonjol dari tipe cendawan mikoriza lainnya. Hal ini dimungkinkan karena kemampuannya dalam berasosiasi dengan hampir 90 % jenis tanaman, sehingga dapat digunakan secara luas untuk meningkatkan probabilitas tanaman (Pattimahu, 2004).
(56)
Fungi mikoriza arbuskula adalah salah satu jenis mikroba tanah yang mempunyai kontribusi penting dalam kesuburan tanah dengan jalan meningkatkan kemampuan tanaman dalam penyerapan unsur hara seperti fosfat, air, dan nutrisi lainnya. Hal ini disebabkan karena kolonisasi mikoriza pada akar tanaman dapat memperluas bidang serapan akar dengan adanya hifa eksternal yang tumbuh dan berkembang melalui bulu akar. Selanjutnya miselia FMA dapat tumbuh menyebar keluar akar sekitar lebih 9 cm, dengan total panjang hifanya dapat mencapai 26-54 m/g tanah ( Talanca, 2010).
Adanya simbiosis dengan FMA telah banyak diketahui mampu memperbaiki hara tanaman inang melalui penyerapan hara dan air yang pada akhirnya akan meningkatkan pertumbuhan dan hasil tanaman. Inokulasi FMA pada cabai dapat meningkatkan serapan P (Haryantini dan Santoso, 2001) dan meningkatkan adaptasi terhadap kekeringan. Fungi mikoriza arbuskula yang menginfeksi sistem perakaran tanaman inang akan memproduksi jalinan hifa eksternal yang dapat tumbuh secara ekspansif dan menembus lapisan subsoil sehingga kapasitas akar dalam penyerapan hara dan air meningkat.
Penelitian yang dilakukan oleh Yunisari (2015) menunjukkan bahwa inokulasi mikoriza berpengaruh nyata terhadap tinggi, diameter, bobot kering tanaman, indeks mutu bibit, dan infeksi akar tanaman jabon namun tidak berpengaruh nyata terhadap nisbah pucuk akar. Dapat disimpulkan bahwa inokulasi FMA dengan dosis 10 gram dapaat meningkatkan pertumbuhan bibit jabon hasil kultur jaringan.
Pada penelitian yang dilakukan oleh Suwandi et al (2006) menunjukkan bahwa perlakuan dosis mikoriza terhadap pertumbuhan stump jati tidak
(57)
memperlihatkan respon yang nyata, hal ini diduga bahwa mikoriza belum bersimbiosis dengan akar tanaman. Akar tanaman yang belum terinfeksi mikoriza pertumbuhannya akan lambat. Kelambatan pertumbuhan salah satunya disebabkan oleh gagalnya simbiose perakaran bibit dengan fungi mikoriza arbuskula. Hal yang sama di dapati oleh Parhusip (2013) dimana penggunaan FMA tidak berpengaruh nyata terhadap rasio tajuk akar dan serapan P.
2.4 Mikroba Pelarut Fosfat
Mikroba pelarut fosfat merupakan kelompok mikroba tanah yang sering dimanfaatkan untuk rehabilitasi lahan kritis. Mikroba pelarut fosfat mampu mengekstraksi fosfat dari ikatannya dengan Al,Fe, Ca, Mg karena mikroba ini mengeluarkan asam organik yang dapat membentuk kompleks stabil dengan kation-kation pengikat fosfat di dalam tanah. Mikroba ini berupa bakteri seperti Pseudomonas, Bacillus, Mycobacterium, Micrococcus, dan fungi seperti Penicilium, Aspergillus, Fusarium dan Sclerotium. Telah banyak dilaporkan bahwa FPF mampu memperbaiki status nutrisi tanaman terutama P, dan meningkatkan resistensi tanaman terhadap kekeringan (Marbun, 2015).
Alternatif untuk meningkatkan efisiensi pemupukan P dan untuk mengatasi rendahnya P tersedia atau kejenuhan P dalam tanah adalah dengan memanfaatkan kelompok mikroorganisme pelarut P sebgai pupuk hayati. Mikroorganisme pelarut P adalah mikroorganisme yang dapat melarutkan P sukar larut menjadi larut, baik yang berasal dari dalam tanah maupun dari pupuk, sehingga dapat diserap tanaman. Penggunaan mikroba pelarut P merupakan salah satu pemecahan masalah peningkatan efisiensi pemupukan P yang aman
(58)
lingkungan, yang sekaligusdapat menghemat penggunaan pupuk P (Rasti dan Sumarno, 2008).
Mikroorganisme ini hidup terutama di sekitar perakaran tanaman, yaitu di daerah permukaan tanah sampai kedalaman 25 cm dari permukaan tanah. Keberadaan mikroorganisme ini berkaitan dengan banyaknya jumlah bahan organik yang secara langsung mempengaruhi jumlah dan aktivitas hidupnya. Akar tanaman mempengaruhi kehidupan mikroorganisme dan secara fisiologis mikroorganisme yang berada dekat dengan daerah perakaran akan lebih aktif daripada yang hidup jauh dari daerah perakaran. Keberadaan mikroorganisme pelarut fosfat dari suatu tempat ke tempat lainnya sangat beragam. Salah satu faktor yang menyebabkan keragaman tersebut adalah sifat biologisnya. Ada yang hidup pada kondisi asam, dan ada pula yang hidup pada kondisi netral dan basa, ada yang hipofilik, mesofilik, dan termofilik, ada yang hidup sebagai aerob dan ada yang anaerob, dan beberapa sifat lain yang bervariasi. Masing-masing mikroorganisme memiliki sifat-sifat khusus dan kondisi lingkungan optimal yang berbeda-beda yang mempengaruhi efektivitasnya melarutkan fosfat (Simanungkalit et al, 2006).
Menurut Schinner dan Ilmer (1995) dalam Pitriana (1999) Terdapat dua mekanisme penting dalam pelarutan fosfat oleh mikroba pelarut fosfat yang berhasil diamati :
1. Mikroba pelarut fosfat menghasilkan asam organik
Aspergillus niger, Penicillium simplicissimum, Pseudomonas sp (P/18/89) dan Penicillium aurantiogriseum sangat efektif dalam melarutkan AlPO4 yang sukar larut. Aspergillus niger menghasilkan sitrat, oksalat, dan glukonat,
(59)
sedangkan spesies lain mampu menghasilkan beberapa asam organik yang lain. Penicilium aurantiogriseum dan Pseudomonas sp (P/18/89) memiliki kemampuna yang tinggi dalam melarutkan kalsium-fosfat inorganik (hydroxylapatitedan brushite).
2. Pelarutan fosfat tanpa memproduksi asam
Mekanisme ini terjadi melalui pelepasan proton yang menyertai respirasi atau asimilasi NH4.
Penelitian yang dilakukan oleh Simanullang (2014) menunjukkan bahwa penggunaan jamur perlarut fosfat jenis Aspergillus+Penicillium pada tanaman suren merupakan isolat terbaik terhadap rataan pertumbuhan tinggi, diameter, bobot kering tanaman, rasio tajuk akar, dan serapan P. Pada penelitian Hendra (2009) menunjukkan bahwa fungi Aspergillus sp memberikan pengaruh yang besar terhadap pertumbuhan tinggi tanaman meranti batu (Shorea platyclados) dan luas daun sebesar 67,54 cm2.
Penelitian Fitriatin et al (2009) menunjukkan bahwa inokulasi campuran Pseudomonas sp dan Penicillium sp mampu meningkatkan fosfatase, konsentrasi P tajuk hingga 19, 23 % dan bobot gabah kering giling (GKG) padi gogo hingga 29,03 %.
(60)
I. PENDAHULUAN
1.1 Latar Belakang
Lahan marginal dapat dilihat dari ciri tanah dengan kondisi seperti penurunan status hara dan aktifitas biologi tanah serta kandungan bahan organik. Lahan dengan kapasitas menahan air yang sangat rendah, lahan yang mengalami kerusakan dan kehilangan fungsi hidrologis maupun ekonomi yang diakibatkan oleh erosi air atau angin atau telah terjadi salinitas dan pencemaran yang hebat (Suharta, 2010). Tanah marginal merupakan tanah yang memiliki mutu rendah karena mempunyai beberapa faktor pembatas, diantaranya : a) ketersediaan hara rendah, b) keasaman lebih tinggi, c) kandungan bahan organik rendah, d) tingkat erosivitas tinggi, dan e) jika keasaman terlalu rendah mempunyai tingkat keracunan tinggi. Keadaan tanah yang demikian akan menyebabkan pertumbuhan tanaman tidak optimal, sehingga diperlukan perlakuan-perlakuan khusus agar tanaman dapat tumbuh dengan baik dan adaptif terhadap kondisi lapangan (Yuwono, 2009).
Ditinjau dari luasnya, Ultisol sebagai salah satu lahan kering marjinal berpotensi besar untuk dikembangkan sebagai daerah pertanian dengan kendala berupa rendahnya kesuburan tanah seperti kemasaman tanah yang tinggi, pH rata-rata <4,50. Kejenuhan Al tinggi, kandungan hara makro terutama P, K, Ca, dan Mg rendah, kandungan bahan organik yang rendah, kelarutan Fe dan Mn yang cukup tinggi yang akan bersifat racun, dapat menyebabkan unsur Fosfor (P) kurang tersedia bagi tanaman sering menunjukkan kekurangan unsur P (Nyakpa et al., 1988).
(61)
Proses yang mempengaruhi pembentukan Ultisol adalah proses hancuran iklim (pelapukan) kimia yang sangat intensif. Penghancuran yang sangat intensif pada tanah ultisol menyebabkan ultisol mempunyai kejenuhan basa rendah. Selain itu ultisol mempunyai kendala pada kemasaman tanah, KTK yang rendah yaitu kurang dari 24 me/100 g tanah, kandungan nitrogen rendah, fosfor dan kalium rendah serta tingginya kelarutan Al, Fe, dan Mn. Tingginya kelarutan Al, Fe, dan Mn menyebabkan P pada tanah terfiksasi,akibat terjadinya fiksasi maka P pada tanah tidak menjadi tidak tersedia (Munir, 1996).
Alternatif untuk meningkatkan efisiensi pemupukan P dan untuk mengatasi rendahnya P tersedia atau kejenuhan P dalam tanah adalah memanfaatkan kelompok mikroorganisme pelarut P sebagai pupuk hayati ( Rasti dan Sumarno, 2008). Penggunaan mikroba pelarut P sebagai pupuk hayati mempunyai keunggulan antara lain hemat energi, tidak mencemari lingkungan, mampu membantu meningkatkan kelarutan P yang terjerap, menghalangi terjerapnya P oleh unsur-unsur penjerap dan mengurangi toksitas Al3+, Fe3+, dan Mn2+ terhadap tanaman pada tanah masam (Elfiati, 2005).
Berdasarkan hasil penelitian yang ada sampai sekarang, jamur mikoriza berpotensi memfasilitasi penyediaan berbagai unsur hara bagi tanaman terutama P. Perbaikan pertumbuhan dan kenaikan hasil berbagai tanaman berkaitan dengan perbaikan nutrisi P tanaman. Di samping sebagai fasilitator penyerapan hara, jamur mikoriza juga berpotensi sebagai pengendali hayati ( Simanungkalit, 2001).
Beberapa hasil penelitian menunjukkan bahwa mikoriza dapat meningkatkan toleransi tanaman terhadap kekeringan. Perbaikan toleransi
(62)
konduktivitas hidraulik, laju transpirasi yang lebih kecil per satuan luas, adanya ekstraksi air dari tanah ke potensi yang lebih rendah, pemulihan tanaman yang lebih cepat dari stres air, dan adanya nutrisi P tanaman yang lebih baik (Simanungkalit, 2001).
1.2 Tujuan Penelitan
Penelitian ini bertujuan untuk mengetahui pengaruh pemberian fungi mikoriza arbuskula (FMA) dan fungi pelarut fosfat (FPF) terhadap pertumbuhan bibit glodokan (Polyalthia longifolia).
1.3 Hipotesis Penelitian
1. Interaksi antara fungi mikoriza arbuskula dan fungi pelarut fosfat yang berbeda dapat meningkatkan pertumbuhan bibit glodokan pada tanah marginal.
2. Pemberian fungi mikoriza arbuskula pada dosis yang berbeda memberikan perbedan pertumbuhan glodokan pada tanah marginal.
3. Pemberian jenis fungi pelarut fosfat yang berbeda memberikan perbedaan pertumbuhan bibit glodokan pada tanah marginal.
1.4 Manfaat Penelitian
Penelitian ini diharapkan dapat memberikan informasi kepada masyarakat tentang pemanfaatan fungi mikoriza arbuskula dan fungi pelarut fosfat dalam meningkatkan pertumbuhan bibit glodokan (Polyalthia longifolia) pada tanah marginal.
(63)
RISTON SITINDAON. Utilization of Arbuscular Mycorrhizal Fungi and Phosphate Solubilizing Fungi that Increasing the Growth ofGlodokan (Polyalthia longifolia)seeds on Maginal Land. Under academic supervision of DENI ELFIATI and DELVIAN.
The objective of this research was to know the effect of arbuscular mycorrhizal fungi (AMF)and phosphate solubilizing fungi (PSF)on the growth of Polyalthia longifolia (glodokan) seeds. The research was conducted in the green house of the Faculty of Agriculture, University of Sumatera Utara. This research used a factorial completely randomized design with 2 factors that mycorrhizal dosage (0 g/seed, 5 g/ seed, 10 g/ seed, 15 g/ seed) and phosphate solubilizing fungi (control, Aspergillus, Penicilium, and Aspergillus+Penicillium). Parameters that observed were plant height, stem diameter, leaves number, total dry weight, root crown ratio, root colonization percentage, and P absorption in the canopy.
The result showed that the interaction between arbuscular mycorrhizal fungi (AMF)and phosphate solubilizing fungi (PSF) did not significantly affect to the all parameters measured. Inoculation of Aspergillus
Key word: Arbuscular Mycorrhizal Fungi, Phospate solubilizing Fungi,Marginal Land
(64)
RISTON SITINDAON. Pemanfaatan Fungi Mikoriza Arbuskula dan Fungi Pelarut Fosfat untuk Meningkatkan Pertumbuhan Bibit Glodokan (Polyalthia longifolia) pada Tanah Marginal. Dibimbing oleh DENI ELFIATI dan DELVIAN.
Penelitian ini bertujuan untuk mengetahui pengaruh pemberian fungi mikoriza arbuskula (FMA) dan fungi pelarut fosfat (FPF) terhadap pertumbuhan bibit glodokan (Polyalthia longifolia). Penelitian ini dilaksanakan di rumah kaca Fakultas Pertanian Universitas Sumatera Utara Medan. Penelitian ini menggunakan rancangan acak lengkap faktorial dengan 2 faktor yaitu dosis mikoriza (0 g/bibit, 5 g/bibit, 10 g/bibit, 15 g/bibit) dan Fungi pelarut fosfat (kontrol, Aspergillus, Penicillium, dan Aspergillus + Penicillium). Parameter yang diamati adalah tinggi tanaman,diameter batang, jumlah daun, bobot kering tanaman, rasio tajuk akar, persentase kolonisasi akar, dan serapan P pada tajuk.
Hasil penelitian menunjukkan bahwa interaksi antara fungi mikoriza arbuskula (FMA) dan fungi pelarut fosfat (FPF) tidak berpengaruh nyata terhadap semua parameter yang diamati. Pemberian jenis fungi Aspergillus + Penicillium merupakan isolat terbaik dalam meningkatkan rataan pertambahan tinggi dan rasio tajuk akar. Pemberian FMA dengan dosis 15 gram merupakan yang terbaik untuk meningkatkan bobot kering tanaman, rasio tajuk akar, dan serapan P. Kata kunci: Fungi Mikoriza Arbuskula, Fungi Pelarut Fosfat, Tanah Marginal
(65)
PERTUMBUHAN BIBIT GLODOKAN
(Polyalthia longifolia) PADA TANAH MARGINAL
HASIL PENELITIAN
Oleh :
RISTON SITINDAON 101201107/BUDIDAYA HUTAN
PROGRAM STUDI KEHUTANAN
FAKULTAS KEHUTANAN
UNIVERSITAS SUMATERA UTARA
(66)
PERTUMBUHAN BIBIT GLODOKAN
(Polyalthia longifolia) PADA TANAH MARGINAL
SKRIPSI
Oleh :
RISTON SITINDAON 101201107/BUDIDAYA HUTAN
Skripsi sebagai salah satu syarat untuk memperoleh gelar
Sarjana Kehutanan pada Program Studi Kehutanan Fakultas Pertanian Universitas Sumatera Utara
PROGRAM STUDI KEHUTANAN
FAKULTAS KEHUTANAN
UNIVERSITAS SUMATERA UTARA
MEDAN
2016
(67)
Judul Penelitian : Pemanfaatan Fungi Mikoriza Arbuskula dan Fungi Pelarut Fosfat untuk Meningkatkan Pertumbuhan Bibit Glodokan (Polyalthia longifolia) pada Tanah Marginal
Nama : Riston Sitindaon
NIM : 101201107
Minat : Budidaya Hutan
Program Studi : Kehutanan
Disetujui oleh, Komisi Pembimbing
Dr. Deni Elfiati, S.P, M.P. Dr. Delvian, S.P, M.P
Ketua Anggota
Mengetahui,
Siti Latifah S.Hut, M.Si, Ph.D Ketua Program Studi Kehutanan
(1)
RIWAYAT HIDUP
Penulis dilahirkan di Berastagi, Kab. Karo pada tanggal 1 Juli 1991 dari ayahanda Tulusman Sitindaon dan Ibunda Elsina Br Marpaung. Penulis merupakan anak pertama dari lima bersaudara.
Penulis menyelesaikan pendidikan Sekolah Dasar (SD) di SD Methodist Berastagi dan lulus pada tahun 2003 dan melanjutkan pendidikan di SMP Negeri 1 Berastagi dan lulus tahun 2006. Kemudian penulis melanjutkan Pendidikan di SMA Negeri 1 Kabanjahe dan lulus pada tahun 2009.
Pada tahun 2010 penulis mengikuti UMB – PTN dan diterima di Program Studi Kehutanan, Fakultas Pertanian, Universitas Sumatera Utara. Di masa perkuliahan penulis aktif di organisasi kemahasiswaan. Penulis pernah menjabat sebagai Kepala Divisi Inventarisasi HIMAS-USU Periode Kepengurusan 2012/2013 dan menjadi Ketua Umum HIMAS-USU Periode Kepengurusan 2014/2015.
Penulis mengikuti kegiatan Praktek Pengenalan Ekosistem Hutan di TAHURA Bukit Barisan pada tahun 2012. Penulis melaksanakan praktek kerja lapangan (PKL) di PT. Suka Jaya Makmur di Kalimantan Barat dari tanggal 30 Januari 2014 – 16 Maret 2014.
Penulis melaksanakan penelitian dari bulan November 2015 – Maret 2016 dengan judul “Pemanfaatan Fungi Mikoriza Arbuskula dan Fungi Pelarut Fosfat untuk Meningkatkan Pertumbuhan Bibit Glodokan (Polyalthia longifolia) pada Tanah Marginal dibawah bimbingan Ibu Dr. Deni Elfiati, SP., MP dan Bapak Dr.
(2)
KATA PENGANTAR
Puji dan syukur penulis panjatkan kehadirat Tuhan Yang Maha Esa, karena kasih dan berkatNya penulis dapat menyelesaikan skripsi yang berjudul “Pemanfaatan Fungi Mikoriza Arbuskula dan Fungi Pelarut Fosfat untuk Meningkatkan Pertumbuhan Bibit Glodokan (Polyalthia longifolia) pada Tanah Marginal ” ini dengan baik.
Pada kesempatan ini penulis ingin mengucapkan terima kasih sebesar-besarnya kepada :
1.
Ibu Dr. Deni Elfiati, S.P.,M.P sebagai ketua komisi pembimbing penulis dan kepada Bapak Dr. Delvian S.P., M.P sebagai anggota komisi pembimbing yang telah membimbing dan memberikan saran dalam penulisan skripsi ini.2.
Orangtua tercinta, yang telah memberikan motivasi, doa, saran, dan segala sesuatu yang penulis butuhkan dari awal kuliah sampai skripsi ini selesai. Akhir kata, penulis berharap skripsi dapat memberikan manfaat sebagai referensi penelitian selanjutnya.(3)
DAFTAR ISI
Halaman
ABSTRACT ... i
ABSTRAK ... ii
RIWAYAT HIDUP ... iii
KATA PENGANTAR ... iv
DAFTAR ISI ... v
DAFTAR TABEL ... vii
DAFTAR GAMBAR ... viii
I. PENDAHULUAN 1.1 Latar Belakang ... 1
1.2 Tujuan Penelitian ... 3
1.3 Hipotesis Penelitian ... 3
1.4 Manfaat Penelitian ... 3
II. TINJAUAN PUSTAKA 2.1 Morfologi Glodokan (Polyalthia longifolia) ... 4
2.2 Sifat Tanah Ultisol ... 4
2.3 Fungi Mikoriza Arbuskula ... 5
2.4 Mikroba Pelarut Fosfat ... 8
III. BAHAN DAN METODE 3.1 Waktu dan Tempat Penelitian ... 11
3.2 Bahan dan Alat Penelitian ... 11
3.3 Metode Penelitian ... 12
3.4 Prosedur Penelitian ... 13
A. Analisis Contoh Tanah... 13
B. Persiapan Media Tumbuh ... 13
C. Persiapan Inokulum... 14
D. Inokulasi FMA ... 14
E. Pemberian Fungi Pelarut Fosfat ... 14
F. Pemeliharaan Tanaman ... 15
3.5 Pengamatan Parameter ... 15
IV. HASIL DAN PEMBAHASAN 4.1 Hasil ... 18
A. Sifat Kimia Tanah ... 18
(4)
Halaman
E. Rasio Tajuk Akar ... 24
F. Serapan P Tanaman ... 26
G. Persentase Kolonisasi Akar ... 28
4.2 Pembahasan ... 29
A. Sifat Kimia Tanah ... 29
B. Pengaruh Interaksi Fungi Pelarut Fosfat dan Fungi Mikoriza Arbuskula Terhadap Pertumbuhan Tanaman ... 29
C. Pengaruh Jenis Fungi Pelarut Fosfat Terhadap Pertumbuhan Tanaman ... 30
D. Pengaruh Jenis Fungi Mikoriza Arbuskula Terhadap Pertumbuhan Tanaman ... 33
V. KESIMPULAN DAN SARAN 5.1 Kesimpulan ... 37
(5)
DAFTAR TABEL
No Halaman
1. Analisis sifat kimia tanah Ultisol Arboretum USU ... 18
2. Rataan pertambahan tinggi bibit (cm) pada 16 mst ... 19
3. Rataan pertambahan diameter (mm) pada 16 mst ... 21
4. Rataan bobot kering tanaman pada 16 mst (gram)... 23
5. Rataan rasio tajuk akar tanaman pada 16 mst ... 24
6. Rataan serapan P tanaman pada 16 mst (mg/polybag)... 26
(6)
DAFTAR GAMBAR
No Halaman 1. Rataan pertambahan tinggi tanaman pada berbagai jenis fungi pelarut
fosfat ... 19
2. Rataan pertambahan tinggi tanaman pada berbagai dosis pupuk mikoriza ... 20
3. Rataan pertambahan diameter tanaman pada berbagai jenis fungi pelarut fosfat ... 21
4. Rataan pertambahan diameter tanaman pada berbagai dosis pupuk mikoriza ... 22
5. Rataan Bobot kering tanaman pada berbagai jenis fungi pelarut fosfat .... 23
6. Rataan bobot kering tanaman pada berbagai dosis pupuk mikoriza ... 24
7. Rataan Rasio Tajuk Akar pada berbagai jenis fungi ... 25
8. Rataan Rasio Tajuk Akar pada berbagai dosis pupuk mikoriza ... 26
9. Rataan serapan P tanaman pada berbagai jenis fungi ... 27
10.Rataan serapan P pada berbagai dosis pupuk mikoriza ... 27
11.Akar tanpa kolonisasi FMA ... 35