pemberi warna masakan, dan minuman serta digunakan sebagai bumbu dapur Sudarsono dkk., 1996.
Akar kunyit Curcuma domestica berkhasiat melancarkan peredaran darah, antiinflamasi, antibakteri, melancarkan pengeluaran empedu, antipiretik dan
ikterik hepatitis Syukur, 2005.
d. Kandungan kimia akar kunyit Zat warna curcuminoid suatu senyawa diarylheptanoide 3-4 terdiri dari
curcumin, dihydrocurcumin, desmethoxy curcumin dan bisdesmethoxy-curcumin Sudarsono dkk., 1996.
e. Sifat Akar kunyit mempunyai bau khas aromatik, rasa agak pahit, agak pedas
dan dapat bertindak sebagai astringensia Prawiro, 1977. Astringensia merupakan zat yang bekerja lokal yaitu dengan mengkoagulasi protein tetapi demikian kecil
daya penetrasinya sehingga hanya permukaan sel yang dipengaruhi. Serbuk akar kunyit menberikan zat warna yang berwarna kuning jika dilarutkan didalam air.
Serbuk akar kunyit juga telah lama digunakan secara tradisional terutama oleh kaum India sebagai zat warna di kulit. Selain itu, akar kunyit telah digunakan
berabad-abad sebagai pewarna dan sebagai komponen pewarna makanan seperti bubuk kari dan lain-lain Sudarsono dkk., 1996.
2.2. Teknik Pewarnaan
Pewarnaan adalah proses pemberian warna pada jaringan yang telah dipotong sehingga unsur jaringan menjadi kontras dan dapat dikenalidiamati
dengan mikroskop. Proses timbulnya warna terkait dengan terjadinya ikatan antara molekul tertentu yang terdapat pada daerah dan struktur jaringan yang
tertentu. Sinar dengan panjang gelombang tertentu yang terdapat dalam sinar yang berasal dari cahaya matahari atau lampu mikroskop yang dipaparkan pada
Universitas Sumatera Utara
sajian yang telah diwarnai akan diabsorpsi diserap. Zat warna yang terikat pada jaringan akan menyerap sinar dengan panjang gelombang tertentu sehingga
jaringan tersebut akan tampak berwarna. Dengan beberapa pengecualian, kebanyakan jaringan tidak berwarna,
sehingga sulit untuk memeriksa jaringan yang tidak diwarnai di bawah mikroskop cahaya. Oleh karena itu, telah ditemukan metode-metode pewarnaan
jaringan, yang tidak hanya membuat berbagai jaringan menjadi menyolok, tetapi memungkinkan pula diadakan perbedaan di antara komponen-komponen
tersebut. Ini dilakukan dengan menggunakan campuran zat warna yang mewarnai komponen jaringan lebih kurang secara selektif.
Kebanyakan zat warna yang digunakan dalam pemeriksaan histologi bersifat seperti senyawa asam atau basa dan mempunyai kecenderungan untuk
membentuk ikatan elektrostatik garam dengan gugus-gugus jaringan yang dapat berionisasi. Komponen jaringan yang lebih mudah diwarnai dengan zat warna
basa disebut basofilik; yang menpunyai afinitas terhadap zat warna asam disebut asidofilik.
Contoh zat warna basa adalah biru toluidin dan biru metilen. Hematoksilin berkelakuan seperti zat warna basa, yaitu mewarnai jaringan
basofilik. Komponen ringan utama yang berionisasi dan bereaksi dengan zat warna basa melakukan hal itu karena asam dalam komposisi mereka
nukleoprotein dan mukopolisakarida asam. Zat warna asam misalnya orange G, eosin dan fuchsin asam kebanyakan mewarnai komponen basa yang ada di dalam
protein sitoplasma. Sifat basa atau asam suatu zat biasanya menjelaskan reaksi pewarnaan secara kimia, tetapi juga ada dasar-dasar fisika.
Dari semua zat warna, yang paling sering digunakan adalah gabungan hematoksilin dan eosin HE. Banyak warna lain yang digunakan dalam
berbagai prosedur histologik. Meskipun zat warna berguna dalam menggambarkan berbagai komponen jaringan, tetapi biasanya tidak memberikan
keterangan mengenai sifat kimia jaringan yang sedang dipelajari.
Universitas Sumatera Utara
Didasarkan pada metoda produksi, ada dua jenis zat warna, yaitu yang alami dan sintetis Carleton, 1976. Hematoksilin diperoleh dari pohon logwood
yaitu Haematoxylum Campachianum adalah contoh pewarnaan alami Baker Silverton, 1976. Hematoksilin adalah zat warna mitra untuk eosin di teknik
pewarnaan hematoksilin dan eosin. Ia akan membuat nukleus berwarna biru- violet atau coklat. Sedangkan eosin adalah pewarna sintetis yang mewarnai sel
darah merah, sitoplasma, membran sel, kalogen dan struktur di luar sel dengan memberikan warna merah muda atau warna merah.
Sebelum melakukan pewarnaan serangkaian persiapan yang harus dilakukan adalah sebagai berikut:
1. Peralatan gelas harus dibersihkan dulu dan dibilas dengan akuades.
2. Timbang zat warna dengan cermat dan tepat.
3. Larutkan zat warna dalam pelarut yang benar dengan memperhatikan urutan
pencampurannya, misalnya hematoksilin selalu harus dilarutkan dalam alkohol dulu sebelum ditambahkan bahan lain.
4. Aduk zat warna dengan baik agar seluruh partikel zat warna terlarut dengan
baik. 5.
Tuangkan larutan zat warna ke dalam wadah yang sesuai untuk proses pewarnaan dengan menyaringnya menggunakan kertas saring.
6. Siapkan juga larutan-larutan lain yang diperlukan untuk proses pewarnaan dan
tuangkan dalam wadah yang sesuai. 7.
Atur urutan larutan-larutan tersebut sesuai dengan prosedur proses pewarnaan. 8.
Zat warna beralkohol harus ditutup rapat untuk mencegah penguapan alkohol yang akan menyebabkan presipitasi pengendapan zat warna.
Universitas Sumatera Utara
Pelarut yang umum dipakai dalam proses pewarnaan adalah air dengan derajat keasaman yang netral pH 7. Disamping itu juga dapat digunakan cairan
pelarut lainnya seperti etilalkohol etanol dengan derajat konsentrasi yang bervariasi. Bila tidak ada keterangan dalam proses pelarutan yang menggunakan
alkohol berarti konsentrasi alkohol yang digunakan adalah alkohol absolut dengan konsentrasi 99.9.
Pulasan Pewarnaan Hematoksilin-Eosin
Pulasan pewarnaan yang sering digunakan secara rutin adalah pewarnaan yang dapat digunakan untuk memulas inti dan sitoplasma serta jaringan
penyambungnya yaitu pulasan hematoksilin-eosin HE. Pada pulasan HE digunakan dua macam zat warna yaitu hematoksilin yang berfungsi untuk memulas
inti sel dan memberikan warna biru basofilik serta eosin yang merupakan counterstaining hematoksilin, digunakan untuk memulas sitoplasma sel dan jaringan
penyambung dan memberikan warna merah muda dengan nuansa yang berbeda. Hematoksilin merupakan zat warna alami yang pertama kali dipakai tahun
1863. Hematoksilin akan mengikat inti sel secara lemah, kecuali bila ditambahkan senyawaan lainnya seperti alumunium, besi, krom dan tembaga. Senyawaan
hematoksilin yang dipakai adalah bentuk oksidasinya yaitu hematein. Proses oksidasi senyawaan hematoksilin ini dikenal sebagai ripening dan dapat dipercepat prosesnya
dengan menambahkan senyawaan yang bertindak sebagai oksidator seperti merkuri oksida, hidrogen peroksida, potassium permanganat dan sodium iodat.
Selama proses oksidasi berlangsung kemampuan hematoksilin untuk mewarnai inti sel akan terus berlangsung dan akan berkurang bila proses oksidasi
telah selesai. Untuk memperpanjang proses ini larutan hematoksilin dapat disimpan dalam wadah tertutup dan disimpan dalam ruangan gelap. Dalam kondisi terpapar
oleh cahaya sebaiknya larutan diganti sekurangnya seminggu sekali. Jenis hematoksilin yang sering dipakai adalah mayer, delafied, Erlich, Bullard dan Bohmer
sedangkan counterstaining yang dipakai adalah eosin, safranin, dan phloxine.
Universitas Sumatera Utara
Beberapa larutan hematoksilin yang digunakan adalah Jusuf, 2009 : 1. Hematoksilin Erlich
Hematoksilin Erlich adalah hematoksilin yang paling tahan lama, mudah berdifferensiasi dan warnanya relatif tahan lama. Hematoksilin ini baru bisa
digunakan setelah 1-2 bulan dibuat. Waktu inkubasinya adalah 30 menit dan counterstainingnya adalah 0.5 -1 larutan eosin dalam air. Formulanya adalah
sebagai berikut: -
Hematoksilin ……………………. 6 gram -
Alkohol absolut …………………. 300 ml -
Akuades ..………………………….. 300 ml -
Glycerol …………………………… 300 ml -
Glacial acetic acid ………………… 30 ml -
Potassium alum …………………… berlebihan Cara pembuatannya adalah sebagai berikut:
1. Hematoksilin dilarutkan dalam alkohol
2. Sambil digerus dalam mortar secara perlahan-lahan tambahkan bahan lainnya
secara berurutan sambil digerus 3.
Akhirnya tambahkan kristal potassium alum Aluminium potassium sulfate sambil menggoyang-goyang botol hingga terdapat endapan kristal alum di
dasar botol. 4.
Botol berisi larutan hematoksilin Ehrlich kemudian ditutup secara longgar dengan gumpalan kapas dan disimpan ditempat terang selama 1-2 bulan
sehingga hematoksilinnya teroksidasi menjadi haematin. Proses ini dikenal sebagai pematangan.
2. Hematoksilin Delafield Larutan zat warna ini tahan bertahun-tahun dalam penyimpanan, bisa
digunakan 3 hari setlah pembuatan, counterstaining dengan menggunakan 0.5-1
Universitas Sumatera Utara
larutan eosin dalam air, waktu inkubasi 15-20 menit. Formula larutan pewarna ini adalah sebagai berikut:
- Hematoksilin kristal …………………....... 6 gram
- Alkohol absolut …………………………. 50 ml
- Ammonium alum ……………………….... 55 gram
- Akuades …………………………………. 600ml
- Glycerol …………………………………. 150ml
Cara pembuatan larutan hematoksilin Delafield adalah sebagai berikut: 1.
Larutkan kristal hematoksilin dengan alkohol absolut 2.
Larutkan ammonium alum dengan akuades hingga jenuh saturated 3.
Campurkan kedua larutan tersebut dan diamkan selama 3-5 hari 4.
Saring dan tambahkan glycerol 5.
Biarkan selama 3 hari dalam botol terpapar cahaya 6.
Setelah 3 hari simpan dalam botol tertutup dan lindungi dari cahaya
3. Hematoksilin Mayer Larutan Hematoksilin Mayer merupakan larutan yang dapat disimpan dalam
waktu lama berbulan-bulan, counterstaining dengan 0.5-1 larutan eosin dan waktu inkubasinya 10-15 menit. Formulanya adalah sebagai berikut:
- Hematoksilin kristal ……………………….. 1gram
- Aquades …………………………………… 1000ml
- Sodium iodate ………………………………0.2 gram
- Ammoniumpotassium alum ………………. 50gram
- Citric acid ………………………………… 1gram
- Chloral hydrate …………………………… 50gram
Cara pembuatannya adalah sebagai berikut: 1.
Larutkan ammoniumpotassium alum di dalam akuades 2.
Tambahkan hematoksilin dan campurkan secara baik 3.
Kemudian tambahkan sodium iodate, citric acid dan chloralhydrate
Universitas Sumatera Utara
4. Campur dan aduk hingga seluruhnya tercampur dengan baik
5. Biarkan semalam dan saring dengan kertas saring besoknya
4. Hematoksilin Harris Larutan pewarna yang dapat dipakai segera setelah selesai dibuat,
counterstaining dengan 0.5-1 larutan eosin dan waktu inkubasinya adalah 15-20 menit. Formulanya adalah sebagai berikut:
- Kristal hematoksilin ……………………… 5.0 gram
- Alkohol 100 ……………………………. 50 ml
- Ammoniumpotassium alum ……………… 100 gram
- Distilled water …………………………… 1000 ml
- Merkuri oksida …………………………… 2.5 gram
Cara pembuatannya adalah sebagai berikut Jusuf, 2009 : 1.
Larutkan hematoksilin di dalam alkohol 2.
Larutkan ammoniumpotassium alum di dalam distilled water dan panaskan 3.
Hentikan pemanasan dan campur kedua larutan tersebut 4.
Panaskan dengan cepat sambil diaduk 5.
Hentikan pemanasan dan campurkan merkuri oksida ke dalamnya perlahan-lahan
6. Panaskan kembali hingga larutan bewarna ungu gelap
7. Hentikan pemanasan dan tempatkan wadah berisi larutan tersebut di dalam
wadah berisi air dingin hingga larutan hematoksilin menjadi dingin 8.
Larutan siap untuk digunakan segera setelah dinginkan 9.
Tambahkan 2-4ml asam asetat glasial per 100ml larutan untuk meningkatkan ketajaman warna inti
10. Saring sebelum digunakan
Universitas Sumatera Utara
Larutan Counterstaining
Beberapa pulasan yang dipakai sebagai counterstaining larutan hematoksilin adalah eosin, safranin dan phloxine.
1. Larutan Eosin Larutan eosin yang digunakan terdiri atas larutan stok Stock solution dan
larutan kerja working solution. Adapun kedua larutan ini adalah sebagai berikut:
- Eosin Y, water soluble ………………….. 1.0 gram
1 Stock Alkohol-Eosin
- Distilled water …………………………… 20 ml
- Larutkan dan tambahkan
- Alkohol 95 …………………………….. 80 ml
- Eosin stock solution ……………………… 1 bagian
Working Eosin Solution
- Alkohol 80 ……………………………. 3 bagian
Dibuat sesaat sebelum digunakan dan tambahkan asam asetat glasial 0.5ml untuk setiap 100 ml larutan dan aduk dengan baik
2. Larutan Phloxine Larutan phloxine terdiri atas larutan stock eosin, stock phloxine, working
solution dan larutan Safran. Larutan-larutan tersebut adalah sebagai berikut:
- Eosin Y water soluble …………………………… 1 gram
Stock Eosin
- Distilled water …………………………………… 100ml
- Phloxine B ……………………………………….. 1.5 gram
Stock Phloxine
- Distilled water …………………………………… 100ml
- Stock Eosin ………………………………………. 100ml
Working Solution
- Stock Phloxine …………………………………… 10ml
- Alkohol 95 …………………………………….. 780ml
Universitas Sumatera Utara
- Asam asetat glasial ………………………………. 4ml
2 Alkohol Safran -
Safran du Gatinais ……………………………….. 2 gram -
Alkohol 100 …………………………………… 100ml
Pulasan rutin yang banyak dipakai adalah:
Pulasan Hematoxylin Mayer-Eosin
Pulasan ini banyak dipakai dengan beberapa pertimbangan 1.
Differensiasi warna sangat jelas 2.
Mewarnai inti sel dengan baik dan jelas dengan latar belakang yang tidak bewarna
3. Hasil konsisten
4. Prosedurnya sederhana
5. Dapat mewarnai preparat yang difiksasi dengan fiksasi apapun juga
Prosedur yang dipakai adalah sebagai berikut a.
Deparafinisasi dengan xylol 2x2 min b.
Hidrasi dengan serial alkohol 100 2x2 min – 95 2min – 90 2 min – 80 2 min - 70 2min – Distilled water 3min
c. Inkubasi dalam larutan hematoksilin mayers selama 15 min
d. Cuci dalam air mengalir selama 15-20menit
e. Observasi di bawah mikroskop, bila masih terlalu biru cuci lagi di air
mengalir selama beberapa menit. Bila sudah cukup warnanya lanjutkan ke langkah selanjutnya
f. Counterstaining dalam larutan eosin working solution selama 15 detik
hingga 2 menit tergantung pada umur eosin dan kedalaman warna yang diinginkan
g. Dehidrasi dalam serial alkohol dengan gradasi meningkat perlahan mulai
70 hingga 100 masing-masing 2 menit.
Universitas Sumatera Utara
h. Jernihkan dan dealkoholisasi dalam xylol 2x2min
i. Tutup dengan balsem kanada
Hasil Interpretasi adalah -
Inti sel bewarna biru -
Sitoplasma bewarna kemerahan dengan adanya beberapa variasi warna pada komponen tertentu
Gambar 2.2. Hasil pewarnaan HE Gambar 2.3. Hasil pewarnaan HE pada ginjal pada kulit tebal
Pewarnaan Hematoksilin Harris-Eosin
Protokol pulasan hematoksilin Harris – eosin adalah sebagai berikut: a.
Deparafinisasi dalam xylol b.
Hidrasi dalam larutan alkohol dengan gradasi yang menurun dari 100-95- 90-80-70
c. Inkubasi dalam larutan hematoksilin Harris selama 15 min
d. Bilas dalam air mengalir dalam waktu yang singkat
e. Celup dalam campuran asam-alkohol secara cepat 3-10 celup cek differensiasi
warna di bawah mikroskop f.
Bilas dalam air mengalir secara singkat g.
Celup sebanyak 3-5 kali dalam larutan ammonium atau lithium karbonat hingga potongan bewarna biru cerah
Universitas Sumatera Utara
h. Cuci dalam air mengalir selama 10-20 menit Bila pencucian tidak maksimal
jaringan sulit terwarna oleh eosin i.
Inkubasi dalam eosin selama 15 detik hingga 2 menit j.
Dehidrasi dalam alkohol dengan konsentrasi yang meningkat secara perlahan, masing-masing selama 2 menit
k. Inkubasi dalam xylol 2x2menit
l. Tutup dengan kaca penutup
HasilInterpretasi hasil pulasan -
Inti sel bewarna biru -
Sitoplasma bewarna kemerahan dengan adanya beberapa variasi warna pada komponen tertentu
Pewarnaan Hematoksilin Mayer-Phloxyne-Safran
Prosedur pewarnaan adalah sebagai berikut a.
Deparafinisasi dalam xylol b.
Hidrasi dalam larutan alkohol dengan gradasi yang menurun dari 100-95- 90-80-70
c. Inkubasi dalam larutan asam pikrat jenuh selama 5 menit
d. Cuci dalam air mengalir hingga seluruh asam pikrat hilang
e. Inkubasi dalam larutan hematoksilin mayer selama 15 menit
f. Basuh dengan air mengalir selama 20 menit
g. Warnai dalam larutan 1.5 larutan Phyloxine B selama 2 menit
h. Basuh dengan air selama 5 menit
i. Cuci dengan alkohol absolut 3 kali
j. Warnai dalam 2 larutan alkohol Safran selama 5 menit
k. Cuci dengan alkohol absolut 2 kali
l. Inkubasi dalam xylol 2 kali masing-masing selama 2 menit
m. Rekatkan dengan objek glass menggunakan Balsam Kanada
Universitas Sumatera Utara
Hasilinterpretasi -
Inti bewarna biru -
Sel darah merah bewarna vermillion pink -
Tulang bewarna kuning -
Tulang rawan bewarna hijau kekuningan -
Otot bewarna merah -
Serat kolagen bewarna kuning
Universitas Sumatera Utara
BAB 3 KERANGKA KONSEP