Isolasi Dan Uji Potensi Mikroorganisme Selulolitik Asal Tanah Gambut Dan Kayu Sedang Melapuk Dalam Mendekomposisikan Kayu

ISOLASI DAN UJI POTENSI MIKROORGANISME

SELULOLITIK ASAL TANAH GAMBUT DAN KAYU

SEDANG MELAPUK DALAM MENDEKOMPOSISIKAN

KAYU

SKRIPSI OLEH:

DESI NURMAYANI 020303021/ILMU TANAH

DEPARTEMEN ILMU TANAH

FAKULTAS PERTANIAN

UNIVERSITAS SUMATERA UTARA

MEDAN

ISOLASI DAN UJI POTENSI MIKROORGANISME

SELULOLITIK ASAL TANAH GAMBUT DAN KAYU

SEDANG MELAPUK DALAM MENDEKOMPOSISIKAN

KAYU

SKRIPSI

OLEH:

DESI NURMAYANI 020303021/ILMU TANAH

Skripsi Sebagai Salah Satu Syarat Untuk Dapat Menyelesaikan Studi Pada Departemen Ilmu Tanah Fakultas Pertanian

Universitas Sumatera Utara Medan

Disetujui Oleh, Komisi Pembimbing

Prof.Dr.Ir. Asmarlaili S. Hanafiah, MS, DAA Jamilah, SP, MP

Ketua Anggota

DEPARTEMEN ILMU TANAH FAKULTAS PERTANIAN UNIVERSITAS SUMATERA UTARA

MEDAN 2007

ABSTRAK

Isolasi dan uji potensi mikroorganisme selulolitik dalam mendekomposisikan kayu. Penelitian ini dilakukan di Laboratorium Biologi Tanah, Laboratorium Kimia dan Kesuburan Tanah dan Laboratorium Sentral Fakultas Pertanian Universitas Sumatera Utara Medan.Penelitian ini bertujuan untuk mengisolasi mikroorganisme selulolitik dari kayu dan tanah gambut untuk menguji potensi isolat mikroorganisme selulolitik yang berasal dari kayu dan tanah gambut.

Penelitian ini menggunakan Rancangan Acak Lengkap Non Faktorial yang terdiri dari dua perlakuan dan dua ulangan. Perlakuan terdiri dari MOSKJ I1

(Jamur Kayu 1 dari Media SA), MOSKJ I2 (Jamur Kayu 2 dari Media SA),

MOSKJ I5 (Jamur Kayu 5 dari Media SA), MOSKJII1 (Jamur Kayu 1 dari Media

MYA), MOSKJ II9 (Jamur Kayu 9 dari Media MYA), MOSGJ I1 (Jamur Gambut

1 dari Media SA), MOSGJ I2 (Jamur Gambut 2 dari Media SA), MOSGJ II1

(Jamur Gambut 1 dari Media MYA), MOSGJ II2 (Jamur Gambut 2 dari Media

MYA), MOSKA I3 (Aktinomicetes Kayu 3 dari Media SA), MOSKB I1 (Bakteri

Kayu 1 dari Media SA), MOSKB I2 (Bakteri Kayu 2 dari Media SA),

MOSGB I1 (Bakteri Gambut 1 dari Media SA), H 34 (Bakteri Koleksi

Laboratorium), BB 31 B (Bakteri Koleksi Laboratorium), PH 12 E (Bakteri Koleksi Laboratorium), H 27 (Bakteri Koleksi Laboratorium), TA 5 (Bakteri Koleksi Laboratorium).

Hasil dari penelitian ini adalah isolat PH 12 E (Bakteri Koleksi Laboratorium) menghasilkan gula reduksi terbesar diikuti dengan BB 31 B (Bakteri Koleksi Laboratorium). Penurunan nilai ratio C/N tertinggi dihasilkan oleh isolat MOSKJ I5 (Jamur Kayu 5 dari Media SA) sebesar 27.71 dan diikuti

ABSTRACT

Isolation and Potency Test of Selulolithic Microorganism in Wood Decomposition. This research is executed in Biological Laboratory, Chemistry and Soil Nutrition Laboratory and Central Laboratory in Faculty of Agriculture, University of North Sumatera. This research aim to isolate of sululolithic microorganism of wood and peat land and to test the potency of microorganism selulolithic of wood and peat land.

The research was used complete Random Design Non Factorial, which consist of nineteen treatments and two repetition. The treatment are : Control, MOSKJ I1 (Wood Fungi 1), MOSKJ I2 (Wood Fungi 2), MOSKJ I5 (Wood Fungi

5), MOSKJ II1 (Wood Fungi 1), MOSKJ II9 (Wood Fungi 9), MOSGJ I1 (Peat

Fungi 1), MOSGJ I2 (Peat Fungi 2), MOSGJ II1 (Peat Fungi 1), MOSGJ II2 (Peat

Fungi 2), MOSKA I3 (Wood Aktinomycetes 3), MOSKB I1 (Wood Bacterium 1),

MOSKB I2 (Wood Bacterium 2), MOSGB I1 (Peat Bacterium 1),H 34 (Laboratory

Bacterium), BB 31B (Laboratory Bacterium), PH 12 E (Laboratory Bacterium), H 27 (Laboratory Bacterium), TA 5 (Laboratory Bacterium),

The result of this research are the isolat of PH 12 E (Laboratory Bacterium) cause the highest of reduction sugar, followed with the isolate of BB 31 B (Laboratory Bacterium). The highest decresing of ratio C/N is caused by the isolate of MOSKJ I5 (Wood Fungi 5) (C/N = 27.71) and followed with the isolate

DAFTAR RIWAYAT HIDUP

Desi Nurmayani, dilahirkan di Medan pada tanggal 2 Desember 1983 dari Ayah M. Azhar Panggabean dan Ibu N. Rambe. Penulis merupakan putri pertama dari empat bersaudara.

Tahun 2002 penulis lulus dari SMUN III Rantau Prapat dan tahun 2002 lulus seleksi masuk USU melalui jalur SPMB. Penulis memilih program studi Ilmu Tanah Fakultas Pertanian Universitas Sumatera Utara, Medan.

Selama mengikuti perkuliahan penulis pernah menjadi assisten Laboratorium untuk mata kuliah : Biologi Tanah pada tahun 2005-2006 dan Assisten Laboratorium Pupuk Hayati dan Penggunaannya pada tahun 2006-2007. Mengikuti Praktik Kerja Lapangan di PTPN III Kebun Sei Dadap, Kisaran. Penulis juga aktif mengikuti kegiatan organisasi Ikatan Mahasiswa Ilmu Tanah (IMILTA-FP USU) medan sejak tahun 2002 sampai dengan selesai perkuliahan.

KATA PENGANTAR

Syukur Alhamdulillah penulis panjatkan kepada ALLAW SWT yang telah memberikan Rahmat dan HidayatNya sehingga penulis dapat menyelesaikan skripsi ini yang berjudul “ Isolasi dan Uji Potensi Mikroorganisme Selulolitik Dalam Mendekomposisikan Kayu ” yang merupakan salah satu syarat untuk mendapatkan gelar sarjana di Departemen Ilmu Tanah Fakultas Pertanian Universitas Sumatera Utara Medan.

Pada kesempatan ini penulis mengucapkan terima kasih kepada Prof. Dr . Ir. Asmarlaili S, Hanafiah, MS, DAA dan Jamilah, SP, MP selaku ketua

dan anggota komisi pembimbing yang telah banyak memberikan perhatian, arahan dan bimbingan dalam menyelesaikan skripsi ini.

Akhir kata penulis mengharapkan kritik dan saran yang membangun demi kesempurnaan skripsi ini. Penulis mengucapkan terima kasih.

Medan, September 2007

DAFTAR ISI

ABSTRACT……… i

ABSTRAK………. ii

KATA PENGANTAR……….. iii

DAFTAR ISI………. iv

DAFTAR TABEL……… v

DAFTAR GAMBAR……….. vi

DAFTAR LAMPIRAN……….. vii

PENDAHULUAN Latar Belakang………. 1

Perumusan Masalah………. 2

Tujuan Penelitian………. 2

Hipotesa Penelitian……….. 2

Kegunaan Penelitian……… 2

TINJAUAN PUSTAKA Dekomposisi Bahan Organik……… 3

Peranan Mikroorganisme Selulolitik……… 6

Mikroorganisme Pelapuk Kayu……… 9

BAHAN DAN METODA Tempat dan Waktu Penelitian……… 12

Bahan dan Alat Bahan……….. 12

Alat………. 12

Pelaksanaan Penelitian……… 13

Isolasi Mikroorganisme Selulolitik……….. 14

Uji Potensi Mikroorganisme Selulolitik a. Uji Potensi Mikroorganisme Pada Media Cair Kualitatif ………. 15

Kuantitatif……… 16

Metode Penelitian……… 17

Uji Potensi Mikroorganisme Selulolitik Pada Media Kayu Metode Penelitian………. 20

Hasil

Isolasi Mikroorganisme Selulolitik Uji Potensi Mikroorganisme Selulolitik

a. Uji Potensi Mikroorganisme Pada Media Cair

Kualitatif………. 24

Kuantitatif ……….. 25

b. Uji Potensi Mikroorganisme Selulolitik Pada Media Kayu KESIMPULAN DAN SARAN

Kesimpulan………. 45

Saran……… 45

DAFTAR PUSTAKA LAMPIRAN

DAFTAR TABEL

NO. JUDUL HAL

1. Pengenceran Larutan Glukosa Standart ……… 18

2. Data Kalibrasi Larutan Glukosa Standart ………. 19

3. Hasil Isolasi Mikroorganisme Selulolitik yang Diisolasi dari

Kayu dan Tanah Gambut ...……. 25 4. Hasil Uji Potensi Secara Kualitatif Berbagai Isolat Mikroorganisme

Selulolitik yang Diisolasi dari Kayu dan Tanah Gambut...……. 26 5. Hasil Uji Potensi Secara Kuantitatif Berbagai Isolat Mikroorganisme

Selulolitik yang Diisolasi dari Kayu dan Tanah Gambut pada

Pengamatan 7-14 Hari Setelah Inkubasi...……. 28 6. Hasil Uji Potensi pada Media Kayu dari Berbagai Isolat

Mikroorganisme Selulolitik yang Diisolasi dari Kayu dan Tanah

Gambut ...…… 29 7. Hasil Penurunan Bobot Kayu dari Berbagai Mikroorganisme

Selulolitik yang Diisolasi dari Kayu dan Tanah Gambut………. 31 8. Hasil Penguraian Serat Kayu dari Berbagai Mikroorganisme

Selulolitik yang Diisolasi dari Kayu dan Tanah Gambut………. 32 9. Hasil Perubahan Warna Kayu dari Berbagai Mikroorganisme

Selulolitik yang Diisolasi dari Kayu dan Tanah Gambut……… 33 10. Hasil Perubahan Warna Kayu dari Berbagai Mikroorganisme

DAFTAR GAMBAR

NO. JUDUL HAL

1. Hasil Uji Potensi mikroorganisme Selulolitik Secara Kualitatif…. 74

2. Isolat Koleksi ………. 74

3. Hasil Isolasi Mikroorganisme Selulolitik ………. 74

4. Isolat Jamur ……….. 75

5. Isolat Aktinomicetes ……… 75

6. Isolat Bakteri ……… 75

PENDAHULUAN

Latar Belakang

Banyaknya pembukaan areal pertanian baru mengakibatkan banyaknya tumpukan kayu. Disini para petani mengalami kesulitan dalam memusnahkan sisa-sisa kayu tersebut. Biasanya petani membiarkan sisa-sisa kayu tersebut sampai melapuk tetapi tentu saja ini memakan waktu yang sangat lama karena kayu mengandung senyawa lignin yang tinggi. Jika kayu tersebut dibakar akan mengalami polusi lingkungan dan bahan organiknya akan hilang. Oleh karena itu dibutuhkan mikroba yang dapat merombak kayu tersebut.

Senyawa lignin merupakan senyawa yang paling banyak terkandung pada tanaman berkayu. Senyawa ini tahan terhadap dekomposisi, berbeda dengan senyawa lain seperti hemiselulosa dan selulosa yang mudah terdekomposisi. Salah satu cara yang dapat digunakan untuk mempercepat dekomposisi senyawa ini adalah dengan pemberian mikroorganisme selulolitik. Dengan pemberian mikroorganisme selulolitik ini diharapkan mampu mempercepat dekomposisi kayu tersebut hingga tidak memerlukan waktu yang terlalu lama dalam proses dekomposisi. Kayu yang melapuk ini bila diolah/dimanfaatkan dapat berguna sebagai sumber bahan organik.

Berdasarkan uraian diatas penulis ingin mencoba menggunakan mikroorganisme selulolitik yang di isolasi dari kayu yang melapuk tersebut, lalu

diidentifikasi agar diketahui jenis mikroorganisme selulolitik yang mana yang paling berpotensi melapukkan kayu tersebut.

Perumusan Masalah

Pembakaran sisa-sisa kayu dapat menyebakan kerusakan lingkungan atau terjadi polusi udara. Untuk mengurangi kerusakan tersebut maka digunakan mikroorganisme selulolitik untuk mendekomposisikan kayu tersebut

Tujuan Penelitian

1. Untuk mengisolasi mikroorganisme selulolitik yang berasal dari kayu dan tanah gambut.

2. Untuk menguji potensi isolat mikroorganisme selulolitik yang berkemampuan tinggi dalam mendekomposisikan kayu.

Hipotesis Penelitian

1. Pada kayu dan tanah gambut terdapat berbagai mikroorganisme selulolitik 2. Mikroorganisme selulolitik tersebut memiliki kemampuan yang berbeda-beda

dalam mendekomposisikan kayu.

Kegunaan Penelitian

1. Sebagai salah satu syarat untuk dapat memperoleh gelar sarjana di departemen Ilmu Tanah Fakultas Pertanian Universitas Sumatera Utara Medan.

2. Sebagai bahan informasi bagi pihak yang membutuhkan.

TINJAUAN PUSTAKA

Dekomposisi Bahan Organik

Tanah mengandung bermacam-macam mikroba, meliputi berbagai spesies bakteri, ganggang, cendawan dan lain-lain. Bakteri dan cendawan sangat berperan dalam memecah bahan-bahan organik. Jumlah dan macam mikroba yang terdapat tergantung pada jumlah dan susunan bahan yang dapat dirombak seperti kotoran hewan, pupuk hijau, limbah pangan dan pupuk organic yang ditambahkan dalam tanah dapat mengandung zat-zat yang terlarut dalam air. Banyak komponen dari beberapa zat seperti N, P, S, dan Mg terdapat dalam banyak senyawa kompleks yang perlu dipecah oleh mikroorganisme tanah agar selanjutnya dapat dimanfaatkan tanaman (Kuswandi, 1993).

Kompos adalah bahan-bahan organik (sampah organik) yang telah mengalami proses pelapukan karena adanya interaksi antara mikroorganisme (bakteri pembusuk) yang bekerja didalamnya. Bahan-bahan organik tersebut seperti dedaunan, rumput, jerami, sisa-sisa ranting dan dahan, kotoran hewan, rerontokan kembang, air kencing dan lain-lain. Adapun kelangsungan hidup mikroorganisme tersebut didukung oleh keadaan lingkungan yang basah dan lembab (Murbandono, 2006).

Team Redaksi Trubus (1981), proses pengomposan dipengaruhi oleh faktor lingkungan seperti ukuran bahan, kadar air, aerasi, pH, suhu dan

perbandingan C dengan N. Ukuran partikel penting karena bakteri dan jamur akan lebih mudah hidup pada ukuran partikel yang lebih kecil.

Agar diperoleh hasil pengomposan yang optimal perlu memerhatikan beberapa faktor lingkungan yang berpengaruh karena proses ini merupakan proses biologi. Faktor yang mempengaruhi laju penomposan diantaranya:

1. Ukuran bahan

Proses pengomposan akan lebih cepat jika bahan mentahnya memiliki ukuran yang kecil. Bahan yang berukuran kecil akan cepat didekomposisikan karena luas permukaannya meningkat dan mempermudah aktivitas mikroorganisme perombak.

2. Rasio C/N

Hal ini disebabkan proses pengomposan tergantung dari kegiatan mikroorganisme yang membutuhkan karbon sebagai sumber energi dan pembentukan sel dan nitrogen untuk membentuk sel.

3. Kelembaban dan aerasi

Dekomposisi bahan organik sangat tergantung dari kelembaban lingkungan dan oksigen yang diperoleh dari rongga udara yang terdapat diantara partikel bahan yang dikomposkan. Mikroorganisme yang melakukan aktivitas metabolisme diluar sel tubuhnya.

4. Temperatur pengomposan

Temperatur optimum yang dibutuhkan mikroorganisme untuk merombak bahan adalah 35-55°C.

Kisaran pH kompos yang optimal adalah 6,0-8,0. Derajat keasaman bahan pada permulaan pengomposan umumnya asam sampai dengan netral (pH 6,0-7,0).

6. Mikroorganisme yang terlibat dalam pengomposan

Mikroorganisme merupakan faktor penting dalam proses pengomposan

karena mikroorganisme ini yang merombak bahan organik menjadi kompos (Djuarnani, dkk, 2005).

Proses dekomposisi selulosa dapat ditentukan berdasarkan perubahan nilai rasio C/N. Bahan organik tanaman yang segar pada umumnya memiliki rasio C/N yang tinggi dan sebaliknya menjadi rendah setelah mengalami pembusukan. Perubahan nilai rasio C/N suatu bahan organik dapat disebabkan karena adanya penurunan kadar karbon (C) peningkatan kadar nitrogen (N). Mikroorganisme memecah bahan-bahan organik menjadi senyawa-senyawa yang lebih sederhana untuk menghasilkan energi. Energi yang dihasilkan sebagian besar digunakan untuk sintesa mikromolekul seperti asam nukleat, lipida dan polisakarida. Sintesa asam-asam nukleat penting untuk pertmbuhan dan perkembangan sel. Reaksi degradasi selulosa menurunkan kadar karbon dan sebaliknya sintesa komponen-komponen sel akan meningkatkan kadar karbon (Lay dan Hastowo, 1992).

Seiring berjalan waktu, mikroorganisme sudah memulai aktivitasnya dalam bahan sehingga suhu meningkat dan pH turun (menjadi asam). Pada suhu lebih dari 40°C, kegiatan bakteri mesofilik akan terhenti dan diganti dengan jamur mesofilik. Pada kenaikan temperatur ini, bahan akan semakin memadat karena air dalam bahan keluar(berkeringat). Akibatnya suplai oksigen lama-kelamaan

dan organisme lainnya terbunuh secara bertahap sehingga tugas pengomposan berangsur-angsur diambil alih oleh mikroba anaerobik yang bekerja pada kondisi tanpa oksigen. Kondisi pH akan meningkat menjadi basa kembali. Bersamaan dengan ini berbagai gas akan dihasilkan seperti amonia, gas nitrogen, metan, dan lain sebagainya (Yuwono, 2006).

Menurut Yuwono (2006) hasil akhir dari pengomposan aerobik itu adalah seperti tanah berwarna hitam kecoklatan dan gembur sedangkan aroma yang dihasilkan oleh pengomposan aerobik adalah tidak berbau dan pengomposan anaerobik adalah berbau.

Didalam timbunan bahan-bahan organik pada pembuatan kompos, terjadi aneka perubahan hayati yang dilakukan oleh jasad-jasad renik. Akibat perubahan tersebut, berat dan isi bahan kompos menjadi sangat berkurang. Sebagian besar senyawa zat arang akan hilang, menguap ke udara. Kadar senyawa N yang larut (amoniak) akan meningkat. Peningkatan ini tergantung pada perbandingan C/N bahan asal. Perbandingan C/N bahan yang semakin kecil berarti bahan tersebut mendekati C/N tanah. Idealnya C/N bahan sedikit lebih rendah dibanding C/N tanah (Murbandono, 2006).

Dalam pengomposan, kadar abu dan humus makin meningkat. Pada perubahan selanjutnya (diakhir pembuatan kompos) akan diperoleh bahan yang berwarna merah kehitaman. Bahan dengan kondisi semacam itu sudah siap digunakan sebagai pupuk (Murbandono, 2006).

Adanya perubahan-perubahan hayati jasad renik tersebut akibat banyak hal. Diantaranya adalah terjadinya penguraian bahan-bahan organik didalam

diantaranya adalah kandungan lignin, sifat dan ukuran bahan asal, kandungan nitrogen (N), kadar pH, air dan udara, variasi bahan, suhu (Murbandono, 2006).

Peranan Mikroorganisme Selulolitik

Bahan organik tanah terdiri dari sisa-sisa tanaman dan hewan dari semua tahapan dekomposisi karena kerja mikroorganisme tanah. Bermacam-macam senyawa organik yang mencapai tanah dalam bentuk sisa-sisa tanaman atau sisa hewan tersusun dari karbohidrat yang kompleks, gula sederhana, tepung, selulosa, hemiselulosa, pektin, getah, lender, protein, lemak, mimyak, lilin, resin, alkohol, aldehid, keton, asam-asam organik, lignin, ferol, tannin, hidrokarbon, alkaloid, pigmen, dan produk-produk lainnya. Ukuran partikel dalam bahan organik, ciri-ciri dan jumlah mikroorganisme yang terlibat, sejauh mana ketersediaan C, N, P, K, kandungan kelembaban tanah, temperature, pH dan aerasinya adanya senyawa-senyawa penghambat dan sebagainya merupakan sebagian faktor-faktor utama yang mempengaruhi laju dekomposisi (Rao, 1994).

Selulosa adalah bahan yang digunakan dalam pembuatan kertas yang dapat diperoleh dari bubur kayu. Kayu mengandung serat-serat selulosa dan hemiselulosa yang mempunyai berat molekul lebih rendah yang terikat oleh molekul-molekul yang berat molekulnya lebih tinggi yang disebut lignin. Lignin tersebut dapat dihilangkan dengan penambahan natrium hidroksida dan natrium sulfida (Heddy, dkk, 1994).

Selulosa terdiri dari rantai -D-glukosa dengan derajat polimerisasi sebesar kurang lebih 14.000. Sifat-sifat dari fibril selulosa terutama kokohnya dan

rantai ini harus saling berhubungan dengan cara menutupi hidrofibril dan pengikatan stabilitas. Seutas benang selulosa terdiri dari fibril selulosa yang diliputi oleh selaput lilin dan pektin (Schlegel dan Schmidth, 1994).

Selulosa merupakan komponen utama penyusun dinding sel tanaman, dibangun oleh unit-unit D-glukosa dengan ikatan glukosida 1,4. Ikatan-ikatan ini membentuk mikrofibril selulosa yang tidak larut dalam air. Bagian selulosa yang mudah dihidrolisir disebut bagian amorf selulosa. Selulosa merupakan substansi utama dalam proses enzimatis. Kecepatan degradasi enzimatis juga dipengaruhi oleh struktur selulosa. Degradasi selulosa berlangsung melalui hidrolisis rantai polisakarida menjadi molekul sederhana, yang menghasilkan oligosakarida maupun monomer glukosa atau produk degradasi separti asam-asam organik maupun alkohol (Schuller, 1980 dalam Cahyono dan Bachruddin, 1995 ).

Mikroorganisme yang mampu menghidrolisis selulosa dinamakan mikroorganisme selulolitik (perombak selulosa) yang dapat berupa jamur, bakteri, aktinomicetes maupun protozoa. Contoh mikroorganisme selulolitik antara lain adalah Chaetonium sp, Cythophaga sp. Clostridium sp (bakteri); Nocardia sp dan

Streptomyces sp (aktinomicetes) (Rao, 1982).

Mikroorganisme selulolitik seperti jamur, bakteri dan aktinomicetes banyak ditemukan pada tanah-tanah pertanian, hutan dan jaringan hewan atau tumbuhan yang membusuk. Beberapa diantaranya diketahui dapat dengan mudah dan cepat merombak selulosa seperti diketahui bahwa penambahan inokulasi pada pembuatan kompos adalah bagian dari usaha untuk mempercetat pengomposan (Azhari, 2000).

Proses mineralisasi yaitu menghancurkan bahan organik dari binatang dan tanaman menjadi senyawa-senyawa anorganik yang sederhana. Kegiatan ini dilakukan oleh berbagai mikroorganisme tanah (bakteri, cendawan, aktinomicetes). Perubahan secara fisik maupun kimiawi yang sederhana oleh mikroorganisme tanah tadi disebut proses dekomposisi (pembusukan/pelapukan) atau kadang-kadang disebut mineralisasi. Proses dekomposisi hasilnya sangat membantu tersedianya zat-zat organik tanah yang merupakan hara bagi tanaman ( Sutedjo, dkk, 1996 ).

Dari hasil penelitian Susanti (2005) diperoleh data bahwa jumlah isolat jamur yang ditemukan lebih banyak daripada bakteri dan aktinomicetes, hal ini disebabkan pengaruh faktor lingkungan diantaranya air, aerasi, pH, suhu, dan lain-lain. Faktor pH memiliki pengaruh yang penting dalam populasi mikroba yang berperan dalam proses dekomposisi selulosa. Dimana pH optimum bagi bakteri adalah mendekati netral yaitu 6,5-7,5 sedangkan bagi jamur kisaran pH nya lebih lebar dari bakteri yaitu 2,0-11,0 yang artinya jamur lebih toleran pada tempat yang masam daripada bakteri.

Reaksi pada media juga memiliki suatu pengaruh yang penting atas sifat/keadaan populasi mikrobiologis yang berperan dalam proses dekomposisi selulosa. Bakteri aerobic termasuk golongan Cytophage sanggup berkembang pada pH 6,1-9,1. Tanah-tanah yang lebih masam pH 6,0 mungkin mengurani sama sekali organisme ini, walaupun bakteri pendekomposisi selulosa lain sanggup berkembang pada pH 5,0-6,0. Aktinomicetes tumbuh dan berkembang pada pH 5,5-9,5 sedangkan cendawan berkembang dalam tingkatan reaksi yang lebih

leluasa pada pH 3,0-9,5 Trichoderma (yang juga pendekomposisi selulosa) sanggup berkembang pada pH 2,1-2,5 (Sutedjo, dkk. 1996).

Pada tingkat pertumbuhan yang cepat isolasi saat dibiakkan mempunyai daya adaptasi yang cukup tinggi, dan isolat-isolat tersebut menghasilkan enzim selulase secara lengkap. Sedangkan isolat-isolat yang memiliki daya adaptasi rendah karena belum mendekomposisikan bahan selulosa yang diberikan, disebabkan karena kondisi media selulosa cair masih cukup mengandung glukosa untuk pertumbuhannya, sehingga isolat-isolat tersebut belum menghidrolisis bahan selulosa yang diberikan sebagai sumber energi dan karbonnya (Dwijoseputro, 1998 ).

Degradasi Selulosa

Norkrans (1967) mengatakan bahwa selulosa alami merupakan kristalin dan mempunyai struktur yang kompleks. Salle (1984) menjelaskan bahwa molekul selulosa dibangun dari unit-unit ß-glukosa. Dua molekul ß-glukosa dikombinasikan melalui pertalian 1,4 yang menghasilkan ß-sellobiose. Molekul selulosa merupakan polimer linier sederhana dari 1000-10.000 unit sellobiose yang berikatan melalui ikatan 1,4-ß-glikosidik.

Apabila mikroorganisme dikultivasikan dalam suatu substrat, terjadi beberapa tahap pertumbuhan. Menurut Lay dan Hastowo (1992), bahwa suatu mikroorganisme yang dikultivasikan dalam suatu substrat akan mengalami beberapa tahap pertumbuhan yaitu fase penyesuaian diri, fase logaritmik, fase stasioner dan fase kematian.

Menurut Hebraund dan Fevre (1990, dalam Cahyono dan Bacharuddin, 1995) bahwa proses perombakan secara enzimatis terjadi dengan adanya enzim selulase sebagai agen perombak yang bersifat spesifik untuk menghidrolisis ikatan ß-(1,4)-glikosidik dan rantai selulosa dan derivatnya. Komplek enzim selulase umumnya terdiri dari tiga unit enzim utama yaitu Endo ß-(1,4)-glucanase (cx) yang berperan terutama pada bagian amorf pada rantai selulosa, Endo ß-(1,4)-glucanase (cl) atau cellobiohydrolase yang berperan pada pemecahan dibagian kristal rantai selulosa dan ß-glukosidase merupakan unit enzim yang penting untuk menghasilkan produk glukosa dari pemecahan selobiosa.

Lebih lanjut Moat dan Foster (1988) menjelaskan bahwa degradasi selulosa secara sempurna memerlukan kerjasama dari ketiga enzim tersebut. Pertama-tama, suatu Endo ß-(1,4)-glucanase membelah selulosa dan menghasilkan sedikit oligosakarida dengan ujung rantai yang bebas. Kemudian suatu Endo ß-(1,4)-glucanase membelah unit-unit sellobiose dari ujung rantai yang tidak tereduksi. Sellobiose kemudian dihidrolisis menjadi glukosa oleh suatu ß-glukosidase.

Mikroorganisme Pelapuk Kayu

Mikroorganisme terdiri dari sejumlah mikroba membantu proses pelapukan sehingga sampah alam terurai kembali menjadi tanah berupa humus. Hasil kerja mikroorganisme yang sempurna tidak menghasilkan polusi tersebut memberi inspirasi pada para ilmuwan kita untuk memanfaatkan dalam sektor pertanian (Magdalena, 2003).

Jamur pelapuk kayu berasal dari kelas Basidiomycetes, mempunyai kemampuan untuk merombak selulosa dan lignin yang menjadi komponen utama dinding sel kayu, sehingga kekuatan kayu menjadi berkurang. Beberapa jenis jamur hanya merombak selulosa sehingga warna kayu berubah coklat dan disebut

Brown root. Jenis lainnya merombak selulosa dan lignin sehingga warna kayu

menjadi putih pucat dan disebut White root. Sifat mekanis kayu seperti keteguhan pukul, keteguhan luntur, keteguhan tekan, kekerasan dam elastisitas akan berkurang bila terserang jamur pelapuk kayu (Aini, 2005).

Terdapat dua metode memodifikasi proses pelapukan yakni mengkultur jamur diatas substrat dengan kondisi kimia, fisik, nutrisi dan lingkungan yang terkontrol. Proses yang dikenal adalah fermentasi padat. Cara lain mengisolasi enzim jamur yang telah dibiakkan pada media tertentu kemudian mereaksikan enzim tersebut dalam suatu bioreactor. Dari dua metode ini serangkaian proses dapat dikembangkan untuk keperluan berbagai proses industri yang lebih ramah lingkungan (Anonim, 2002).

Pendekomposer Basidiomycetes adalah jamur yang diisolasi dari serasah atau tanah, dan kita sedikit mengetahui tentang pemecahan dan keterangan didalam siklus mineral dari Basidiomycetes ini yang merupakan decomposer dari bahan organic yang mati. Langkah pertama dalam menjelaskan Basidiomycetes adalah dalam mengurai kayu yang sama dari elemen-elemen(partikel kation) tidak termasuk pada kayu yang segar, identifikasi species untuk melapukan kayu dan berdekatan horizon tanah adalah penting. Sejak Basidiomycetes mudah diperkenalkan sebagai jamur atau bakteri, media yang selektif untuk

Basidiomycetes adalah penting untuk proses isolasi (Blanchard and Thompson, 2006).

Media yang biasa digunakan dalam isolasi mikroorganisme selulolitik adalah media SA (Selulosa Agar). Dari hasil penelitian Blanchard and Thompson (2006) media yang baik digunakan dalam isolasi mikroorganisme selulolitik pelapuk kayu adalah MYA (Malt Yeast Agar). Oleh karena itu peneliti mencoba untuk menggunakan kedua media tersebut kemudian membandingkan pada media pertumbuhan mikroorganisme selulolitik yang terbaik.

BAHAN DAN METODA

Tempat dan Waktu Penelitian

Penelitian ini dilakukan di Laboratorium Biologi Tanah, Laboratorium Kimia dan Kesuburan Tanah dan Laboratorium Sentral Fakultas Pertanian Universitas Sumatera Utara Medan dari bulan Desember 2006-September 2007 pada ketinggian tempat ± 25 m diatas permukaan laut.

Bahan dan Alat

Bahan yang digunakan :

1. Tanah gambut yang berasal dari Desa Ajamu Kabupaten Labuhan Batu 2. Kayu yang berasal dari Fakultas Pertanian

3. Alkohol 96% untuk mensterilkan laminar

4. Media Asparagine (untuk jamur), Hans (untuk bakteri), Ken Knight (untuk aktinomicetes), media Selulosa Agar, media MYA (Malt Yeast Extract).

5. CMC (Carboxymethyl Cellulose) sebagai pengganti tepung selulosa Alat yang digunakan adalah :

1. Cangkul, goni

2. Alat gelas yaitu tabung reaksi, Erlenmeyer, cawan petri, pipet skala, gelas ukur 3. Alat penunjang yaitu timbangan, oven, hot plate, pH meter, rotary mixer,

spektrofotometer, jarum ose, shaker

Pelaksanaan Penelitian

Penelitian ini dilaksanakan dengan 2 tahapan yaitu : I. Isolasi mikroorganisme

II. Uji Potensi mikroorganisme

I. Isolasi Mikroorganisme Selulolitik a. Pengambilan Sampel

Tanah Gambut diambil dari Desa Ajamu Kabupaten Labuhan Batu dan kayu diambil dari Fakultas Pertanian Universitas Sumatera Utara Medan.

b. Pengkayaan

Pengkayaan ini bertujuan untuk memperbanyak mikroorganisme yang ada pada tanah gambut dan kayu. Tanah gambut dan kayu ditimbang sebanyak 10 g dan dimasukkan kedalam media Selulosa Agar sebagai pengganti bahan selulosa. Kemudian diinkubasi selama 2 minggu.

c. Isolasi Mikroorganisme Selulolitik

Isolasi ini bertujuan untuk memisahkan mikroorganisme selulolitik dari habitat aslinya dan ditumbuhkan ke media buatan yaitu Hans, Asparagine, dan Ken Knight. Media Selulosa Agar padat dituang ke dalam cawan petri. Dari media yang diperkaya diambil 1 gr lalu dibuat pengenceran 10-3. Dari pengenceran terakhir di goreskan 1 ose pada media spesifik yaitu Hans untuk bakteri, Asparagine untuk jamur dan Ken Knight untuk aktinomicetes dan diinkubasi selama 2 minggu. Koloni yang terbentuk dari goresan tadi menandakan adanya aktivitas mikroorganisme selulolitik. Hal ini terlihat adanya zona transparan pada goresa. Kemudian dilakukan purifikasi agar didapat koloni yang seragam. Setelah

diperoleh isolat yang seragam dipindahkan ke media agar miring. Kemudian dipindahkan ke lemari es pada suhu 4˚C hingga pengujian berikutnya.

II. Uji Potensi Mikroorganisme Selulolitik 1. Uji Potensi Pada Media Cair

a. Kualitatif

Dibuat media cair Selulosa Agar sebanyak 1 L, kemudian dimasukkan kedalam tabung reaksi. Diambil 1 ose dari masing-masing isolat koleksi kemudian dimasukkan ke dalam media Selulosa Agar tadi dan diinkubasi selama 1 hari. Dibuat Media Selulosa Agar +CMC (Carboxymethyl Cellulose), kemudian dimasukkan kedalam tabung reaksi sebanyak 39 buah. Dipipet 1 mL media kultur dan dimasukkan kedalam 10 mL media Selulosa Agar + CMC selanjutnya diinkubasi selama 4 hari. Kemudian media kultur disentrifugasi dengan kecepatan 5000 rpm selama 20 menit. Supernatannya diambil sebanyak 5 mL dimasukkan kedalam tabung reaksi dan ditambahkan 1 ml Fehling A dan B, kemudian dikocok hingga homogen dan dipanaskan pada air mendidih selama 30 menit. Diamati gula reduksinya secara kualitatif ditandai dengan adanya endapan merah bata. Banyaknya endapan merah bata dibandingkan dengan kontrol. Jika endapan merah bata pada sampel pertama ada sedikit gula reduksi maka diberi tanda (+), jika sampel kedua lebih banyak gula reduksi dari sampel pertama diberi tanda (++), jika sampel ketiga lebih banyak gula reduksi dari sampel kedua maka sampel diberi tanda (+++).

b. Kuantitatif

Dibuat media cair Selulosa Agar cair sebanyak 1 L, kemudian dimasukkan kedalam tabung reaksi. Diambil 1 ose isolat dan dimasukkan kedalam media cair

tersebut, kemudian media kultur diinkubasi selama 7 dan 14 hari. Pada setiap masa inkubasi media kultur diambil sebanyak 10 mL dan disentrifugasi kemudian diambil supernatannya untuk dianalisis gula reduksinya secara kuantitatif dengan metode Nelson-Somogyi.

Untuk menentukan kadar gula reduksi secara kuantitatif terlebih dahulu kita persiapkan Regensia Nelson, Larutan Arsenomolybdat dan larutan Pb-Asetat. I. Penyiapan Reagensia

1. Reagensia Nelson Reagensia Nelson A

Ditimbang 12,5 gr Natrium karbonat anhidrat; 12,5 gr garam Rochelle (K-Na tetrat); 10 gr (K-Natrium bikarbonat dan 100 gr (K-Natrium Sulfat anhidrat dilarutkan dalam 350 mL air suling dan diencerken sampai 500 mL.

Reagensia Nelson B

Ditimbang 7,5 gr CuSO45H2O dilarutkan dalam 50 mL air suling dan

ditambahkan 1 tetes asam sulfat pekat.

Reagensia Nelson dibuat dengan mencampurkan 25 bagian reagensia Nelson A dan 1 bagian Nelson B. Pencampuran dilakukan pada hari akan digunakan.

2. Larutan Arsenomolybdat

Ditimbang 25 gr Amonium molybdat dilarutkan dalam 450 mL air suling dan ditambahkan 25 mL asam sulfat pekat. Pada tempat yang lain dilarutkan 3 gr Na2H2SO47H2O dalam 25 mL air suling, kemudian larutan

berwarna coklat dan diinkubasi selama 24 jam. Reagensia ini baru dapat digunakan setelah masa inkubasi tersebut, reagensia ini berwarna kuning. 3. Larutan Pb-asetat

Ditimbang 10 gr Pb-asetat anhidrat, dilarutkan dalam 100 mL aquades, kemudian dinetralkan dengan NaOH. Untuk menghilangkan kelebihan Pb yang digunakan dalam penjernihan, tambahkan kedalam filtrat K atau Na-oksalat anhidrat secukupnya.

Kemudian dibuat larutan glukosa standart dengan konsentrasi 2, 4, 6, 8, dan 10 mg/100 mL sehingga diperoleh Tabel seperti berikut :

Tabel 1. Pengenceran Larutan Glukosa Standart Tabung

Reaksi

mL larutan 0,2 mg glukosa/mL

mL aquadest mL glukosa/mL

1 2 3 4 5 6 7 8 9 10 11

0 0,1 0,2 0,3 0,4 0,5 0,6 0,7 0,8 0,9 1,0

1 0,9 0,8 0,7 0,6 0,5 0,4 0,3 0,2 0,1 0

0 0,02 0,04 0,06 0,08 0,10 0,12 0,14 0,16 0,18 0,20

Masing-masing larutan dipipet sebanyak 1 mL dan dimasukkan kedalam tabung reaksi, ditambahkan 1 mL reagensia Nelson, dipanaskan semua tabung pada air mendidih selama 20 menit. Kemudian didinginkan, setelah dingin tambahkan 7 mL reagensia Arsenomolybdat dan diguncang hingga larut. Kemudian ditambahkan 7 mL aquadest diguncang hingga homogen. Nilai absorbansi diukur dengan mengukur larutan standart tersebut pada panjang

gelombang 541 nm. Dari perlakuan diatas diperoleh data kalibrasi seperti pada Tabel berikut ini :

Tabel 2. Data Kalibrasi Larutan Glukosa Standar

NO Xi Yi Xi2 Yi2 XiYi

1 0,02 0,165 0,0004 0,027225 0,00330

2 0,04 0,233 0,0016 0,054289 0,00932

3 0,06 0,302 0,0036 0,091204 0,01812

4 0,08 0,363 0,0064 0,131769 0,02904

5 0,10 0,421 0,0100 0,177241 0,04210

6 0,12 0,480 0,0144 0,230400 0,05760

7 0,14 0,547 0,0186 0,293764 0,07580

8 0,16 0,605 0,0256 0,366025 0,09680

9 0,18 0,661 0,0324 0,436921 0,11898

10 0,20 0,720 0,04003 0,518400 0,14400

4,492 0,1540 2,327238 0,59514

Keterangan : Xi : konsentrasi glukosa standart

Yi : Absorbansi pada panjang gelombang = 541 dan n = 10

Dibuat persamaan regresi dengan memakai data-data tersebut :

Y = a + bx, sehingga diperoleh Y = 0,1125 + 3,061x, dengan r = 0,997 dimana : Y = Absorbansi, x = konsentrasi gula reduksi (mg/mL). Setelah diketahui nilai x, kemudian disubsitusikan pada persamaan :

Kadar gula reduksi (%) = A x FP x 100% S

Dengan :

A = Konsentrasi gula reduksi dari perhitungan persamaan regresi (mg/mL) FP = Faktor pengenceran

S = Berat sampel kering (mg)

Untuk mengukur media kultur sama prosedurnya dengan pelaksanaan pembuatan larutan standar. Untuk menghitung kadar gula reduksi dari media kultur harus diketahui persamaan regresi dengan menggunakan data larutan standar. Kadar gula reduksi dapat diketahui melalui persamaan :

Kadar gula reduksi : A x FP x 100% S

A = K onsentrasi gula reduksi dan perhitungan persamaan regresi mg/mL FP = Faktor pengencer

S = Berat sampel kering (mg)

Metode Penelitian

Hasil uji pada media cair Selulosa Agar secara kualitatif dari 38 mikroorganisme selulolitik tidak ada yang tidak menghasilkan endapan merah bata. Sehingga semua isolat mikroorganisme tersebut perlu diuji lagi pada media cair secara kuantitatif. Percobaan pada media cair ini menggunakan metode Rancangan Acak Lengkap (RAL) Non Faktorial dengan satu faktor Mikroorganisme Selulolitik yang terdiri dari 39 perlakuan dan 2 ulangan dengan menggunakan uji beda rataan Duncan Multiple Range Test :

1. SUKJ 1 : Kayu yang mengandung jamur 1 pada media SA

2. SUKJ 2 : Kayu yang mengandung jamur 2 pada media SA

3. SUKJ 4 : Kayu yang mengandung jamur 4 pada media SA

4. SUKJ 5 : Kayu yang mengandung jamur 5 pada media SA 5. SUKJ 7 : Kayu yang mengandung jamur 7 pada media SA 6. SUKJ 8 : Kayu yang mengandung jamur 8 pada media SA

7. SUKJ 9 : Kayu yang mengandung jamur 9 pada media SA

8. SUKJ 10 : Kayu yang mengandung jamur 10 pada media SA 9. SUKJ 11 : Kayu yang mengandung jamur 11 pada media SA

10. SUKJ 12 : Kayu yang mengandung jamur 12 pada media SA 11. MUKJ 1: Kayu yang mengandung jamur 1 pada media MYA

12. MUKJ 2: Kayu yang mengandung jamur 2 pada media MYA 13. MUKJ 3 : Kayu yang mengandung jamur 3 pada media MYA 14. MUKJ 5 : Kayu yang mengandung jamur 5 pada media MYA 15. MUKJ 6 : Kayu yang mengandung jamur 6 pada media MYA 16. MUKJ 7: Kayu yang mengandung jamur 7 pada media MYA 17. MUKJ 8 : Kayu yang mengandung jamur 8 pada media MYA 18. MUKJ 9: Kayu yang mengandung jamur 9 pada media MYA 19. MUKJ 10 : Kayu yang mengandung jamur 10 pada media MYA 20. SAGJ 1 : Gambut yang mengandung jamur 1 pada media SA 21. SAGJ 2 : Gambut yang mengandung jamur 2 pada media SA 22. MAGJ 1 : Gambut yang mengandung jamur 1 pada media MYA 23. MAGJ 2 : Gambut yang mengandung jamur 2 pada media MYA 24. SUKA 1 : Kayu yang mengandung aktinomicetes 1 pada media SA 25. SUKA 2: Kayu yang mengandung aktinomicetes 2 pada media SA 26. SUKA 3 : Kayu yang mengandung aktinomicetes 3 pada media SA 27. SUKB 1 : Kayu yang mengandung bakteri 1 pada media SA

28. SUKB 2 : Kayu yang mengandung bakteri 2 pada media SA 29. SUKB 3 : Kayu yang mengandung bakteri 3 pada media SA 30. MUKB 1 : Kayu yang mengandung bakteri 1 pada media MYA 31. MAGB 1 : Gambut yang mengandung bakteri 1 pada media MYA 32. MAGB 2 : Gambut yang mengandung bakteri 2 pada media MYA 33. SAGA 1 : Gambut yang mengandung aktinomicetes pada media SA 34. H 34 : Aktinomicetes Koleksi laboratorium

36. PH 12 : Bakteri Koleksi laboratorium 37. H 27 : Bakteri Koleksi laboratorium 38. TA 5 : Aktinomicetes Koleksi laboratorium 39. KONTROL

Sehingga total unit percobaan adalah 78 unit.

Adapun model linier dari rancangan percobaan yang dipergunakan dalam penelitian ini adalah:

Yij= µ + i + ij

Dengan :

Yij : nilai pengamatan hasil penelitian pada perlakuan ke-i ulangan ke-j

µ : nilai rerata (mean) harapan

i : pengaruh faktor perlakuan jenis isolat ij : pengaruh galat

2. Uji Potensi Pada Media Kayu

Kayu segar dicacah dengan ukuran ± 5 cm. Lalu ditimbang setiap perlakuan 100 gr, sebelumnya dilakukan analisis C/N awal pada kayu tersebut. Kemudian dinokulasikan isolat jamur, bakteri dan aktinomicetes sesuai perlakuan dan dimasukkan kedalam plastik. Kemudian diaduk dan dimasukkan kedalam ember. Rasio C/N diukur dan dilakukan pembalikan setiap 5, 10, 15, 20, 25, 30 hari.

Metode Penelitian Pada Media Kayu

Dari hasil uji potensi pada media Selulosa Agar cair secara kuantitatif masing-masing isolat jamur, bakteri, dan aktinomicetes diambil yang terbaik.

Percobaan pada media kayu ini menggunakan metode Rancangan Acak Lengkap (RAL) Non Faktorial dengan satu faktor Mikroorganisme Selulolitik yang terdiri dari 19 perlakuan dan 2 ulangan. Dengan menggunakan uji beda rataan Duncan Multiple Range Test :

1. SUKJ 1 : Kayu yang mengandung jamur 1 pada media SA 2. SUKJ 2 : Kayu yang mengandung jamur 2 pada media SA 3. SUKJ 5 : Kayu yang mengandung jamur 5 pada media SA 4. MUKJ 1 : Kayu yang mengandung jamur 1 pada media MYA 5. MUKJ 9 : Kayu yang mengandung jamur 9 pada media MYA 6. SAGJ 1 : Gambut yang mengandung jamur 1 pada media SA 7. SAGJ 2 : Gambut yang mengandung jamur 2 pada media SA 8. MAGJ 1 : Gambut yang mengandung jamur 1 pada media MYA 9. MAGJ 2 : Gambut yang mengandung jamur 2 pada media MYA 10. SUKA 3 : Kayu yang mengandung aktinomicetes 3 pada media SA 11. SUKB 1 : Kayu yang mengandung bakteri 1 pada media SA

12. SUKB 2 : Kayu yang mengandung bakteri 2 pada media SA 13. SAGB 1 : Gambut yang mengandung bakteri 1 pada media SA 14. H 34 : Aktinomicetes koleksi laboratorium

15. BB 31 : Bakteri koleksi laboratorium 16. PH 12 : Bakteri koleksi laboratorium 17. H 27 : Bakteri koleksi laboratorium

18. TA 5 : Aktinomicetes koleksi laboratorium 19. KONTROL

Adapun model linier dari rancangan percobaan yang dipergunakan dalam penelitian ini adalah:

Yij= µ + i + ij

Dengan :

Yij : nilai pengamatan hasil penelitian pada perlakuan ke-i ulangan ke-j

µ : nilai rerata (mean) harapan

i : pengaruh faktor perlakuan jenis isolat ij : pengaruh galat

Parameter yang Diamati

1. Analisis kadar gula reduksi kuantitatif metode Nelson-Somogyi 2. Analisis C/N media kayu

3. Bobot kayu (g) 4. Serat, warna dan bau

HASIL DAN PEMBAHASAN

Hasil

I. Isolasi Mikroorganisme Selulolitik

Dari kayu dan tanah gambut yang digunakan berhasil diperoleh beberapa isolat mikroorganisme selulolitik sebagaimana yang disajikan pada Tabel 3.

Tabel 3. Hasil Isolasi Mikroorganisme Selulolitik yang Diisolasi dari Kayu dan Tanah Gambut

Jenis MOS Jumlah Isolat

1. Kayu Jamur Bakteri Aktinomicetes

Media SA 10

3 3

Media MYA 9 1 - 2. Tanah gambut

Jamur Bakteri Aktinomicetes

2 2 1

2 - -

Dari Tabel 3 terlihat bahwa jumlah mikroorganisme terbanyak yaitu pada jamur sebanyak 19 isolat dari kayu dan 4 isolat dari tanah gambut lalu diikuti isolat bakteri sebanyak 4 isolat dari kayu dan 2 isolat dari tanah gambut sedangkan yang paling sedikit pada aktinomicetes sebanyak 3 isolat dari kayu dan 1 isolat dari tanah gambut.

Dari sampel kayu dan tanah gambut yang diuji, ditemukan mikroorganisme selulolitik sebanyak 33 isolat yaitu 26 isolat dari kayu ( 19 jamur, 3 aktinomicetes, 4 bakteri) dan 7 isolat dari tanah gambut ( 4 jamur, 1 aktinomicetes, 2 bakteri).

II. Uji Potensi Mikroorganisme Selulolitik 1. Uji Potensi Pada Media Cair Selulosa Agar a. Uji Potensi Secara Kualitatif

Dari hasil uji potensi mikroorganisme selulolitik pada media Selulosa Agar cair + Carboxymethyl Cellulose secara kualitatif seperti pada Tabel 4.

Tabel 4. Hasil Uji Potensi Secara Kualitatif Berbagai Isolat Mikroorganisme Selulolitik yang Diisolasi dari Kayu dan Tanah Gambut.

Kode Isolat Gula Reduksi

SUKJ 1 (jamur) SUKJ 2(jamur) SUKJ 4(jamur) SUKJ 5(jamur) SUKJ 7(jamur) SUKJ 8(jamur) SUKJ 9(jamur) SUKJ 10 (jamur) SUKJ 11(jamur) SUKJ 12 (jamur)

MUKJ 1(jamur) MUKJ 2 (jamur) MUKJ 3(jamur) MUKJ 5(jamur) MUKJ 6 (jamur) MUKJ 7(jamur) MUKJ 8(jamur) MUKJ 9(jamur) MUKJ 10(jamur)

SAGJ 1(jamur) SAGJ 2(jamur) MAGJ 1(jamur) MAGJ 2(jamur) SUKA 1(aktinomicetes) SUKA 2(aktinomicetes) SUKA 3(aktinomicetes)

SUKB 1(bakteri) SUKB 2(bakteri) SUKB 3(bakteri) MUKB 1(bakteri)

SAGB 1(bakteri) SAGB 2 (bakteri) SAGA 1(aktinomicetes)

H 34 (aktinomicetes) BB 31 (bakteri)

+++ +++ ++ ++ + ++ ++ + +++ ++ + + + +++ +++ ++ ++ + ++ ++ +++ + ++ ++ ++ + ++ ++ +++ ++ +++ ++ + +++ ++

PH 12 (bakteri) H 27 (bakteri) TA 5 (aktinomicetes) KONTROL (tanpa perlakuan)

+++ +++ ++

- Keterangan : - : tidak ada gula reduksi

+ : sedikit gula reduksi ++ : banyak gula reduksi +++ : sangat banyak gula reduksi

Dari Tabel 4 diatas terlihat bahwa pada kayu kelompok jamur yang paling banyak menghasilkan gula reduksi adalah SUKJ 1, SUKJ 2, SUKJ 11, MUKJ 5, MUKJ 6. Dari kelompok bakteri yang banyak menghasilkan gula reduksi adalah SUKB 3. Dari kelompok aktinomicetes yang paling banyak menghasilkan gula reduksi adalah SUKA 1dan SUKA 2. Sedangkan pada tanah gambut kelompok jamur yang paling banyak menghasilkan gula reduksi adalah SAGJ 2. Dari kelompok bakteri yang paling banyak menghasilkan gula reduksi adalah SAGB 1. Dari kelompok aktinomicetes yang paling banyak menghasilkan gula reduksi adalah SAGA 1. Dan yang tidak mampu menghasilkan gula reduksi adalah pada KONTROL.

b. Uji Potensi Secara Kuantitatif.

Untuk mengetahui jumlah gula reduksi yang dihasilkan masing-masing isolat pada media Selulosa Agar cair terlebih dahulu dihitung persamaan regresinya dari larutan glukosa standar dari berbagai konsentrasi dan absorbansi disajikan pada lampiran.

Hasil uji potensi secara kuantitatif gula reduksi pada media cair Selulosa Agar pada masa inkubasi 7 hari dan 14 hari dapat dilihat pada Tabel 5.

Tabel 5. Hasil Uji Potensi Secara Kuantitatif Berbagai Isolat Mikroorganisme Selulolitik Yang Diisolasi Dari Kayu dan Tanah Gambut Pada Pengamatan 7-14 Hari Setelah Inkubasi

Kode isolat Gula Reduksi (Mg/L)

7 HSI 14 HSI

SUKJ 1 (jamur) SUKJ 2(jamur) SUKJ 4(jamur) SUKJ 5(jamur) SUKJ 7(jamur) SUKJ 8(jamur) SUKJ 9(jamur) SUKJ 10 (jamur) SUKJ 11(jamur) SUKJ 12 (jamur)

MUKJ 1(jamur) MUKJ 2 (jamur) MUKJ 3(jamur) MUKJ 5(jamur) MUKJ 6 (jamur) MUKJ 7(jamur) MUKJ 8(jamur) MUKJ 9(jamur) MUKJ 10(jamur)

SAGJ 1(jamur) SAGJ 2(jamur) MAGJ 1(jamur) MAGJ 2(jamur) SUKA 1(aktinomicetes) SUKA 2(aktinomicetes) SUKA 3(aktinomicetes)

SUKB 1(bakteri) SUKB 2(bakteri) SUKB 3(bakteri) MUKB 1(bakteri)

SAGB 1(bakteri) SAGB 2 (bakteri) SAGA 1(aktinomicetes)

H 34 (aktinomicetes) BB 31 (bakteri) PH 12 (bakteri) H 27 (bakteri) TA 5 (aktinomicetes)

KONTROL 18,5 a 18,5 a 7,15 g 18 a 4,7 ij 2,9 lm 6,15 h 2,9 lm 9,05 ef 3,4 kl 10,55 de 3,4 kl 2,1 m 8,1 fg 2,9 lm 11,5 d 3,4 lm 14 c 11,5 d 3,1 l 18,5 a 13 cd 14,5 bc 6,65 gh 2,1 m 7,15 g 12 d 5,65 hi 7,1 g 2,1 m 7,65 g 3,1 l 3,9 jk 14,5 bc 17 ab 18,5 a 14 c 12 d 0,3 n 41 a 38,5 a 26,5 c 35 a 24,5 ef 21,5 i 25 e 27 cd 31,5 ab 25,5 de 34 a 23 gh 21 i 28 bc 23,5 fg 35 a 26 d 36,5 a 33,5 a 24 f 39,5 a 34,5 a 36,5 a 25 e 24 fg 28 bc 32,5 a 22 hi 28 bc 21,5 i 27 cd 26 d 26 d 38 a 41 a 42 a 34,5 a 34 a 3,12 j

Ket : Angka yang diikuti dengan huruf yang sama menunjukkan tidak berbeda nyata taraf 5 % menurut DMRT.

Dari Tabel 5 terlihat bahwa pada masa inkubasi 7 hari yang menghasilkan gula reduksi tertinggi adalah SUKJ 1, SUKJ 2, MAGJ 2, PH 12 sebesar 18,5

diikuti BB 31 sebesar 17 dan terendah pada Kontrol sebesar 0,3.

Pada masa inkubasi 14 hari yang menghasilkan gula reduksi tertinggi adalah PH 12 sebesar 42 diikuti dengan BB 31 dan SUKJ 1 sebesar 41 dan terendah pada Kontrol sebesar 3,12.

III. Uji Potensi Media Kayu

Dari hasil uji potensi kuantitatif diambil isolat untuk diuji potensinya pada media kayu. Hasil uji potensi pada media kayu seperti terlihat pada Tabel 4.

Tabel 6. Hasil Uji Potensi pada Media Kayu dari Berbagai Isolat Mikroorganisme Selulolitik yang Diisolasi dari Kayu dan Tanah Gambut.

Kode Isolat

Rasio C/N (%) 5 HSI 10 HSI 15 HSI 20 HSI 25 HSI 30 HSI SUKJ 1 SUKJ 2 SUKJ 5 MUKJ 1 MUKJ 9 SAGJ 1 SAGJ 2 MAGJ 1 MAGJ 2 SUKA 3 SUKB 1 SUKB 2 SAGB 1 H 34 BB 31 PH 12 H 27 TA 5 KONTROL 49.29 47.39 45.5 50.29 50.36 46.14 47.39 46.89 48.71 46.44 46.49 48.12 47.85 47.13 46.01 47.59 47.89 47.59 52.62 78.04 abc 64.04 efg 58.87 g 64.55 efg 63.03 efg 80.22 ab 79.14 ab 72.66 bcdef 73.46 bcde 66.21 defg 77.11 abcd 66.77 cdefg 80 ab 62.56 efg 69.68 bcdefg 61.41 fg 61.54 fg 59.29 g 87.94 a 48.04 ab 43.29 cdef 41.47 f 48.7 ab 47.35 abc 45.41 bcdef 45.12 bcdef 45.97 bcde 46.55 bcd 48.49 ab 49.09 ab 45.17 bcdef 45.34 bcdef 43.03 def 42.59 def 42.47 def 43.13 cdef 42.14 ef 51.25 a 43.01 ab 38.22 ef 36.55 f 43.33 ab 41.11 bcd 39.29 cdef 39.29 cdef 39.35 cdef 41.21 bcd 41.6 bc 42.81 b 39.23 cdef 39.57 cde 38.07 ef 37.87 ef 37.12 ef 38.42 def 37.31 ef 45.87 a 38.19 ab 34.49 cdef 32.12 f 38.16 ab 36.33 bcd 34.12 cdef 33.79 def 35.31 cde 36.7 abc 35.9 bcd 36.72 bc 34.55 cdef 34.7 cdef 33.34 ef 33.78 def 32.99 ef 33.65 def 32.71 ef 39.3 a 32.66 abc 29.96 defgh 27.71 h 33.35 ab 31 bcde 28.63 efgh 28.34 fgh 30.29 cdefg 30.59 cdef 29.97 defgh 31.65 abcd 30.09 defgh 29.79 defgh 27.88 gh 28.87 efgh 27.84 gh 28.82 efgh 28.35 fgh 33.61 a Ket. Angka yang diikuti huruf yang sama menunjukkan tidak berbeda nyata pada taraf 5 % menurut DMRT.

Dari Tabel 6 terlihat bahwa pada masa inkubasi 5 hari penurunan Rasio C/N tertinggi terdapat pada perlakuan SUKJ 5sebesar 45.5% diikuti oleh H 34 sebesar 47.13% sedangkan penurunan C/N terendah terdapat pada kontrol sebesar 52.62%.

Pada masa inkubasi 10 hari penurunan C/N tertinggi terdapat pada perlakuan SUKJ 5sebesar 58.87% diikuti oleh TA 5 sebesar 59.29% sedangkan penurunan C/N terendah terdapat pada perlakuan kontrol sebesar 87.94%.

Pada masa inkubasi 15 hari penurunan C/N tertinggi terdapat pada perlakuan SUKJ 5sebesar 41.47% diikuti oleh TA 5 sebesar 42.14% sedangkan penurunan C/N terendah terdapat pada perlakuan kontrol sebesar 51.25%.

Pada masa inkubasi 20 hari penurunan C/N tertinggi terdapat pada perlakuan SUKJ 5sebesar 36.55% diikuti oleh PH 12 sebesar 37.12% sedangkan penurunan C/N terendah terdapat pada perlakuan kontrol sebesar 45.87%.

Pada masa inkubasi 25 hari penurunan C/N tertinggi terdapat pada perlakuan SUKJ 5sebesar 32.12% diikuti oleh TA 5 sebesar 32.71% sedangkan penurunan C/N terendah terdapat pada perlakuan kontrol sebesar 39.3%.

Pada masa inkubasi 30 hari penurunan C/N tertinggi terdapat pada perlakuan SUKJ 5sebesar 27.71% diikuti oleh TA 5 sebesar 28.35% sedangkan penurunan C/N terendah terdapat pada perlakuan kontrol sebesar 33.61%

IV. Bobot Kayu

Dari hasil uji potensi kuantitatif diambil isolat untuk diuji potensinya menurunkan bobot kayu.Hasil dari penurunan bobot kayu seperti terlihat pada Tabel 7.

Tabel 7. Hasil Penurunan Bobot Kayu dari Berbagai Mikroorganisme Selulolitik yang Diisolasi dari Kayu dan Tanah Gambut.

Kode Isolat

Bobot Kayu (g) 5 HSI 10 HSI 15 HSI 20 HSI 25 HSI 30 HSI SUKJ 1 SUKJ 2 SUKJ 5 MUKJ 1 MUKJ 9 SAGJ 1 SAGJ 2 MAGJ 1 MAGJ 2 SUKA 3 SUKB 1 SUKB 2 SAGB 1 H 34 BB 31 PH 12 H 27 TA 5 KONTROL 104.35 104.2 101.1 104.15 104.15 104.75 104.8 103.35 104 103.55 103.45 104.25 103.2 102.2 102.65 102.95 102.75 103.5 105.45 99.8 100.25 97.4 99.4 99.35 99.95 99.35 99.8 99.9 100.05 99.85 99.9 99.75 98.85 99.1 99.2 99.20 99.15 103.25 98.6 99.9 96.95 99.05 98.5 99.6 98.9 98.5 98.7 96.45 98.85 98.75 99.25 97.75 98.05 98.25 98.25 98.35 100.2 97.95 99 95.8 97.6 97.25 98.5 97.5 97.35 97.95 97.5 97.5 97.3 97.65 96.14 96.35 96.55 97 97.25 99.65 96.75 98.2 94.7 96.7 96.35 97.5 96.7 97.7 96.7 96.7 96.25 96.35 97 95.3 95.55 95.8 96.2 96.25 98.85 95.65 94.85 93.05 95.1 96.3 95 95.95 95.05 95.75 95.2 95.25 95.25 94.5 93.45 93.6 93.65 94.1 94.3 98.4

Dari Tabel 7 terlihat bahwa pada masa inkubasi 5 hari penurunan bobot kayu tertinggi terdapat pada perlakuan SUKJ 5sebesar 101.1 g diikuti oleh H 34 sebesar 102.2 g sedangkan penurunan bobot kayu terendah terdapat pada kontrol sebesar 105.45 g.

Pada masa inkubasi 10 hari penurunan bobot kayu tertinggi terdapat pada perlakuan SUKJ 5sebesar 97.4 g diikuti oleh H 34 sebesar 98.85 g sedangkan penurunan bobot kayu terendah terdapat pada kontrol sebesar 103.25 g.

Pada masa inkubasi 15 hari penurunan bobot kayu tertinggi terdapat pada perlakuan SUKJ 5 sebesar 96.95 g diikuti oleh H 34 sebesar 97.75 g sedangkan penurunan bobot kayu terendah terdapat pada kontrol sebesar 100.2 g.

Pada masa inkubasi 20 hari penurunan bobot kayu tertinggi terdapat pada perlakuan SUKJ 5sebesar 95.8 g diikuti oleh H 34 sebesar 96.14 g sedangkan penurunan bobot kayu terendah terdapat pada kontrol sebesar 99.65 g.

Pada masa inkubasi 25 hari penurunan bobot kayu tertinggi terdapat pada perlakuan SUKJ 5 sebesar 94.7 g diikuti oleh H 34 sebesar 95.3 g sedangkan penurunan bobot kayu terendah terdapat pada kontrol sebesar 98.85 g.

Pada masa inkubasi 30 hari penurunan bobot kayu tertinggi terdapat pada perlakuan SUKJ 5 sebesar 93.05 g diikuti oleh H 34 sebesar 93.45 g sedangkan penurunan bobot kayu terendah terdapat pada kontrol sebesar 98.4 g.

V. Serat Kayu

Dari hasil uji potensi kuantitatif diambil isolat untuk diuji potensinya menguraikan serat kayu. Hasil dari penguraian serat kayu seperti terlihat pada Tabel 8.

Tabel 8. Hasil Penguraian Serat Kayu dari Berbagai Mikroorganisme Selulolitik yang Diisolasi dari Kayu dan Tanah Gambut.

Kode Isolat Serat Kayu 5 HSI 10 HSI 15 HSI 20 HSI 25 HSI 30 HSI SUKJ 1 SUKJ 2 SUKJ 5 MUKJ 1 MUKJ 9 SAGJ 1 SAGJ 2 MAGJ 1 MAGJ 2 SUKA 3 SUKB 1 SUKB 2 SAGB 1 H 34 BB 31 PH 12 H 27 SK SK SK SK SK SK SK SK SK SK SK SK SK SK SK SK SK SK SK SK SK SK SK SK SK SK SK SK SK SK SK SK SK SK K K K SK SK SK K K K K SK SK SK K K K K K K K K SK SK K K K K K K SK K K K K K K AK K K K K K K AK K K K AK AK AK AK AK AK AK K K K AK AK AK AK K K AK AK AK AK AK

TA 5 KONTROL SK SK SK SK K SK K SK AK K AK K Ket : SK = Sangat Kasar

K = Kasar AK = Agak Kasar

Dari Tabel 8 terlihat bahwa penguraian serat kayu pada tiap masa inkubasi adalah tidak sama. Pada masa inkubasi 5 hari semua perlakuan menunjukkan penguraian serat kayu yang masih sangat kasar. Pada masa inkubasi 10 hari semua perlakuan juga menunjukkan penguraian serat kayu yang masih sangat kasar. Pada masa inkubasi 15 hari tingkat penguraian sudah berbeda dimana ada sebagian perlakuan yang menunjukkan penguraian serat kayu menjadi kasar. Pada masa inkubasi 20 hari hampir sama dengan masa inkubasi 15 hari. Pada masa inkubasi 25 hari menunjukkan peningkatan penguraian serat dimana ada sebagian perlakuan yang menunjukkan penguraian serat menjadi agak kasar. Pada masa inkubasi 30 hari hampir sama dengan masa inkubasi 25 hari.

VI. Warna Kayu

Dari hasil uji potensi kuantitatif diambil isolat untuk diuji potensinya merubah warna kayu. Hasil dari perubahan warna kayu terlihat pada Tabel 9. Tabel 9. Hasil Perubahan Warna Kayu dari Berbagai Mikroorganisme

Selulolitik yang Diisolasi dari Kayu dan Tanah Gambut. Kode Isolat Warna Kayu 5 HSI 10 HSI 15 HSI 20 HSI 25 HSI 30 HSI SUKJ 1 SUKJ 2 SUKJ 5 MUKJ 1 MUKJ 9 SAGJ 1 SAGJ 2 MAGJ 1 MAGJ 2 SUKA 3 CM CM CM CM CM CM CM CM CM CM CM CM CM CM CM CM CM CM CM CM CT CT CT CT CT CT CT CT CT CT CT CT CT CT CT CT CT CT CT CT CT CT CK CT CT CT CT CT CT CK CT CT CK CT CT CT CK CK CK CK

SUKB 1 SUKB 2 SAGB 1 H 34 BB 31 PH 12 H 27 TA 5 KONTROL CM CM CM CM CM CM CM CM CM CM CM CM CM CM CM CM CM CM CT CT CT CT CT CT CT CT CT CT CT CT CT CT CT CT CT CT CK CK CK CK CK CK CK CK CT CK CK CK CK CK CK CK CK CT Ket : CM = Coklat Muda

CT = Coklat Tua

CK = Coklat Kehitaman

Dari Tabel 9 terlihat bahwa perubahan warna kayu pada tiap masa inkubasi adalah tidak sama. Pada masa inkubasi 5 hari semua perlakuan menunjukkan warna coklat muda. Pada masa inkubasi 10 hari semua perlakuan juga menunjukkan warna coklat muda. Pada masa inkubasi 15 hari semua perlakuan menunjukkan warna coklat muda. Pada masa inkubasi 20 hari semua perlakuan menunjukkan warna coklat muda. Pada masa inkubasi 25 hari ada beberapa perlakuan yang sudah menunjukkan warna coklat kehitaman. Pada masa inkubasi 30 hari juga ada beberapa perlakuan yang berwarna coklat tua berubah menjadi coklat kehitaman.

VII. Bau Kayu

Dari hasil uji potensi kuantitatif diambil isolat untuk diuji potensinya merubah bau kayu. Hasil dari perubahan bau kayu terlihat pada Tabel 10.

Tabel 10. Hasil Perubahan Bau Kayu dari Berbagai Mikroorganisme Selulolitik yang Diisolasi dari Kayu dan Tanah Gambut.

Kode Isolat Bau Kayu 5 HSI 10 HSI 15 HSI 20 HSI 25 HSI 30 HSI SUKJ 1 SUKJ 2 SUKJ 5 MUKJ 1 MUKJ 9 SAGJ 1 TB TB TB TB TB TB B B B B B B TB TB TB TB TB TB TB TB TB TB TB TB TB TB TB TB TB TB TB TB TB TB TB TB

SAGJ 2 MAGJ 1 MAGJ 2 SUKA 3 SUKB 1 SUKB 2 SAGB 1 H 34 BB 31 PH 12 H 27 TA 5 KONTROL TB TB TB TB TB TB TB TB TB TB TB TB TB B B B B B B B B B B B B B TB TB TB TB TB TB TB TB TB TB TB TB TB TB TB TB TB TB TB TB TB TB TB TB TB TB TB TB TB TB TB TB TB TB TB TB TB TB TB TB TB TB TB TB TB TB TB TB TB TB TB TB Ket : TB = Tidak Bau

B = Bau

Dari Tabel 10 terlihat bahwa perubahan bau kayu pada tiap masa inkubasi adalah sama. Pada masa inkubasi 5 hari semua perlakuan tidak mengeluarkan bau. Pada masa inkubasi 10 hari semua perlakuan mengeluarkan bau. Pada masa 15, 20, 25 dan 30 hari semua perlakuan tidak mengeluarkan bau.

Pembahasan I. Isolasi Mikroorganisme Selulolitik

Dari sampel kayu dan tanah gambut yang diuji, ditemukan mikroorganisme selulolitik sebanyak 33 isolat yaitu 26 isolat dari kayu ( 19 jamur, 3 aktinomicetes, 4 bakteri) dan 7 isolat dari tanah gambut ( 4 jamur, 1 aktinomicetes, 2 bakteri). Sutedjo dkk (1996) menyatakan bahwa proses mineralisasi dilakukan oleh berbagai mikroorganisme tanah (bakteri, cendawan, aktinomicetes). Perubahan secara fisik maupun kimiawi yang sederhana oleh mikroorganisme tanah tadi disebut proses dekomposisi (pembusukan/pelapukan) atau kadang-kadang disebut mineralisasi. Proses dekomposisi hasilnya sangat membantu tersedianya zat-zat yang merupakan hara bagi tanaman.

Jumlah isolat jamur yang ditemukan lebih banyak daripada bakteri dan aktinomicetes . Hal ini disebabkan pengaruh faktor lingkungan, kadar air, aerasi, pH, suhu dan lain-lain. Menurut Sutedjo (1996) cendawan atau jamur berkembang dalam tingkatan reaksi yang lebih luas yaitu pada pH 3,0-9,5 sedangkan bakteri berkembang pada pH 5,0-6,0 dan aktinomicetes berkembang pada pH 5,5-9,5. II. Uji Potensi Mikroorganisme Selulolitik

1. Uji Potensi Pada Media Cair Selulosa Agar a. Kualitatif

Dari hasil uji potensi secara kualitatif yang dilakukan dengan selulosa agar+CMC berdasarkan pembentukan gula reduksi secara kualitatif ditemukan bahwa semua isolat menunjukkan hasil positif atau menghasilkan gula reduksi. Dari hasil seleksi tersebut didapat 11 isolat yang berpotensi atau sangat banyak (+++) menghasilkan gula reduksi sedangkan yang lainnya menghasilkan gula

reduksi yang sedikit. Mikroorganisme yang menghasilkan gula reduksi disebabkan karena terjadinya pemecahan enzimatik selulosa yang sempurna sedangkan yang sedikit menghasilkan gula reduksi disebabkan karena isolat tersebut tidak terjadi pemecahan enzimatik selulosa yang sempurna dimana salah satunya tahapan enzim-enzim selulase terputus atau tidak menghasilkan enzim glocosidase yang berperan penting dalam pemecahan rantai sellubiose menjadi glukosa. Isolat-isolat tersebut diperkirakan memecah selulosa bahan CMC hanya sampai pada tahap menghasilkan rantai-rantai pendek celobiose saja, yang bukan gula pereduksi. Hal ini didukung oleh pendapat Schuller (1980 dalam Cahyono danBachruddin, 1995) bahwa dalam proses perombakan secara enzimatis terjadi dengan adanya enzim selulase sebagai bahan perombak yang mempunyai sifat

spesifik untuk menghidrolisis ikatan (1,4)-glikosidik dari rantai selulosa dan derivatnya.

b. Kuantitatif

Pemberian isolat uji pada media Selulosa Agar setelah beberapa hari inkubasi yang ditentukan ditemukan bahwa sebagian besar isolat menghasilkan gula reduksi yang lebih besar dari kontrol yang dianggap mampu dan berpotensi, sebaliknya isolat-isolat yang menghasilkan gula reduksi lebih rendah tidak mampu dalam mendegradasi kayu. Rendahnya kadar gula reduksi yang dihasilkan oleh beberapa isolat uji ini, karena bahan selulosa bersifat kristalin sehingga sulit untuk diuraikan, disamping itu isolat-isolat tersebut tidak mmenghasilkan glukosa yang merupakan gula pereduksi sebagai hasil akhir dari degradasi selulosa.

Pada masa inkubasi 7 hari isolat telah menunjukkan gula reduksi yang lebih besar dari kontrol, hal ini disebabkan karena sel-sel isolat tersebut

mempunyai tingkat pertumbuhan cepat. Hal ini didukung oleh Dwijoseputro (1998) yang menyatakan bahwa pada tingkat pertumbuhan cepat ini isolasi tersebut saat dibiakkan mempunyai daya adaptasi yang cukup tinggi dan isolat-isolat tersebut menghasilkan enzim selulosa secara lengkap.

Pada masa inkubasi 14 hari, isolat menunjukkan peningkatan gula reduksi. Isolat-isolat yang menunjukkan peningkatan gula reduksi disebabkan karena sel-sel isolate memasuki pertumbuhan yang konstan. Hal tersebut yang disebabkan karena isolate-isolat tersebut memiliki sel-sel yang telah aktif membelah dan menyesuaikan diri terhadap kondisi pertumbuhan yang baru.

Dari semua inkubasi yang dilakukan tampak bahwa isolate-isolat jamur menghasilkan gula reduksi yang rata-rata lebih besar dari isolate bakteri dan aktinomicetes. Hal ini dapat disebabkan karena system enzim selulase pada jamur tidak sama dengan bakteri. Sistem enzim selulase pada jamur merupakan system enzim ekstra seluler yang terbentuk secara genetic, sedang pada bakteri merupakan system enzim periplamik yang terbentuk jika terdapat selulosa, sehingga aktivitas selulolitik dari isolate-isolat jamur lebih tinggi dari isolat bakteri.

III. Uji Potensi Pada Media Kayu

Inkubasi isolat-isolat diuji pada kayu yaitu dengan proses penguraian selama masa inkubasi yang telah ditentukan menunjukkan adanya penurunan C/N kayu yang nyata. Hal ini dikarenakan pemecahan polimer anhidroglukosa menjadi molekul sederhana yang menghasilkan oligosakarida, disakarida maupun monomer glukosa atau produk degradasi asam-asam organik ataupun alkohol atau terjadinya pemecahan rantai-rantai karbon dan senyawa-senyawa sederhana yang

diperlukan oleh sel-sel isolat yang diuji sebagai sumber karbon dan energinya. Hal ini dijelaskan oleh Lay dan Hastowo (1992) yang menyatakan bahwa sintesis asam nukleat penting untuk pembentukan komponen sel atau untuk pembentukan pertumbuhan dan perkembangan sel. Dengan adanya dekomposisi selulosa menjadi glukosa sebagai sumber energi dan karbon untuk perumbuhan komponen-komponen sel menyebabkan terjadinya pertambahan sel-sel isolat yang diuji dimana pada akhirnya pertambahan pada sel-sel ini menyebabkan peningkatan kadar nitrogen pada pengukuran kadar nitrogen pada sampel kayu setelah beberapa masa inkubasi yang telah ditentukan.

Pada masa inkubasi 5 hari, nilai ratio C/N kayu yang diinokulasikan dengan isolat-isolat uji menunjukkan adanya penurunan dibandingkan dengan kontrol. Hal ini disebabkan karena kecepatan atau tingkat aktivitas metabolisme selulosa masing-masing isolat tidak sama. Kecepatan metabolisme ini dipengaruhi oleh berbagai faktor diantaranya yaitu faktor lingkungan, kondisi bahan metabolisme atau organisme itu sendiri. Menurut Team Redaksi Trubus ( 1981) proses pengomposan dipengaruhi oleh faktor lingkungan seperti ukuran bahan, kadar air, aerasi, pH, suhu dan perbandingan C dengan N.

Pada masa inkubasi 10 hari menunjukkan peningkatan C/N dari inkubasi 5 hari. Hal ini disebabkan karena kelembaban kompos yang lebih dari 60 % sehingga terjadi proses denitrifikasi. Karena itu kadar N kompos menurun dan menyebabkan ratio C/N kayu 10 hari masa inkubasi lebih tinggi dari ratio C/N kayu 5 hari masa inkubasi.

Pada masa inkubasi 15 hari isolat uji menunjukkan penurunan C/N yang sangat nyata dibandingkan dengan kontrol. Hal ini disebabkan karena pada hari ke

15 aktivitas mikroorganisme telah berjalan sempurna sehingga menunjukkan penurunan C/N yang sangat nyata. Hal ini berarti mengindikasikan tingkat dekomposisi kayu sudah sempurna. Berarti dalam hal ini kadar C organik kayu tersebut rendah dan N total kayu tinggi sehingga ratio C/N rendah. Hal ini didukung oleh literatur Lay dan Hastowo (1992) yang menyatakan bahwa dekomposisi selulosa dapat ditentukan berdasarkan perubahan nilai ratio C/N. Bahan organik tanaman segar pada umumnya memiliki nilai ratio C/N tinggi dan sebaliknya menjadi rendah setelah mengalami dekomposisi. Perubahan nilai ratio C/N suatu bahan organik dapat disebabkan karena adanya penurunan karbon (C) dan peningkatan kadar nitrogen (N).

Pada masa inkubasi 20 hari isolat uji menunjukkan penurunan C/N yang sangat nyata dibandingkan dengan kontrol. Hal ini disebabkan karena pada hari ke 20 aktivitas mikroorganisme masih berjalan sempurna sehingga menunjukkan penurunan C/N yang sangat nyata.

Pada masa inkubasi 25 dan 30 hari isolat uji masih menunjukkan penurunan C/N yang sangat nyata dibandingkan dengan kontrol. Hal ini disebabkan karena pada hari ke 25 dan 30 aktivitas mikroorganisme masih berjalan sempurna sehingga menunjukkan penurunan C/N yang sangat nyata. IV. Bobot Kayu

Pada masa inkubasi 5 hari dekomposisi kayu menghasilkan bobot kayu yang lebih besar dari awal pengomposan. Hal ini dikarenakan mikroorganisme masih pada fase penyesuaian diri dan penambahan air mengakibatkan bobot kompos lebih berat.

Pada masa inkubasi 10 hari dekomposisi kayu menghasilkan bobot kayu yang lebih kecil dari masa inkubasi 5 hari. Hal ini disebabkan mikroorganisme mulai beraktivitas tetapi masih dalam fase penyesuain diri. Hal ini terlihat dari bobot kayu pada masa inkubasi 5 hari yang tidak jauh berbeda dengan bobot kayu pada masa inkubasi 10 hari.

Pada masa inkubasi 15, 20, 25 dan 30 hari dekomposisi kayu menghasilkan bobot kayu yang lebih kecil dari hari sebelumnya pada masing-masing masa inkubasi. Hal ini menunjukkan aktivitas mikroorganisme sudah berjalan dengan baik. Hal ini sesuai dengan literatur Murbandono (2006) yang menyatakan bahwa akibat perubahan hayati yang dilakukan oleh jasad-jasad renik adalah berat dan isi bahan kompos menjadi sangat berkurang.

V. Serat Kayu

Pada masa inkubasi 5 dan 10 hari dekomposisi kayu menunjukkan proses dekomposisi belum berjalan sempurna. Hal ini terlihat dari serat-serat kayu yang ukurannya masih sama dengan ukuran kayu pada awal dekomposisi.

Pada masa inkubasi 15 hari dekomposisi kayu menunjukkan tingkat aktivitas mikroorganisme yang berbeda. Hal ini terlihat dari bentuk serat-serat kayu yang sangat kasar atau masih seperti ukuran semula menjadi kasar.

Pada masa inkubasi 20 hari dekomposisi kayu menunjukkan hasil yang tidak jauh berbeda dengan masa inkubasi 15 hari. Namun pada masa inkubasi 20 hari ini sampel yang berserat kasar semakin banyak dari masa inkubasi sebelumnya.

Pada masa inkubasi 25 hari dekomposisi kayu menunjukkan bahwa pada masa inkubasi ini ada beberapa sampel yang seratnya menjadi agak kasar. Hal ini menunjukkan bahwa aktivitas mikroorganisme semakin tinggi.

Pada masa inkubasi 30 hari dekomposisi kayu menunjukkan hasil bahwa sampel yang berserat agak kasar semakin banyak. Hal ini menunjukkan bahwa aktivitas mikroorganisme itu berbeda-beda pada setiap masa inkubasi. Hal ini terlihat dari peningkatan hasil pada masa inkubasi 30 hari masa inkubasi

VI. Warna Kayu

Pada masa inkubasi 5 hari dekomposisi kayu menghasilkan warna yang sama pada tahap awal dekomposisi yaitu berwarna coklat muda. Hal ini disebabkan karena mikroorganisme masih dalam fase penyesuaian diri. Hal ini sesuai dengan literatur Lay dan Hastowo (1992) yang menyatakan bahwa suatu mikroorganisme yang dikultivasikan dalam suatu substrat akan mengalami bebrapa tahap pertumbuhan yaitu fase penyesuaian diri, fase logaritmik, fase stasioner dan fase kematian.

Pada masa inkubasi 10 hari dekomposisi kayu masih menghasilkan warna yang sama pada tahap dekomposisi 5 hari. Hal ini menunjukkan bahwa mikroorganisme masih dalam fase penyesuaian diri.

Pada masa inkubasi 15 dan 20 hari dekomposisi kayu menghasilkan warna yang sudah berbeda yaitu coklat tua. Hal ini menunjukkan aktivitas mikroorganisme mulai meningkat dari hari-hari sebelumnya. Hal ini disebabkan oleh faktor air yang tidak lebih dari 60%. Hal ini sesuai dengan literatur Murbandono (2006) yang menyatakan bahwa penguraian bahan organic

dipengaruhi oleh beberapa faktor antara lain kandungan lignin, kandungan N, air dan udara.

Pada masa inkubasi 25 hari dekomposisi kayu menghasilkan warna yang berbeda antara sampel. Hal ini disebabkan karena aktivitas mikroorganisme berbeda-beda. Pada masa inkubasi ini sudah ada isolat yang menunjukkan aktivitasnya yang tinggi dari pada isolat yang lainnya. Hal ini terlihat dari perubahan warna coklat tua menjadi coklat kehitaman.

Pada masa inkubasi 30 hari dekomposisi kayu menghasilkan warna yang berbeda antara sampel. Pada masa inkubasi ini telah banyak isolat yang menunjukkan aktivitas yang tinggi. Hal ini terlihat pada warna kayu yang coklat kehitaman. Semakin lama masa pengomposan maka warna dari bahan kompos akan berubah menjadi kehitaman. Hal ini sesuai dengan literatur Yuwono (2006) bahwa hasil akhir dari pengomposan adalah seperti tanah berwarna hitam kecoklatan dan gembur.

VII. Bau Kayu

Pada masa inkubasi 5 hari dekomposisi kayu tidak mengeluarkan bau atau tidak berbau. Hal ini sesuai dengan literatur Yuwono (2006) yang menyatakan bahwa pengomposan aerobik memang tidak mengeluarkan bau.

Pada masa inkubasi 10 hari dekomposisi kayu mengeluarkan bau. Hal ini dikarenakan kelembaban bahan kompos mencapai lebih dari 60%. Hal ini menyebabkan keadaan menjadi anaerobik. Menurut Yuwono (2006) bahwa pengomposan secara aerobik menghasilkan gas ammonia, gas nitrogen, dan gas metan.

Pada masa inkubasi 15, 20, 25 dan 30 hari dekomposisi kayu kembali tidak mengeluarkan bau karena keadaan kompos sudah kembali menjadi aerobik.

KESIMPULAN DAN SARAN

Kesimpulan

1. Pada kayu dan tanah gambut terdapat mikroorganisme selulolitik. Dari hasil isolasi mikroorganisme selulolitik pada kayu diperoleh 19 isolat jamur, 4 isolat bakteri dan 3 isolat aktinomicetes sedangkan pada tanah gambut diperoleh 4 isolat jamur, 2 isolat bakteri dan 1 isolat aktinomicetes.

2. Dari hasil uji potensi mikroorganisme selulolitik secara kualitatif berbagai isolat mikroorganisme selulolitik yang diisolasi dari kayu diperoleh isolat yang berpotensi adalah SUKJ I1, SUKJ I2, SUKJ I11, MUKJ I5, MUKJ I6,

SAGJ I2, SUKB I3, SAGB I1, H 34, PH 12 , H 27.

3. Dari hasil uji potensi secara kuantitatif berbagai isolat mikroorganisme selulolitik yang diisolasi dari kayu dan tanah gambut yang menghasilkan gula reduksi tertinggi secara nyata adalah PH 12 pada masa inkubasi 14 hari. 4. Dari hasil uji potensi pada media kayu yang paling berpotensi menurunkan

C/N dan menurunkan bobot kayu secara nyata adalah SUKJ I5 pada setiap hari

pengamatan.

Saran

Perlu dilakukan uji potensi mikroorganisme selulolitik dalam jangka waktu yang lebih lama untuk mendekomposisikan kayu.

DAFTAR PUSTAKA

Aini, N. 2005. Meningkatkan Kualitas Infrastruktur Bidang Pemukiman Melalui Pengembangan Teknologi Tepat Guna.http://www.pu.go.id/public/produk/Seminar/Kolokium2005/Kolokiu

m20050pdf#Search=jamur%20pelapuk%20kayu.

Anonim. 2002. Gejala Pelapukan Untuk Proses Industri.

Aaronson, S. 1970. Experimental Microbial Ecology. Academic Press, New York San Fransisco, London.

Azhari. 2000. Pengaruh Penggunan Mikroorganisme Selulolitik Terhadap PengomposanTandan Kosong Kelapa Sawit. Fakultas Pertanian Universitas Sumatera Utara. Medan.

Blanchard, R. O and T. A Thompson, 2006. Selective Isolation of Basidiomycetes In Felled Wood and Contiguous Soil. Plant Biology, University of New Hampshire, Durham, NH, USA.http://www.bssp.org. Uk/icpp98/3.7/10.html.

Cahyono, W.W dan Z. Bacharuddin. 1995. Pengaruh Pakan Serat Kasar dari Jerami Padi Terhadap Aktivitas Enzim Selulase dan Hemiselulase

Cairan Rumen Ternak Ruminansia. Berkala Penelitian Pasca

Sarjana UGM Vol. 8 Yogyakarta.

Djuarnani, N., Kristian dan B. S. Setiawan. 2005. Cara Cepat Membuat Kompos. Agromedia Pustaka. Jakarta

Dwijoseputro. D. 1998. Dasar-Dasar Mikrobiologi. Djambatan, Jakarta.

Heddy, S., W. H. Sutanto dan M. Kurniati. 1994. Pengantar Produksi Tanaman dan Pangan Pasca Panen. Raja Grafindo Persada. Jakarta.

Kuswandi. 1993. Pengapuran Tanah Pertanian. Kanisius. Yogyakarta. Lay. B. W dan S. Sastowo. 1992. Mikrobiologi. Rajawali Press. Jakarta

Magdalena, M. 2003. Alam Menginspirasi Teknologi Ramah

Lingkungan.http:/

Moat, A. G., and J. W. Foster. 1988. Microbial Physiology. Second Edition. Jhon Wiley & Son Inc. New York.

Murbandono, L. 2006. membuat Kompos> Penebar Swadaya. Jakarta.

Norkrans, B. 1967. Cellulose and Cellulolysis. Advance in Applied Microbiology Vol. 9. Academic Press. New York.

Rao, S. 1982. Biofertilizer In Agriculture. Oxford and IBM Publishing Co. New

Delhi. Bombay. Calcutta.

. 1994. Mikroorganisme Tanah dan Pertumbuhan Tanaman. Universitas

Indonesia Press. Jakarta.

Salle, A. J. 1984. Fundamental Principless of Bacteriology. Tata Mac Graw-Hill Publishing Company Ltd. New Delhi.

Schlegel, H. G dan K. Schmidt. 1994. Mikrobiologi Umum. Edisi Ke Enam. UGM

Press. Yogyakarta.

Susanti, U. 2005. Isolasi dan Uji Potensi Mikroorganisme Selulolitik Dalam

Dekomposisi Sisa Tanaman Tembakau Deli PTPN II Kebun Sampali

Departemen Ilmu Tanah. Fakultas Pertanian. USU Medan.

Sutedjo, M. M., A. G. Kartasapoetra, dan R. D. S. Sastroatmodjo. 1996. Mikrobiologi

Tanah. Rineka Cipta. Jakarta.

Team Redaksi Trubus. 1981. Membuat Kompos. Penebar Swadaya. Jakarta. Yuwono, D. 2006. Kompos. Penebar Swadaya. Jakarta.

Lampiran 1. Gula Reduksi Media Selulosa Cair Beberapa Isolat Uji Pada Pengamatan 7 Hari Setelah Inkubasi

Kode Isolat Ulangan Total Rataan

I II

SUKJ 1 20 17 37 18,5

SUKJ 2 19 18 37 18,5

SUKJ 4 9,6 4,7 14,3 7,15

SUKJ 5 18 18 36 18

SUKJ 7 3,7 5,7 9,4 4,7

SUKJ 8 2,1 3,7 5,8 2,9

SUKJ 9 4,7 7,6 12,3 6,15

SUKJ 10 2,1 3,7 5,8 2,9

SUKJ 11 6,6 11,5 18,1 9,05

SUKJ 12 3,1 3,7 6,8 3,4

MUKJ 1 11,5 9,6 21,1 10,55

MUKJ 2 3,7 3,1 6,8 3,4

MUKJ 3 2,1 2,1 4,2 2,1

MUKJ 5 8,6 7,6 16,2 8,1

MUKJ 6 2,1 3,7 5,8 2,9

MUKJ 7 11,5 11,5 23 11,5

MUKJ 8 3,7 3,1 6,8 3,4

MUKJ 9 15 13 28 14

MUKJ 10 10 13 23 11,5

SAGJ 1 3,1 3,1 6,2 3,1

SAGJ 2 19 18 37 18,5

MAGJ 1 13 13 26 13

MAGJ 2 14 15 29 14,5

SUKA 1 5,7 7,6 13,3 6,65

SUKA 2 2,1 2,1 4,2 2,1

SUKA 3 4,7 9,6 14,3 7,15

SUKB 1 12 12 24 12

SUKB 2 7,6 3,7 11,3 5,65

SUKB 3 7,6 6,6 14,2 7,1

MUKB 1 2,1 2,1 4,2 2,1

SAGB 1 9,6 5,7 15,3 7,65

SAGB 2 3,1 3,1 6,2 3,1

SAGA 1 2,1 5,7 7,8 3,9

H 34 14 15 29 14,5

BB 31 17 17 34 17

PH 12 19 18 37 18,5

H 27 15 13 28 14

TA 5 12 12 24 12

KONTROL 0,3 0,3 0,6 0,3

Total 340.1 342.9 683 341.5

Analisis Sidik Ragam Gula Reduksi 7 Hari Setelah Inkubasi

SK db JK KT Fh F 0,05 F 0,01

Perlakuan 38 2498,77 65,76 50,20** 1,52 1,83 Galat 39 50,9 1,31

Total 77 2549,67 KK = 13,05%

Lampiran 2. Gula Reduksi Media Selulosa Cair Beberapa Isolat uji Pada Pengamatan 14 Hari Setelah Inkubasi

Kode Isolat Ulangan Total Rataan

I II

SUKJ 1 42 40 82 41

SUKJ 2 38 39 77 38,5

SUKJ 4 27 26 53 26,5

SUKJ 5 35 35 70 35

SUKJ 7 25 24 49 24,5

SUKJ 8 22 21 43 21,5

SUKJ 9 26 24 50 25

SUKJ 10 28 26 54 27

SUKJ 11 35 28 63 31,5

SUKJ 12 26 25 51 25,5

MUKJ 1 35 33 68 34

MUKJ 2 24 22 46 23

MUKJ 3 21 21 42 21

MUKJ 5 28 28 56 28

MUKJ 6 24 23 47 23,5

MUKJ 7 35 35 70 35

MUKJ 8 26 26 52 26

MUKJ 9 38 35 73 36,5

MUKJ 10 35 32 67 33,5

SAGJ 1 24 24 48 24

SAGJ 2 40 39 79 39,5

MAGJ 1 35 34 69 34,5

MAGJ 2 38 35 73 36,5

SUKA 1 24 26 50 25

SUKA 2 24 24 48 24

SUKA 3 28 28 56 28

SUKB 1 33 32 65 32,5

SUKB 2 22 22 44 22

SUKB 3 28 28 56 28

MUKB 1 21 22 43 21,5

SAGB 1 28 26 54 27

SAGB 2 24 28 52 26

SAGA 1 24 28 52 26

H 34 38 38 76 38

BB 31 42 40 82 41

PH 12 42 42 84 42

H 27 35 34 69 34,5

TA 5 33 35 68 34

KONTROL 2,18 4,06 6,24 3,12

Total 1155.18 1132.06 2287.24 1143.62

Analisis Sidik Ragam Gula Reduksi 14 Hari Setelah Inkubasi

SK db JK KT Fh F 0,05 F 0,01

Perlakuan 38 3040,88 80,023 4,44** 1,52 1,83 Galat 39 702,27 18,01

Total 77 3743,15 KK = 14,47%

Lampiran 3. Nilai C/N Yang Diinokulasikan Beberapa Isolat Uji Pada Pengamatan 5 Hari Setelah Inkubasi

Kode Isolat Ulangan Total Rataan

I II

SUKJ 1 49.26 49.32 48.58 49.29

SUKJ 2 43.64 51.14 94.78 47.39

SUKJ 5 45.5 45.5 91 45.5

MUKJ 1 52.42 48.17 100.59 50.29

MUKJ 9 53.7 47.02 100.72 50.36

SAGJ 1 42 50.28 92.28 46.14

SAGJ 2 43.64 51.14 94.78 47.39

MAGJ 1 48.28 45.5 93.78 46.89

MAGJ 2 48.17 49.26 97.43 48.71

SUKA 3 46.42 46.46 92.88 46.44

SUKB 1 48.86 44.12 92.98 46.49

SUKB 2 45.1 51.14 96.24 48.12

SAGB 1 53.7 42 95.7 47.85

H 34 41.29 52.98 94.27 47.13

BB 31 49.32 42.71 92.03 46.01

PH 12 48.17 47.02 95.19 47.59

H 27 49.75 46.03 95.78 47.89

TA 5 48.17 47.02 95.19 47.59

KONTROL 55.92 49.32 105.24 52.62

Total 913.31 906.13 1819.44 909.69

Rataan 47.87

Analisis Sidik Ragam Ratio C/N 5 Hari Setelah Inkubasi

SK db JK KT Fh F 0,05 F 0,01

Perlakuan 18 111.1 6.17 0.34tn 2.18 3.06

Galat 19 344.45 18.12

Total 37 455.55 FK = 87114.78

Lampiran 4. Nilai C/N Yang Diinokulasikan Beberapa Isolat Uji Pada Pengamatan 10 Hari Setelah Inkubasi

Kode Isolat Ulangan Total Rataan

I II

SUKJ 1 76.18 79.9 156.08 78.04

SUKJ 2 64.75 63.37 128.12 64.04

SUKJ 5 62.04 55.71 117.75 58.87

MUKJ 1 67.6 61.5 129.1 64.55

MUKJ 9 62.7 63.37 126.07 63.03

SAGJ 1 82.45 78 160.45 80.22

SAGJ 2 82.58 75.7 158.28 79.14

MAGJ 1 73.66 71.67 145.33 72.66

MAGJ 2 70.74 76.18 146.92 73.46

SUKA 3 64.55 67.88 132.43 66.21

SUKB 1 72.42 81.8 154.22 77.11

SUKB 2 68.82 64.72 133.54 66.77

SAGB 1 82 78 160 80

H 34 68.25 56.87 125.12 62.56

BB 31 72 67.36 139.36 69.68

PH 12 63.96 58.86 122.82 61.41

H 27 58.08 65 123.08 61.54

TA 5 67.88 50.7 118.58 59.29

KONTROL 85.31 90.58 175.89 87.94

Total 1345.97 1306.63 2652.6 1326.33

Rataan 69.8

Analisis Sidik Ragam Ratio C/N 10 Hari Setelah Inkubasi

SK db JK KT Fh F 0,05 F 0,01

Perlakuan 18 2648.44 147.14 6.44** 2.18 3.06 Galat 19 433.8 22.83

Total 37 3082.24 FK = 185165.44

Lampiran 5. Nilai C/N Yang Diinokulasikan Beberapa Isolat Uji Pada Pengamatan 15 Hari Setelah Inkubasi

Kode Isolat Ulangan Total Rataan

I II

SUKJ 1 47.8 48.28 96.08 48.04

SUKJ 2 44.27 42.32 86.59 43.29

SUKJ 5 41.51 41.43 82.94 41.47

MUKJ 1 51.1 46.31 97.41 48.7

MUKJ 9 45.8 48.91 94.71 47.35

SAGJ 1 46.8 44.03 90.83 45.41

SAGJ 2 44.03 46.22 90.25 45.12

MAGJ 1 45.15 46.8 91.95 45.97

MAGJ 2 46.31 46.8 93.11 46.55

SUKA 3 47.66 49.32 96.98 48.49

SUKB 1 47.04 51.14 98.18 49.09

SUKB 2 47.91 42.44 90.35 45.17

SAGB 1 45.6 45.09 90.69 45.34

H 34 43.17 42.9 86.07 43.03

BB 31 42.65 42.54 85.19 42.59

PH 12 43.58 41.36 84.94 42.47

H 27 43.47 42.77 86.24 43.13

TA 5 43.68 40.6 84.28 42.14

KONTROL 51 51.5 102.5 51.25

Total 868.53 860.76 1729.29 864.4

Rataan 45.49

Analisis Sidik Ragam Ratio C/N 15 Hari Setelah Inkubasi

SK db JK KT Fh F 0,05 F 0,01

Perlakuan 18 276.84 15.38 4.99** 2.18 3.06 Galat 19 58.54 3.08

Total 37 335.38 FK = 78695.89

Lampiran 6. Nilai C/N Yang Diinokulasikan Beberapa Isolat Uji Pada Pengamatan 20 Hari Setelah Inkubasi

Kode Isolat Ulangan Total Rataan

I II

SUKJ 1 43.07 42.95 86.02 43.01

SUKJ 2 38.5 37.94 76.44 38.22

SUKJ 5 37.35 35.75 73.1 36.55

MUKJ 1 44.75 41.91 86.66 43.33

MUKJ 9 40.14 42.09 82.23 41.11

SAGJ 1 40.18 38.41 78.59 39.29

SAGJ 2 39.58 39 78.58 39.29

MAGJ 1 38.4 40.3 78.7 39.35

MAGJ 2 40.69 41.74 52.43 41.21

SUKA 3 41.53 41.67 83.2 41.6

SUKB 1 41.82 43.8 85.65 42.81

SUKB 2 40.02 38.45 78.47 39.23

SAGB 1 38.45 40.69 79.14 39.57

H 34 37.34 38.4 76.14 38.07

BB 31 37.3 38.45 75.75 37.87

PH 12 36.89 37.35 74.24 37.12

H 27 37.85 39 76.85 38.42

TA 5 39 35.62 74.62 37.31

KONTROL 46.8 44.94 91.74 45.87

Total 760.06 758.46 1518.52 759.23

Rataan 39.95

Analisis Sidik Ragam Ratio C/N 20 Hari Setelah Inkubasi

SK db JK KT Fh F 0,05 F 0,01

Perlakuan 18 222.54 12.63 8.95** 2.18 3.06 Galat 19 26.27 1.38

Total 37 248.81 FK = 60681.65

Lampiran 7. Nilai C/N Yang Diinokulasikan Beberapa Isolat Uji Pada Pengamatan 25 Hari Setelah Inkubasi

Kode Isolat Ulangan Total Rataan

I II

SUKJ 1 37.39 39 76.39 38.19

SUKJ 2 34.87 34.12 68.99 34.49

SUKJ 5 32.84 31.4 64.24 32.12

MUKJ 1 38.41 37.91 76.32 38.16

MUKJ 9 35.36 37.3 72.66 36.33

SAGJ 1 34.19 34.05 68.24 34.12

SAGJ 2 34.32 33.26 67.58 33.79

MAGJ 1 33.42 37.2 70.62 35.31

MAGJ 2 35.92 37.48 73.4 36.7

SUKA 3 35.28 36.53 71.81 35.9

SUKB 1 36.4 37.05 73.45 36.72

SUKB 2 34.66 34.44 69.1 34.55

SAGB 1 33 36.4 69.4 34.7

H 34 32.78 33.91 66.69 33.34

BB 31 32.67 34.89 67.56 33.78

PH 12 33.15 32.84 65.99 32.99

H 27 33.72 33.58 67.3 33.65

TA 5 33.68 31.74 65.42 32.71

KONTROL 39 39.6 78.6 39.3

Total 661.06 672.7 1333.76 666.85

Rataan 35.09

Analisis Sidik Ragam Ratio C/N 25 Hari Setelah Inkubasi

SK db JK KT Fh F 0,05 F 0,01

Perlakuan 18 146.88 8.16 6.08** 2.18 3.06 Galat 19 25.57 1.34

Total 37 172.45 FK = 46813.57

Lampiran 22. Komposisi Media Asparagine ( Jamur )

NO Jenis Bahan/Zat Jumlah (g/L)

1 2 3 4 5 6 7 8 9 10 11 (NH4)2SO4 L-Asparagine K2HPO4 KCl MgSO47H2O CaCl2 Yeast Extract Selulosa Agar Aquadest pH 0,5 0,5 1,0 0,5 0,1 0,1 0,25 10,0 20,0 1,0 6,2 Sumber : Rao, 1994

Hans ( Bakteri)

NO Jenis Bahan/Zat Jumlah (g/L)

1 2 3 4 5 6 7 8 9 10 11

(NH4)2SO4 KH2PO4 K2HPO4 NaCl

MgSO47H2O CaCl2 Yeast Extract Selulosa Agar Aquadest pH 1,0 0,5 0,5 6,0 0,1 0,1 0,1 10,0 20,0 1,0 6,2 Sumber: Rao, 1994

Ken Knight (aktinomicetes)

NO Jenis Bahan/Zat Jumlah (g/L)

1 2 3 4 5 6 7 8 NaNO3 K2HPO4 KCl

MgSO47H2O Selulosa Agar Aquadest pH 0,1 0,1 0,1 0,1 1,0 20,0 1,0 7,0-7,2 Sumber: Rao, 1994

Selulosa Agar

NO Jenis Bahan/Zat Jumlah (g/L)

1 2 3 4 5 6 7 8 9 10 Selulosa NaNO3 K2HPO4 MgSO47H2O KCl Yeast Extract Casein Hydrolysat Agar Aquadest pH 5,0 1,0 1,8 0,9 0,5 0,5 0,5 10,0 1,0 6,8 Sumber : Aaronson, 1970

MYA (Malt Yeast Extarct)

NO Jenis Bahan/Zat Jumlah (g/L)

1 2 3 4 Malt Extract Yeast Extract Agar Aquadest 10 2 20 1,0

Gambar 1. Hasil Uji Potensi Mikrooganisme Selulolitik Secara Kualitatif

Gambar 2. Isolat Koleksi

Gambar 7. Hasil Pengomposan Kayu 30 Hari Setelah Inkubasi

TA 5 (2) TA 5 (1) KONTROL (2)

KONTROL (1) PH 12 (1) PH 12 (2)

H 27 (1) H 27 (2) BB 31 (1)

BB 31 (2) H 34 (1) H 34 (2)

SUKJ 1 (1) SUKJ 1 (2) SUKJ 2 (2)

MUKJ 1 (1) MUKJ 1 (2) MUKJ 9 (1)

MUKJ 9 (2) SAGJ 1 (1) SAGJ 1 (2)

SAGJ 2 (1) SAGJ 2 (2) MAGJ 1 (1)

MAGJ 1 (2) MAGJ 2 (1) MAGJ 2 (2)

SUKA 3 (1) SUKA 3 (2) SUKB 1 (1)

SUKB 1 (2) SUKB 2 (1) SUKB 2 (2)