Isolasi Pati dari Ubi Kayu (Manihot utilissima Pohl.) yang Memenuhi Standar Farmakope Indonesia

(1)

43 Lampiran 1. Hasil Identifikasi Tumbuhan


(2)

44 Umbi ubi kayu 4 kg

Ampas Filtrat I

Filtrat II Ampas

Pati Umbi Ubi Kayu

Lampiran 2. Bagan Prosedur Pembuatan Pati

Dikupas dan dicuci dengan air bersih Dipotong-potong dengan ukuran sedang Dihaluskan dengan menggunakan juicer Disaring sambil diperas hingga didapat suspensi pati

Ditambahkan pelarut

Disaring dan diperas hingga air hasil saringan bening

Digabungkan filtrat I dan II

Dibiarkan mengendap selama ± 24 jam

Dibuang bagian atas yang keruh dan ditambahkan pelarut, biarkan selama ± 24 jam

Dibuang cairan bening bagian atas

Dikeringkan endapan yang diperoleh pada suhu ruangan (25°C-27°C), diperoleh pati kering

Digerus dalam lumpang dan diayak dengan ayakan mesh 80

Dimasukkan dalam pot dan ditutup rapat


(3)

45

Lampiran 3. Tumbuhan, Umbi dan Pati dari Ubi Kayu (Manihot utillisima Pohl.)

Tumbuhan Ubi Kayu (Manihot utillisima Pohl.)

Umbi dari tanaman ubi kayu (Manihot utillisima Pohl.)


(4)

46 Lampiran 3 (lanjutan)

Pati dari umbi ubi kayu (Manihot utillisima Pohl.)


(5)

47

Lampiran 4. Hasil Identifikasi Amilum Dengan Larutan Iodum

Perubahan warna pada larutan kanji sebelum dan sesudah penambahan iodum Sebelum

Penambahan Iodum

Setelah Penambahan

Iodum


(6)

48

Lampiran 5. Gambar Hasil Pemeriksaan Pati yang diisolasi dari Umbi Ubi Kayu (Manihot utillisima Pohl.)

Hilus Lamela


(7)

49

Lampiran 6. Gambar Hasil Pemeriksaan Mikrobiologi Total Plate Count Pada Pati yang diisolasi dari umbi ubi kayu (Manihot utillisima Pohl.)

Keterangan : I, II, dan III menyatakan daerah tumbuh ubi kayu (I: Pengunungan; II: Pemukiman; III: Pabrik). A dan B menyatakan jenis pelarut yang digunakan saat ekstraksi (A: Akuades; B: Air PAM)

IA

IIA

IB

IIB

IIIA

IIIB


(8)

50

Lampiran 7. Tabel Total Plate Count Pada Pati yang diisolasi dari umbi ubi kayu (Manihot utillisima Pohl.)

Perlakuan

Total Plate Count (cfu/g)

IA IB IIA IIB IIIA IIIB

I 83×101 151×101 94×101 150×101 86×101 178×101 II 74×101 120×101 90×101 161×101 90×101 222×101 III 83×101 136×101 86×101 190×101 79×101 167×101 Rata-rata 80×101 135×101 90×101 167×101 85×101 189×101 Keterangan : I, II, dan III menyatakan daerah tumbuh ubi kayu (I: Pengunungan; II: Pemukiman; III: Pabrik). A dan B menyatakan jenis pelarut yang digunakan saat ekstraksi (A: Akuades; B: Air PAM)


(9)

51

Lampiran 8. Gambar Hasil Pemeriksaan Mikrobiologi Jamur Pada Pati yang diisolasi dari umbi ubi kayu (Manihot utillisima Pohl.)

Gambar Hasil Pemeriksaan Jamur Pada Media PDA

Keterangan : I, II, dan III menyatakan daerah tumbuh ubi kayu (I: Pengunungan; II: Pemukiman; III: Pabrik). A dan B menyatakan jenis pelarut yang digunakan saat ekstraksi (A: Akuades; B: Air PAM).

IA

IIB IIA

IB

IIIA IIIB


(10)

52

Lampiran 9. Gambar Hasil Pemeriksaan Jamur Pada Pati yang diisolasi dari umbi ubi kayu (Manihot utillisima Pohl.)

1 3

4

5

6 2

Keterangan: 1 : Sporangium 2 : Spora 3 : Kolumela 4 : Sporangiospora 5 : Stolon

6 : Rhizoid


(11)

53

Lampiran 10. Gambar Hasil Pemeriksaan Mikrobiologi Penetapan Batas Mikroba Pada Pati yang diisolasi dari umbi ubi kayu (Manihot utillisima Pohl.)

Gambar Hasil Pemeriksaan Mikrobiologi Penetapan Batas Mikroba Pada Media Nutrient Agar

IB IA

IIA

IIIA IIIB

IIB


(12)

54 Lampiran 11. Perhitungan Susut Pengeringan

Sampel IA

1. Bobot pati = 1,0054 g

Bobot botol timbang = 53,7813 g

Bobot botol timbang + pati mula-mula = 54,7867 g Bobot botol timbang + pati akhir = 54,6788 g

Penyusutan bobot = 0,1079 g

= 0,1079 g

1,0054 g × 100% = 10,7320%

2. Bobot pati = 1,0039 g

Bobot botol timbang = 53,7814 g

Bobot botol timbang + pati mula-mula = 54,7853 g Bobot botol timbang + pati akhir = 54,6865 g

Penyusutan bobot = 0,0988 g

= 0,0988 g

1,0039 g × 100% = 9,8416%

3. Bobot pati = 1,0031 g

Bobot botol timbang = 53,7789 g

Bobot botol timbang + pati mula-mula = 54,7829 g Bobot botol timbang + pati akhir = 54,6857 g

Penyusutan bobot = 0,0972 g


(13)

55 = 0,0972 g

1,0031 g × 100% = 9,6899%

− =10,7320% + 9,8416% + 9,6899% 3

= 10,0878% Sampel IB

1. Bobot pati = 1,0051 g

Bobot botol timbang = 50,0024 g

Bobot botol timbang + pati mula-mula = 51,0075 g Bobot botol timbang + pati akhir = 50,9167 g

Penyusutan bobot = 0,0908 g

= 0,0908 g

1,0051 g × 100% = 9,0339%

2. Bobot pati = 1,0022 g

Bobot botol timbang = 49, 9981 g

Bobot botol timbang + pati mula-mula = 51,0003 g Bobot botol timbang + pati akhir = 50,9036 g

Penyusutan bobot = 0,0967 g

= 0,0967 g

1,0022 g × 100% = 9,6487%

3. Bobot pati = 1,0027 g

Bobot botol timbang = 50,0060 g

Bobot botol timbang + pati mula-mula = 51,0087 g Bobot botol timbang + pati akhir = 50,9157 g

Penyusutan bobot = 0,0930 g


(14)

56 = 0,0930 g

1,0027 g × 100% = 9,2749%

− = 9,0339% + 9,6487% + 9,2749% 3

= 9,3191%

Sampel IIA

1. Bobot pati = 1,0009 g

Bobot botol timbang = 50,5396 g

Bobot botol timbang + pati mula-mula = 51,5405 g Bobot botol timbang + pati akhir = 51,4789 g

Penyusutan bobot = 0,0616 g

= 0,0616 g

1,0009 g × 100% = 6,1544%

2. Bobot pati = 1,0038 g

Bobot botol timbang = 50,5382 g

Bobot botol timbang + pati mula-mula = 51,5420 g Bobot botol timbang + pati akhir = 51,4758 g

Penyusutan bobot = 0,0662 g

= 0,0662 g

1,0038 g × 100% = 6,5949%

3. Bobot pati = 1,0016 g

Bobot botol timbang = 50,5398 g

Bobot botol timbang + pati mula-mula = 51,5414 g Bobot botol timbang + pati akhir = 51,4687 g

Penyusutan bobot = 0,0727 g


(15)

57 = 0,0727 g

1,0016 g × 100% = 7,2583%

− = 6,1544% + 6,5949% + 7,2583% 3

= 6,6695% Sampel IIB

1. Bobot pati = 1,0060 g

Bobot botol timbang = 49,4138 g

Bobot botol timbang + pati mula-mula = 50,4198 g Bobot botol timbang + pati akhir = 50,3514 g

Penyusutan bobot = 0,0684 g

= 0,0684 g

1,0060 g× 100% = 6,7990%

2. Bobot pati = 1,0018 g

Bobot botol timbang = 49,4172 g

Bobot botol timbang + pati mula-mula = 50,4190 g Bobot botol timbang + pati akhir = 50,3470 g

Penyusutan bobot = 0,0720 g

= 0,0720 g

1,0018 g × 100% = 7,1870%

3. Bobot pati = 1,0008 g

Bobot botol timbang = 49,4203 g

Bobot botol timbang + pati mula-mula = 50,4211 g Bobot botol timbang + pati akhir = 50,3489 g

Penyusutan bobot = 0,0722 g


(16)

58 = 0,0722 g

1,0008 g × 100% = 7,2142%

− = 6,7990% + 7,1870% + 7,2142% 3

= 7,0667%

Sampel IIIA

1. Bobot pati = 1,0022 g

Bobot botol timbang = 51,9284 g

Bobot botol timbang + pati mula-mula = 52,9306 g Bobot botol timbang + pati akhir = 52,8568 g

Penyusutan bobot = 0,0738 g

= 0,0738 g

1,0022 g × 100% = 7,3637%

2. Bobot pati = 1,0010 g

Bobot botol timbang = 51,9289 g

Bobot botol timbang + pati mula-mula = 52,9299 g Bobot botol timbang + pati akhir = 52,8432 g

Penyusutan bobot = 0,0867 g

= 0,0876 g

1,0010 g × 100% = 8,6613%

3. Bobot pati = 1,0005 g

Bobot botol timbang = 51,9308 g

Bobot botol timbang + pati mula-mula = 52,9313 g Bobot botol timbang + pati akhir = 52,8597 g

Penyusutan bobot = 0,0716 g


(17)

59 = 0,0716 g

1,0005 g× 100% = 7,1564%

− = 7,3637% + 8,6613% + 7,1564% 3

= 7,7271% Sampel IIIB

1. Bobot pati = 1,0060 g

Bobot botol timbang = 49,2226 g

Bobot botol timbang + pati mula-mula = 50,2286 g Bobot botol timbang + pati akhir = 50,1496 g

Penyusutan bobot = 0,0790 g

= 0,079

1,0060 g× 100% = 7,8528%

2. Bobot pati = 1,0065 g

Bobot botol timbang = 49,2235 g

Bobot botol timbang + pati mula-mula = 50,2300 g Bobot botol timbang + pati akhir = 50,1507 g

Penyusutan bobot = 0,0793 g

= 0,0793 g

1,0065 g × 100% = 7,8787%

3. Bobot pati = 1,0067 g

Bobot botol timbang = 49,2213 g

Bobot botol timbang + pati mula-mula = 50,2280 g Bobot botol timbang + pati akhir = 50,1492 g

Penyusutan bobot = 0,0788 g


(18)

60 = 0,0788 g

1,0067 g × 100% = 7,8275%

− = 7,8528% + 7,8787% + 7,8275% 3

= 7,853%


(19)

61 Lampiran 12. Perhitungan Sisa Pemijaran

Sampel IA

1. Bobot pati = 1,0052 g

Bobot kurs porselen = 52,1332 g

Bobot kurs porselen + pati mula-mula = 53,1384 g Bobot kurs porselen + pati akhir = 52,1352 g

Bobot abu = 0,0020 g

= 0,0020 g

1,0052 g× 100% = 0,1989%

2. Bobot pati = 1,0074 g

Bobot kurs porselen = 52,1370 g

Bobot kurs porselen + pati mula-mula = 53,1444 g Bobot kurs porselen + pati akhir = 52,1390 g

Bobot abu = 0,0020 g

= 0,0020 g

1,0074 g× 100% = 0,1985%

3. Bobot pati = 1,0043 g

Bobot kurs porselen = 56,3460 g

Bobot kurs porselen + pati mula-mula = 57,3503 g Bobot kurs porselen + pati akhir = 56,3477 g

Bobot abu = 0,0017 g

= 0,0017 g

1,0043 g× 100% = 0,1692%


(20)

62

− = 0,1989% + 0,1985% + 0,1692% 3

= 0,1888% Sampel IIA

1. Bobot pati = 1,0066 g

Bobot kurs porselen = 54,8870 g

Bobot kurs porselen + pati mula-mula = 55,8936 g Bobot kurs porselen + pati akhir = 54,8895 g

Bobot abu = 0,0025 g

= 0,0025 g

1,0066 g× 100% = 0,2483%

2. Bobot pati = 1,0018 g

Bobot kurs porselen = 55,6770 g

Bobot kurs porselen + pati mula-mula = 56,6788 g Bobot kurs porselen + pati akhir = 56,6788 g

Bobot abu = 0,0026 g

= 0,0026 g

1,0018 g× 100% = 0,2595%

3. Bobot pati = 1,0075 g

Bobot kurs porselen = 57,2043 g

Bobot kurs porselen + pati mula-mula = 58,2118 g Bobot kurs porselen + pati akhir = 57,2072 g

Bobot abu = 0,0029 g

= 0,0029 g

1, 0075 g× 100% = 0,2878%


(21)

63

− = 0,2483% + 0,2595% + 0,2878% 3

= 0,2652% Sampel IIA

1. Bobot pati = 1,0032 g

Bobot kurs porselen = 54,8567 g

Bobot kurs porselen + pati mula-mula = 55,8599 g Bobot kurs porselen + pati akhir = 54,8587g

Bobot abu = 0,0020 g

= 0,0020 g

1, 0032 g× 100% = 0,1993%

2. Bobot pati = 1,0040 g

Bobot kurs porselen = 56,8787 g

Bobot kurs porselen + pati mula-mula = 57,8827 g Bobot kurs porselen + pati akhir = 56,8811 g

Bobot abu = 0,0024 g

= 0,0024 g

1,0040 g× 100% = 0,2390%

3. Bobot pati = 1,0057 g

Bobot kurs porselen = 54,8776 g

Bobot kurs porselen + pati mula-mula = 55,8833 g Bobot kurs porselen + pati akhir = 54,8804 g

Bobot abu = 0,0028 g

= 0,0028 g

1,0057 g× 100% = 0,2784%


(22)

64

− = 0,1993% + 0,2390% + 0,2784% 3

= 0,2389% Sampel IIB

1. Bobot pati = 1,0078 g

Bobot kurs porselen = 67,5779g

Bobot kurs porselen + pati mula-mula = 68,5857 g Bobot kurs porselen + pati akhir = 67,5816 g

Bobot abu = 0,0037 g

= 0.0037g

1,0078 g× 100% = 0,3671%

2. Bobot pati = 1,0013 g

Bobot kurs porselen = 54,0756 g

Bobot kurs porselen + pati mula-mula = 55,0769 g Bobot kurs porselen + pati akhir = 54,0789 g

Bobot abu = 0,0033 g

= 0,0033 g

1, 0013 g× 100% = 0,3295%

3. Bobot pati = 1,0035 g

Bobot kurs porselen = 54,0813 g

Bobot kurs porselen + pati mula-mula = 55,0848 g Bobot kurs porselen + pati akhir = 54,0852 g

Bobot abu = 0,0039 g

= 0,0039 g

1,0035 g× 100% = 0,3886%

− = 0,3671% + 0,3295% + 0,3886% 3


(23)

65

= 0,3617% Sampel IIIA

1. Bobot pati = 1,0003 g

Bobot kurs porselen = 55,3508 g

Bobot kurs porselen + pati mula-mula = 56,3511 g Bobot kurs porselen + pati akhir = 55,3549 g

Bobot abu = 0,0050 g

= 0,0050 g

1, 0003 g× 100% = 0,4998%

2. Bobot pati = 1,0025 g

Bobot kurs porselen = 57,8760 g

Bobot kurs porselen + pati mula-mula = 58,8785 g Bobot kurs porselen + pati akhir = 57,8812 g

Bobot abu = 0,0052 g

= 0,0052 g

1,0025 g× 100% = 0,5187%

3. Bobot pati = 1,0017 g

Bobot kurs porselen = 57,7201 g

Bobot kurs porselen + pati mula-mula = 58,7218 g Bobot kurs porselen + pati akhir = 57,7250 g

Bobot abu = 0,0049 g

= 0,0049 g

1,0017 g× 100% = 0,4891%

− = 0,4998% + 0,5187% + 0,4891% 3

= 0,5025%


(24)

66 Sampel IIIB

1. Bobot pati = 1,0080 g

Bobot kurs porselen = 54,8875 g

Bobot kurs porselen + pati mula-mula = 55,8955 g Bobot kurs porselen + pati akhir = 54,8931 g

Bobot abu = 0,0062 g

= 0,0062 g

1, 0080 g× 100% = 0,6150%

2. Bobot pati = 1,0038 g

Bobot kurs porselen = 56,8778 g

Bobot kurs porselen + pati mula-mula = 57,8816 g Bobot kurs porselen + pati akhir = 56,8838 g

Bobot abu = 0,0060 g

= 0,0060 g

1,0038 g× 100% = 0.5977%

3. Bobot pati = 1,0014 g

Bobot kurs porselen = 56,7989 g

Bobot kurs porselen + pati mula-mula = 57,8003 g Bobot kurs porselen + pati akhir = 56,8053 g

Bobot abu = 0,0064 g

= 0,0064 g

1,0014 g× 100% = 0,6373%

− = 0,6150% + 0,5977% + 0,6373% 3

= 0,6166%


(25)

38

DAFTAR PUSTAKA

Agoes, A. (2010). Tanaman Obat Indonesia. Buku 2. Jakarta: Salemba Medika. Halaman 25-26.

Alexopoulos, C.J. (1907). Laboratory Manual For Introductory Mycology. Minneapolis: Burgess Printing Co. Halaman 978-980.

Anonim. (2009). Postharvest Deterioration of the Roots. http:// www ciat.cgiar.org. Diakses 15 Maret 2016.

Anonim. (2016). http://www.conewafer.com. Diakses 15 Maret 2016.

Apriyantono, A., Dedi F., Puspitasari, N.L., Sedarnawati., Slamet B. (1989). Petunjuk

Laboratorium Analisis Pangan. Bogor: Institut Pertanian Bogor. Halaman

98,100.

Balagopalan, C., Padmaja, G., Nanda, S. K., dan Moorthy, S. N. (1988). Cassava in

Food, Feed and Industry. Florida: CRC Press.

Banks, W., Greenwood, C.T., dan Muir, D.D. (1973). The structure of starch. Di dalam : Birch, G.G. dan L.F. Green. (1973). Molecular Structure and

Function of Food Carbohydrate. London: Applied Science Publisher Ltd.

Basset, J., Denney, R. C., Jeffrey, G.H., dan Mendhom, J. (1994). Buku Ajar Vogel

Kimia Analisa Kuantitatif Anorganik. Jakarta : EGC. Halaman 601-612.

Biro Pusat Statistik. (2009). Statistik Indonesia; Harvested Area, Yield Rate and Production of Cassava by Province. http://www.datastatistik indonesia.com. Diakses 6 Januari 2016.

Brautlecht, C.A. (1953). Starch: Its Source, Production, and Uses. New York: Reinhold Publishin Corporation. Halaman 65,70,86.

Charles, A.L., Chang, Y.H., Ko, W. C., Sriroth, K., dan Huang, T. C. (2004).

Somephysical and Chemical Properties of Starch Isolates of Cassava Genotypes.

Charley, H. (1982). Food Science. Canada: John Willey & Sons Inc. Halaman 765-770.

Copeland, L., Blazek, J., Salman, H., dan Tang, M.C. (2009). Form and

Functionality of Starch. Food Hydrocolloid. London: Applied Science

Publisher Ltd. Halaman 1527-1534.

Cumbana, A., Mirione, E., Cliff, J., dan Bradburry, J. H. (2007). Reduction of Cyanide Content of Cassava Flour in Mozambique by the Wetting Method.

Journal of Food Chemistry 101 : 894-897.


(26)

39

Damardjati, D. (1990). Pembuatan Tepung Campuran (Gaplek, Terigu, dan Gude/Kacanlg hijau) untuk kue basah (Cake). Hasil Penelitian Pertanian dengan Aplikasi Laboratorium II. Proyek Pembangunan Pertanian/NAR II.

Jurnal Badan Penelitian Pertanian.

Departemen Kesehatan R.I. (1996). Daftar Komposisi Bahan Makanan. Jakarta: Bhratara Karya Aksara.

Difco Laboratories. (2009). Difco & BBL Manual of Microbiological Culture Media. Edisi Kedua. USA: Becton, Dickinson and Company 7 Loveton Circle. Halaman 398, 402, 472.

Ditjen BKAK RI (2013). Farmakope Indonesia. Edisi Kelima. Jakarta: Kementrian Kesehatan Republik Indonesia. Halaman 1022, 1033, 1343, 1569, 1426.

Ditjen POM. (1979). Farmakope Indonesia. Edisi Ketiga. Jakarta : Departemen Kesehatan Republik Indonesia. Halaman 93, 672, 684, 748.

Ditjen POM. (1995). Farmakope Indonesia. Edisi Keempat. Jakarta: Departemen Kesehatan Republik Indonesia. Halaman 108, 847, 925, 1043.

Eris, F. R. (2005). Produksi Bersih pada Industri Tapioka. Makalah. Program Studi Teknologi Industri Pertanian. Bogor: Sekolah Pasca-Sarjana-IPB.

Fardiaz, S. (1989). Mikrobiologi Pangan. Jurusan Teknologi Pangan dan Gizi. Bogor: Institut Pertanian Bogor.

Fennema, O.R. (1996). Food Chemistry. New York: Marcel Dekker Inc. Goldsworth, R. (1999). Abudant Plant Varieties. New York: World Wide Inc. Gusmayadi, I. (2000). Amilum Granulat dari Biji Nangka (Artocarpus integra Linn.)

Sebagai Bahan Tambahan pada Pembuatan Tablet. Tesis. Yogyakarta: Fakultas Farmasi UGM.

Hafsah, M.J. (2003). Bisnis Ubi Kayu Indonesia. Jakarta: Pustaka Sinar Harapan. Halaman 7, 16, 25.

Hoseney, R. C. (1998). Principles of Cereal Science and Technology. Edisi Kedua. St. Paul Minesota: American Association of Cereal Chemist Inc.

Jati, P.W. (2006). Pengaruh Waktu Hidrolisis dan Konsentrasi HCl Terhadap Nilai

Dextrose Equivalent (DE) dan Karakterisasi Mutu Pati Termodifikasi dari Pati

Tapioka Dengan Metode Hidrolisis Asam. Skripsi. Institut Pertanian Bogor. Bogor. Halaman 1, 49, 56.

Kaletunc, G., dan Breslauer, K.J. (2003). Characterization of Cereals and Flours. New York: Marcel Dekker Inc. Halaman 57,59,72,73.


(27)

40

Kemenkes RI. (2013). Farmakope Indonesia. Edisi Kelima. Jakarta: Kementrian Kesehatan Republik Indonesia.

Knight, J.W. (1969). The Starch Industry. Di dalam : Beynum, G.M.A.V dan J.A. Roels. (1985). Starch Conversion Technology. New York: Marcel Dekker Inc. Halaman 756-780.

Knight, J.W. (1974). Speciality Food Starch. Di dalam : Suriani, A. I. (2008). Mempelajari Pengaruh Pemanasan dan Pendinginan Berulang Terhadap Karakteristik Sifat Fisik dan Fungsional Pati Garut (Marantha arundinacea) Termodifikasi. Skripsi. Bogor: Institut Pertanian Bogor. Departemen Ilmu dan Teknologi Pangan. Fakultas Teknologi Pertanian. Halaman 17,18.

Kusmayadi, A., dan Dadang, S. (2008). Cara Memilih dan Mengolah Makanan Untuk

Perbaikan Gizi Masyarakat. http://database.deptan.go.id. Diakses 15 Maret

2016.

Lehninger, A.L. (1988). Dasar-Dasar Biokimia. Jakarta : Erlangga.

Makfoeld, D. (1982). Deskripsi Pengolahan Hasil Nabati. Yogyakarta: Agritech Fakultas Teknologi Pertanian UGM. Halaman 75-86.

Momuat, L., Fatimah, F., Wehantouw, F., dan Mamondol, O. (2011). Total Antioksidan dari Beberapa Jenis Sayuran Tinutuan yang Ditanam di Daerah Berbeda Ketinggian. Jurnal. Manado: Jurusan Kimia FMIPA Universitas Sam Ratulangi. Halaman 6-7.

Moore, E., dan Landecker. (1982). Fundamental of The Fungi. New Jersey: Prentice Hall, Inc. Englewoo Cliff. Halaman 275, 337.

Moorthy, S.N. (2004). Tropical Sources Of Starch. Di dalam: Ann Charlotte Eliasson. (2004). Starch in Food: Structure, Function, and Application. Florida: CRC Press, Baco Raton. Halaman 770-776.

Moorthy, S.N., Rickard, J., dan Blandshard, J.M.V. (1996). Influence of

Gelatinization Characteristics of Cassava Starch Properties of Some Food Products. Di dalam: Dufour, D., G.M. O’Brien, R. Best. (1996). Cassava Flour and Starch : Progress in Research and Development. Colombia: CIAT

Publisher. Halaman 232-235.

Mulyandari, S.H. (1992). Kajian Perbandingan Sifat-Sifat Pati Umbi-Umbian dan Pati Biji-Bijian. Skripsi. Fakultas Teknologi Pertanian. Bogor: Institut Pertanian Bogor.

Niba, L.L., Bokanga, M.M., Jackson, J. L., Schlimme, D.S., dan Li, B. W. (2002). Pshysochemical Properties and Starch Granular Characteristics of Flour From Various Manihot Esculanta (Cassava) Genotypes. Journal of Food Science 67: 1701-1705.

Oxoid. (2006). The Manual Oxoid. Edisi Kesembilan. England: Basingstoke.


(28)

41

Panikulata, G. (2008). Potensi Modified Cassava Flour (MOCAF) Sebagai Substituen Tepung Terigu Pada Produk Kacang Telur. Skripsi. Departemen Ilmu dan Teknologi Pangan. Fakultas Teknologi Pertanian. Bogor: Institut Pertanian Bogor.

Pemerintah Republik Indonesia. (2001). Peraturan Pemerintah Nomor 82 tahun 2001

Tentang Pengelolaan Kualitas Air dan Pengendalian Pencemaran Air.

Jakarta.

Purwono. (2009). Tanaman Ubi Kayu. http:www.psychologymania.com. Diakses 15 Maret 2016.

Rofiq, S. (1988). Ekstraksi dan Karakteristik Pati Ganyong (Canna edulis Kerr.).

Skripsi. Fakultas Teknologi Pertanian. Bogor: Institut Pertanian Bogor.

Sabrina, E. (1990). Karakterisasi Tepung Singkong dari Beberapa Varietas Ubi Kayu.

Skripsi. Fakultas Teknologi Pertanian. Bogor: Institut Pertanian Bogor.

Sajeev, M.S., Moorthy, S.N., Kailappan, R., dan Rani, V.S. (2002). Gelatinization Characteristics of Cassava Starch Settled in the Presence of Different Chemicals. Jurnal Sains. Halaman 469-475.

Sriroth, K., Plyachomkwan, K., Wanlapatit, S., dan Oates, C.G. (2000). Cassava

Starch Technology: The Thai Experience.

Suriawiria, U. (1996). Mikrobiologi Air dan Dasar-dasar Pengolahan Buangan

secara Biologis. Bandung: Penerbit Alumni. Halaman 132,142.

Swarbrick, J. (2007). Encyclopedia of Pharmaceutical Technology. Edisi Ketiga. USA: PharmaceuTech, Inc. Halaman 520-523.

Swinkels, J.J.M. (1985). Source of Starch, its Chemistry and Physic. Di dalam : Beynum, G.M.A.V dan J.A. Roels. (1985). Starch Conversion Technology. New York: Marcel Dekker Inc. Halaman 302-305.

Syarief, R., dan Halid, H., (1993). Teknologi Penyimpanan Pangan. Jakarta: Arcan. Taggart, P. (2004). Starch as an Ingredient : Manufacture and Applications. Di

dalam: Eliasson A.C (ed.). 2004. Starch in Food : Structure, Function, and Applications. CRC Press, Boca Raton. Halaman 154-170.

Tjitrosoepomo, G. (1996). Taksonomi Tumbuhan (Spermatophyta). Yogyakarta: Gajah Mada University Press. Halaman 251 – 253.

Ulyarti. (1997). Mempelajari Sifat-Sifat Amilografi Pada Amilosa, Amilopektin, dan Campurannya. Skripsi. Jurusan Teknologi Pangan dan Gizi. Fakultas Teknologi Pertanian. Bogor: Institut Pertanian Bogor.

Winarno, F.G. (2002). Kimia Pangan dan Gizi. Jakarta: PT Gramedia Pustaka Utama. Halaman 78-85.


(29)

42

World Health Organization. (1998). Quality Control Methods for Medicinal Plant

Material. Switherland: WHO. Halaman 27-30.

Wurzburg, O.B. (1968). Starch in the food industry. Di dalam : Furia, T. E. (1968). Handbook of Food Additives. Ohio: The Chemical Rubber Co.


(30)

16 BAB III

METODE PENELITIAN

3.1 Lokasi Penelitian

Penelitian dilakukan di Laboratorium Kimia Organik dan Laboratorium Mikrobiologi Fakultas Farmasi Universitas Sumatera Utara.

3.2 Jenis Penelitian

Jenis Penelitian yang dilakukan adalah penelitian eksperimental parametrik. Parameter yang digunakan mengacu pada Farmakope Indonesia Edisi IV yaitu tentang karakteristik pati yang diisolasi dari umbi ubi kayu (Manihot utillissima Pohl). Tahapan-tahapan penelitian meliputi pengumpulan sampel, identifikasi sampel, pengolahan sampel dan karakterisasi pati yang diisolasi sesuai satandar Farmakope Indonesia Edisi IV.

3.3 Alat-alat

Alat-alat yang digunakan adalah alat inkubator, alat-alat gelas, aluminium foil, batang pengaduk, benang wol, bunsen, buret (Oberol), dandang, hot plate stirer (Thermo Scientific Cimarec), juicer (Miyako), kain kasa, kapas, kertas label, kertas saring, klem, kurs porselen, lemari pendingin, mikro pipet, mikroskop.autoklaf (Wisd Laboratory Analyrical), objek glas, ose, oven (Dynamica), penangas air, penjepit tabung, pinset, pipet tetes, saringan 80 mesh, spatula, statif, tanur (Stuart), termometer, dan timbangan digital (Boeco Germany).

3.4 Bahan

Bahan-bahan yang digunakan adalah umbi ubi kayu (Manihot utilissima Pohl.), akuades, larutan iodum 0,005 M, etanol 70%, etanol 80%, indikator fenolftaein 0,1%, NaOH 0,1 N, H2SO4 2N, larutan ammonium karbonat 16%, larutan


(31)

17

gentian violet, larutan lugol, larutan safranin, minyak imersi, media nutrient agar, media plate count agar, media potato dextrose agar.

3.5 Pembuatan Larutan Pereaksi dan Media 3.5.1 Pembuatan Larutan Pereaksi

3.5.1.1 Larutan Iodum 0,005 M

Iodium kristal sebanyak 14 gram dilarutkan dalam larutan 36 gram kalium iodida pekat dalam 1000 mL air suling (Ditjen, POM., 1979).

3.5.1.2 Larutan Etanol 70% v/v

Sebanyak 72,9 mL etanol 96% dilarutkan dalam air suling hingga 100 mL (Ditjen, POM., 1979).

3.5.1.3 Larutan Etanol 80% v/v

Sebanyak 83,3 mL etanol 96% dilarutkan dalam air suling hingga 100 mL (Ditjen, POM., 1979).

3.5.1.4 Larutan Fenolftalein 0,1% b/v

Sebanyak 0,1 gram fenolftalein P dilarutkan dalam 100 mL etanol P (Ditjen, POM., 1979).

3.5.1.5 Larutan NaOH 0,1 N

Sebanyak 0,4 gram natrium hidroksida dilarutkan dalam akuades bebas karbondioksida hingga 100 mL (Ditjen, POM., 1979).

3.5.1.6 Larutan H2SO4 2N

Tambahkan secara hati-hati 16,67 mL asam sulfat 12N kedalam air hingga100 mL (Ditjen, POM., 1979).

3.5.1.7 Larutan Ammonium Karbonat 16% b/v

Larutkan 16 gram ammonium karbonat P dalam air suling hingga 100 mL (Ditjen, POM., 1979).


(32)

18 3.5.1.8 Larutan KOH 3% b/v

Larutkan 3 gram kalium hidroksida dalam air suling hingga 100 mL (Ditjen, POM., 1979).

3.5.2 Pembuatan Media 3.5.2.1 Media Nutrient Agar

Komposisi : Lemco beef extract 1 g

Yeast extract 2 g

Peptone 5 g

NaCl 5 g

Agar 15 g

Cara pembuatan:

Sebanyak 28 g nutrient agar ditimbang, disuspensikan kedalam air suling sebanyak 1000 mL, lalu dipanaskan sampai bahan larut sempurna lalu disterilkan di dalam autoklaf pada suhu 121ºC selama 15 menit (Oxoid, 2016).

3.5.2.2 Media Potato Dextrose Agar Komposisi : Potato extract 4 g

Glucose 20 g

Agar 15 g

pH 5.6 ± 0.2 Cara pembuatan:

Sebanyak 39 g potato dextrose agar ditimbang, disuspensikan kedalam air suling sebanyak 1000 mL, lalu dipanaskan sampai bahan larut sempurna lalu disterilkan di dalam autoklaf pada suhu 121ºC selama 15 menit (Oxoid, 2016).


(33)

19

3.5.2.3 Media Brilliant Green Lactose Bile Broth

Komposisi : Peptone 10.0 g

Lactose 10.0 g

Ox bile (purified) 20.0 g Brilliant green 0.0133 g pH 7.4 ± 0.2

Cara Pembuatan:

Sebanyak 40 g brilliant green lactose bile broth ditimbang, dilarutkan kedalam air suling sebanyak 1000 mL, lalu dipanaskan hingga larut sempurna lalu disterilkan didalam autoklaf pada suhu 121ºC selama 15 menit (Oxoid, 2016).

3.5.2.4 Media Plate Count Agar

Komposisi : Tryptone 5 g Yeast extract 2.5 g

Glucose 1 g

Agar 9 g

pH 7.0 ± 0.2 Cara Pembuatan:

Sebanyak 17,5 g plate count agar ditimbang, dilarutkan kedalam air suling sebanyak 1000 mL, lalu dipanaskan hingga larut sempurna lalu disterilkan didalam autoklaf pada suhu 121ºC selama 15 menit (Oxoid, 2016).

3.6 Penyiapan Sampel

Penyiapan Sampel meliputi pengambilan sampel, identifikasi sampel dan pengolahan sampel.

3.6.1 Pengambilan Sampel

Pengambilan sampel dilakukan secara purposive, artinya tanpa membandingkan sampel yang diambil dengan sampel yang sama dari daerah lain.


(34)

20

Sampel yang digunakan adalah umbi ubi kayu (Manihot utilissima Pohl.), yang berasal dari daerah Simalingkar B, Tanjung Morawa, dan Tanah Karo Berastagi. 3.6.2 Identifikasi Sampel

Identifikasi sampel (umbi ubi kayu) dilakukan di Pusat Penelitian dan Pengembangan Biologi Lembaga Ilmu Pengetahuan Indonesia (LIPI) Bogor.

3.6.3 Pembuatan Pati

Sebanyak 5 kg umbi ubi kayu dikupas dan dicuci menggunakan air bersih. Kemudian umbi dipotong melintang dengan ukuran ± 5 cm, lalu dimasukkan ke dalam juicer. Air sarian dan ampas dipisahkan, ampas umbi ubi kayu ditambahkan pelarut 10 L, lalu disaring sambil diperas dan perlakuan ini dilakukan hingga didapat air saringan bening. Air hasil penyaringan didiamkan dalam wadah hingga pati mengendap selam ± 24 jam. Bagian atas larutan yang keruh dibuang dan ditambahkan sebanyak 5 L pelarut dibiarkan selama ± 24 jam lagi, kemudian dibuang cairan bening bagian atas dan endapan pati dikeringkan pada suhu ruangan (25-27ºC). Pati kering diperoleh kemudian digerus dalam lumpang dan diayak dengan ayakan 80 mesh (Makfoeld, 1982).

3.7 Pemeriksaan Karakteristik Pati 3.7.1 Pemeriksaan Pemerian

Pemeriksaan dilakukan terhadap tekstur dan warna pati dari umbi ubi kayu (Manihot utillisima Pohl.).

3.7.2 Pemeriksaan Kelarutan a. Kelarutan dalam air dingin

Kedalam tabung reaksi dimasukkan pati secukupnya kemudian ditambahkan 10 mL air dingin kemudian diaduk dan diamati kelarutannya.


(35)

21 b. Kelarutan dalam etanol

Kedalam tabung reaksi dimasukkan pati secukupnya kemudian ditambahkan 10 mL etanol kemudian diaduk dan diamati kelarutannya.

3.7.3 Pemeriksaan Mikroskopik

Pati secukupnya diambil dan diletakkan diatas gelas objek, kemudian ditetesi dengan satu tetes akuades dan ditutup menggunakan kaca penutup, selanjutnya diamati di bawah mikroskop.

3.8.4 Identifikasi

a. Panaskan sampai mendidih selama 1 menit suspensi dari 1 g pati dalam 50 mL air, kemudian didinginkan: terbentuk larutan kanji yang encer (Depkes, RI., 1995).

b. Campur 1 mL larutan kanji yang diperoleh pada identifikasi A dengan 0,05 mLiodum 0,005 M, terjadi warna biru tua yang hilang pada pemanasan dan timbul kembali pada pendinginan (Depkes, RI., 1995).

3.7.5 Penetapan Keasaman

Sebanyak 10 g pati dimasukkan ke dalam Erlenmeyer 250 mL dan ditambahkan 100 mL etanol 70% yang telah dinetralkan terhadap 0,5 mL larutan fenolftalein P 0,1% dalam etanol 80%, kocok selama 1 jam, saring dan titrasi 50 mL filtrat dengan NaOH 0,1 N (Depkes, RI., 1995).

3.7.6 Penetapan Susut Pengeringan

Botol timbang beserta tutupnya dikeringkan selama 30 menit pada suhu 100° C sampai 105° C selama 2 jam dan ditimbang bobotnya, ditimbang sebanyak 1 g pati dimasukkan dalam botol timbang. Masukkan kedalam oven, buka sumbat botol timbang dan biarkan sumbat dalam oven. Panaskan sampel pada suhu 100° sampai 105° selama 2 jam. Pada waktu oven dibuka, botol segera ditutup dan didinginkan


(36)

22

dalam desikator, lalu ditimbang. Perlakuan ini dilakukan hingga didapat bobot tetap (Depkes, RI., 1995).

3.7.7 Penetapan Sisa Pemijaran

Krus porselen kosong dipijar dan didinginkan, kemudian ditimbang sampai bobot tetap, kedalam krus ditimbang 2 g pati. Tambahkan 2 mL asam sulfat 2 N, panaskan mula-mula di atas penangas air, kemudian panaskan perlahan-lahan dalam tanur pada suhu lebih kurang 600°, lanjutkan pemanasan sampai arang habis terbakar dan biarkan dingin. Tambahkan beberapa tetes asam sulfat 2 N dan ulangi pemanasan dan pemijaran dan biarkan dingin. Tambahkan beberapa tetes larutan ammonium

karbonat P 16%, uapkan hingga kering dan pijarkan hati-hati. Dinginkan, timbang

dan pijarkan 15 menit dan ulangi cara ini hingga diperoleh bobot tetap (Depkes, RI., 1995).

3.7.8 Pemeriksaan Mikrobiologi Bahan Organik Asing

Sebanyak 1 g sampel dimasukkan ke dalam tabung reaksi berisi 9 mL NaCl 0,9% yang sebelumnya telah disterilkan. Sampel dihomogenkan, kemudian dipipet 1 mL dan dimasukkan kedalam cawan petri. Tuangkan media plate count agar (PCA) ke dalam cawan petri tersebut sebanyak 15 mL dan dihomogenkan. Cawan berisi media yang sudah memadat kemudian diinkubasi pada suhu 250-280C selama 48 jam, dihitung angka lempeng total masing-masing cawan. Koloni dipindahkan dalam media potato dexrtose agar dan diinkubasi pada suhu 250-280C selama 48 jam. Koloni yang tumbuh diamati dibawah mikroskop. Cawan kembali diinkubasi selama 10 hari, diamati warna koloninya dan diperiksa dibawah mikroskop.

3.7.9 Pemeriksaan Mikrobiologi Penetapan Batas Mikroba

Sebanyak 1 g sampel dimasukkan kedalam tabung reaksi berisi 9 mL NaCl 0,9% yang telah disterilkan. Sampel dihomogenkan, kemudian dipipet 1 mL dan


(37)

23

dimasukkan kedalam cawan petri. Dituangkan media nutrient agar (NA) ke dalam cawan petri tersebut sebanyak 15 mL dan dihomogenkan. Cawan petri berisi media yang sudah memadat kemudian diinkubasi pada suhu 35ºC-37ºC selama 24 jam dengan posisi terbalik. Kemudian dilakukan pengecatan gram.Uji dilanjutkan dengan memindahkan koloni pada media BGLB dan diinkubasi pada suhu 35ºC-37ºC selama 24 jam. Diamati ada tidaknya kekeruhan dalam tabung.


(38)

24 BAB IV

HASIL DAN PEMBAHASAN

4.1 Hasil Identifikasi Sampel

Hasil identifikasi sampel telah dilakukan di Pusat Penelitian dan Pengembangan Biologi Lembaga Ilmu Pengetahuan Indonesia (LIPI) Bogor adalah umbi ubi kayu (Manihot utillisima Pohl.) dari famili Euphorbiaceae. Hasil identifikasi dapat dilihat pada Lampiran 1 halaman 45.

4.2 Hasil Rendemen

Isolasi pati dilakukan dengan cara mengolah umbi ubi kayu segar sesuai prosedur hingga didapatkan pati kering. Hasil penelitian menunjukkan bahwa rendemen yang dihasilkan berkisar antara 24,9428% hingga 28%. Rendemen tertinggi terdapat pada sampel IA sedangkan rendemen terendah terdapat pada sampel IIIA. Tabel 4.1 Hasil Rendemen Pati Ubi Kayu (Manihot utillisima Pohl.)

Keterangan : I, II, dan III menyatakan daerah tumbuh ubi kayu (I: Pengunungan; II: Pemukiman; III: Pabrik). A dan B menyatakan jenis pelarut yang digunakan saat ekstraksi (A: Akuades; B: Air PAM)

Menurut Sabrina (1990), faktor-faktor yang mempengaruhi kadar pati dalam umbi ubi kayu adalah umur tanam, varietas, dan keadaan tanah. Pemanenan lebih cepat atau lebih lambat akan memberikan hasil yang kurang maksimal. Menurut Eris (2005), ubi kayu yang digunakan untuk memproduksi pati biasanya mempunyai umur panen antara 9-12 bulan dengan rendemen sekitar 15-30%. Menurut Balagopalan, et

Sampel Rendemen Pati (%)

IA 28,0000

IB 27,6571

IIA 26,0000

IIB 25,5714

IIIA 24,9428

IIIB 25,3142


(39)

25

al., (1988), kadar pati tertinggi berada pada pemanenan umur 10-11 bulan. Jika pemanenan ditunda umbi akan berubah menjadi serat. Adapun ubi kayu yang digunakan dalam penelitian ini adalah ubu kayu yang masih berumur 4-6 bulan sehingga kadar pati yang dihasilkan belum optimal. Selain faktor umur panen, proses ekstraksi merupakan faktor yang sangat berpengaruh terhadap banyaknya pati yang berhasil diisolasi, semakin besar tekanan yang diberikan pada saat ekstraksi maka semakin banyak pula pati yang berhasil diisolasi dan semakin sedikit pati yang tertinggal pada onggok/ampas.

4.3 Hasil Pemeriksaan Karakteristik Pati 4.3.1 Hasil Pemeriksaan Pemerian

Pati singkong adalah pati yang diperoleh dari umbi akar Manihot utillisima Pohl (Familia Euphorbiaceae) dengan pemerian serbuk sangat halus berwarna putih (Kemenkes RI., 2014). Warna putih sangat dipengaruhi oleh proses ekstraksi pati, semakin murni proses ekstraksi, maka pati yang dihasilkan akan semakin putih. Menurut Schoch (1945) di dalam Ropiq (1988), adanya protein dan lemak dapat menyebabkan granula bewarna lebih gelap. Menurut Meyer (1973) di dalam Sabrina (1990), komponen non-karbohidrat (lemak, protein, dan enzim polifenolase) akan menyebabkan reaksi browning (pencoklatan). Reaksi browning yang terjadi mempengaruhi derajat putih pati, karena membuat pati menjadi lebih gelap. Pati yang dihasilkan pada penelitian memiliki warna putih dan memiliki tekstur halus serta memiliki bau yang khas, sehingga keenam sampel pati memenuhi syarat yang ada dalam Farmakope Indonesia.

4.3.2 Hasil Pemeriksaan Kelarutan

Pemeriksaan kelarutan yang dilakukan terhadap keenam sampel diperoleh bahwa pati yang dihasilkan praktis tidak larut dalam air dingin dan dalam etanol. Hal


(40)

26

ini sesuai dengan persyaratan yang ada dalam Farmakope Indonesia edisi IV bahwa pati Manihot utillisima praktis tidak larut dalam air dingin dan etanol. Menurut Moorthy (2004), faktor-faktor seperti rasio amilosa dan amilopektin, panjang rantai, distribusi bobot molekul, derajat percabangan dan konformasi menentukan kelarutan pati. Menurut Charles, et al., (2004), komponen amilosa dan lemak dapat menghambat kelarutan pati dan rantai yang panjang dari amilopektin dapat meningkatkan kelarutan. Hal ini disebabkan oleh molekul-molekul amilosa yang linier sehingga memperkuat jaringan internalnya (Leach, 1965 di dalam Goldworth, 1999). Adapun komponen pati yang dapat menyerap air adalah amilopektin, pada pati singkong perbandingan komponen antara amilopektin dengan amilosa adalah 83:17 (Winarno, 2008), sehingga semakin besar kandungan amilosa dalam pati maka kelarutan pati dalam air semakin rendah.

4.3.3 Hasil Pemeriksaan Mikroskopik

Hasil pemeriksaan mikroskopik yang dilakukan terhadap keenam sampel pati menunjukkan bahwa granula pati Manihot utillisima memilikibutir tunggal dan agak bulat atau bersegi banyak dengan hilus di tengah berupa titik, garis lurus atau bercabang tiga; lamella tidak jelas, konsentris; butir majemuk sedikit, terdiri dari 2 atau 3 butir tunggal yang tidak sama bentuknya. Bentuk granula pati dari keenam sampel dinyatakan memenuhi persyaratan dalam Farmakope Indonesia.

4.3.4 Hasil Identifikasi

Hasil identifikasi yang telah dilakukan diperoleh bahwa pati Manihot

utillisima dalam air dingin bila dipanaskan akan membentuk larutan kanji encer, yang

mana bila larutan kanji ini didinginkan kemudian ditambahkan dengan iodum akan terjadi warna biru tua. Warna ini akan hilang bila larutan dipanaskan, namun akan timbul kembali bila didinginkan, hasil penelitian menunjukkan bahwa identifikasi


(41)

27

keenam sampel sesuai dengan yang ada dalam Farmakope Indonesia. Amilum dapat bereaksi dengan molekul iodium karena struktur amilum pada larutan berbentuk heliks yang berbentuk kumparan sehingga dapat diisi oleh molekul iodium didalamnya dan hasil dari ikatan ditunjukkan warna larutan menjadi warna biru. Ikatan antara iod dan amilum yang terbentuk berupa ikatan semu karena dapat putus saat dipanaskan dan terbentuk kembali pada saat didinginkan. Apabila dipanaskan rantai amilum akan memanjang sehingga iod mudah terlepas, sama halnya ketika didinginkan, rantai pada amilum akan mengerut sehingga iod kembali terikat dengan amilum dan memberikan warna biru sebagai hasil ikatan yang terbentuk (Sherly, 2012).

Perbandingan kadar amilosa dengan amilopektin dalam pati ubi kayu adalah 83:17. Pada uji dengan mengunakan iodum, warna biru yang terbentuk adalah hasil interaksi antara amilosa dengan iodum, sedangkan amilopektin dengan iodum akan memberikan warna ungu hingga merah (Lehninger, 1988). Mulyandari (1992) melaporkan bahwa selama pemanasan akan terjadi pemecahan granula pati, sehingga pati dengan kadar amilosa lebih tinggi, granulanya akan lebih banyak mengeluarkan amilosa, dan kelarutannya akan meningkat. Kelarutan terkait dengan kemudahan molekul air untuk berikatan hidrogen dengan molekul dalam granula pati, sehingga semakin mudah mengikat air, granula pati akan semakin mengembang. Menurut Niba, et al., (2002), pati yang memiliki ukuran granula lebih kecil akan lebih larut dalam air.

4.3.5 Hasil Penetapan Keasaman

Keasaman pada pati diduga disebabkan oleh kadar asam organik yang terkandung pada setiap tanaman (termasuk ubi kayu), yang merupakan hasil metabolisme lanjut (dalam siklus TCA atau glikosida) yang terakumulasi dalam


(42)

28

vakuola tanaman (Fennema, 1996). Selain itu, komponen asam sianida (HCN) diduga juga dapat mempengaruhi keasaman pada pati yang dihasilkan, karena menurut Cumbana, et al., (2007), proses selama pembuatan pati, tidak sepenuhnya dapat menghilangkan HCN. Sedangkan menurut Rahman (2007) dan Sajeev, et al., (2002), proses pemisahan pati dan air dilakukan melalui pengendapan berjam-jam, sehingga memungkinkan terjadinya proses fermentasi alami oleh mikroba. Asam-asam organik hasil fermentasi mikroba akan terakumulasi dan akan mempengaruhi pH pati.

Indikator yang digunakan pada saat titrasi adalah indikator fenolftalein. Fenolftalein termasuk senyawa golongan ftalein yang bersifat asam lemah. Fenolftalein umumnya dipakai sebagai indikator dalam menentukan titik akhir titrasi asam kuat dengan basa kuat. Fenolftalein mempunyai trayek pH 8,3-10,0 (Bassett, 1994), dalam larutan yang bersifat asam dan pada rentangan pH < 8,3 indikator fenolftalein tidak akan memberikan perubahan warna, dimana warna larutan tetap tidak berwarna, sedangkan pada larutan yang bersifat basa pada rentangan pH 8,3-10,0 indikator fenolftalein akan memberikan perubahan warna menjadi merah muda. Tabel 4.2 Hasil Penetapan Keasaman Pati Ubi Kayu (Manihot utillisima Pohl.)

Sampel Volume NaOH 0,1 N (mL) Keterangan

IA 1,1567 Memenuhi Syarat

IB 1,1067 Memenuhi Syarat

IIA 1.0633 Memenuhi Syarat

IIB 1,0500 Memenuhi Syarat

IIIA 1,1200 Memenuhi Syarat

IIIB 1,0667 Memenuhi Syarat

Keterangan : I, II, dan III menyatakan daerah tumbuh ubi kayu (I: Pengunungan; II: Pemukiman; III: Pabrik). A dan B menyatakan jenis pelarut yang digunakan saat ekstraksi (A: Akuades; B: Air PAM)

Berdasarkan hasil penelitian didapatkan bahwa pati yang diekstraksi menggunakan pelarut akuades membutuhkan lebih banyak NaOH untuk mencapai titik akhir titrasi dibandingkan dengan pati yang diekstraksi menggunakan air PAM.


(43)

29

Hal ini disebabkan karena akuades yang digunakan memiliki pH 7 atau netral, sedangkan air PAM yang digunakan memiliki pH 8 atau basa, pH pelarut ini berpengaruh pada keasaman pati yang dihasilkan, dimana semakin rendah pH larutan yang akan dititrasi maka semakin banyak NaOH yang digunakan untuk mencapai titik akhir titrasi.

Penetapan keasaman digunakan untuk menentukan derajat keasaman, menurut Jati (2006) derajat asam menyatakan seberapa besar kandungan asam yang terkandung didalam bahan. Semakin besar kandungan asamnya maka semakin rendah pula pH-nya. Hasil penelitian menunjukkan volume NaOH yang dipakai adalah 1,0633 mL hingga 1,1567 mL yang dapat dilihat pada Tabel 4.2. Hal ini telah sesuai dengan persyaratan yang ditetapkan pada Farmakope Indonesia yaitu volume NaOH yang digunakan tidak lebih dari 2,0 mL.

4.3.6 Hasil Penetapan Susut Pengeringan

Air merupakan komponen penting dalam bahan pangan yang dapat mempengaruhi kualitas bahan pangan itu sendiri. Peningkatan jumlah air dapat mempengaruhi laju kerusakan bahan pangan oleh proses mikrobiologis, kimiawi, dan enzimatis. Rendahnya kadar air suatu bahan pangan merupakan salah satu faktor yang dapat membuat bahan pangan menjadi awet. Kerusakan bahan seperti tepung lebih terutama disebabkan oleh kapang dan berbagai jenis kutu (Syarief dan Halid, 1993). Menurut Fardiaz (1989), pengeringan pada tepung dapat mengurangi kadar air tepung sampai batas tertentu sehingga pertumbuhan mikroba dan aktivitas enzim penyebab kerusakan pada tepung dapat dihambat. Perbedaan kadar air pada keenam sampel tersebut diduga dipengaruhi oleh derajat keterikatan air dalam bahan, baik terikat secara fisik maupun kimia. Menurut Winarno (1992), air yang terdapat dalam bahan makanan umumnya dipakai istilah air terikat (bound water), dimana derajat


(44)

30

keterikatan berbeda-beda dalam bahan. Menurut Fennema (1976), jumlah dari berbagai tipe air terikat berbagai bahan bervariasi tergantung sumber bahan.

Penetapan susut pengeringan dilakukan untuk menetapkan jumlah semua jenis bahan yang mudah menguap dan hilang pada kondisi tertentu. Bahan yang dimaksud tidak hanya air, namun senyawa lain yang dapat menguap pada saat pengeringan. Metode yang digunakan pada penetapan susut pengeringan pada pati adalah metode gravimetri. Susut pengeringan pada pati identik dengan penetapankadar air, kadar air yang tepat akan dapat mempertahankan mutu pati yang dihasilkan. Hasil penetapan susut pengeringan dapat dilihat pada Tabel 4.3

Tabel 4.3 Hasil Susut Pengeringan Pati Ubi Kayu (Manihot utillisima Pohl.)

Sampel Susut Pengeringan (%) Keterangan

IA 10,0878 Memenuhi Syarat

IB 9,3191 Memenuhi Syarat

IIA 6,6695 Memenuhi Syarat

IIB 7,0667 Memenuhi Syarat

IIIA 7,7271 Memenuhi Syarat

IIIB 7,8530 Memenuhi Syarat

Keterangan : I, II, dan III menyatakan daerah tumbuh ubi kayu (I: Pengunungan; II: Pemukiman; III: Pabrik). A dan B menyatakan jenis pelarut yang digunakan saat ekstraksi (A: Akuades; B: Air PAM)

Batas susut pengeringan yang ditetapkan pada Farmakope Indonesia untuk pati ubi kayu adalah maksimal 15%. Dari hasil penelitian seluruh sampel dalam kategori memenuhi syarat, adapun susut pengeringan tertinggi terdapat pada sampel IA yaitu sebesar 10,0878% sedangkan susut pengeringan terendah terdapat pada sampel IIA yaitu sebesar 6,6695%. Persyaratan kadar air SNI untuk tepung ubi kayu adalah maksimal 12%, sedangkan pada pati Amprotab yang dijual dipasaran dilakukan susut pengeringan sesuai Farmakope Indonesia. Hal yang mempengaruhi kadar air dalam


(45)

31

pati adalah suhu dan lama pengeringan sampel setelah ekstraksi, selain itu pati merupakan polimer yang terdiri dari monomer-monomer glukosa, jumlah monomer glukosa penyusun pati dipengaruhi oleh usia tanaman ubi kayu saat panen. Semakin tua umur ubi kayu saat dipenen maka semakin panjang rantai glukosa yang terbentuk, pembentukan rantai glukosa ini harus melibatkan molekul air sehingga semakin panjang rantai glukosa yang terbentuk semakin banyak pula molekul air yang terlibat sehingga mempengaruhi kadar air dalam pati.

4.3.7 Hasil Penetapan Sisa Pemijaran

Penetapan sisa pemijaran pada pati umbi ubi kayu (Manihot utillisima Pohl.) berhubungan dengan kandungan mineral-mineral anorganik sisa pembakaran bahan organik pada suhu sekitar 550ºC (Apriyantono, et al., 1988). Selain kandungan mineral yang ada didalam bahan baku, hal yang turut mempengaruhi kandungan zat anorganik adalah pengaruh proses pembuatan dan pelarut yang digunakan. Uji sisa pemijaran merupakan salah satu uji syarat kemurnian bahan baku dengan tujuan membuktikan bahwa bahan bebas dari senyawa asing dan cemaran atau mengandung senyawa asing dan cemaran dimaksudkan untuk membatasi senyawa demikian sampai pada jumlah yang tidak mempengaruhi partikel pada kondisi biasa. Penetapan sisa pemijaran/abu sulfat ini menggunakan prosedur untuk mengukur jumlah sisa zat yang tidak menguap dari pati.Uji ini digunakan untuk menentukan kandungan cemaran anorganik dalam zat organik (Kemenkes, RI., 2014).

Hasil penelitian menunjukkan bahwa pati yang diisolasi menggunakan pelarut air PAM memberi hasil yang lebih tinggi dibandingkan dengan pati yang diisolasi menggunakan aqudes. Hasil sisa pemijaran bila dilihat berdasarkan daerah tempat tumbuh diperoleh bahwa sampel yang diambil dari daerah pengunungan memberikan hasil yang lebih rendah dibandingkan dengan sampel yang diambil dari daerah


(46)

32

pemukiman dan pabrik. Persyaratan dalam Farmakope Indonesia edisi IV sisa pemijaran maksimal adalah 0,6%, sedangkan dalam Farmakope Indonesia edisi V sisa pemijaran maksimal adalah 1%. Sampel IIIB yaitu sampel yang berasal dari daerah pabrik dengan pelarut air PAM memberikan hasil 0,6166%, hasil ini melebihi batas maksimal dan tidak memenuhi persyaratan Farmakope Indonesia edisi IV, namun masih memenuhi syarat Farrmakope Indonesia edisi V. Pada pati Aprotab yang dijual dipasaran tidak melekukan prosedur sisa pemijaran sedangkan syarat untuk tepung berdasarkan SNI, kadar abu maksimal untuk tepung ubi kayu adalah 1,5%.

Tabel 4.4 Hasil Sisa Pemijaran Pati Ubi Kayu (Manihot utillisima Pohl.)

Sampel Sisa Pemijaran (%) Keterangan

IA 0,1888 Memenuhi Syarat

IB 0,2652 Memenuhi Syarat

IIA 0,2389 Memenuhi Syarat

IIB 0,3617 Memenuhi Syarat

IIIA 0,5025 Memenuhi Syarat

IIIB 0,6166 Memenuhi Syarat

Keterangan : I, II, dan III menyatakan daerah tumbuh ubi kayu (I: Pengunungan; II: Pemukiman; III: Pabrik). A dan B menyatakan jenis pelarut yang digunakan saat ekstraksi (A: Akuades; B: Air PAM)

Menurut Momuat, et al., (2011), terdapat mineral dalam tanah yang ketebalannya adalah 15-35 cm. Lapisan ini mudah hilang oleh pengikisan air hujan. Pengikisan tersebut menyebabkan mineral yang terkandung dalam tanah dibawa oleh air hujan ke sungai dan sebagian meresap ke dalam tanah. Mineral-mineral tersebut mengalir bersama air sungai dan air tanah dari tempat yang lebih tinggi ke tempat yang lebih rendah dan akhirnya mengendap di tempat yang posisinya lebih rendah. Hal ini menyebabkan tanah di daerah dataran rendah memiliki kandungan mineral yang lebih besar konsentrasinya dan lebih beragam jenisnya daripada tanah di daerah


(47)

33

dataran tinggi. Kandungan mineral inilah yang menentukan hasil sisa pemijaran yang diperoleh.

4.3.8 Hasil Pemeriksaan Mikrobiologi Bahan Organik Asing

Pemeriksaan mikrobiologi bahan organik asing dilakukan untuk mengetahui bahan organik yang mungkin ada selain sampel itu sendiri. Dalam Farmakope bahan organik asing pada pati Manihot utillisima tidak lebih dari sesepora sel, bahan organik asing yang dimaksud adalah cemaran mikroorganisme yang dapat memepengaruhi kualitas pati pada saat penyimpanan. Pemeriksaaan dilakukan dengan menggunakan media PCA sebagai media pertumbuhan untuk menentukan

total plate count. Hasil total plate count dinyatakan dalam cfu/g dapat dilihat pada

Tabel 3.5.

Tabel 4.5 Total Plate Count pada pati ubi kayu (Manihot utillisima Pohl.) Sampel Total Plate Count (cfu/g) Keterangan

IA 70×101 Memenuhi Syarat

IB 135×101 Tidak Memenuhi Syarat

IIA 80×101 Memenuhi Syarat

IIB 167×101 Tidak Memenuhi Syarat

IIIA 75×101 Memenuhi Syarat

IIIB 189×101 Tidak Memenuhi Syarat

Keterangan : I, II, dan III menyatakan daerah tumbuh ubi kayu (I: Pengunungan; II: Pemukiman; III: Pabrik). A dan B menyatakan jenis pelarut yang digunakan saat ekstraksi (A: Akuades; B: Air PAM)

Hasil penelitian menunjukkan bahwa terdapat pertumbuhan koloni yang terdapat pada sampel didominasi jamur. Koloni jamur yang ada diuji lanjut dalam media PDA, setelah diinkubasi selama 48 jam ditemukan koloni berwarna putih, inkubasi dilakukan hingga 10 hari. Koloni yang terbentuk diamati dan didapatkan hasil bahwa koloni yang terbentuk berwarna hitam, kemudian dilakukan pemeriksaan menggunakan mikroskop. Berdasarkan hasil mikroskopik, jamur yang ada dalam pati adalah Rhizopus sp. dari filum Zygomycota famili Mucoraceae.Sampel yang positif mengandung jamur Rhizopus sp. adalah sampel IB, IIB, dan IIIB. Ketiga sampel ini Universitas Sumatera Utara


(48)

34

adalah pati yang menggunakan air PDAM sebagai pelarut pada saat ekstraksi, diduga bahwa dalam air PDAM terdapat spora yang kemudian berkembang dalam pati secara vegetative. Sampel yang memenuhi syarat yang tertera dalam Farmakope Indonesia adalah sampel yang diekstraksi menggunakan akuades sebagai pelarut yaitu sampel IA, IIA, dan IIIA. Adapun pati Amprotab dan tepung ubi kayu berdasarkan SNI tidak melakukan uji bahan organik asing.

Jamur dapat bereproduksi secara seksual maupun aseksual, reproduksi aseksual akan diproduksi spora. Pada kelompok Zygomycota spora yang diproduksi adalah sporangiospora. Sporangiospora merupakan spora yang dibentuk di dalam sporangium. Inti-inti yang ada di dalam kolumela (ujung sporangiofor) akan keluar menembus dinding kolumela masuk ke dalam suatu kantung yaitu sporangium. Sporangium merupakan karpus untuk reproduksi aseksual mirip kantung yang berbentuk bulat atu semibulat. Sporangium semula berwarna bening atau agak kekuningan karena mengandung senyawa β- karoten kemudian berwarna hitam karena senyawa karoten mengalami polimerisasi yang disebabkan proses oksidasi. Selanjutnya terbentuk sporopolenin yaitu senyawa yang sangat resisten terhadap degradasi. Apabila jumlah sporangiospora telah mencapai jumlah maksimum untuk spesies tersebut maka sporangium akan pecah dan sporangiospora akan lepas ke lingkungan. Sisa dinding sporangium akan terlihat menggantung pada dasar kolumela (Alexopoulos, 1907).

Pati atau amilum merupakan polisakarida yang strukturnya dibentuk oleh ikatan antar atom karbon. Sebagian besar dari berat kering sel jamur terdiri dari karbon, ini menunjukkan adanya indikasi penting antara senyawa-senyawa karbon dengan sel. Senyawa-senyawa organik digunakan sebagai materi pembentuk struktur dan menyediakan energi kedalam sel melalui oksidasi. Karbon diperlukan dalam


(49)

35

jumlah yang lebih banyak dibandingkan dengan elemen esensial lainnya oleh jamur, dan nutrisi karbon menjadi yang terpenting bagi jamur. Pati merupakan sumber karbon yang banyak digunakan oleh jamur, dengan bantuan enzim amylase dan air pati akan diubah menjadi maltose yang mana maltose ini akan diubah oleh jamur menjadi glukosa dengan bantuan enzim maltase dan molekul air (Moore,1982). Adanya spora didalam pati akan memberikan kehidupan yang lebih baik bagi spora yang pada akhirnya akan menyebabkan tumbuhnya jamur didalam pati.

4.3.9 Hasil Pemeriksaan Mikrobiologi Penetapan Batas Mikroba

Penetapan batas mikroba pada pati Manihot utillisima berdasarkan Farmakope IV tidak boleh mengandung Escherichia coli, pada penelitian dilakukan pengecatan gram, hasil menunjukkan bahwa bakteri yang ada dalam sampel adalah bakteri gram positif, sebab dibawah mikroskop bakteri yang diperiksa berwarna ungu.

Escherichia coli merupakan bakteri Gram negatif berbentuk batang pendek,

bakteri ini akan menunjukkan reaksi positif pada media BGLB yang ditandai dengan adanya kekeruhan dalam tabung reaksi. Penelitian dilakukan dengan cara menginkubasi sampel dalam media selama 24 jam dan tidak ditemukan adanya koloni yang terbentuk didalam pati ubi kayu. Adanya Eschericia coli menjadi acuan bahwa suatu bahan/sampel tercemar oleh feses manusia. Kontrol terhadap pati dilakukan dengan syarat tidak boleh mengandung Escherichia coli. Bakteri Escherichia coli merupakan jasad indikator dalam substrat air dan bahan makanan yang mampu memfermentasikan laktosa pada temperatur 37°C dengan membentuk asam dan gas. Bakteri ini berpotensi patogen karena pada keadaan tertentu dapat menyebabkan diare (Suriawiria, 1996). Batas mikroba untuk pati berdasarkan SNI berbeda dengan persyaratan Farmakope Indonesia, persyaratan untuk tepung ubi kayu dalam SNI


(50)

36

adalah cemaran mikroba E. coli maksimal 3 x 101 koloni/g, sedangkan untuk pati amprotab tidak ada batas untuk cemaran E. coli.


(51)

37 BAB V

KESIMPULAN DAN SARAN

5.1 Kesimpulan

Hasil Penelitian yang dilakukan terhadap pati yang diisolasi dari umbi ubi kayu (Manihot utilllisima Pohl.) diperoleh kesimpulan :

1. Pati yang diisolasi dari umbi ubi kayu (Manihot utilllisima Pohl.) yang memenuhi standar Farmakope Indonesia adalah pati yang diisolasi menggunakan akuades sebagai pelarut.

2. Perbedaan karakteristik yang diperoleh dari isolai pati umbi ubi kayu (Manihot utilllisima Pohl.) antara pelarut akuades dan air PAM adalah: Untuk penetapan keasaman, volume NaOH yang digunakan dari sampel IA hingga IIIB berurutan dalam mL 1,1567; 1,1067; 1,0633; 1,0500; 1,1200; 1,0667. Untuk penetapan susut pengeringan dari sampel IA hingga IIIB dalam % 10,0878;9,3191; 6,6695; 7,0667;7,7271; 7,8530.Untuk penetapan sisa pemijaran dari sampel IA hingga IIIB dalam % 0,1888; 0,2652, 0,2389; 0,3617; 0,5025; 0,6166. Untuk penetapan bahan organik asing, sampel yang menggunakan pelarut air PAM pada saat ekstraksi tidak memenuhi syarat, sedangkan sampel yang menggunakan akuades pada saat ekstraksi memenuhi syarat Farmakope Indonesia.

5.2 Saran

Disarankan pada peneliti selanjutnya untuk menggunakan perbedaan tempat tumbuh ubi kayu dan usia panen sebagai variabel dalam penelitian berikutnya.


(52)

5 BAB II

TINJAUAN PUSTAKA

2.1 Ubi Kayu (Manihot utilissima Pohl.) 2.1.1 Sistematika Tumbuhan

Menurut Tjitrosoepomo (1996) klasifikasi tumbuhan singkong (Manihot

utilissima) secara sistematik adalah sebagai berikut:

Kingdom : Plantae

Divisi : Spermatophyta Sub divisi : Angiospermae Kelas : Dicotyledoneae Ordo : Euphorbiales Famili : Euphorbiaceae Genus : Manihot

Spesies : Manihot utilissima Pohl. 2.1.2 Nama Daerah

Ubi kayu mempunyai banyak nama, yaitu ketela, keutila, ubi kayee (Aceh), ubi parancih (Minangkabau), ubi singkung (Jakarta), batata kayu (Manado), bistungkel (Ambon), huwi dangdeur (Sunda), tela pohung (Jawa), tela balandha (Madura), sabrang sawi (Bali), kasubi (Gorontalo), lame kayu (Makassar), lame aju (Bugis), kasibi (Ternate, Tidore) (Purwono, 2009).

2.1.3 Deskripsi Tumbuhan

Singkong (Manihot utilissima) adalah tanaman dikotil. Merupakan tanaman semak belukar tahunan, ubi kayu tumbuh sekitar 1-4 m dengan daun besar yang menjari dengan 5-9 belahan lembar daun. Daunnya yang bertangkai panjang bersifat cepat luruh yang berumur paling lama hanya beberapa bulan. Batangnya memiliki


(53)

6

pola percabangan yang khas, yang keragamannya bergantung pada kultivar. Pada tanaman yang diperbanyak secara vegetatif, akar serabut tumbuh dari dasar lurus. Umbinya berwarna putih atau kekuning-kuningan (Sudarma, 2013). Singkong memiliki umbi atau akar pohon yang panjang dengan diameter dan tinggi batang yang beagam tergantung dari varietasnya. Di Indonesia, umbinya dikenal luas sebagai makanan pokok penghasil karbohidrat dan daunnya sebagai sayuran (Agoes, 2010). 2.1.4 Kandungan kimia

Singkong segar mempunyai komposisi kimia terdiri dari kadar air sekitar 60%, pati 35%, serat kasar 2,5%, kadar lemak 0,5% dan kadar abu 1%, meskipun merupakan sumber karbohidrat dan serat makanan, namun sedikit kandungan zat gizi seperti protein (Litbang, 2011).

Tabel 2.1 Komposisi Kimia Singkong (per 100 gram bahan)

No. Komponen Kadar per 100 g

1. Kalori 146 kkal

2. Protein 0,8 g

3. Lemak 0,3 g

4. Karbohidrat 34,7 g

5. Air 62,5 g

6. Kalsium 33 mg

7. Fosfor 40 mg

8. Zat besi 0,7 mg

9. Asam Askorbat 30 mg

10. Thiamin 0,06 mg

11. Bagian yang dapat dimakan 75% Sumber : Departemen Kesehatan (1992).

2.2 Pati

Pati merupakan kabohidrat yang berbentuk granula.Granula pati ini disimpan dalam biji, akar, atau batang tanaman.Pati berfungsi sebagai cadangan makanan tanaman dalam masa dormanasi, germinasi, ataupun pertumbuhan. Pati disintesis dari air dan karbondioksida dengan bantuan klorofil dan sinar matahari. Selama proses fotosintesis ini, pati terakumulasi di daun dalam bentuk granula-granula kecil dengan Universitas Sumatera Utara


(54)

7

diameter ± 1 µm (Swinkels, 1985). Sedangkan pada waktu malam hari, pati di daun ini dipecah oleh enzim dan ditranportasikan dalam bentuk glukosa (terutama sukrosa) ke bagian tanaman yang lain. Pada organ tanaman inilah, beberapa glukosa dikonversi lagi menjadi pati dan disimpan sebagai cadangan makanan (Knight, 1969). Molekul pati disimpan dalam bagian amyloplast pada tanaman (Charley, 1982).

Pati merupakan senyawa polisakarida yang terdiri dari monosakarida yang berikatan melalui ikatan oksigen. Monomer dari pati adalah glukosa yang berikatan dengan ikatan α (1,4)-glikosidik, yaitu ikatan kimia yang menggabungkan 2 molekul monosakarida yang berikatan kovalen terhadap sesamanya. Pati merupakan homopolimer glukosa dengan ikatan -glikosidik. Berbagai macam pati tidak sama sifatnya, tergantung dari panjang rantai C-nya, serta apakah lurus atau bercabang rantai molekulnya. Pati terdiri dari dua fraksi yang dapat dipisahkan dengan air panas.Fraksi terlarut disebut amilosa dan fraksi tidak larut disebut amilopektin.

2.2.1 Granula Pati

Pati terdiri dari butiran-butiran kecil yang disebut granula. Ukuran dan bentuk granula pati bervariasi, tetapi kebanyakan berbentuk bulat. Di bawah mikroskop, granula pati merupakan struktur yang dibentuk dari molekul-molekul yang tersusun konsentris. Ukuran granula pati bervariasi tergantung sumber tanaman, yaitu antara ± 1-150 µm. Bentuk granula pati juga bervariasi dari poligon kecil (pati jagung) sampai bulatan besar (pati gandum) (Brautlecht, 1953). Bentuk granula pati spesifik untuk setiap jenis pati, sehingga dapat dibedakan antara satu dengan yang lainnya baik secara organoleptik maupun secara mikroskopik (Heimann, 1980).

Granula pati ubi kayu memiliki ukuran yang bervariasi antara 5-40 µm dengan bentuk bulat atau oval (Moorthy, 2004), atau berbentuk bulat dan terpotong di salah satu ujungnya berbentuk seperti ketel serta memiliki letak hilum di tengah yang jelas


(55)

8

(Brautlecht, 1953). Variasi tersebut dipengaruhi oleh varietas tanaman singkong dan periode pertumbuhan pada musim yang berbeda (Moorthy, 2004). Rantai polimer glukosa pada granula pati bergabung satu sama lain melalui ikatan hidrogen yang kuat membentuk kristal atau misela (Swinkels, 1985). Di antara misela terdapat daerah yang renggang atau amorf (Pomeranz, 1985). Daerah amorf lebih mudah dimasuki oleh air karena strukturnya lebih sederhana tidak beraturan. Amilosa sebagian besar berada pada bagian amorf dari granula pati dan sebagian kecil menyusun bagian kristalin. Sedangkan, amilopektin merupakan komponen utama penyusun bagian kristalin pati (Kaletunc dan Breslauer 2003).

Gambar 2.1 Struktur Granula Pati (Anonim,2009)

Daerah kristalin lebih resisten terhadap reaksi enzimatis, reaksi kimia dan penetrasi oleh air daripada daerah amorf. Granula pati terdiri dari ± 30% daerah kristalin (Hoseney, 1998). Granula pati di bawah mikroskop akan merefleksikan cahaya terpolarisasi dan memperlihatkan pola ‘maltose cross’ (pola silang), yang


(56)

9

dikenal dengan nama sifat birefringence (Taggart, 2004). Struktur granula pati secara keseluruhan dapat dilihat pada Gambar 2.1.

2.2.2 Struktur Molekul Pati

Pati merupakan karbohidrat yang disusun dari atom karbon, hidrogen dan oksigen dengan rumus molekul (C6H10O5)n. Pati merupakan kondensasi polimer glukosa dengan ikatan gkukosida pada C1. Ikatan glukosida ini stabil pada kondisi basa, tetapi akan terhidrolisis pada kondisi asam (Swinkels, 1985). Pati merupakan gabungan dari dua fraksi, yaitu amilosa dan amilopektin. Pati dari berbagai sumber, satu per empat bagian merupakan amilosa dan tiga per empat bagian merupakan amilopektin (Charley, 1982). Perbedaan antara kedua makromolekul tersebut terletak pada pembentukan percabangan pada struktur liniernya, ukuran derajat polimerisasi, ukuran molekul, dan pengaturan posisi pada granula pati.

Tabel 2.2 Sifat Fisik dan Kimia Berbagai Jenis Pati Jenis Pati Bentuk Granula

Ukuran Granula (µm) Kandungan Amilosa (% rasio) Kandungan Amilopektin (% rasio)

Sagu Elips agak terpotong 20 – 60 27 23

Beras Poligonal 3 – 8 17 83

Jagung Poligonal 5 – 25 26 74

Kentang Bundar 15 – 100 24 76

Ubi Kayu Oval 5 – 35 17 83

Gandum Elips 2 – 35 25 75

Ubi Jalar Poligonal 16 – 25 18 82

Sumber: Knight (1969)

Pati dari sumber yang berbeda memilki ratio amilosa-amilopektin yang berbeda pula. Pati jagung, gandum, dan sorghum memiliki kandungan amilosa yang lebih tinggi (amilopektin ± 28%) dibandingkan dengan kelompok umbi-umbian seperti ubi kayu dan kentang (amilosa 20%) (Swinkels, 1985). Variasi komponen amilosa dan amilopektin berkaitan kompleksitas biosintesis pati (Copeland, et al., 2009). Perbandingan amilopektin dengan amilosa bervariasi tergantung dari jenis


(57)

10

sumber patinya, normalnya adalah 80 : 20. Rasio ini memiliki pengaruh penting untuk mengetahui sifat dan tingkah laku pati (Knight, 1969). Data perbandingan amilosa dan amilopektin pada berbagai sumber pati disajikan pada Tabel2.2.

2.2.2.1 Amilosa

Amilosa merupakan polimer glukosa rantai lurus dengan ikatan α-(1,4)-D-glukosa (Swinkels, 1985) dan sebanyak 0,5% merupakan rantai cabang (Copeland, et al., 2009). Amilosa memiliki derajat polimerisasi 1000-10000 unit glukosa (Copeland, et al., 2009). Perilaku amilosa dalam pangan didominasi oleh dua sifat, yaitu kemudahan amilosa untuk membentuk kompleks dengan polimer lain dan kemampuan amilosa untuk membentuk kristalin akibat interaksi molekular (Banks, et al., 1973).

Gambar 2.2 Struktur Amilosa (Taggart, 2004).

Amilosa memiliki afinitas terhadap iodin dan molekul lain yang mengandung gugus hidrofobik dan hidrofilik, seperti asam lemak dan berbagai surfaktan (Wurzburg, 1968), butanol, fenol, dan hidrokarbon (Swinkels, 1985), dimana kompleks yang ada membentuk formasi heliks. Kemampuan pembentukan kristal oleh amilosa dikarenakan struktur amilosa cukup sederhana sehingga mempunyai kecenderungan untuk terorientasi secara pararel antara rantai yang satu dengan yang lain dan saling mendekat, membentuk satu polimer yang dihubungkan oleh ikatan hidrogen (Taggart, 2004).


(58)

11 2.2.2.2 Amilopektin

Amilopektin merupakan polimer yang lebih besar, dengan bobot molekul 108 dan derajat polimerisasi lebih dari satu juta (Copeland, et al.,2009). Amilopektin merupakan glukosa yang memiliki rantai bercabang yang terdiri dari ± 10-60 unit glukosa dengan ikatan α-(1,6)-D-glukosa. Percabangan ini membuat berat molekul amilopektin 1000 kali lebih berat dari berat molekul amilosa. Berbeda dengan amilosa, ukuran dan percabangan dari amilopektin ini dapat menghalangi gerakan molekul dan kecenderungannya untuk saling membentuk ikatan intermolekul. Oleh karena itu diperlukan ikatan hidrogen yang lebih ekstensif untuk terjadinya retrogradasi (Taggart, 2004) sehingga membutuhkan waktu yang lama untuk beretrogradasi dibandingkan dengan amilosa (Wurzburg, 1968). Amilopektin cenderung lemah dalam gelasi, retrogradasi, dan sineresis karena stuktur cabang yang dimilikinya. Semakin tinggi kadar amilopektin, semakin tinggi kemampuan hidrasi karena percabangan amilopektin lebih reaktif untuk mengikat air (Panikulata, 2008).

Gambar 2.3 Struktur Amilopektin (Taggart, 2004). 2.3 Pembuatan Pati

Pada prinsipnya pembuatan pati adalah memisahkan komponen pati dari dalam sel umbi ubi kayu kemudian memisahkan dari komponen lainnya sehingga didapat pati dalam keadaan semurni mungkin. Prinsip pengolahan pati terdiri dari empat tahap penting, yaitu: (1) Pemecahan sel dan pengambilan atau pemisahan granula pati dari bagian lain yang tidak larut dengan cara pencucian, pengupasan,


(59)

12

pemarutan, penyaringan; (2) Pengambilan pati dengan penambahan air, kemudian diendapkan dan dicuci; (3) Penghilangan air (pengeringan) dan (4) Penepungan agar mendapatkan pati yang dikehendaki (Makfoeld, 1982). Diagram alir pembuatan pati dapat dilihat pada Gambar 2.4.

Pada dasarnya, bahan baku yang digunakan untuk memproduksi pati dapat berasal dari semua jenis ubi kayu. Sebelum diolah menjadi pati, ubi kayu dikupas untuk menghilangkan kotoran dan kulit. Setelah itu, pencucian dilakukan untuk menghilangkan lendir (lapisan kambium) dan kotoran yang masih menempel pada umbi. Lendir akan menimbulkan warna yang tidak diinginkan.

Selama penyaringan dapat ditambah air untuk membantu memisahkan granula pati dari matriks serat dan menjaga saringan tetap bersih. Penyaringan dengan penambahan air ini dilakukan bertahap sampai pati terekstrak semaksimal mungkin. Hasil penyaringan kemudian diendapkan. Pengendapan sangat tergantung pada diameter granula pati, keasaman dari mediumnya, kandungan protein yang ikut, dan zat kolodial lainnya (Makfoeld, 1982). Berbagai bahan kimia seperti asam sulfat (0.001 mL/L), klorin (1 mg/L), tawas (0.1 g/L), dan sulfur dioksida sering ditambahkan selama proses pengendapan untuk mempersingkat waktu, meningkatkan keputihan, dan kekompakan endapan pati yang dihasilkan.

Pati akan memisah dengan mengendap di bagian bawah, sedangkan bagian supernatan dipisahkan dan dibuang. Endapan pati yang berbentuk padat semi cair ini dikeringkan dalam oven pengering (Sajeev, et al, 2002). Endapan pati ini memiliki kadar air sekitar 35%-40%. Pengeringan dilakukan pada suhu yang tidak terlalu tinggi yaitu di bawah suhu gelatinisasi untuk mencegah terjadinya gelatinisasi pati yang akan menurunkan mutu pati. Hasil pengeringan ini menghasilkan gumpalan-gumpalan pati kasar. Setelah itu gumpalan-gumpalan pati ini digiling. Hasil penggilingan ini


(60)

13

menghasilkan pati dengan ukuran mesh pati yang belum seragam (Sriroth, et al, 2000).

Gambar 2.4 Diagram alir pembuatan pati (Makfoeld, 1982). 2.4 Air

Air merupakan zat kimia yang penting bagi semua bentuk kehidupan yang diketahui sampai saat ini di bumi. Air adalah senyawa kimia dengan rumus kimia H2O, pada kondisi standar, air bersifat tidak berwarna, tidak berasa dan tidak berbau.

Kotoran

Potongan Ubi Kulit

Air Rendama

n Endapan Granula Pati

Pengeringan Endapan Pati Penghancuran

Pati Pengayakan

Perendaman dan Pengendapan Butiran Pati

Penyaringan dan Pencucian Ampas

Parutan Umbi

Pemarutan (Pemecahan Jaringan) Umbi

Pengupasan Ubi kayu

Pemotongan dan Pembersihan


(61)

14

Air merupakan suatu pelarut yang penting, yang memiliki kemampuan untuk melarutkan banyak zat kimia lainnya, seperti garam-garam, gula, asam, beberapa jenis gas dan banyak macam molekul organik (Kusmayadi, 2008).

2.4.1 Air PDAM

Menurut Peraturan Pemerintah Nomor 82 Tahun 2001 tentang pengelolaan kualitas air dan pengendalian pencemaran air, air PDAM dikelompokkan menjadi air kelas satu, air yang peruntukkannya dapat digunakan untuk air baku air minum, dan/atau peruntukkan lain yang mempersyaratkan mutu air yang sama dengan kegunaan tersebut. Air PDAM yang dialirkan ke konsumen telah memenuhi standar SNI, namun pencemaran bisa saja terjadi pada saat pendistribusian hingga saat penggunaan air PDAM. Pencemaran yang dimaksud adalah virus, bakteri patogen, parasit dan bahan kimia.

2.4.2 Air Suling

Air suling dikenal juga sebagai akuades, aqua destilata adalah air hasil penyulingan tidak sama dengan air mineral, bahkan tidak ada kandungan mineralnya (Ditjen, POM., 1979). Air suling adalah air yang dihasilkan dari proses destilasi dimana air dipanaskan hingga mendidih, uap yang dihasilkan masuk kedalam kondensor/pendingin sehingga uap air berubah kedalam wujud cair, air ini ditampung dalam wadah. Proses penyulingan dapat menghilangkan mikroba dan/atau kotoran dalam air. Proses pemurnian air ini dianggap sangat efektif dalam membuat air bersih dan hampir murni. Seiring dengan itu mineral yang mungkin menjadi bagian dari air juga akan berkurang bahkan tidak ada sama sekali (Anonim, 2016).


(62)

15

2.5 Pati Ubi Kayu Standar Farmakope Indonesia

Menurut Farmakope Indonesia edisi kelima, pati singkong adalah pati yang diperoleh dari umbi akar Manihot utilissima Pohl (Familia Euphorbiaceae). Syarat mutu pati sesuai dengan standar Farmakope Indonesia dapat dilihat pada Tabel 2.3. Tabel 2.3 Syarat Mutu Pati Sesuai Standar Farmakope Indonesia Edisi V

Kriteria Uji Satuan Persyaratan

Pemerian - Serbuk sangat halus; putih

Mikroskopik - Butir tunggal, agak bulat atau

bersegi banyak; butir kecil diameter 5-10 µm, butir besar bergaris tengah 20-35 µm; hilus ditengah berupa titik, garis lurus atau bercabang tiga; lamela tidak jelas, konsentris; butir majemuk sedikit, terdiri dari 2 atau 3 butir tunggal yang tidak sama bentuknya.

Kelarutan

a. dalam air dingin b.dalam etanol

-

a. Praktis tidak larut b. Praktis tidak larut Identifikasi

a. dididihkan dalam air b. penambahan iodum 0,05 M

- -

a. terbentuk larutan kanji encer b.terbentuk warna biru tua yang hilang pada pemansan dan timbul kembali pada pendinginan

Keasaman mL NaOH 0,1 N Maksimal 2,0

Susut pengeringan % b/b Maksimal 15,0

Sisa pemijaran %b/b Maksimal 1,0

Angka Lempeng Total koloni/g 1000

Batas Mikroba - Tidak boleh mengandung

Escherichia coli

Sumber : (Kemenkes, RI., 2013)


(63)

1 BAB I PENDAHULUAN

1.1. Latar Belakang

Indonesia merupakan daerah tropis yang kaya akan hasil sumber daya alam, salah satu hasilnya adalah umbi-umbian seperti ubi kayu atau ketela pohon. Ubi kayu adalah salah satu komoditas pertanian jenis umbi-umbian yang cukup penting di Indonesia baik sebagai sumber pangan maupun sumber pakan, hal ini disebabkan karena tanaman ubi kayu mempunyai beberapa keunggulan dibandingkan dengan tanaman pangan lain, diantaranya dapat tumbuh di lahan kering dan kurang subur, daya tahan terhadap penyakit relatif tinggi, masa panennya yang tidak diburu waktu sehingga dapat dijadikan lumbung hidup. Tanaman ini dikonsumsi sebagai makanan pokok oleh kira-kira 400 juta orang di daerah-daerah tropik yang lembab (Damardjati,1990).

Pemanfaatan ubi kayu (Manihot utilissima Pohl) di Indonesia telah dikenal secara luas baik sebagai bahan pangan yang dikonsumsi melalui pengolahan industri juga digunakan untuk pakan dan industri non-pangan. Dewasa ini sebagian besar hasil ubi kayu dalam negeri dimanfaatkan untuk pangan yakni sekitar 75%, selebihnya untuk pakan 2%, industri non pangan 14%, dan hilang tercecer sebesar 9% (Hafsah, 2003).

Upaya peningkatan produksi ubi kayu tanpa disertai peningkatan pengolahan tidak akan banyak gunanya, bahkan panen yang melimpah dengan produksi rata-rata 30 ton per hektar melebihi permintaan sehingga menurunkan harga jualnya dan merugikan petani. Peningkatan produksi ubi kayu dari tahun ke tahun menyebabkan ubi kayu terbuang percuma karena kurangnya pengetahuan dibidang pengolahannya atau diversifikasi ubi kayu (Biro Pusat Statistik, 2003). Menurut Biro Pusat Statistik


(64)

2

(2009), produksi tanaman ubi kayu di Indonesia pada tahun 2008 sebesar 20.834.241 ton. Melihat kandungan pati pada singkong sebesar 90%, maka pada tahun tersebut dapat menghasilkan 18.750.816,9 ton pati singkong. Produksi pati yang tinggi, penanamannya yang mudah, dan mudah didapatkan di Indonesia menjadikan singkong sangat potensial dijadikan sebagai bahan baku pembuatan pati/amilum.

Amilum/pati dalam bidang farmasi merupakan bahan tambahan/eksipien yang penting dalam formulasi sediaan tablet yang berfungsi sebagai bahan pengisi, bahan pengikat dan bahan penghancur (Swabrick, 2007). Bahan-bahan untuk membuat sedian farmasi selama ini 90% masih impor, tidak hanya bahan aktifnya saja bahkan bahan-bahan tambahan pun yang sebenarnya bahan bakunya terdapat dalam negeri masih diimpor, misalnya amilum/pati. Tanaman sebagai sumber amilum di Indonesia sebenarnya banyak tersedia, mulai dari umbi-umbian, padi, jagung, sampai biji-bijian dari buah-buahan dan sebagainya yang ternyata memiliki kandungan pati/amilum sangat banyak, namun pemanfaatan amilum/pati dari sumber yang sangat banyak ini belum diusahakan sehingga berkualitas farmasetis dan bisa dipakai sebagai bahan untuk pembuatan sediaan obat (Gusmayadi, 2000).

Tingginya harga amilum impor menyebabkan banyak industri farmasi yang akhirnya memproduksi amilum sendiri yang tidak sesuai dengan standar Farmakope Indonesia. Amilum lokal yang tersedia dipasaran yang terbuat dari singkong

(Manihot utilissima Pohl.) dikenal dengan Amprotab. Amprotab telah digunakan

secara luas sebagai bahan pengisi, bahan pengikat dan bahan penghancur untuk formulasi sediaan tablet, namun amprotab yang diproduksi tidak memenuhi standar Farmakope Indonesia, hal ini menyebabkan amilum yang diproduksi tidak sesuai dengan kualitas pharmaceutical grade, untuk itu penelitian dalam bidang ini perlu digalakkan agar kelak bisa mendapatkan sumber bahan baku/tambahan obat yang


(65)

3

berasal dari negeri sendiri, tidak lagi tegantung bahan impor, yang tentunya akan menurunkan harga obat di masyarakat, menjadi harga yang lebih terjangkau.

Metode isolasi amilum melibatkan air hampir diseluruh prosesnya, mulai dari pencucian, penyaringan dan pengendapan. Kualitas air yan digunakan akan berpengaruh pada kualitas pati yag dihasilkan, adanya pencemaran dalam air akan turut mencemari pati. Selain pengaruh pelarut, hal yang turut mempengaruhi kualitas pati adalah tempat tumbuh tanaman. Ubi kayu yang mudah tumbuh dan kaya akan manfaat, membuat masyarakat sering tidak memperhatikan kualitas tanah yang digunakan pada saat penanaman ubi kayu, misalnya penanaman di pekarangan rumah yang dekat dengan jalan raya, penanaman dekat septictank. Hal-hal seperti ini turut mempengaruhi kualitas pati yang dihasilkan pada saat isolasi.

Berdasarkan uraian di atas maka dilakukan penelitian untuk membuat amilum/pati dari ubi kayu (Manihot utillissima) yang sesuai dengan standar Farmakope Indonesia dengan menggunakan variabel perbedaan pelarut antara air PAM dan akuades pada saat ekstraksi tanpa membedakan tempat tumbuh sampel. 1.2 Perumusan Masalah

Rumusan masalah dalam penelitian ini adalah:

1. Apakah pati yang diisolasi dari umbi ubi kayu (Manihot utillissima Pohl) memiliki karakteristik yang memenuhi standar Farmakope Indonesia? 2. Apakah terdapat perbedaan karakteristik pati yang diperoleh dari umbi ubi

kayu (Manihot utillisima Pohl) dengan perbedaan pelarut pada saat ekstraksi antara akuades dengan air PAM?


(1)

ix

2.2 Pati ... 6

2.2.1 Granula Pati ... 7

2.2.2 Struktur Molekul Pati ... 9

2.2.2.1 Amilosa ... 10

2.2.2.2 Amilopektin ... 11

2.3 Pembuatan Pati ... 11

2.4 Air ... 13

2.4.1 Air PDAM ... 14

2.4.2 Air Suling ... 14

2.5 Pati Ubi Kayu Standar Farmakope Indonesia ... 15

BAB III METODE PENELITIAN ... 16

3.1 Lokasi Penelitian ... 16

3.2 Jenis Penelitian ... 16

3.3 Alat-Alat ... 16

3.4 Bahan ... 16

3.5 Pembuatan Larutan Pereaksi dan Media ... 17

3.5.1 Pembuatan Larutan Pereaksi ... 17

3.5.1.1 Larutan Iodum 0,005 M ... 17

3.5.1.2 Larutan Etanol 70% ... 17

3.5.1.3 Larutan Etanol 80% ... 17

3.5.1.4 Larutan Fenolftalein 0,1% ... 17

3.5.1.5 Larutan NaOH 0,1 N ... 17

3.5.1.6 Larutan H2SO4 2 N ... 17

3.5.1.7 Larutan Ammonium Karbonat 16% ... 17

3.5.2 Pembuatan Media ... 18


(2)

x

3.5.2.1 Media Nutrient Agar ... 18

3.5.2.2 Media Potato Dextrose Agar ... 18

3.5.2.3 Media Brilliant Green Lactose Bile Broth .... 19

3.5.2.4 Media Plate Count Agar ... 19

3.6 Penyiapan Sampel ... 19

3.6.1Pengambilan Sampel ... 19

3.6.2 Identifikasi Sampel ... 20

3.6.3 Pembuatan Pati ... 20

3.7 Pemeriksaan Karakteristik Pati... 20

3.7.1 Pemeriksaan Pemerian ... 20

3.7.2 Pemeriksaan Kelarutan ... 20

3.7.3 Pemeriksaan Mikroskopik ... 21

3.7.4 Identifikasi ... 21

3.7.5 Penetapan Keasaman ... 21

3.7.6 Penetapan Susut Pengeringan ... 21

3.7.7 Penetapan Sisa Pemijaran ... 22

3.7.8 Pemeriksaan Bahan Organik Asing ... 22

3.7.9 Penetapan Batas Mikroba ... 22

BAB IV HASIL DAN PEMBAHASAN ... 24

4.1 Hasil Identifikasi Sampel ... 24

4.2 Hasil Rendemen ... 24

4.3 Hasil Pemeriksaan Karakteristik Pati ... 25

3.3.1 Hasil Pemeriksaan Pemerian ... 25

3.3.2 Hasil Pemeriksaan Kelarutan ... 35

3.3.3 Hasil Pemeriksaan Mikroskopik ... 26


(3)

xi

3.3.4 Hasil Identifikasi ... 26

3.3.5 Hasil Penetapan Keasaman ... 27

3.3.6 Hasil Penetapan Susut Pengeringan ... 29

3.3.7 Hasil Penetapan Sisa Pemijaran ... 31

3.3.8 Hasil Pemeriksaan Mikrobiologi Bahan Organik Asing ... 33

3.3.9 Hasil Pemeriksaan Mikrobiologi Batas Mikroba ... 35

BAB V KESIMPULAN DAN SARAN ... 37

5.1 Kesimpulan ... 37

5.2 Saran ... 37

DAFTAR PUSTAKA ... 38


(4)

xii

DAFTAR TABEL

Tabel Halaman

2.1 Komposisi Kimia Singkong (per 100 gram bahan) ... 6

2.2 Sifat Fisik dan Kimia Berbagai Jenis Pati ... 9

2.3 Syarat Mutu Pati Standar Farmakope Indonesia Edisi V ... 15

4.1 Hasil Rendemen Pati Ubi Kayu (Manihot utillisima Pohl.) ... 24

4.2 Hasil Penetapan Keasaman Pati Ubi Kayu (Manihot utillisima Pohl.) ... 28

4.3 Hasil Penetapan Susut Pengeringan Pati Ubi Kayu (Manihot utillisima Pohl.) ... 30

4.4 Hasil Penetapan Sisa Pemijaran Pati Ubi Kayu (Manihot utillisima Pohl.) ... 32

4.5 Total Plate Count pada Pati Ubi Kayu (Manihot utillisima Pohl.) ... 33


(5)

xiii

DAFTAR GAMBAR

Gambar Halaman

2.1 Struktur Granula Pati ... 8

2.2 Struktur Amilosa ... 10

2.3 Struktur Amilopektin ... 11

2.4 Diagram Alir pembuatan Pati ... 13


(6)

xiv

DAFTAR LAMPIRAN

Lampiran Halaman

1 Hasil Identifikasi Tumbuhan ... 43

2 Bagan Prosedur Pembuatan Pati ... 44

3 Tumbuhan, Umbi, dan Pati dari Ubi Kayu ... 45

4 Hasil Identifikasi Amilum Dengan Larutan Iodum ... 47

5 Gambar Pemeriksaan Mikroskopik Pati ... 48

6 Gambar Pemeriksaan Mikrobiologi Bahan Organik Asing ... 49

7 Tabel Total Plate Count Pada Pati ... 50

8 Gambar Pemeriksaan Mikrobiologi Jamur ... 51

9 Gambar Hasil Pemeriksaan Mikroskopik Jamur ... 52

10 Gambar Pemeriksaan Mikrobiologi Batas Mikroba ... 53

11 Perhitungan Susut Pengeringan ... 54

12 Perhitungan Sisa Pemijaran ... 61