Ekstraksi Aktivitas Antioksidan Komponen Minyak Atsiri Bahan Segar Dan Ekstrak Etanol Dari Ampas Rimpang Jahe Gajah Serta Aplikasi Terhadap Daging Ikan Nila

mutagenik, tetapi banyak senyawa bahan alami belum pernah diuji. Adapun keuntungandan kerugian dari antioksidan sintetis dan alami dirangkum dalam Tabel2. 4. Tabel 2.4. Keuntungandan Kerugian dariAntioksidanSintetis dan Alami Antioksidan sintetis Antioksidan alami murah mahal Banyak diterapkan Kegunaan terbatas padabeberapa produk menengahdengan aktivitasantioksidan yang tinggi Aktivitas antioksidan dengan rentang yang luas meningkatkan soal keselamatan dianggap sebagaizatberbahaya Penggunaan dilarang untuk beberapa dari mereka Meningkatkan dan memperluas penggunaan aplikasi Kelarutan rendah dalam air Jangkauan kelarutan luas Menurunkan keuntungan Menaikkan keuntungan Tidak ada argument ilmiah atau teknis rasional dapat diberikan untuk antioksidan alami: antioksidan alami lebih diterima oleh konsumen terutama berdasarkan alasan emosional. Kebanyakan antioksidanyang umumnya ditambahkan pada makanan misalnya propel galat, flavonoid, tokoferol-a, asam karnosat, karnosol, katekin, vitamin C merupakan yang mampu menstimulasi radikal bebas kerusakan pada komponen nonlipida, karbohidrat dan DNA dalam makanan. Namun,manfaat menggunakan antioksidan lebih besar daripada risiko. Tanpa antioksidan dalam makanan, produk oksidasi yang terbentuk dapat menyebabkan resiko yang lebih besar untuk kesehatan Pokorny, 2001. Bahan-bahan alami yang kaya akan antioksidan dapat diperoleh dengan ekstraksi.

2.5. Ekstraksi

Metode ekstraksi dilakukan tergantung pada beberapa faktor, antara lain : - tujuan dilakukan ekstraksi - skala ekstraksi - sifat-sifat komponen yang akan diekstraksi - sifat-sifat pelarut yang akan digunakan Hougton,1998 UNIVERSITAS SUMATERA UTARA Ekstraksi merupakan istilah yang paling umum untuk mendapatkan suatu senyawa yang berasal dari suatu campuran yang didapat dari kontak antara pelarut dengan senyawa terlarut di dalam bahan yang kita inginkan. Campuran itu bisa saja berupa padatan ataupun cairan, dan berbagai teknik dan alat ukur yang digunakan untuk situasi yang berbeda. Rodig, 1997 Ragam ekstraksi yang tepat sudah tentu bergantung pada tekstur dan bahan kandungan air dalam bahan tumbuhan yang diekstraksi. Umumnya kita perlu menghidrolisis jaringan tumbuhan untuk mencegah terjadinya oksidasi enzim. Mencelupkan jaringan daun segar atau bunga bila perlu dipotong-potong kedalam metanol mendidih yang mana merupakan suatu cara yang baik untuk mencapai tujuan itu. Alkohol merupakan pelarut serbaguna yang baik untuk ekstraksi pendahuluan. Selanjutnya bahan dapat dimaserasi dalam suatu pelumat, lalu disaring. Tetapi hal ini hanya betul-betul diperlukan bila kita ingin mengekstraksi habis. Harbone,1987 2.5.1. Lipida dalam hal sifat yang terkait dengan molekul lain melalui Ekstraksi Lipida dari Makanan dan Bahan Biologis a interaksi Van der Waals contoh : interaksi beberapa lipida dengan protein b ikatan elektrostatis dan hidrogen terutama antara lipida dengan protein c ikatan kovalen antara lipida, karbohidrat dan protein Karena itu, untuk memisahkan dan mengisolasi lipida dari matriks seluler yang kompleks,penanganan secara kimia dan fisis yang berbeda harus diberikan. Prosedur dalam ekstraksi lipida dari jaringan hewan atau tumbuhan biasanya meliputi beberapa langkah : Ketidaklarutan dalam air secara umum digunakan untuk pemisahan lipida dari komponen lainnya. Ekstraksi lengkap mungkin memerlukan waktu ekstraksi yang lama atau seri atau kombinasi pelarut sehingga lipida dapat dilarutkan dari matriks. a penyediaan sampel, yang meliputi: pengeringan, pengecilan b ukuran atau hidrolisis c homogenisasi jaringan dengan adanya pelarut d pemisahan cairan organik dan larutan dan fase padat e penghilangan kontaminasi non-lipida penghilangan pelarut dan pengeringan dari ekstrak UNIVERSITAS SUMATERA UTARA A. Persiapan sampel untuk analisis lipida tergantung pada jenis makanan dan sifat lipidanya. Analisis yang efektif membutuhkan pengetahuan tentang kimia, struktur dan konstituennya. Oleh karena itu, tidak mungkin merancang metode standar tunggal untuk ekstraksi semua jenis lemak dalam makanan yang berbeda. Penyediaan Sampel Ekstraksi lipida harus dilakukan sesegera mungkin setelah pelepasan jaringan dari organisme hidup sehingga untuk meminimalkan perubahan berikutnya. Ekstraksi langsung tidak selalu mungkin, namun sampel biasanya disimpan pada suhu yang sanga trendah dalam wadah tertutup, di bawah suasana nitrogen inert atau di atas es kering. Namun, proses pembekuanitu sendiri secara permanen dapat merusak jaringan sebagai akibat dari kejutan osmotik. Pencairan sampel diambil dari penyimpanan beku sebelum ekstraksi dapat meningkatkan kerusakan ini. Oleh karena itu, sampel jaringan harus homogen dan diekstraksi dengan pelarut tanpa diperbolehkan untuk mencair. Enzim lipolitik jaringan hewan dan tumbuhan biasanya dinonaktifkan ireversibel oleh homogenisasi dengan pelarut polar. Penggunaan suhu tinggi harus dihindari, melainkan juga dianjurkan, bila mungkin, untuk menjaga suasana inert selama persiapan sampel dan ekstraksi yang dapat meminimalkan reaksi oksidasi lipida tak jenuh. B. 1. Perlakuan Pengeringan Kadang-kadang pelarut nonpolar, seperti dietil eter dan heksana, tidak mudah menembus jaringan lembab kelembaban 8; Oleh karena itu, 2. ekstraksi lipida efektif tidak terjadi. Dietil eter adalah higroskopis dan menjadi jenuh dengan air sehingga tidak efisien untuk ekstraksi lipida. Pengeringan oven vakum pada suhu rendah atau liofilisasi biasanya dianjurkan. Pengecilan ukuran partikel Efisiensi ekstraksi lipida dari sampel kering juga tergantung pada ukuran partikel. Oleh karena itu, pengecilan ukuran partikel dapat meningkatkan luas permukaan, yang memungkinkan lebih banyak kontak langsung dengan pelarut, dan meningkatkan 3. ekstraksi lipida. Hidrolisis asambasa UNIVERSITAS SUMATERA UTARA Untuk membuat lipida yang tersedia bagi pelarut ekstraksi, matriks makanan sering dihidrolisis dengan asam atau alkali sebelum ekstraksi. Hidrolisis asam atau alkali diperlukan untuk melepaskan kovalen dan ionic terikat lipida dengan protein dan karbohidrat serta untuk memecah emulsi lemak. Digesti sampel dengan asam biasanya3-6M HCl dalam kondisi refluks mengubah lipida terikat tersebut untuk bentuk yang mudah diekstrak. C. Ekstraksi lipida dengan pelarut Ketidaklarutan lipida dalam air membuat kemungkinan pemisahan mereka dari protein, karbohidrat dan air dalam jaringan. Dalam analisis makanan rutin, kandungan lemak kadang-kadang disebut ekstrak eter, lemak netral, atau lemak kasar mengacu pada konstituen lipida “bebas” yang dapat diekstraksi ke dalam pelarut kurang polar, seperti petroleum eter atau dietil eter. Konstituen lipida yang “terikat” memerlukan pelarut lebih polar, seperti alkanol, untuk ekstraksi mereka. Oleh karena itu, penggunaan pelarut universal tunggal untuk ekstraksi lipida dari jaringan tidak mungkin. Selama ekstraksi pelarut, ikatan VanderWaals dan interaksi elektrostatik serta ikatan hidrogen rusak sampai batas yang berbeda, namun ikatan kovalen tetap utuh. Lipida netral terikat secara hidrofobik dandapat diekstraksi dari jaringan oleh pelarut nonpolar, sedangkan lipida polar, yang terikat secara dominan oleh gaya elektrostatik dan ikatan hidrogen, memerlukan pelarut polar untuk mampu memecah ikatan tersebut Lipida yang terikat secara kovalen kelompok polipeptida dan polisakarida tidak akan diekstrak sama sekali oleh pelarut organik dan akan tetap dalam residu nonlipida. Oleh karena itu, langkah hidrolisis mungkin diperlukan untuk melepaskan lipida kovalen terikat untuk membuat mereka sepenuhnya diekstrak : Akoh, 2002. 1. Sifat pelarut ekstraksi Jenis pelarut dan metode yang sebenarnya dalam ekstraksi lipida bergantung pada kedua sifat kimia dari sampel dan jenis ekstrak lipida yang diinginkan. Karakteristik yang paling penting dari pelarut yang ideal untuk ekstraksi lipida adalah kelarutan lipida tinggi ditambah dengan kelarutan rendah atau tidak ada protein, asam amino, dan karbohidrat. UNIVERSITAS SUMATERA UTARA Pelarut ekstraksi juga dapat mencegah hidrolisis lemak secara enzimatis, sehingga memastikan tidak adanya reaksi samping. Pelarut harus siap menembus partikel sampel dan harus memiliki titik didih yang relatif rendah untuk menguap dengan mudah tanpa meninggalkan residu ketika memperoleh lipida kembali. Pelarut yang banyak digunakan untuk isolasi lipida adalah alkohol metanol, etanol, isopropanol, n-butanol, aseton, asetonitril,eter dietil eter, isopropil eter, dioksan, tetrahidrofuran, halokarbon kloroform, diklorometan, hidrokarbon heksana, benzena, sikloheksana, isooktana atau campurannya. 2. Metode ekstraksi dengan pelarut tunggal Meskipun pelarut seperti benzena berguna dalam ekstraksi lipida, disarankan untuk mencari pelarut alternatif karena sifat potensial kanker dari produk tersebut, mudah terbakar dan toksisitas pelarut juga menjadi pertimbangan penting untuk meminimalkan potensi bahaya serta biaya dan sifat nonhigroskopis. Dietil eter dan petroleum eter merupakan yang paling umum digunakan untuk ekstraksi lipida. 3. Di samping itu, heksana dan kadang-kadang pentana lebih disukai untuk mendapatkan lipida dari minyak sayur Dietil eter mempunyai kemampuan solvasi yang lebih baik untuk lipida dibandingkan dengan petroleum eter. Metode ekstraksi dengan kombinasi pelarut Suatu pelarut tunggal nonpolar tidak dapat mengekstrak lipida polar dari jaringan untuk memastikan secara lengkap dan kuantitatif lipida dari jaringan, sistem pelarut terdiri dari berbagai perbandingan komponen polar dan nonpolar dapat digunakan seperti campuran ekstrak lipida total lebih mendalam dan ekstrak ini cocok untuk karakterisasi lipida lebih lanjut. Umumnya kloroform-metanol 2:1, v v sistem pelarut yang menyediakan media yang efisien untuk ekstraksi lipida dari jaringan hewan, tanaman, atau bakteri. Sistem pelarut awal adalah biner; selama proses ekstraksi, ini menjadi sebuah sistem terner yang terdiri dari kloroform, metanol, dan air dalam proporsi yang bervariasi, tergantung pada kadar air dari sampel. Karena potensi bahaya kesehatan kloroform, campuran pelarut yang mengandung alkana-alkohol-air campuran seperti heksana dan isopropanol, UNIVERSITAS SUMATERA UTARA dengan atau tanpa air telah berhasil digunakan untuk mengekstrak jaringan. Heksana-isopropanol 3:2, heptana-etanol-air-natrium dodesilsulfat 1:1:1, metilen klorida-metanol 2:1 dan heksana-aseton 1:1 merupakan pelarut kombinasi digunakan untuk mengekstrak lipida dari bahan biologis 4. Metode ekstraksi dengan pelarut non-organik Karena masalah lingkungan dan bahaya kesehatan potensial dari pelarut organik, pelarut nonorganic telah menjadi populer. Penggunaan gelombang mikro untuk mengisolasi lipida. Disarankan bahwa energi gelombang mikro dengan meningkatkan kekuatan rotasi yang menghubungkan molekul dipol pada molekul yang berdekatan, mengurangi energi yang dibutuhkan untuk mengganggu asosiasi hidrofobik. Ikatan hydrogen dan interaksi elektrostatis, sehingga membantu D. untuk melarutkan semua jenis lipida. Penghapusan kontaminan nonlipida dari ekstrak lipida dan pertimbangan praktis lainnya Penghapusan kontaminan nonlipida dari ekstrak lipida diperlukan karena sebagian besar pelarut yang digunakan juga melarutkan sejumlah besar minyak yang larut dalam rasa, pigmen, gula, asam amino, peptida rantai pendek, garam anorganik dan urea. Penggunaan larutan garam memiliki keuntungan mencegah atau meminimalkan pembentukan fase menengah. E. Penghilangan pelarut dari ekstrak lipida Penghilangan pelarut dari ekstrak lipida harus dikondisikan secara vakum dalam rotari evaporator, larutan harus dipekatkan dan dipindahkan ke dalam botol kecil. Lipida harus disimpan segera dalam pelarut non-alkoho linert seperti kloroform, n-heksana bukannya dibiarkan tetap dalam keadaan kering untuk waktu yang lama. Untuk mencegah atau memperlambat kerusakan oksidatif makanan, antioksidan banyak digunakan sebagai aditif dalam lemak dan minyak, dan dalam pengolahan makanan Akoh, 2002. UNIVERSITAS SUMATERA UTARA BAB 3 METODE PENELITIAN

3.1. Alat-Alat

Dokumen yang terkait

Aktivitas Antioksidan Edible Film Galaktomanan Yang Diinkorporasi Dengan Ekstrak Rimpang Jahe Pada Daging Ikan Nila

3 79 89

Analisis Secara GC-MS Komponen Minyak Atsiri dari Rimpang Tanaman Jerangau (Acorus calamus) Hasil isolasi Menggunakan Metode Hidrodestilasi Dibandingkan dengan Destilasi Uap

8 80 131

Aktivitas Antioksidan Komponen Minyak Atsiri Bahan Segar Dan Ekstrak Etanol Dari Ampas Rimpang Jahe Gajah Serta Aplikasi Terhadap Daging Ikan Nila

3 49 97

Analisis Komponen Kimia Minyak Atsiri Rimpang Jahe Merah (Zingiber officinale var. amarum) dengan GC-MS dan Uji Antioksidan Menggunakan Metode DPPH

32 249 106

Analisis Secara Gc-Ms Komponen Minyak Atsiri Dari Rimpang Tanaman Jerangau (Acoruscalamus) Hasil Isolasi Menggunakan Metode Hidrodestilasi Dibandingkan Dengan Destilasi Uap

7 81 131

Pengaruh Pemberian Ekstrak Metanol Rimpang Jahe (Zingiber officinale Rosc.) Terhadap Kadar Malondialdehid (MDA) Plasma dan Otot Gastroknemius Mencit Sebelum Latihan Fisik Maksimal

1 39 73

BAB 2 TINJAUAN PUSTAKA - Aktivitas Antioksidan Komponen Minyak Atsiri Bahan Segar Dan Ekstrak Etanol Dari Ampas Rimpang Jahe Gajah Serta Aplikasi Terhadap Daging Ikan Nila

0 0 28

AKTIVITAS ANTIOKSIDAN KOMPONEN MINYAK ATSIRI BAHAN SEGAR DAN EKSTRAK ETANOL DARI AMPAS RIMPANG JAHE GAJAH SERTA APLIKASI TERHADAP DAGING IKAN NILA SKRIPSI EDY TANTONO

0 0 14

BAB 2 TINJAUAN PUSTAKA - Aktivitas Antioksidan Komponen Minyak Atsiri Bahan Segar Dan Ekstrak Etanol Dari Ampas Rimpang Jahe Gajah Serta Aplikasi Terhadap Daging Ikan Nila

0 0 28

AKTIVITAS ANTIOKSIDAN KOMPONEN MINYAK ATSIRI BAHAN SEGAR DAN EKSTRAK ETANOL DARI AMPAS RIMPANG JAHE GAJAH SERTA APLIKASI TERHADAP DAGING IKAN NILA SKRIPSI EDY TANTONO

0 0 14