High Pressure Liquid Chromatography HPLC Gas Chromatography Mass Spectrophotometry GCMS

3.4 Sumber Subkultur

Kapang endofit yang digunakan sebanyak 27 subkultur yaitu genus Fusarium, Neofusicoccum, Cercospora, Cladosporium, Trichoderma, Guignardia, Gliocladiopsis, Diaporthe, Phoma, Penicillium, Pestalotiopsis, Lestosphaerulina dan Aspergillus. Subkultur kapang sudah diidentifikasi secara molekuler. Kapang diisolasi dari tanaman kina di Pusat Perkebunan Teh dan Kina PPTK, Gambung, Ciwidey, Bandung, Jawa Barat. Isolasi kapang dilakukan tanggal 29 September 2012 oleh Nani Radiastuti, M.Si dosen Biologi Fakultas Sains dan Teknologi UIN Syarif Hidayatullah Jakarta. Isolasi pukul 09.00-12.00 WIB. Lokasi Sampling l7° 835.78S 107°3059.55E. pH tanah 6,8 dan kelembaban tanah 35.

3.5 Cara Kerja

Gambar 5. Bagan kerja Penelitian Analisis Metabolit Sekunder Lain GCMS Analisis Metabolit Sekunder HPLC Ekstraksi Metabolit Sekunder Kloroform Ekstraksi Metabolit Sekunder Etil Asetat Pengujian Alkaloid Kuinin Pengujian Antibakteri Hasil +- Zona Hambat Analisis Metabolit Sekunder Lain GCMS Analisis Data - Kromatogram Preparasi Inokulum Bakteri Uji Fermentasi Cair Duplo Pengamatan Subkultur Kapang Sterilisasi Alat, Bahan dan Pembuatan Media

3.5.1 Persiapan Subkultur Kapang Endofit

Subkultur kapang endofit sebanyak 27 dengan genus berbeda ditumbuhkan pada cawan petri berisi media Potato Dextrose Agar PDA. Proses peremajaan subkultur ke media PDA baru bertujuan agar kapang tidak mati. Subkultur kapang dari media PDA lama dicetak menggunakan sedotan steril. Kapang lalu dipindahkan ke media PDA baru menggunakan tusuk gigi steril. Subkultur kapang ditumbuhkan di media PDA cawan dan PDA tabung. 3.5.2 Pembuatan Media 3.5.2.1 Pembuatan Media PDA dan PDB Sebanyak 39,0 g PDA dilarutkan di dalam 1000 ml akuades menggunakan erlenmeyer. Larutan dihomogenisasi dan dididihkan menggunakan hot plate dan magnetic stirer. Media PDA lalu disterilisasi menggunakan autoklaf pada suhu 121°C selama ± 15 menit pada tekanan 1,5 atm. Sebanyak 26,4 g PDB dilarutkan di dalam 1000 ml akuades menggunakan erlenmeyer. Larutan dihomogenisasi menggunakan hot plate dan magnetic stirer. Media dituang ke dalam botol besar sebanyak 200 ml. Media PDB disterilisasi menggunakan autoklaf pada suhu 121°C selama ± 15 menit pada tekanan 1,5 atm.

3.5.2.2 Pembuatan Media Nutrient Agar NA dan Nutrient Broth NB

Media NA sebanyak 28 g dilarutkan dalam 1000 ml akuades. Larutan dihomogenisasi menggunakan hot plate dan magnetic stirer. Media disterilisasi dengan autoklaf pada suhu 121°C selama ± 15 menit pada tekanan 1,5 atm. Media NB sebanyak 9 g dilarutkan dalam 1000 ml akuades. Larutan dihomogenisasi menggunakan hot plate dan magnetic stirer. Media NB lalu